universidad tecnolÓgica equinoccial industrias
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UNIVERSIDAD TECNOLÓGICA EQUINOCCIAL
Sede Santo Domingo
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA INGENIERÍA E
INDUSTRIAS
CARRERA DE INGENIERÍA AMBIENTAL Y MANEJO DE RIESGOS NATU-
RALES
Informe de propuesta tecnológica para obtener el título de:
INGENIERA AMBIENTAL Y MANEJO DE RIESGOS NATURALES
CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA Y MICROBIOLÓGICA DE
AGUAS RESIDUALES BIOTRATADAS EN LAGUNAS DE OXIDACIÓN
PARA RIEGO DE VIVEROS DE PALMA ACEITERA
Autora
CÓRDOVA SÁNCHEZ KAREN CAROLINA
Director(a)
ING. ELSA CLARA BURBANO CLARK, Ms.C
Santo Domingo de los Tsáchilas – Ecuador
Marzo – 2017
II
CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA Y MICROBIOLÓGICA DE
AGUAS RESIDUALES BIOTRATADAS EN LAGUNAS DE OXIDACIÓN
PARA RIEGO DE VIVEROS DE PALMA ACEITERA
Ing. Elsa Clara Burbano Clark, Ms.C
DIRECTORA
APROBADO
Ing. Miriam Natividad Recalde Quiroz Ms.C
PRESIDENTA DEL TRIBUNAL
Ing. Ricardo Paúl González Dávila, Ms.C
MIEMBRO DEL TRIBUNAL
Ing. Judit García, Ms.C
MIEMBRO DEL TRIBUNAL
Santo Domingo, _______ de ________________ del 2017
III
Autor:
KAREN CAROLINA CÓRDOVA SÁNCHEZ
Institución:
UNIVERSIDAD TECNOLÓGICA EQUINOCCIAL
Título:
CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA Y
MICROBIOLÓGICA DE AGUAS RESIDUALES
BIOTRATADAS EN LAGUNAS DE OXIDACIÓN
PARA RIEGO DE VIVEROS DE PALMA
ACEITERA.
Fecha: MARZO , 2017
El contenido del presente trabajo está bajo la responsabilidad del autor y no ha sido
plagiado.
Karen Carolina Córdova Sánchez
C.C. 230013599-9
IV
UNIVERSIDAD TECNOLÓGICA EQUINOCCIAL
Sede Santo Domingo
INFORME DEL DIRECTOR
Santo Domingo, 13 de febrero del 2017
Ing. Recalde Quiróz Miriam Natividad, MsC
COORDINADORA DE LA CARRERA DE INGENIERÍA AMBIENTAL Y
MANEJO DE RIESGOS NATURALES
Presente.
De mis consideraciones.-
Mediante la presente tengo a bien informar que el trabajo escrito de titulación reali-
zado por la señorita KAREN CAROLINA CÓRDOVA SÁNCHEZ, cuyo título es:
“CARACTERIZACIÓN FISICOQUÍMICA Y MICROBIOLÓGICA DE
AGUAS RESIDUALES BIOTRATADAS EN LAGUNAS DE OXIDACIÓN
PARA RIEGO DE VIVEROS DE PALMA ACEITERA.” ha sido elaborado bajo
mi supervisión y revisado en todas sus partes, el mismo que no ha sido plagiado, por
lo cual autorizo su respectiva presentación.
Particular que informo para fines pertinentes.
Atentamente,
Ing. Elsa Clara Burbano Clark, Ms.C
DIRECTORA DEL TRABAJO DE TITULACIÓN
V
Dedicatoria
Este trabajo se lo dedicó a mis padres Carlos Córdova y Raquel Sánchez quienes han
sido un pilar fundamental, por su sacrificio apoyo y confianza en todo mi trayecto
educativo. A mis hermanos: Lisethe, Jonathan, Jean Pierre quienes han sido un so-
porte en mi vida.
VI
Agradecimiento
A mis padres por brindarme su apoyo incondicional, cada uno de mis logros es por
ustedes y para ustedes que han sabido motivarme para alcanzar mis metas.
A mis hermanos y sobrinos por toda su apoyo y confianza espero se sientan orgullo-
sos de mí.
A mis amigos que han estado en todo momento conmigo, en las buenas y malas en
este trayecto para llegar a ser profesionales.
A la Universidad Tecnológica Equinoccial Sede Santo Domingo por brindarme los
conocimientos adquiridos, y convertirme en una persona profesional.
A los ingenieros Elsa Burbano y Paúl González por guiarme y tener paciencia al
momento de realizar análisis en el laboratorio.
A las personas pertenecientes de la extractora Rio Manso, por aceptar realizar mi
tesis en esta prestigiosa empresa, al Ingeniero Vicente Lascano, Alexander Muñoz y
Miguel García quienes han sido de gran apoyo para la realización de este trabajo.
VII
FORMULARIO DE REGISTRO BIBLIOGRÁFICO
PROYECTO DE TITULACIÓN
DATOS DE CONTACTO
CÉDULA DE IDENTIDAD: 2300135999
APELLIDO Y NOMBRES: Córdova Sánchez Karen Carolina
DIRECCIÓN: Cooperativa Villa Florida
EMAIL: [email protected]
TELÉFONO FIJO: (02)3709859
TELÉFONO MÓVIL: 0988444579
DATOS DE LA OBRA
TITULO: Caracterización fisicoquímica y microbiológica de aguas
residuales biotratadas en lagunas de oxidación para riego
de viveros de palma aceitera
AUTOR O AUTORES: Córdova Sánchez Karen Carolina
FECHA DE ENTREGA DEL PRO-
YECTO DE TITULACIÓN:
16 de marzo de 2017
DIRECTOR DEL PROYECTO DE
TITULACIÓN:
Ing. Elsa Clara Burbano, M.sC.
PROGRAMA PREGRADO POSGRADO
TITULO POR EL QUE OPTA: Ingeniera Ambiental y Manejo de Riesgos Naturales
RESUMEN: Mínimo 180 y máximo
250 palabras
Las aguas generadas en los diferentes procesos industriales
presentan un serio inconveniente a los establecimientos
fabriles que deben tratar sus vertidos bajo los límites
permisibles de los contaminantes que establece la
normativa ecuatoriana.
Se procedió a la toma de muestras de las aguas residuales
en la piscina de oxidación número ocho (agua efluente) de
la planta extractora “Río Manso”, durante un periodo de
cuatro meses (septiembre a diciembre 2016).
El objetivo del trabajo fue determinar la calidad del agua
residual biotratada en la extractora “Río Manso” para su
VIII
potencial uso en el riego de plántulas de palma aceitera
establecidas en viveros, mediante la caracterización
fisicoquímica (pH, Conductividad Eléctrica, Turbidez,
Sólidos Totales, Sólidos Disueltos, Demanda Bioquímica
de Oxigeno (DBO5) y Demanda Química de Oxígeno
(DQO), Fosfatos, Nitratos), Ca, Mg, Cu, Zn, Fe, Mn,
Potasio, Aceites y grasas, Relación de Adsorción de Sodio
(RAS) y microbiológica (Coliformes Totales).
Se implementó un vivero con 15 plántulas de palma
aceitera las mismas que fueron regadas mediante cuatro
tratamientos de agua residual (AR): T4 = 100 % AR, T3=
75 % AR + 25 % agua destilada (AD), T2 = 50 % AR + 50
% AD, T1 = 25 % AR + 75 % AD, To (Testigo) = 100 %
agua destilada (AD).
Se realizaron análisis foliares a las plántulas de Elaeis
guineensis que fueron regadas con el agua residual de
estudio para determinar la absorción de los nutrientes, tales
como: Cu, Mn, Zn, Fe, Ca, Mg, K y N.
Los resultados obtenidos determinaron que las aguas
residuales contienen los nutrientes necesarios para uso
agrícola, permitiendo el crecimiento óptimo de plántulas.
Dándole un mejor aprovechamiento a estas aguas tratadas,
generando beneficios a la empresa ya que disminuye la
contaminación ambiental y evita sanciones económicas.
PALABRAS CLAVES: Vertidos, caracterización, nutrientes, aguas residuales,
Elaeis guineensis
ABSTRACT: The generated water in the different industrial processes
presents a serious inconvenience to the factories that must
treat their discharges under the permissible limits of the
pollutants established by the Ecuadorian regulations.
Samples of the wastewater were collected in the oxidation
pool number eight (effluent water) of the "Manso River"
extraction plant, for a period of four months (September to
December 2016).
IX
The objective of this work was to determine the quality of
the bio treated wastewater in the "Rio Manso" extractor for
its potential use in the irrigation of oil palm seedlings es-
tablished in nurseries by physicochemical characterization
(pH, Electrical Conductivity, Turbidity, Total Solids,
(SOD), Phosphates, Nitrates), Ca, Mg, Cu, Zn, Fe, Mn,
Potassium, Oils and Fats, Sodium Adsorption Ratio (SOD)
And microbiological (Total Coliforms).
A nursery was implemented with 15 oil palm seedlings the
same ones that were irrigated by four treatments of residual
water (AR): T4 = 100% AR, T3 = 75% AR + 25% distilled
water (AD), T2 = 50% AR + 50% AD, T1 = 25% AR +
75% AD, To (Witness) = 100% distilled water (AD).
Foliar analyzes were performed on Elaeis guineensis seed-
lings that were irrigated with residual study water to deter-
mine nutrient uptake, such as Cu, Mn, Zn, Fe, Ca, Mg, K
and N.
The results obtained determined that the wastewater con-
tains the necessary nutrients for agricultural use, allowing
the optimal growth of seedlings. Giving a better use to
these treated waters, generating benefits to the company
since it diminishes the environmental contamination and
avoids economic fines.
KEYWORDS Discharges, characterization, nutrients, sewage, Elaeis
guineensis
Se autoriza la publicación de este Proyecto de Titulación en el Repositorio Digital de
la Institución.
Karen Carolina Córdova Sánchez
C.C. 230013599-9
X
DECLARACIÓN Y AUTORIZACIÓN
Yo, CÓRDOVA SÁNCHEZ KAREN CAROLINA, CI: 230013599-9 autor de la
propuesta tecnológica titulada: Caracterización fisicoquímica y microbiológica de
aguas residuales biotratadas en lagunas de oxidación para riego de viveros de
palma aceitera, previo a la obtención del título de INGENIERA AMBIENTAL Y
MANEJO DE RIESGOS NATURALES en la Universidad Tecnológica
Equinoccial.
1. Declaro tener pleno conocimiento de la obligación que tienen las Instituciones
de Educación Superior, de conformidad con el Artículo 144 de la Ley Orgánica
de Educación Superior, de entregar a la SENESCYT en formato digital una
copia del referido trabajo de graduación para que sea integrado al Sistema
Nacional de información de la Educación Superior del Ecuador para su difusión
pública respetando los derechos de autor.
2. Autorizo a la BIBLIOTECA de la Universidad Tecnológica Equinoccial a tener
una copia del referido trabajo de graduación con el propósito de generar un
Repositorio que democratice la información, respetando las políticas de
propiedad intelectual vigentes.
Santo Domingo 16 de marzo del 2017.
f:__________________________________________
CÓRDOVA SÁNCHEZ KAREN CAROLINA
C.C. 230013599-9
XI
XII
ÍNDICE DE CONTENIDO
Portada.................................................................................................. I
Sustentación y aprobación de los integrantes del tribunal..................... II
Responsabilidad del autor..................................................................... III
Aprobación del director......................................................................... IV
Dedicatoria............................................................................................ V
Agradecimiento..................................................................................... VI
Formulario de biblioteca……………………………………………...
Declaración y Autorización…………………………………………..
Carta de Auspicio…………………………………………………..…
Índice de contenido...............................................................................
VII
IX
X
XI
Índice de tablas...................................................................................... XII
Índice de figuras.................................................................................... XIII
I. INTRODUCCIÓN........................................................................ 1
II. METODOLOGÍA……………………………………………..… 3
2.1. Localización.................................................................................... 4
2.2. Elaboración de vivero de palma aceitera……………………….... 5
2.3. Riego de agua según el tratamiento………………………….…... 5
2.4. Muestreo de aguas…………………………………….…….…… 6
2.5 Análisis de laboratorio………………………………………..…. 7
2.6 Propuesta Tecnológica…………………………………………… 8
2.7 Diseño de viveros de palma aceitera con riego de agua residual. 10
2.8 Análisis Económico……………………………………………... 13
III. ANÁLISIS DE RESULTADOS ……………………………….. 14
3.1. Parámetros físico-químicos………………………………….….. 14
IV CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES........................... 29
V REFERENCIAS........................................................................... 30
XIII
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Ubicación de puntos de muestreo…………………..….…..…… 4
Tabla 2. Tratamiento de viveros de palma aceitera…………….…..….… 5
Tabla 3. Normas Mexicanas para realizar análisis fisicoquímicos de
agua residual………………………………………………...................... 7
Tabla 4. Consumo de agua por goteo……………………………………. 10
Tabla 5. Presupuesto para la construcción de vivero de palma aceitera… 12
Tabla 6. Análisis realizados en laboratorio certificado………………..… 21
XIV
ÍNDICE DE FIGURAS
1 Procedimiento para muestreo de aguas.......................................... 6
2 Morfología de la palma aceitera (Elaeis guineensis)…….………… 8
3 Sistema de riego por goteo a vivero de palma aceitera 11
4 Variación temporal del pH en aguas residuales…………………. 13
5 Variación temporal de conductividad eléctrica en aguas
residuales………………………………………………………… 13
6 Variación temporal del Turbidez en aguas residuales……..……. 14
7 Variación temporal del Sólidos Totales en aguas residuales….... 16
8 Variación temporal del Sólidos Disueltos en aguas residuales…. 15
9 Variación temporal Demanda Química de Oxígeno en aguas
residuales……………………………………………………..… 16
10 Variación temporal del Oxígeno Disuelto en aguas residuales…. 17
11 Variación temporal del Fosfatos en aguas residuales……………. 17
12 Variación temporal del Cobre en aguas residuales………….….. 18
13 Variación temporal del Manganeso en aguas residuales……..…. 18
14 Variación temporal del Zinc en aguas residuales……………….. 19
15 Variación temporal del Hierro en aguas residuales………….…. 19
16 Variación temporal del Calcio en aguas residuales……………. 20
17 Variación temporal del Magnesio en aguas residuales………… 20
18 Variación temporal del Potasio en aguas residuales………..…. 21
19 Variación de Cobre en tejido foliar Elaeis guineensis…………... 23
20 Variación de Manganeso en tejido foliar de Elaeis guineensis…. 23
21 Variación de Zinc en tejido foliar de Elaeis guineensis………… 24
22 Variación de Hierro en tejido foliar de Elaeis guineensis……..… 25
23 Variación de Calcio en tejido foliar de Elaeis guineensis………. 25
24 Variación de Magnesio en tejido foliar de Elaeis guineensis…… 26
25 Variación de Potasio en tejido foliar de Elaeis guineensis……… 26
26 Variación de Nitrógeno en tejido foliar de Elaeis guineensis…… 27
I. INTRODUCCIÓN
El problema de la contaminación del agua se ha incrementado con el pasar de los
años. Este es un problema mundial, regional y local. De toda la cantidad del líquido
vital que se encuentra en el planeta únicamente el 3% es agua dulce, de esta propor-
ción, el 79% en forma de hielo por lo cual no es idóneo para su uso, y el resto se en-
cuentra en forma de aguas subterráneas con un 20% y solo el 1% como aguas super-
ficiales (Garbanzo Vaca, 2011). La disposición de aprovechamiento de este recurso,
se ve notablemente reducida por los continuos cambios en la civilización que condu-
cen notablemente a su deterioro (Frers C, 2008), los mismos que provocan escases de
este líquido vital para los seres vivos.
El agua es uno de los principales recursos utilizados por el hombre, su consumo varía
según el tipo de actividad, como es el caso de
la irrigación agrícola y desarrollo industrial, siendo estos los que demandan mayor
cantidad de uso y consumo del agua, en cierto modo se producen grandes impactos,
como la agregación de sustancias diferentes a su composición, el incremento de mi-
croorganismos, disminución de las fuentes hídricas y considerables descargas de
aguas residuales a los lugares más cercanos modificando su calidad. Por lo tanto se
emplea un sistema de tratamiento de aguas residuales mediante lagunas de oxidación
del cual se obtiene aguas biotratadas para evitar la generación de problemas ambien-
tales, disminuyendo el riesgo para la sociedad y el medio ambiente, puesto que es
una necesidad de importancia prioritaria (Mercado, 2013).
Las lagunas de oxidación presentan una variedad de contaminantes fisicoquímicos y
biológicos en sus aguas residuales; por consiguiente es primordial caracterizar su
composición para determinar un tratamiento óptimo (Rojas, 2015).
Debido a la presencia bacteriológica estas aguas pueden contener un gran valor nu-
tricional, por lo cual se las puede reutilizar y aprovechar en la irrigación de viveros,
como los de palma aceitera (Elaeis guineensis). Lo cual va a permitir a la industria
utilizar sus propios recursos de una manera sostenible y logrando un beneficio y pro-
tección ambiental, conservando este recurso hídrico, disponiéndola para sus diferen-
tes usos (Naspud, 2009).
2
El objetivo general para desarrollar la presente propuesta de estudio fue identificar
las características fisicoquímicas y microbiológicas que contiene el
agua biotratadada de las lagunas de oxidación, para irrigación de viveros de palma
aceitera.
Para ello se plantearon los siguientes objetivos específicos; Realizar los análisis fisi-
coquímicos de las aguas residuales biotratadas; Desarrollar un diseño experimental
para definir la influencia de los nutrientes de estas aguas residuales; Proponer trata-
mientos de palma aceitera regada con agua residual.
Este estudio fue desarrollado a través de una metodología que comprende las fases
de: campo, laboratorio y vivero. En la fase de campo se realizó la toma de muestras
de la piscina de oxidación de la Extractora Agrícola Río Manso, en la fase de labora-
torio se efectuó los análisis químicos, físicos y microbiológicos del agua proveniente
de la laguna de oxidación con el fin de establecer sus características.
En el proceso de selección, recolección y análisis de la muestra se tomó en cuenta
ciertos parámetros, que se determinan específicamente mediante métodos de Análisis
fisicoquímicos y microbiológicos como: pH, conductividad eléctrica, Turbidez, Sóli-
dos totales, Sólidos disueltos, Demanda Bioquímica de Oxigeno (DBO5) y Demanda
Química de Oxigeno (DQO), Fosfatos, Nitratos, Ca, Mg, Cu, Zn, Fe, Mn, Potasio,
Aceites y grasas, Relación de Adsorción de Sodio (RAS), Coliformes totales. Según
lo establece el Anexo 1 del Libro VI del Texto Unificado de Legislación Secundaria
del Ministerio del Ambiente en la Norma de Calidad Ambiental y de Descarga de
Efluentes al recurso agua: Criterios de calidad de aguas de uso agrícola o de riego
(TULSMA, 2015).
En la fase de vivero se realizó análisis de los nutrientes que contenían las plántulas
determinando si contiene los suficientes nutrientes para el óptimo desarrollo y buena
producción del cultivo, la falta de nuetrientes puede causar daño a las plántulas e
incluso la muerte.
3
II. CONTENIDO TÉCNICO
Hoy en día uno de los principales inconvenientes que se está originando es la dismi-
nución y explotación de los recursos naturales principalmente el agua (Bante, 2002),
cuyo problema es la demanda que se está generando en el sector industrial, urbano y
agrícola ocasionando una gran cantidad de contaminantes y disminuyendo este re-
curso ya que suelen ser vertidos a ríos o lugares más cercanos sin alcanzar una depu-
ración óptima (Sanz, 2007) .
La utilización de aguas residuales en agricultura constituye un mecanismo valioso
que tienen los países en vías de desarrollo para hacer frente a la contaminación y al
desafío que constituye aumentar la producción agrícola con un recurso hídrico escaso
(Villanueva, 2009).
El sector industrial suele presentar serios inconvenientes con el vertimiento de aguas
residuales, ya que deben realizar tratamiento de sus aguas y estar bajo los límites
permisibles que establece la ley (Gómez, 2012), la reutilización de agua biotratada
puede representar un ahorro significativo en una empresa, debido a que contiene
gran cantidad de nitrógeno, fósforo y potasio los cuales pueden servir como nutrien-
tes en plantaciones agrícolas sustituyendo a los fertilizantes, y aumentando el rendi-
miento de los cultivos (Infante, 2012).
Algunas sustancias y microorganismos patógenos presentes en aguas residuales pue-
den ocasionar efectos perjudiciales a los cultivos dado que no se les da un tratamien-
to adecuado, o una baja depuración ambiental, el uso de estas aguas sin control im-
plica riesgo para la salud de la población causando enfermedades generadas por bac-
terias entre estas tenemos la salmonellas, parásitos y virus, por lo que es necesario
identificar el impacto, tipo, y la totalidad de contaminantes presentes (Cervantes,
2011).
4
2.1. Localización
La toma de muestras de esta investigación se realizó en la extractora Río Manso, la
cual se ubica en el kilómetro 41 vía Santo Domingo-Quevedo perteneciente a la Pro-
vincia de los Ríos Cantón Buena Fe. La zona tiene una temperatura media anual de
22°C.
Las características climáticas de la región calificada como bosque muy húmedo Pre
Montano con una estación lluviosa de diez meses (Septiembre a junio)/ y una esta-
ción seca de dos meses (Julio y Agosto).
Tabla 1. Ubicación de los puntos de muestreo
Ubicación Coordenadas (UTM)
Latitud Longitud
Planta industrial
La laguna de oxidación número ocho
681212
681319
9939200
9940369
La Planta Extractora Río Manso, con respecto a la calidad del agua tiene una influen-
cia directa a partir de la descarga del sistema de tratamiento de la planta, aguas abajo
del estero Río Manso que tiene unión con el río Baba. Cabe mencionar que el estero
tiene un comportamiento estacional y su caudal aumenta en la estación lluviosa.
El terreno donde se ubica la planta Extractora es ligeramente irregular sobre la cota
210 msnm. La pendiente del terreno es aproximadamente del 3% en dirección Oeste
(Pazmiño, 2010).
Fuente: Google Earth.
Fig. 1. Ubicación de la Planta extractora agrícola “Rio Manso”
5
Tratamientos de riego palma aceitera
Para la elaboración de un vivero de palma aceitera se realizó cinco tratamientos con
tres repeticiones, los mismos que se detallan en la tabla 2.
Tabla 2. Tratamientos de viveros de palma aceitera
Tratamientos
T0 Testigo 100% Agua Destilada
T1 25% Agua Residual y 75% Agua Destilada
T2 50% Agua Residual y 50% Agua Destilada
T3 75% Agua Residual 25% Agua Destilada
T4 100 % Agua Residual
En este trabajo se utilizó fundas para pre vivero con longitud de 25cm de largo por
15 cm de ancho, 0.4 quintales de arena de rio amarilla y plántulas de semilla certifi-
cada de palma aceitera esto quiere decir que tengan asegurada su calidad, origen y
hayan pasado varios controles de campo según establece el INIAP (Instituto Nacio-
nal de Investigaciones Agropecuarias).
Las fundas para previvero se procedieron a llenar con arena, para realizar el trasplan-
te de plántulas que contenían tierra.
2.3 Riego de agua según el tratamiento
La cantidad y la frecuencia de riego fue 300 ml/bolsa/día de agua, durante un periodo
de 3 meses. Según los tratamientos se regó de la siguiente manera:
La primera plántula se añadió 300 ml de agua residual, la segunda plántula 250 ml de
agua residual y 50 ml de agua destilada, la tercera plántula 150 ml agua residual y
150 ml de agua destilada, la cuartan plántula 50 ml de agua residual y 250 ml de
agua destilada, la quinta plántula en este caso el testigo (To) 300 ml de agua destilada
(Quesada Herrera, 2012). Además se realizó de cada tratamiento tres repeticiones, es
decir se utilizó un total de quince plántulas.
6
2.4 Muestreo de aguas
Para la caracterización de agua de la extractora Río Manso, se tomó la muestra de la
última piscina de oxidación (número ocho). En cuanto al muestreo, manejo y con-
servación del agua se estableció mediante la norma INEN 2169 (Instituto
Ecuatoriano de Normalización, 1998).
Figura 1. Procedimiento para el muestreo de aguas
Preparación de materiales necesarios para toma de muestras
Para la toma, y transporte de muestras los recipientes estuvieron higiénicos, y hermé-
ticos para evitar la alteración de las muestras. Los envases fueron enjuagados de
igual manera con el agua de estudio antes de recolectar la muestra (INEN, 2000).
El recipiente se mantenía con suficientes bolsas de hielo para mantener una tempera-
tura cercana a 4°C, así mantener las muestras de agua hasta realizar los respectivos
análisis (Cicuco, 2011).
Toma de muestras
El período de muestreo se realizó semanalmente durante tres meses de manera ma-
nual en un determinado punto que es la salida del efluente. Las muestras fueron ma-
nejadas y transportadas con el mayor cuidado posible, evitando que permanezcan
por más de un día en almacenamiento, tratando de hacer los análisis de estas aguas lo
más pronto posible (Guevara, 2007).
Se preparó los materiales necesarios para mantener la muestra fresca a una temperatura adecuada
Se procedió a la toma de muestras
Se realizó los análisis de laboratorio
7
2.5 Análisis de laboratorio
La metodología utilizada para determinar los parámetros fisicoquímicos se detalla a
continuación:
Tabla 3. Normas Mexicanas para realizar análisis fisicoquímicos de agua residual
biotratada.
Parámetro Unidades Método Norma Mexicana
pH Electrométrico NMX-AA-008-SCFI-2000
Conductividad
Eléctrica
μS
Conductímetro NMX-AA-093-SCFI-2000
Turbidez NTU Turbidímetro NMX-AA-038-SCFI-2001
Sólidos totales y
Sólidos suspendidos
mg,L-1
Gravimétrico NOM-AA-34-1976
Oxígeno Disuelto mg,L-1
Azida de sodio NMX-AA-012-SCFI-2001
Demanda Química
de Oxígeno
mg,L-1
Reflujo cerrado NMX-AA-030-SCFI-2001
Fosfatos mg,L-1
Cloruro Estanoso NMX-AA-029-SCFI-2001
Metales mg,L-1
Espectrofotometría NMX-AA-051-SCFI-2001
8
2.6 Propuesta tecnológica
“Caracterización fisicoquímica y microbiológica de aguas residuales biotratadas
en lagunas de oxidación para riego de viveros de palma aceitera”
El sistema de las lagunas de oxidación es uno de los métodos más importantes para el
tratamiento de aguas residuales. Este tipo de estanques de estabilización son mayor-
mente utilizadas en la industria, por lo general están constituidas sistemas de lagunas
anaeróbicas, facultativas, aeróbicas (Miño, 2014).
Las aguas biotratadas de la laguna de oxidación contienen un alto grado nutritivo y
gran carga microbiana lo que no la hace apta para el consumo humano. A pesar de
todos los procesos para mejorar la calidad del agua no se purifican su totalidad, de
manera que brindándole un buen tratamiento no representan peligro al momento de
verter al medioambiente por esto se realiza descargas a ríos, o esteros más cercanos
(Saénz, 2009) .
La reutilización de este tipo de agua para uso agrícola es lo ideal, ya que no son es-
pecies de consumo directo por el ser humano y no se corre el peligro de contamina-
ción por agentes patógenos (Sherman, 2011). Existe una limitación en cuanto a pro-
yectos del reusó de esta agua, si se la trata de manera eficiente representa una gran
oportunidad dado que no representa costo significativo ayudando al crecimiento de
las plántulas como palma aceitera (Paulson L. D., 2013).
La Palma aceitera es una planta tropical, propia de climas cálidos de origen occiden-
tal y central del continente africano. Originalmente del golfo de Guinea, de ahí su
nombre científico (Elaeis guineensis). Fue a partir del siglo XV cuando su cultivo se
extendió a otras regiones de África. En el siglo XVI se dio una propagación mínima
la cual se inició a través del tráfico de esclavos en navíos portugueses, llegando a
América.
2. 6. 1 Taxonomía y morfología de la palma aceitera.
Es una planta perenne se presenta en tres variedades: Dura, pisifera y tenera. La tene-
ra es la que se utiliza comercialmente para la extracción del aceite y es un cruce entre
las otras dos variedades (Dura y pisifera) (Technoserve, 2005).
9
-Familia: Arecaceae.
-Especie: Elaeis Guineensis Jacq.
- Porte: palmera monoica con tronco erguido, puede alcanzar más de 40 m de altura
en estado natural. En cultivos industriales para la obtención de aceite su altura se
limita de 10-15 m, con un diámetro de 30-60 cm cubierto de hojas viejas, como se
visualiza en la figura 1 (Infoagro, 2012).
El abastecimiento de agua es uno de los principales inconvenientes en el rendimiento
en términos de producción, y crecimiento de palma de aceite (Cornaire & Lamade,
2006).
Fuente: Manual Palma Aceitera.
Figura 2. Palma aceitera (Elaeis guineensis)
2.6.2 Justificación
En los últimos años el Ecuador ha incrementado su cultivo de palma aceitera, por lo
tanto se ha visto en la necesidad de utilizar grandes volúmenes de agua, para poder
suministrar la cantidad necesaria y evitar que presenten un déficit durante su desarro-
llo. Por lo tanto se ve la necesidad de establecer mejores prácticas ambientales y es
aquí donde interviene la industria que se ve en la necesidad de optar medidas que
minimicé la contaminación que se genera.
10
Por tal motivo se propone la utilización de las aguas residuales biotratadas para riego
de palma aceitera que cada día incrementa la demanda, debido a esto es necesario
caracterizarla para determinar los componentes que tiene el efluente, y se le dé el
mejor aprovechamiento como es el riego agrícola, así la disposición final de las
aguas residuales industriales evitará desembocar al ambiente, optimizando los recur-
sos naturales, beneficiando a la industria reduciendo costes generados por la conta-
minación.
2.7 Diseño de viveros de palma aceitera regada con agua residual
El presente diseño se tiene un área de 625m2 contribuirá a la reutilización de aguas
residuales biotratadas en riego de palma aceitera.
Se escogió el riego por goteo ya que este método a diferencia de otras técnicas el
agua cae directamente al tallo de la plántula así evita cualquier daño que se puede
generar, o quemar a las hojas, dando como resultado un mayor aprovechamiento del
agua.
Cantidad de plántulas de palma aceitera׃
Con una capacidad de diez parcelas de 3.75 m x 11.2 m, y una separación entre plán-
tulas de 0.75 m. La distancia entre parcelas de 1.5 metros, cada parcela tiene una
capacidad de 60 plántulas, lo cual en 10 parcelas se contará con 600 plántulas de
palma aceitera.
Tabla 4. Consumo de agua por goteo
Etapa meses Consumo por plán-
tula (L)
Cantidad de plán-
tulas de palma
Total de consumo
diario de vivero (L)
1
2
3
0-6
6-8
8-14
0.3
0.4
0.5
600
600
600
180
240
300
Fuente׃ Quesada, 1997
11
Presenta un tanque elevado de 1000 L, con un sensor para nivel de tanque que es de
gran utilidad cuando el agua llega a un límite inferior, capta y envía la señal a la
bomba hidráulica de 1 HP.
Se realizaron análisis foliares a las plántulas de Elaeis guineensis que fueron regadas
con el agua residual de estudio para determinar la absorción de:
Macronutrientes del suelo: Nitrógeno (N), Potasio (K), Calcio (Ca), Magnesio (Mg)
Micronutrientes del suelo: Hierro (Fe), Zinc (Zn), Manganeso (Mn), Cobre (Cu).
12
Figura 3. Diseño de sistema de riego por goteo en vivero de palma aceitera
13
2.8 Análisis Económico
A continuación se detalla el precio de los materiales a utilizar para la construcción
de un vivero de palma aceitera. Se debe considerar que el precio varía de acuerdo a la
cantidad de plántulas de palma a utilizar.
Tabla 5. Presupuesto para la construcción de un vivero de palma aceitera.
Vivero de palma aceitera
Descripción Unidad Cantidad Precio Unita-
rio ($)
Total
($)
Plántulas de palma aceitera U 600 3.00 180.00
Bomba Hidráulica 1HP (eléc-
trica)
U 1 250.00 250.00
Tubería de 1 pulgada U 11 10.50 115.50
Tubería de ¾ de pulgada
Tubería de ½ de pulgada
Tanque elevado 1000 litros
U
U
L
20
58
1
7.80
5.50
173.00
156.00
319.00
173.00
Universales de 1 pulgada U 5 4.95 24.75
Uniones de 1 pulgada U 5 2.25 11.25
Codo de 1 pulgada U 5 0.75 3.75
Válvula check 1 pulgada U 1 16.00 16.00
Sensor de agua U 1 10.80 10.80
Cemento qq 10 8.15 81.50
Hierro qq 2 39.80 79.60
Arena m3 3 10.00 30.00
Mano de obra personas 30 25 750.00
Otros materiales( accesorios
de conexión)
U 1 100 100.00
Total 2.301.15
14
III. ANÁLISIS DE RESULTADOS
3.1 Parámetros fisicoquímicos:
Los análisis físico-químicos se efectuaron de septiembre a diciembre del año 2016.
3.1.1 pH
Según el TULSMA los valores de pH para riego deben estar en un rango de 6.5 a 8.4.
Como se puede ver en la figura según la caracterización que se llevó a cabo el pH
tiene un rango aceptable de 7.90 a 8.40. El pH varía debido a los diferentes trata-
mientos de las aguas residuales industriales, como es el caso de la adición de quími-
cos o microorganismos para mejorar la calidad de la misma. En la semana 8 no tiene
una diferencia significativa, manteniéndose el pH alcalino siendo favorable para el
crecimiento de plántulas (Bedoya, 2015).
Fig. 4. Variación temporal del pH en aguas residuales biotratadas
3.1.2 Conductividad Eléctrica
La conductividad eléctrica se encuentra en un rango de 9,11 μS/cm y 10.75 μS/cm
presentando valores aceptables. Según lo establece el TULSMA debe estar en un
rango inferior a 3 mmhos/cm (3x106 μS/cm). La conductividad eléctrica es una me-
dida de salinidad del agua, mientras la conductividad sea menor mejor adsorción de
agua va a tener la plántulas beneficiando al crecimiento de la misma (Rebolledo,
2007).
7,80
7,90
8,00
8,10
8,20
8,30
8,40
8,50
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
pH
Semanas
15
Fig. 5. Variación temporal de la conductividad eléctrica en aguas residuales biotra-
tadas.
3.1.3 Turbidez
La turbidez se encuentra en un rango que va desde 466 NTU hasta los 570 NTU. Se
puede observar que las concentraciones de este parámetro varían, produciendo un
incremento y decrecimiento, esto se debe a la presencia de partículas en suspensión,
ya que a mayor cantidad de sólidos suspendidos más turbia será el agua. (Azario,
Metzler, & Garcia, 2004)
Fig. 6. Variación temporal de la turbidez en aguas residuales biotratadas.
9,00
9,20
9,40
9,60
9,80
10,00
10,20
10,40
10,60
10,80
11,00
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13
Co
nd
uct
ivid
ad (μ
S.cm
-1 )
Semanas
460
480
500
520
540
560
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Turb
ide
z (N
TU)
Semanas
16
3.1.7 Sólidos Totales
Los sólidos totales se encuentran en un rango que va desde los 9200 mg.L-1
a los
11200 mg.L-1
, originando un alto contenido de impurezas, turbidez y color oscuro del
agua. Se realizó tres repeticiones de este análisis, variando los resultados afectando la
calidad del efluente. No existe un rango en el TULSMA para determinar la cantidad
de sólidos disueltos para uso agrícola. Debería implementarse otro tratamiento de
aguas residuales para disminuir el exceso de sólidos totales (Clair N. Sawyer, 2000)
Fig. 7. Variación temporal de Sólidos totales en aguas residuales biotratadas.
3.1.8 Sólidos Disueltos
En este rango de sólidos disueltos encontramos que va desde 7600 mg.L-1
a los
11000 mg.L-1
El TULSMA establece el límite máximo permisible para riego agricola
de 3 000,0 mg/l. Al igual que los sólidos totales presentan elevadas cantidades, lo
cual excede el limite permisible, mientras más cantidad de sólidos el agua será más
turbia será, por ende va a contener gran cantidad de partículas que pueden ser noci-
vas y verse afectada la conductividad del agua para el riego (Paulson D. , 2015).
9000
9500
10000
10500
11000
11500
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Sólid
os
tota
les(
mg,
L-1)
Semanas
Repetición 1
Repetición 2
Repetición 3
17
Fig. 8. Variación temporal de Sólidos disueltos en aguas residuales biotratadas.
3.1.4 Demanda química de oxígeno (DQO)
La concentración de DQO va desde 1100 mg.L-1
hasta 3619 mg.L-1
. Se presentó
una variación en la concentración de este parámetro debido a que varía el consumo
de oxígeno y la carga orgánica. Por lo general las aguas residuales industriales pre-
sentan un rango de 5000 a 1000 mg.L-1
e incluso más altos. El TULSMA no estable
un rango limite permisible de DQO para riego ( Gutiérrez & Caldera , 2010).
Fig. 9. Variación temporal del DQO en aguas residuales biotratadas.
7400
7900
8400
8900
9400
9900
10400
10900
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Sólid
os
Dis
uel
tos
(mg,
L-1)
Semanas
Repetición 1
Repetición 2
Repetición 3
1000
1500
2000
2500
3000
3500
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
DQ
O (
mg,
L-1)
Semanas
18
3.1.5 Oxígeno disuelto La concentración de Oxígeno disuelto se encuentra en un
rango de 0.54 mg.L-1
a 3.76 mg.L-1
. Los cambios de OD varían por la presencia de
materia orgánica, provocando niveles bajos de oxígeno denominado hipoxia. Presen-
ta un comportamiento homogéneo en cuanto a las repeticiones realizadas en este aná-
lisis (Tamani, 2014).
Fig. 10. Variación temporal del Oxígeno disuelto en aguas residuales biotratadas.
3.1.6 Fosfatos
El rango de Fosfatos se encuentra entre 60.01 mg.L-1
a 123.400 mg.L-1
presentando
una variación considerable mientras más alto sea el fosfato como se observa en la
semana 13 y 14 menos cantidad de oxigeno por ende causa eutrofización a las aguas
residuales. No especifica el TULSMA la cantidad de fosfatos que deben tener las
aguas residuales industriales. Los fosfatos en el agua aportan nutrientes que pueden
ser utilizados para el riego agrícola. Mientras mayor cantidad de fosfatos en el agua
de riego se dará un mayor crecimiento de plántulas. (Villamar, 2009)
Fig. 11. Variación temporal del Fosfatos en aguas residuales biotratadas.
0,50
1,00
1,50
2,00
2,50
3,00
3,50
4,00
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Oxí
gen
o D
isu
elto
(m
g,L-1
)
Semana
D 20
D 30
D 90
40,000
60,000
80,000
100,000
120,000
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Fosf
ato
s (m
g,L-1
)
Semanas
19
3.1.9 Cobre
La concentración de cobre según la caracterización va de 0.034 mg.L-1
hasta 0.42
mg.L-1
. Los cambios son debido a los tratamientos en las piscinas de oxidación, tam-
bién se debe a la adición de químicos en el tratamiento de las aguas. El TULSMA
establece que el rango debe ser inferior a 2 mg/l, por lo que se encuentra bajo los
límites permisibles (Gaete, Aránguiz, Cienfuegos, & Tejos, 2007)
Fig. 12. Variación temporal de Cobre en aguas residuales biotratadas.
3.1.10 Manganeso
El manganeso presentó una variación entre 0.87 mg.L-1
a 0.480 mg.L-1
.Se encuentra
en un rango aceptable considerado un nutriente esencial para el riego de plántulas. El
TULSMA establece que debe estar en un rango inferior a 2 mg/lt (Espinoza, 2006).
Fig. 12. Variación temporal de Manganeso en aguas residuales biotratadas.
-0,05
0,05
0,15
0,25
0,35
0,45
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Cu
(m
g. L
-1)
Semanas
0,000
0,100
0,200
0,300
0,400
0,500
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Mn
(m
g. L
-1)
Semanas
20
3.1.11 Zinc
La variación de zinc es de un 0.115 mg.L-1
a 0.270 mg.L-1
. El TULSMA establece
que ser inferior a 2,0 mg.L-1
. No se lo le atribuye riesgo para el uso agrícola a las
aguas que contienen zinc, ya que es considerado un nutriente necesario para el desa-
rrollo de plántulas (Vega & Vélez, 2011).
Fig. 14. Variación temporal de Zinc en aguas residuales biotratadas.
3.1.12 Hierro
La concentración de hierro se encuentra entre 1.92 y 4.81 mg.L-1
. El TULSMA esta-
blece que este parámetro debe estar en un límite máximo permisible de 5.0 mg.L-1
.
La variación del hierro se debe a la utilización de químicos en el tratamiento de las
aguas residuales. El hierro es considerado un nutriente esencial para el crecimiento
de plántulas (Toscano , 2014).
Fig. 15. Variación temporal de Hierro en aguas residuales biotratadas.
0,100
0,150
0,200
0,250
0,300
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Zn (
mg.
L-1
)
Semanas
2
2,5
3
3,5
4
4,5
5
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Fe (
mg.
L-1
)
Semanas
21
3.1.13 Calcio
El calcio presenta niveles que van desde 123 mg.L-1
hasta 209.2 mg.L-1
. No especifi-
ca el TULSMA la cantidad de calcio que debe tener para riego. La variación se debe
a los químicos utilizados en los tratamientos de aguas residuales. Es considerado un
nutriente para el crecimiento de plántulas (Orellana, 2005)
Fig. 16. Variación temporal de Calcio en aguas residuales biotratadas.
3.1.14 Magnesio
El magnesio presenta niveles que van desde 124 mg.L-1
hasta 276.6 mg.L-1
. La va-
riación está estrechamente relacionada con el calcio ya que a mayor concentración de
estos nutrientes causa la dureza del agua. El magnesio es un nutriente indispensable
para el desarrollo de plántulas, siendo componente básico de la clorofila es el que da
el color verde a las plantas (Jodral, Navarro, & López, 2007). No se presenta en el
TULSMA un límite permisible para el Magnesio.
Fig. 17. Variación temporal de Magnesio en aguas residuales biotratadas.
120
140
160
180
200
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Ca
(mg.
L-1
)
Semanas
100
150
200
250
300
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
Mg
(mg.
L-1 )
Semanas
22
3.1.15 Potasio
Se encuentra en un rango de 178,2 mg.L-1
a 327.5 mg.L-1
. No se presenta en el
TULSMA un límite permisible para el potasio. La variación es debido a los
tratamientos químicos en las aguas residuales. Es escencial para riego de plántulas ya
que determina el color y tamañaño de la misma (Barba, 2002).
Fig. 18. Variación temporal de Potasio en aguas residuales biotratadas.
Tabla 6. Análisis realizados en laboratorio certificado
DBO5
(mg L-1
)
Nitratos
(mg L-1
)
Índice RAS
(mg L-1
)
Aceites y gra-
sas
(mg L-1
)
Coliformes
totales
(nmp/100 ml)
Agua residual 3619 18.43 2.31 17 5400,0
Límite permisible --- --- 2,9 0,3 1 000
(LABIOTEC, 2016)
Demanda Bioquímica de Oxígeno (DBO5)
La DBO5 va a determinar la cantidad de oxigeno que necesita para oxidar los com-
puestos orgánicos en el agua residual. No se presenta en el TULSMA un límite per-
misible para el determinar DBO5. Es de gran importancia en tratamientos de aguas
residuales permite que se lleven los procesos biológicos en el tratamiento de aguas
para mejorar su calidad (Moran, 2014).
150
170
190
210
230
250
270
290
310
330
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14
K (
mg.
L-1
)
Semanas
23
Nitratos
La presencia de nitratos en las aguas residuales se debe a los diferentes tratamientos
que se les da a las aguas residuales. Los nitratos presentes en agua de riego en pro-
porciones adecuadas mejoran el crecimiento de las plántulas y aumentan
su rendimiento. No se presenta en el TULSMA un límite permisible para el determi-
nar Nitratos (Palomares, 2015).
Índice RAS
El análisis más relevante que se determinó fue el índice RAS (Relación de Adsorción
de Sodio), establece si las plántulas presentan problemas de infiltración de agua, el
cual causa daño a la estructura del suelo, volviéndose duro y compacto. Mientras
mayor contenido de RAS presente el agua residual menor probabilidad para uso agrí-
cola, este parámetro está en un nivel óptimo según lo estipula la normativa Ecuato-
riana.
Aceites y grasas
La presencia de aceites y grasas se debe al proceso industrial generado en la extracto-
ra. El TULSMA presenta un límite permisible inferior a 0,3 mg L-1
. El análisis reali-
zado establece que estas aguas contiene un valor de 17 mg L-1
. Es vital importancia
brindarle un correcto tratamiento ya que un exceso puede reducir la oxigenación a
través de la interfase aire-agua, afectando la cantidad de oxígeno disuelto.
(Casadiego, 2013).
Coliformes totales
La presencia de coliformes totales se debe a que cuenta con los nutrientes necesarios
y la temperatura adecuada para su crecimiento. El TULSMA presenta un límite
permisible inferior a 1000 (nmp/100 ml). Sería conveniente implementar otro trata-
miento para microorganismos ya que hay que evitar la aparición viveros en gran
cantidad, una vez que aparecen es muy difícil de controlar y manejar en el cultivo. Se
debe tener en cuenta que prácticamente no hay productos químicos como los fungi-
cidas en el caso de los hongos (Romero, 2007).
24
3.2 Nutrientes absorbidos por Elaeis guineensis en vivero.
3.2.1 Cobre
Se encuentra en un promedio de 0.15 a 0.43 mg.L-1
. El cobre es un micronutriente
esencial para el crecimiento y color de la plántula. Según los tratamientos que se
realizó el testigo es el que menos cantidad de nutriente absorbe. Las hojas se presen-
tan enrolladas y con clorosis en sus hojas (falta de color verde hojas) (Bloodnick,
2016).
Fig. 19. Variación de Cobre en tejido foliar de Elaeis guineensis.
3.2.3 Manganeso
Se encuentra en valores de 0.51 a 0.81 mg.L-1
. El testigo presenta síntomas de defi-
ciencia de manganeso representando un limitante para el desarrollo de la plántula. Es
un micronutriente importante ya que contribuye al crecimiento de las raíces y a la
resistencia de enfermedades que se puede dar en el cultivo (Bloonick, 2016).
0,1
0,15
0,2
0,25
0,3
0,35
0,4
0,45
T0 T1 T2 T3 T4
Cu
(m
g. L
-1)
Tratamiento
25
Fig. 20. Variación de Manganeso en tejido foliar de Elaeis guineensis.
3.2.3 Zinc
Se encuentra en rangos de 0,31 a 1,08 mg.L-1
. Este micronutriente es esencial para el
crecimiento y enfermedades que se pueden generar en las raíces, el perjuicio de las
plagas. Se observó que el testigo presentó problemas en sus raíces, y no se desarrolló
como los otros tratamientos (Marengo, 2009).
Fig. 21. Variación de Zinc en tejido foliar de Elaeis guineensis.
0,5
0,55
0,6
0,65
0,7
0,75
0,8
0,85
T0 T1 T2 T3 T4
Mn
(m
g. L
-1)
Tratamiento
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1
1,1
T0 T1 T2 T3 T4
Zn (
mg.
L-1
)
Tratamiento
26
3.2.4 Hierro
Presenta valores de 0,77 a 0,99 mg.L-1
.El testigo presentó falta de hierro, sus hojas
fueron más pequeñas, enrolladas en comparación con el ultimo tratamiento con hojas
más prolongadas (Juárez, 2006).
Fig. 22. Variación de Hierro en tejido foliar de Elaeis guineensis.
3.2.5 Calcio
La concentración de calcio varía de 0,2 a 0,98 mg.L-1
. El testigo presenta deficiencia
de calcio ya que no se dio un buen desarrollo radicular, las raíces fueron pequeñas
con respecto a los otros tratamientos, afectando al crecimiento (Monge, 1994).
Fig. 23. Variación en tejido foliar de Elaeis guineensis de Calcio.
0,75
0,8
0,85
0,9
0,95
1
T0 T1 T2 T3 T4
Fe(m
g. L
-1)
Tratamiento
0,1
0,2
0,3
0,4
0,5
0,6
0,7
0,8
0,9
1
T0 T1 T2 T3 T4
Ca
(mg.
L-1
)
Tratamiento
27
3.2.6 Magnesio
Se encuentra en rangos de 1.15 a 3.18 mg.L-1
.El testigo debido a la falta de este ma-
cronutriente presentó ciertas hojas secas, color amarillento a café claro, lo contrario
ocurre con el ultimo tratamiento 100 % agua residual sus hojas son verdes.
Fig. 24. Variación de Magnesio en tejido foliar de Elaeis guineensis.
3.2.7 Potasio
Se encuentra en un promedio de 1,58 a 4,15 mg.L-1
.Es uno de los nutrientes más
importantes en cuanto requerimiento de plántulas, este ayuda a la resistencia de en-
fermedades (Hernández, Barbazán, & Perdomo, 2010). El cuarto tratamiento no pre-
sento enfermedad alguna.
1
1,5
2
2,5
3
3,5
T0 T1 T2 T3 T4
Mg
(mg.
L-1
)
Tratamiento
28
Fig. 25. Variación de Potasio en tejido foliar de Elaeis guineensis.
3.2.8 Nitrógeno
Los valores se encuentran de 1,09 a 1,85 mg.L-1
. Este nutriente controla en gran parte
el crecimiento de la palma y su producción (Perdomo, 2007). La deficiencia que se
presenta en el testigo es que en las hojas que fueron brotando se pudo notar un color
amarillento
Fig. 26. Variación de Nitrógeno en tejido foliar de Elaeis guineensis.
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4
4,5
T0 T1 T2 T3 T4
K (
mg.
L-1
)
Tratamiento
1
1,1
1,2
1,3
1,4
1,5
1,6
1,7
1,8
1,9
T0 T1 T2 T3 T4
N (
mg.
L-1
)
Tratamiento
29
IV CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
La caracterización fisicoquímica y microbiológica de las aguas residuales permitió
identificar si se encuentra bajo los límites permisibles que establece el TULSMA, e
identificar si son aptas para uso agrícola.
Los parámetros que incumplen los límites permisibles normados para riego son: acei-
tes y grasas, coliformes totales y solidos disueltos, por lo que debería implementarse
más tratamientos para mejorar la calidad del agua residual.
En cuanto al diseño experimental de viveros de palma aceitera se pudo llegar a la
conclusión que el último tratamiento (100% agua residual) se desarrolló de mejor
manera, ya que los otros tratamientos presentaron algunos inconvenientes por falta
de nutrientes, presentaban color amarillento a café en algunas de sus hojas, en el caso
del testigo las hojas eran más pequeñas y enrolladas presentando inconvenientes en
el crecimiento.
Las aguas residuales utilizadas para el riego de viveros dieron buenos resultados en
el crecimiento de plántulas, ya que aporto con los nutrientes que la planta requiere
sin necesidad de recurrir al uso de fertilizantes.
Es recomendable fomentar la reutilización de aguas de las plantas de tratamientos
residuales, de esta manera concientizar y promover el uso que se le da a este recurso
natural especialmente en el sector industrial y agrícola que son los que mayormente
utilizan.
30
REFERENCIAS
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calidad de aguas a partir de fuentes superficiales. Obtenido de
http://www.salud-
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Cali: Miraguano Ediciones. Obtenido de Universidad del Valle:
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formacion/la-funcion-del-cobre-en-el-cultivo-de-plantas/
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formacion/la-funcion-del-manganeso-en-el-cultivo-de-plantas/
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