detección de vibrio cholerae en muestras ambientales de procedimitnos de... · pseudomonas,...

1

1

Detección de Vibrio cholerae en Muestras Ambientales

Metodología de AnálisisTM. Lic Fabiola Rojas C.

Enero 2011

2

2

Muestras para análisis• Matriz Alimento

Pescados y mariscos Vegetales Alimentos en general

• Matriz Agua

Mar Pozo Aguas servidas

3

3

Metodología Microbiología tradicional

Referencias– Standard Methods for Examination of Water and Wastewater, 21 Ed. 2005.

– Bacteriological Analytical Manual Online, BAM Chapter 9 January 2004.

– Microbiology of food and animal feeding stuffs -- Horizontal method for the detection of potentially enteropathogenic Vibrio spp. -- Part 1: Detection of Vibrio parahaemolyticus and Vibrio cholerae ISO/TS 21872-1:2007

– NCh 2640 Of 2001:Productos hidrobiológicos- Detección de Vibrio cholerae.

– Compendium of Methods for the Microbiological Examination of Food, 4 Ed. 2001.

– Laboratory Methods for the Diagnosis of Vibrio cholerae Centers for Disease Control and Prevention. V. Examination of Food and Environmental Samples.

4

4

Metodología

Microbiología tradicional

• Detección• Aislamiento• Identificación• Confirmación

5

5

Etapas

• Detección

Enriquecimiento Aislamiento en agar selectivo

6

6

Etapas

• Identificación

Pruebas bioquímicas

Serología

7

7

Etapas

• Confirmación

Envío al Centro de Referencia

8

8

Consideraciones analíticas para matrices de alimento

• Aún no se ha desarrollado un buen caldo de enriquecimiento selectivo para V. cholerae.

• Debido a su rápido tiempo de generación, cortos períodos de incubación son efectivos.

• APA es un buen medio de enriquecimiento para períodos cortos de incubación, pero en ciertos tipos de muestras la flora competitiva de V. cholerae puede crecer en exceso por períodos más largos de incubación.

• Incubación de 18 a 24 h no es deseable pero se han aplicado para compatibilizar el análisis de las muestras con el horario de trabajo.

9

9

Consideraciones analíticas para matrices de alimento

• Si el producto ha sido sometido a etapas de proceso como: calentamiento, congelación, deshidratación o bien una baja densidad del microorganismo es esperada, una incubación prolongada es recomendada para una buena resucitación de las células dañadas.

• Se recomienda la incubación de ostras crudas a 42ºC por ser efectiva para aislar V. cholerae.

• Algunos autores como Hwang y DePaola encontraron que la incubación del enriquecimiento por 18 a 21 h en lugar de 6 a 8 h permite una mayor recuperación de V. cholerae O1 cuando bajos inóculos son usados. Lo recomendado para ostras crudas es utilizar una proporción 1:100 de muestra:APA.

10

10

Consideraciones analíticas para matrices de agua

• Vibrio cholerae serogrupo O1 y O139 colerágenos están asociados a los brotes epidémicos. Los serogrupos no O1 y no O139 no producen toxina, causan una forma leve de gastroenteritis, se asocian a casos esporádicos y se aislan normalmente de agua de estuarios y en muestras de mariscos y pescados.

• El aislamiento e identificación de V. cholerae en agua se basa en su rápido crecimiento en condiciones alcalinas en presencia de oxigeno. Normalmente en matrices de agua este microorganismo se encuentra en bajos niveles por lo que se recomienda utilizar técnicas de concentración.

• Se ha indicado que , en medio acuático, V. cholerae adopta un estado viable pero no cultivable, debido sobre todo a las bajas temperaturas.

11

11

Consideraciones analíticas para matrices de agua

• La selección del método depende de la naturaleza de la muestra.

• Muestras de origen marino y estuario que contienen numerosos otros Vibrios se recomienda diluir y utilizar la técnica del Número Más Probable incubándose la muestra a 42ºC.

• Para muestras de agua claras, sin lodo o sedimento y que contienen una baja densidad de Vibrios se recomienda la técnica de Filtración por Membrana

• Un método para el aislamiento del Vibrio cholerae O1 a partir de aguas contaminadas es mediante el uso de una Tórula de Moore en un torrente de aguas servidas por un periodo de hasta 1 semana, seguido por una etapa de enriquecimiento y posterior identificación.

12

12

Procedimiento Detección en AlimentosBAM online

13

13

Procedimiento Detección V. cholerae en aguas residuales: Tórula de Moore

Esquema confección Tórula de Moore

Base 10 cm

Largo total 36 cm (doblado 5 veces)

Ancho 24 cm

Cortes de 4 cm

Argolla de alambre

Forma final de gasa

14

14

Técnica aislamiento V. cholerae en matriz agua : Tórula de Moore y Tórula de Spira

• Tórula de Moore ( aguas residuales)

Tórula de Spira (filtrar gran volumen de agua)

15

15

Procedimiento Detección V. cholerae en aguas

16

16

Medio de cultivo de Enriquecimiento y de Aislamiento

MEDIOS DE ENRIQUECIMIENTO

Agua Peptonada Alcalina

•La viabilidad de Vibrio spp. se mantiene intacta a pH alcalino y el uso de agua peptonada alcalina ha sido recomendado para incrementar la recuperación de Vibrio spp. de materia fecal y de otras muestras.

•El medio contiene peptona de carne, cloruro de sodio y el pH final es de 8.6 ± 0.2 a 25ºC. Se incuba 6 a 8 horas y se siembra en los medios de cultivo.

Formulación

l literAgua destilada

10 gNaCl

10 gPeptona

Ajustar pH de manera de obtener 8.5 ± 0.2 después de de esterilizar.Dispensar en tubos/frascos tapa roscaAutoclavar por 10 min a 121ºC

17

17


MEDIOS DE CULTIVO DE AISLAMIENTO

Agar TCBS ( Tiosulfato-citrato-bilis-sacarosa-agar)

•Es un medio selectivo para el aislamiento de Vibrio cholerae.

•El medio contiene: peptona de caseína, peptona de carne, extracto de levadura , citrato de sodio, citrato de fierro, cloruro de sodio, tiosulfato de sodio, sales biliares y sacarosa y estádisponible comercialmente.

•Se prepara según las indicaciones del fabricante. No se debe autoclavar.

•pH 8,6± 0,2 a 25ºC

•Por su doble indicador (azul de timol y azul de brotimotimol) vira al amarillo con pequeñas variaciones de pH por la acidificación de la sacarosa.

18

18


MEDIOS DE CULTIVO DE AISLAMIENTO ADICIONAL

Agar CHROMagar Vibrio

Alcance: detección y aislamiento de V. parahaemolyticus, V. vulnificus, V. cholerae

Apariencia en el agar:

V.parahaemolyticus → malva

V.vulnificus / V.cholerae → verde-azul; azul- turquesa

V.alginolyticus → sin color

Formulación en g/L Agar 15,0 Peptona y extracto de levadura 8,0Sales 51,4 Mezcla cromogénica 0,3 pH : 9,0 ± 0,2

19

19


Agar TCBS

Enterobacterias y otros

Pseudomonas, Aeromonas y otros

Vibrio alginolyticus

Vibrio parahahemolyticus

Vibrio cholerae

Microorganismos

Pobre/ ninguno

Pobre/ ninguno

Muy Bueno

Muy Bueno

Muy Bueno

Desarrollo

Muy pequeñas y translúcidas

Azules

Largas y amarillas

Pequeñas, azul-verdoso

Planas 2 a 3 mm de diámetro , amarillas

Apariencia de colonias

20

20

Confirmación bioquímica

• Batería tradicional

• Kit identificación rápida

21

21


Batería tradicional:

Perfil bioquímico

• Oxidasa• String test• AGS• Tolerancia escala de sal• MIO• TSI• LIA• Indol

Serología

22

22


Oxidasa + String test +

23

23


KIA K/K -,- / TSI A/A -,- Tolerancia sal 1% +, 3% +, 6%-

LIA K/K -,-

24

24

Confirmación bioquímica Kit comercial

PRUEBAS POSITIVAS

Reacción positiva

PRUEBAS NEGATIVAS

Reacción negativa

API 20 E

25

25


26

26

Confirmación bioquímica Kit comercial test suplementarios

27

27

Confirmación bioquímica Kit comercial

Nota. Suspender la cepa sospechosa de Vibrio en solución salina al 0,85%

IDENTIFICACION PRESUNTIVA

Nota

5 3 4 6 1 2 4 5 7 Perfil

API 20 E V4.1 Galería

0.9899.6Vibrio cholerae

Pruebas en contraT% IDTaxón significativo

0.50.2Vibrio mimicus

Pruebas en contraT% IDTaxón siguiente

0%SAC

28

28

Caracterización bioquímica

Ref: BAM online

29

29


100+Desarrollo en NaCl 1%

99.1c/0d+Desarrollo en caldo triptona al 1% b

100+Desarrollo en NaCl 0%

75 e+/-Voges Proskauer a

100+Sacarosa (producción de ácido)

0-Glucosa (producción de gas)

100A/A, no gas, no H2STSI

100+Glucosa (producción de ácido)

100+String test

100K/A, no gas, no H2SKIA

a Con NaCl 1%b Sin NaClc V. cholerae (y V. mimicus)d V. parahaemolyticus e La mayoría de V. cholerae O1 biotipo El Tor son positivas a VP, mientras que las cepas del biotipo Clásico son negativas.

98.9+L-ornitina decarboxilasa a

0-L-arginina dehidrolasa a

100+L-lisina decarboxilasa a

100+Oxidasa

100+Bacilo Gram-negativo, no esporulado

PorcentajeReacción positiva

Número mínimo de características necesarias para identificar cepas V. cholerae

Ref: Laboratory Methods for the Diagnosis of Vibrio cholerae Centers for Disease Control and Prevention

30

30



31

31

Confirmación SerológicaFlujograma de Serotipificación para Vibrio cholerae

Cepa con características bioquímicas de Vibrio cholerae

Estría en T1N1

Aglutinación con solución salina 0,85%

Negativa Positiva

Aglutinación con Polivalente O1 Cepa rugosa

Negativa Positiva

Vibrio cholerae no O1 Vibrio cholerae O1

Aglutinación con O139 Aglutinación con Inaba Aglutinación con Ogawa

Negativa Positiva Positiva Positiva

V. cholerae no O1,no O139 V. cholerae O139 V.cholerae O1, Inaba V. cholerae O1,Ogawa

32

32

Confirmación Serológica

Aglutinación antisuero polivalente O1

33

33

Clasificación general

A veces produce otro tipo de toxinaProductor toxina de cólera CT (factor de virulencia)

Toxina

Los 3 serotipos no son aplicable para cepa No O1

Inaba, Ogawa, Hikojima (raro)Serotipos

No aplicable para cepas No O1Clásico, El Tor (más frecuente)Biotipos

No –O1O1Serogrupos

No asociado a epidemiaAsociado a EpidemiaClasificación


34

34

Clasificación general

Características de los serotipos de V. cholerae O1


InabaOgawa

Principales Factores O presentes

Aglutinación

++A,B,CHikojima

+-A,CInaba

-+A,BOgawa

Serotipo

35

35

DIFERENCIACIÓN ENTRE LOS BIOTIPOS EL TOR Y CLÁSICO

•El biotipo Clásico es raramente encontrado, los siguientes ensayos opcionales son para diferenciarlo del biotipo El Tor:

Beta- hemólisis:

El medio más común de diferenciar los biotipos del V. cholerae O1 y tal vez la más fácil es determinar la capacidad de producir β- hemólisis sobre placa de agar sangre de cordero.

Las cepas del biotipo El Tor son β- hemolíticas, mientras que el biotipo Clásico no produce una hemolisina.

Sembrar el cultivo a ensayar en cuña y superficie en placas de agar sangre de cordero incubar a 18-24 horas a 35 ºC± 2ºC. La β- hemólisis puede ser determinada por una zona clara alrededor del cultivo.

36

36

DIFERENCIACIÓN ENTRE LOS BIOTIPOS EL TOR Y CLÁSICO

Sensibilidad a la Polimixina B:

Sembrar profusamente un cultivo sospechoso en una placa seca de agar T1N1.

Poner un disco de 50 unidades de polimixina B sobre la superficie.

Las cepas del biotipo Clásico son sensibles (una zona de >12 mm); las cepas del biotipo El Tor son resistentes. Si el cultivo sospechoso crece sobre agar mCPC, el cual contiene polimixina B, se considera que se trata del biotipo El Tor.

37

37

http://www.ispch.cl/colera

38

38

39

39

Gracias

detección de vibrio cholerae en muestras ambientales de procedimitnos de... · pseudomonas,...

Documents