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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
UNIDAD DE INVESTIGACIÓN, TITULACIÓN Y GRADUACIÓN
ACUMULACIÓN DE PLACA BACTERIANA EN TRES TIPOS DE
HILOS DE LA CLÍNICA DE POSTGRADO DE PERIODONCIA DE
LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD
CENTRAL DEL ECUADOR.
TRABAJO DE INVESTIGACIÓN PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE
ODONTÓLOGO
AUTORA:
YAMILE NATALY HUERTAS PANTOJA
TUTORA:
DRA. MYRIAM KATHERINE ZURITA SOLIS
QUITO – ECUADOR
FEBRERO, 2016
ii
AGRADECIMIENTO
A los docentes de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador,
por ser parte de mi formación profesional y humana.
A mi tutora de tesis Dra. Katherine Zurita, por sus aportes, consejos y tiempo para la
realización de este trabajo.
De manera muy especial a la Dra. María Elena Herrera por ser parte fundamental en
todo el tiempo de la carrera.
A mis amigas Andrea, Diana, Marcela E. y mi amigo Luis por ese gran apoyo.
iii
DEDICATORIA
Este trabajo dedico principalmente a mi Dios por ser el guiador de cada uno de mis
pasos, y nunca desampararme aún en mis momentos más difíciles.
Lo dedico a mi querida madre Silvana por ese apoyo incondicional durante todo el
tiempo de mi carrera, por ese gran trabajo que realizó conmigo al cultivar cada uno de los
valores que me han hecho una buena persona.
De manera muy especial a mi abuelita Rosa por ser mi apoyo y la fuerza que me
impulsa a seguir adelante.
A mis hermanos Yadira, Alison y Alex, por cada una de sus palabras de motivación y
ese apoyo incondicional.
Con todo mi cariño
Nataly Huertas
iv
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL
Yo, YAMILE NATALY HUERTAS PANTOJA, en calidad de autora de la tesis
realizada sobre “ACUMULACIÒN DE PLACA BACTERIANA EN TRES TIPOS DE
HILOS DE SUTURA DE LA CLÌNICA DE POSTGRADO DE PERIODONCIA DE LA
FACULTAD DE ODONTOLOGÌA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL
ECUADOR”.
Por la presente autorizo a la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, hacer uso
de todos los contenidos que me pertenecen o de parte de los que contienen esta obra, con
fines estrictamente académicos o de investigación.
Los derechos que como autor me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los
artículos 5, 6, 8,19 y demás pertinentes a la Ley de Propiedad Intelectual y su Reglamento.
Quito, 16 de febrero del 2016
YAMILE NATALY HUERTAS PANTOJA.
C.I. 0401890678
v
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
UNIDAD DE GRADUACIÓN, TITULACIÓN E INVESTIGACIÓN
APROBACIÓN DEL TUTOR
Quito, 16, Febrero 2016
Dra. Mariela Balseca
COORDINADOR DE LA UNIDAD DE GRADUACIÓN, TITULACIÓN E
INVESTIGACIÓN DE LA FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR.
Presente
De mi consideración:
Yo, DRA. MYRIAM KATHERINE ZURITA SOLÍS, APRUEBO como TUTOR la
tesis titulada “ACUMULACIÒN DE PLACA BACTERIANA EN TRES TIPOS DE
HILOS DE SUTURA DE LA CLÌNICA DE POSTGRADO DE PERIODONCIA DE LA
FACULTAD DE ODONTOLOGÌA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL
ECUADOR” que se desarrolló en el área del conocimiento de la especialidad de
Odontología, cuyo AUTOR es el estudiante Sta. YAMILE NATALY HUERTAS
PANTOJA.
DRA. MYRIAM KATHERINE ZURITA SOLIS
C.I.1708118854
vi
CERTIFICADO DEL TRIBUNAL
ACUMULACIÒN DE PLACA BACTERIANA EN TRES TIPOS DE HILOS DE
SUTURA DE LA CLÌNICA DE POSTGRADO DE PERIODONCIA DE LA
FACULTAD DE ODONTOLOGÌA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL
ECUADOR.
Autora: Huertas Pantoja Yamile Nataly.
APROBACIÓN DEL JURADO EXAMINADOR
El presente trabajo de investigación, luego de cumplir con todos los requisitos
normativos, en nombre de la UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR, FACULTAD
DE ODONTOLOGÍA se aprueba; por lo tanto el jurado que se detalla a continuación,
autoriza al postulante la presentación a efecto de la sustentación pública.
vii
CONTENIDO
AGRADECIMIENTO ........................................................................................................... ii
DEDICATORIA ................................................................................................................... iii
AUTORIZACIÓN DE LA AUTORÍA INTELECTUAL .................................................... iv
APROBACIÓN DEL TUTOR .............................................................................................. v
CERTIFICADO DEL TRIBUNAL ...................................................................................... vi
APROBACIÓN DEL JURADO EXAMINADOR .............................................................. vi
CONTENIDO ...................................................................................................................... vii
ÍNDICE DE ANEXOS ......................................................................................................... xi
ÍNDICE DE FIGURAS ....................................................................................................... xii
ÍNDICE DE TABLAS ........................................................................................................ xiii
ÍNDICE DE GRÁFICOS ................................................................................................... xiv
RESUMEN .......................................................................................................................... xv
ABSTRACT ....................................................................................................................... xvi
INTRODUCCIÓN ................................................................................................................. 1
CAPÍTULO I: ........................................................................................................................ 2
1 EL PROBLEMA ..................................................................................................... 2
1.1 Planteamiento del Problema .................................................................................... 2
1.1.1 Formulación del Problema ...................................................................................... 2
1.2 Objetivos de la Investigación .................................................................................. 3
1.2.1 Objetivo General ..................................................................................................... 3
1.2.2 Objetivos Específicos .............................................................................................. 3
1.3 JUSTIFICACIÒN .................................................................................................... 3
1.4 Hipótesis .................................................................................................................. 4
viii
CAPÍTULO II: ....................................................................................................................... 5
2 PLACA BACTERIANA ......................................................................................... 5
2.1 Antecedentes Históricos .......................................................................................... 5
2.2 Definición de Placa Bacteriana o Biofilm Dental ................................................... 6
2.3 Etiología .................................................................................................................. 7
2.3.1 Papel de la saliva en la formación de la placa ......................................................... 8
2.3.2 Papel de los alimentos ingeridos en la formación de la placa ................................. 8
2.3.3 Dieta en la formación de la placa ............................................................................ 8
2.4 Estadíos de formación de la placa bacteriana .......................................................... 9
2.4.1 Fase I: (Película adquirida.)..................................................................................... 9
2.4.2 Fase II (Colonización Inicial): ................................................................................. 9
2.4.3 Fase III (colonización secundaria): ......................................................................... 9
2.5 Factores que favorecen la acumulación ................................................................. 10
2.6 Composición .......................................................................................................... 11
2.6.1 Matriz de la placa .................................................................................................. 11
2.6.2 Bacterias de la placa .............................................................................................. 12
2.7 Clasificación de la placa bacteriana ...................................................................... 14
2.7.1 Placa Supragingival ............................................................................................... 14
2.7.2 Placa Subgingival .................................................................................................. 14
2.8 Características del Biofilm o PB ........................................................................... 15
2.9 Enfermedades Consecuentes de la PB................................................................... 16
2.9.1 Gingivitis ............................................................................................................... 16
2.9.2 Periodontitis........................................................................................................... 17
2.10 Control de Placa Bacteriana .................................................................................. 18
2.10.1 Elementos del control de PB ................................................................................. 19
2.10.1.1 Cepillos dentales: .................................................................................................. 20
2.10.1.2 Dentífricos: ............................................................................................................ 21
ix
2.10.1.3 Técnicas de cepillado dental.................................................................................. 21
2.10.1.4 Higiene Interdental ................................................................................................ 23
2.10.1.5 Ayudas especiales (irrigación) .............................................................................. 24
2.10.1.6 Control químico de la placa................................................................................... 24
2.11 SUTURA ............................................................................................................... 25
2.11.1 Concepto ................................................................................................................ 25
2.11.2 Objetivos ............................................................................................................... 25
2.11.3 Sutura en Cirugía Periodontal ............................................................................... 25
2.11.4 Clasificación de los hilos de sutura ....................................................................... 26
2.11.4.1 Según su Reabsorbilidad ....................................................................................... 26
2.11.4.1.1Reabsorbibles ...................................................................................................... 27
2.11.4.1.2No reabsorbibles .................................................................................................. 27
2.11.4.2 Según su origen ..................................................................................................... 27
2.11.4.2.1Suturas reabsorbibles naturales ........................................................................... 27
2.11.4.2.1.1Catgut Simple ................................................................................................... 28
2.11.4.2.1.2Catgut Crómico................................................................................................. 28
2.11.4.2.2Suturas reabsorbibles sintéticas ........................................................................... 28
2.11.4.2.2.1Dexon (ácido poliglicólico) ............................................................................. 28
2.11.4.2.3-2 Vicryl (ácido poliláctico) ................................................................................ 29
2.11.4.2.3.1PDS(Polidioxanoma) ........................................................................................ 29
2.11.4.2.4Suturas no reabsorbibles de origen natural .......................................................... 29
2.11.4.2.4.1Lino ................................................................................................................... 29
2.11.4.2.4.2Seda ................................................................................................................. 29
2.11.4.2.5Suturas no reabsorbibles de origen sintético ...................................................... 30
2.11.4.2.6Nylon ................................................................................................................... 30
2.11.4.3 Según su número de filamentos............................................................................. 30
2.11.4.3.1Monofilamentos ................................................................................................... 30
x
2.11.4.3.2Multifilamentos ................................................................................................... 31
2.11.4.4 Según su diámetro ................................................................................................. 31
CAPÍTULO III .................................................................................................................... 33
3 METODOLOGÌA ................................................................................................. 33
3.1 Tipo de Investigación ............................................................................................ 33
3.2 Población y muestra .............................................................................................. 33
3.2.1 Criterios de Inclusión ............................................................................................ 34
3.2.2 Criterios de Exclusión ........................................................................................... 34
3.3 Operacionalización de las variables ...................................................................... 34
3.4 Procedimiento ........................................................................................................ 35
3.4.1 Proceso de selección de pacientes. ........................................................................ 35
3.4.2 Sutura..................................................................................................................... 36
3.4.3 Retiro de puntos..................................................................................................... 36
3.4.4 Toma de muestra ................................................................................................... 37
3.4.5 Determinación de transmitancia por espectrofotometría....................................... 39
3.5 Aspectos Éticos ..................................................................................................... 41
CAPÍTULO IV: ................................................................................................................... 42
4 ANÀLISIS E INTERPRETACIÒN DE RESULTADOS ..................................... 42
4.1 Análisis Estadístico ............................................................................................... 42
4.2 ANOVA de un factor: ........................................................................................... 45
CAPÍTULO V ..................................................................................................................... 52
5 CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES .................................................... 52
5.1 CONCLUSIONES................................................................................................. 52
5.2 RECOMENDACIONES ....................................................................................... 53
BIBLIOGRAFÍA ................................................................................................................. 54
ANEXOS ............................................................................................................................. 57
xi
ÍNDICE DE ANEXOS
ANEXO 1: Fotografías de tratamientos quirúrgicos periodontales y materiales para la
investigación. .................................................................................................... 57
ANEXO 2: Solicitud para la realización del estudio en la Clínica de Postgrado de
Periodoncia de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del
Ecuador. ............................................................................................................ 61
ANEXO 3. Formato de Consentimiento Informado ............................................................ 62
ANEXO 4. Consentimientos Informados firmados ............................................................. 64
ANEXO 5. Informe del Laboratorio Gruentec. ................................................................... 65
ANEXO 6. Certificado del estadístico. ............................................................................... 66
xii
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1. Placa bacteriana revelada ...................................................................................... 7
Figura 2. Formación de la placa bacteriana. ....................................................................... 10
Figura 3. Corte delgado de placa supragingival. ................................................................ 14
Figura 4. Corte delgado de placa subgingival. ................................................................... 15
Figura 5. Gingivitis por placa ............................................................................................. 16
Figura 6. Periodontitis ........................................................................................................ 17
Figura7. Seda negra y vicryl 4-0 marca Braun .................................................................... 35
Figura 8.Nylon 4-0 marca Braun ......................................................................................... 35
Figura 9.Suturando con vicryl 4-0 ....................................................................................... 36
Figura 10.Sutura con vicryl 4-0 ........................................................................................... 36
Figura 11. Instrumental para retiro de puntos ..................................................................... 37
Figura 11. Retiro de puntos ................................................................................................. 37
Figura 12. Calibración de 10ml de agua destilada para la muestra ..................................... 38
Figura 12. Punto de vicryl para la muestra .......................................................................... 38
Figura 13. Colocación de muestra en el tubo de ensayo ..................................................... 38
Figura 13. Muestra de vicryl para espectrofotómetro.......................................................... 39
Figura 14. A) Muestras para espectrofotómetro. B) Muestras blanco................................. 40
Figura 15. Calibración de espectrofotómetro ...................................................................... 40
Figura 16. Lectura de transmitancia .................................................................................... 41
xiii
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1. Nivel de confianza de la muestra........................................................................... 42
Tabla 2. Valores de los resultados de la sutura seda negra .................................................. 43
Tabla 3. Valores de los resultados de la sutura vicryl ......................................................... 43
Tabla 4. Valores de los resultados de la sutura nylon. ........................................................ 44
Tabla 5. Resultado de las Pruebas de Normalidad .............................................................. 44
Tabla 6. Media por cada grupo de sutura de investigación. ................................................ 45
Tabla 7. Prueba de homogeneidad. ...................................................................................... 46
Tabla 8. Prueba de ANOVA de un factor. ........................................................................... 46
Tabla 9. Comparación de medias. ....................................................................................... 47
Tabla 10. Prueba de Tukey. ................................................................................................. 47
xiv
ÍNDICE DE GRÁFICOS
Gráfico 1. Medias de los hilos de sutura por grupo de estudio ........................................... 46
Gráfico 2. Parámetros de medida. ....................................................................................... 48
xv
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA
“ACUMULACIÓN DE PLACA BACTERIANA EN TRES TIPOS DE HILOS DE
SUTURA EN LA CLÍNICA DE POSTGRADO DE PERIODONCIA DE LA
FACULTAD DE ODONTOLOGÍA DE LA UNIVERSIDAD CENTRAL DEL
ECUADOR”
AUTORA: Yamile Nataly Huertas Pantoja.
TUTORA: Dra. Myriam Katherine Zurita Solís.
FECHA: 16 de Febrero del 2016
RESUMEN
La placa bacteriana es un factor importante en la etiología de las enfermedades bucales
y periodontales tales como gingivitis, periodontitis, caries dental que se han convertido en
un problema de Salud Pública, motivo por el cual es importante su control en cavidad
bucal. El propósito de este estudio fue evaluar la acumulación de biofilm (placa bacteriana)
en tres tipos de hilos de sutura (seda negra, nylon, vicryl) de la clínica de postgrado de
Periodoncia de la Facultad de Odontología de la UCE. La obtención de las suturas
utilizadas para muestra fueron de pacientes que acudieron a mencionada clínica para
tratamiento quirúrgico a los cuales se les obsequio un tipo de sutura que fue retirada a los 8
días de la cirugía; sutura que se procedió a depositar en un tubo de ensayo de vidrio con
10ml de agua destilada, tapándose la muestra para llevar al espectrofotómetro para su
análisis mediante la absorbancia. Los resultados obtenidos fueron analizados con la prueba
estadística de ANOVA, con lo que se concluyó que la absorbancia promedio para el vicryl
fue (0.8337), nylon (0.5294), seda negra (0.4809), por lo que el vicryl es la sutura con
menor acumulación de placa bacteriana.
PALABRAS CLAVES: HILO DE SUTURA, PLACA BACTERIANA,
ABSORBANCIA O TRANSMITANCIA.
xvi
UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
SCHOOL OF DENTISTRY
“ACCUMULATION OF PLAQUE IN THREE TYPES OF SUTURES IN THE
GRADUATE PERIODONTICS CLINIC OF THE FACULTY OF DENTSTRY,
CENTRAL UNIVERSITY OF ECUADOR”
AUTHOR: Yamile Nataly Huertas Pantoja.
TUTOR: Dra. Myriam Katherine Zurita Solis.
DATE: February 16, 2016
ABSTRACT
Plaque is an important etiology of oral disease and periodontal factor such as gingivitis,
periodontitis, dental caries have become a Public Health problem, why is it important to
control oral cavity. The purpose of this study was to evaluate the accumulation of biofilm
(plaque) on three types of sutures (black silk, nylon, and vicryl) of graduate periodontics
clinic Faculty of Dentistry, UCE. Obtaining sutures were used to show patients attending
clinic mentioned surgical treatent for which I will be present a type of suture was removed
after 8 day surgery; suture proceeded to deposit in a glass test tube with 10 l of distilled
water, covering the sample to bring the spectrophotometer for analysis by absorbance. The
results were analyzed with ANOVA statistical test, whereby it was concluded that the
average absorbance for vicryl (0.8337), nylon (0.5294), black silk (0.4809), so the vicryl
suture is less accumulation of plaque.
KEYWORDS: SUTURE, PLAQUE , ABSORBANCE OR TRANSMITTANCE.
1
INTRODUCCIÓN
Desde años atrás ha existido el interés del hombre por identificar las causas
primordiales de enfermedades bucales como las periodontales, y es por eso que hoy en día
se conoce a la placa bacteriana como el común denominador de las enfermedades
vinculadas con el periodonto. (Glickman, 1974; Barrios, 2004).
Considerada así la placa bacteriana principal causal de enfermedad bucal, ya que en su
composición lleva bacterias que tienen la capacidad de producir y emanar a los
carbohidratos principalmente extracelulares para permitir su estadía constituyéndola en un
factor inicial de enfermedad. (Lindhe, 2011).
Por otra parte a lo largo de los años y gracias al avance de la ciencia se han empleado
medidas para la prevención de enfermedades bucales causadas por placa dental, de tal
manera que se usan materiales para su control y remoción, medidas de prevención por
parte del odontólogo e incluso la utilización de materiales de sutura que acumulen la menor
cantidad de placa luego de un tratamiento quirúrgico. (Fuenmayor, 2009; Perry, 2014).
Es por ello que ya se han realizado estudios sobre los materiales de sutura, con
resultados positivos; como del vicryl que a más de ser un material que ayuda en la síntesis
de tejidos provoca menos inflamación de los mismos y menor acúmulo de placa a
comparación con otras suturas como la seda negra considerada de uso más común, por este
motivo se realizó este estudio con un espectrofotómetro, para evaluar la acumulación de
placa bacteriana, tanto en la seda negra, el nylon y el vicryl hilos tomados de los pacientes
de la clínica de postgrado de periodoncia.( Felzani, 2007; García, 2008; Matos &
Bascones, 2011).
De acuerdo con los resultados obtenidos cabe mencionar que es recomendable utilizar
suturas que nos brindan mejores ventajas como es el caso del vicryl, y de esta manera
contribuir a un mejor resultado en el tratamiento postquirúrgico con el paciente.
2
CAPÍTULO I:
1 EL PROBLEMA
1.1 Planteamiento del Problema
La Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador, atiende a personas
con una variedad de afecciones en lo que se refiere a su salud bucal.
Por lo tanto en la Clínica de Postgrado de Periodoncia de la Facultad se emplean las
técnicas quirúrgicas y materiales necesarios de sutura en beneficio de la salud bucal del
paciente.
Felzani, R. (2007) en su publicación ha manifestado que el uso de la seda negra para la
sinéresis de heridas quirúrgicas en cavidad bucal es muy común, y que así como presenta
ventajas, tiene desventajas y una de la más común es el acúmulo de placa bacteriana, que
se ha demostrado que es la principal causante de enfermedades periodontales como lo
mencionan Bascones, A. 2011 & Newman, M. 2014.
El éxito de un tratamiento bucal se debe en gran parte a un control minucioso de placa
bacteriana, es por eso que los materiales utilizados deben acumular la menor cantidad de
placa; siendo el hilo de sutura uno de los materiales más importantes. (García, S. 2008).
Por esta razón, es que para mejorar el postquirúrgico de una cirugía bucal, sabiendo que
existen otros materiales que nos pueden brindar mejores características, ya que se necesita
de un material que ayude a suplir los inconvenientes mencionados y los materiales de
alternativa podrían ser el vicryl o nylon.
1.1.1 Formulación del Problema
¿Cuál es la diferencia de acumulación de placa bacteriana que existe entre la seda negra,
nylon, vicryl, recolectados en la Clínica de Postgrado de Periodoncia de la Facultad de
Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
3
1.2 Objetivos de la Investigación
1.2.1 Objetivo General
Determinar y comparar la acumulación de placa bacteriana localizada en los hilos:
seda negra, nylon, vicryl, recolectados en la Clínica de Postgrado de Periodoncia de
la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
1.2.2 Objetivos Específicos
Comparar por medio del espectrofotómetro cuál de los hilos de sutura acumulan
menor cantidad de placa bacteriana.
Proponer la utilización del mejor biomaterial de sutura una vez finalizada la
investigación, de esta manera contribuir a la disminución de formación de placa en
la etapa postquirúrgica en base a la evidencia.
1.3 JUSTIFICACIÒN
Desde épocas prehistóricas ha existido ya el interés por la eliminación del biofilm (placa
bacteriana), interpretándolo como causante de enfermedad periodontal; es por eso que para
la actualidad se la considera como un factor influyente en el resultado de una terapia
quirúrgica periodontal, por lo tanto es importante determinar el comportamiento de
biomateriales de sutura respecto a la acumulación de ésta. (García, S. 2008).
Ya que las suturas son tan antiguas y se utilizaron 50000 años a C. al igual que en la
edad media época obscura de la cirugía; Ambrosio Paré 1510-1590 utilizó para hemostasia
de vasos sanguíneos, abandonando así las cauterizaciones.
Joseph Lister 1867 ligadura antiséptica de catgut (esterilización) y Theodoro Kocher
cambia catgut por seda.
Es necesario identificar suturas que brinden mejores ventajas tanto para el profesional
como para el paciente, y de esta manera obtener mejores resultados en el postquirúrgico de
una cirugía, y así contribuir un aporte para el desarrollo del área de la salud.
4
La presente investigación tiene como propósito contribuir a la elección del biomaterial
de sutura idóneo, utilizado en la sinéresis de tejidos blandos, ya que se ha demostrado que
ciertos hilos de sutura empeoran la etapa postquirúrgica, acumulando mayor cantidad del
biofilm, siendo la causa principal de las enfermedades periodontales, por lo cual el control
de la PB se transforma en uno de los objetivos del tratamiento quirúrgico. (Matos, C. &
Bascones, A. 2011).
1.4 Hipótesis
La acumulación de placa bacteriana será menor en el vicryl que en los otros hilos de
nylon y seda negra.
5
CAPÍTULO II:
MARCO TEÓRICO
2 PLACA BACTERIANA
2.1 Antecedentes Históricos
Estudios paleontológicos señalan que el hombre ha tenido la iniciativa de definir la
placa bacteriana desde épocas prehistóricas y documentos antiguos revelan el
conocimiento de egipcios, sumerios, babilonios, romanos sobre la placa bacteriana junto
con la necesidad de su tratamiento. (Glickman, I. 1974).
Así la conceptualización y el papel de la placa bacteriana han ido también variando a lo
largo de la historia odontológica con la ayuda de los medios técnicos disponibles para su
estudio.
Albucasis (936-1013) destacó el cuidado y el tratamiento de las estructuras de soporte y
se refirió así: “A veces, en la superficie de los dientes, por dentro y por fuera, así como
debajo de las encías, se depositan escamas ásperas de aspecto feo y color negro, verde o
amarillo; así, la corrupción se comunica a las encías y a los dientes, que, con el paso del
tiempo, se denudan.”(Newman, M. 2014).
Anthony Van Leeuwenhoek, en 1683, observó que la placa dental estaba compuesta por
“depósitos blandos con microbios y restos de comida” y mencionó “no limpie mis dientes
(a propósito) durante tres días y retire gran cantidad de material alojado en las encías
debajo de los dientes… encontré pocos animalículos vivos”. (Duarte, C. 2009).
Para los años de 1897 Williams, J. C. la definió como una masa gruesa, de
microorganismos productores de ácidos que desarrollan un proceso carioso. En 1897-1898
Black, G. V. dijo que son capas gelatinosas de microorganismos, utilizando ya la palabra
“placa”. .En Williams J. C. Afirmó que son placas microbianas. En el año 1899 Black, G.
6
V. amplió su definición placa microbiana gelatinosa con capas de consistencia gelatinosa,
transparentes producida por microorganismos.
En 1902 Miller, W. D. la definió como “placa bacteriana”, manifestando que no era
común ver el diente sin presencia de bacterias adheridas. En 1941 W. Wild dice que la
placa se adhiere a la superficie en los espacios habitualmente no limpiados de la dentadura,
y se compone de restos de alimentos (Hidratos de carbono, proteínas, grasas, saliva,
mucina, células epiteliales descamadas y diversas bacterias.). (Glickman, I. 1974).
Continuando con el aporte en 1953 R. M. Stephan dijo la placa es la suma de todo
material blando, exógeno que se adhiere a la superficie dentaria.
En el año de 1961 La Organización Mundial de la Salud dijo la placa tiene
principalmente microorganismos: células epiteliales y sanguíneas y pocos residuos de
alimentos.
En el año de 1963 Dawes, C.et al.la definieron a la placa bacteriana como todos los
depósitos blandos presentes, con exclusión de residuos de alimentos que no eran
removidos con la facilidad del flujo de agua.
En 1965 Loe, H. et al. ya definieron la relación de la placa con la gingivitis como
enfermedad.
¨La placa dentaria es un depósito blando amorfo granular que se acumula sobre las
superficies, restauraciones y cálculos dentarios.” (Glickman, I. 1974, p. 284).
2.2 Definición de Placa Bacteriana o Biofilm Dental
El comité de terminología de la Academia Americana de Periodoncia la define:
“PLACA: Substancia pegajosa compuesta por secreciones mucosas que contienen
bacterias y sus productos, células muertas y restos. Cuando esta substancia tóxica se
acumula sobre los dientes, se sabe que se constituye en un factor iniciador de inflamación
gingival. Los términos flora microbiana o población microbiana son preferibles al término
7
de placa, materia alba o restos haciendo referencia a la microbiota de la región del surco
gingival (Listgarten)”.Tomado de Barrios, Gustavo. 2004, p. 261-262.
Según Duarte, C. (2009) existe una tendencia a utilizar el término Biofilm para sustituir
placa bacteriana; “Biofilm no es más que una o más comunidades incluidas en glucocaliz
que se adhieren a superficie sólida”.
Figura 1. Placa bacteriana revelada Fuente: “Periodoncia”, Eley B, et al 2012, pág. 22.
2.3 Etiología
El origen al igual que la maduración de la placa bacteriana han sido estudiados en las
superficies bucales naturales y en superficies artificiales como metales, acrílicos, hilos de
sutura, entre otros a pesar de sus diferencias en cuanto a aspereza superficial, energía libre
y carga, las características de la formación inicial de la placa son relativamente similares
en estos materiales. (Siegrist y col. 1991).
Inmediato a la ingesta de un sólido en el medio líquido de la cavidad bucal, o luego de
la limpieza de la superficie en boca, macromoléculas de naturaleza hidrófoba constituyen
una película condicionante denominada película adquirida. (Lindhe, J. 2011).
Posteriormente existe una aposición de una capa de bacterias en la película adquirida,
estos microorganismos son “adheridos” por: una matriz interbacteriana adhesiva, o por una
afinidad de la hidroxiapatita adamantina por las glucoproteínas, finalmente la placa crece
por: agregado de nuevas bacterias, multiplicación de las bacterias o por la acumulación de
productos bacterianos. (Glickman, I. 1974).
8
2.3.1 Papel de la saliva en la formación de la placa
El conjunto de glucoproteínas presentes en la saliva se denomina mucina, que no solo
tiene un papel protector, pues la diversidad de sus cadenas oligosacáridos con sitios de
unión y sustratos metabólicos específicos que ayudan a la colonización de bacterias.
(Derrien, M. et al. 2010).
Todas las glucoproteínas de la saliva no son identificadas pero están compuestas de
proteínas conjuntamente combinadas con carbohidratos (oligosacáridos), como fructosa,
galactosa, ácido siálico manosa y las hexosaminas: N-acetilgalactosamina y N-
acetilglucosamina; las enzimas (glucosidasas) descomponen a los carbohidratos que
utilizan como alimento, la enzima neuraminidasa es la que se encarga de separar al ácido
siálico de la glicoproteína salival; la menor viscosidad salival es consecuencia de la
pérdida de ácido siálico y esto se considera un factor importante en la formación de la
placa. (Glickman, I. 1974).
2.3.2 Papel de los alimentos ingeridos en la formación de la placa
Según Glickman, I. (1974) ´´la placa no es un residuo de los alimentos, pero las
bacterias de la placa utilizan los alimentos ingeridos para formar los componentes de la
matriz¨
Los alimentos que más contribuyen a la formación de la placa son los azúcares
solubles: sacarosa, glucosa, fructosa, maltosa como los más conocidos por el paciente,
además de que también contribuyen los almidones que son moléculas más grandes.
2.3.3 Dieta en la formación de la placa
Según Escobar, F. (2012) dieta se llama al total de alimentos ingeridos sean de
naturaleza sólida o líquida, incluyendo también a componentes no-nutritivos. Estos
componentes de la ingesta en la dieta se ponen en íntimo contacto con las piezas dentales,
tejidos de soporte y la placa bacteriana, así la dieta tiene efecto localizado en la cavidad
oral al reaccionar con el esmalte y servirle de este modo de sustrato a los microorganismos.
9
2.4 Estadíos de formación de la placa bacteriana
2.4.1 Fase I: (Película adquirida.)
Barrios, G. (2004) mencionó que la película adquirida es de origen salivar, Lindhe, J.
(2011) dijo que la película adquirida está compuesta por diversas glucoproteínas salivales
(mucinas) y anticuerpos.
La película adquirida se forma constantemente sobre las superficies en boca sin tener en
cuenta la colonización de las bacterias e inclusive podría permanecer sin colonización
bacteriana, y al ser hidrolizada por acción enzimática se descompone por una parte en
hexosas y ácido siálico, y por otra en parte en proteínas eléctricamente cargadas que se
unen luego a la hidroxiapatita, como el calcio (positivo) o el fosfato (negativo) mediante
una unión iónica débil. (Escobar, F. 2012)
2.4.2 Fase II (Colonización Inicial):
En esta fase ya se observan la adhesión de bacterias específicas a la película adquirida
tan solo a minutos de su formación, como primeras colonizadoras las del género
Streptococcus (cocos gram-positivos anaerobios facultativos, siendo la especie más
destacada Streptococcus sanguis).Continuamente se agregan diversas especies de bacilos
gram-positivos, los cuales aumentan también en número, superando a las de forma
cocoides, también se forman interacciones bacterianas formando estructuras como mazorca
de maíz.(Fuenmayor, V. 2009).
Poco después se unen las formas de tipo filamentosas gram-positivas, como los
destacados Actinomyces sp. Los primeros días, esta población bacteriana crece y se
extiende fuera de la superficie dental, por lo que se pueden miran en el microscopio
electrónico agregaciones similares a rascacielos. (Eley, B. et al 2012).
2.4.3 Fase III (colonización secundaria):
En esta etapa se realiza la coagregación de nuevas especies bacterianas gracias a la
multiplicación bacteriana de la fase anterior y a la aparición de nuevas condiciones de
10
crecimiento y metabolismo de los colonizadores. Existe adhesión de Neisseria sp.Veionella
sp. Fusobacterium sp. y otras bacterias gram-negativas en los espacios intersticiales
restantes formados por las interacciones bacterianas. (Eley, B. et al 2012).
Figura 2. Formación de la placa bacteriana. Fuente: www.wikipedia.com
2.5 Factores que favorecen la acumulación
A más del hábito defectuoso de mala higiene bucal comúnmente conocido como el
principal causante, existen una serie de factores que favorecen la acumulación.(Wolf, H.
2009).
Cuadro N° 1 Factores que favorecen la acumulación
1 Cálculos dentarios: Ésta masa mineralizada refleja el predominio de
acumulaciones bacterianas mezcladas con los productos del líquido gingival y
la sangre.
2 Empaquetamiento alimenticio: se produce cuando las superficies
interproximales tienen un contacto defectuoso bien por vía oclusal o vía lateral,
por presión de la lengua.
3 Terceros molares semierupcionados: trae como consecuencia la formación de
un saco periodontal distal al segundo molar.
4 Capuchones pericoronarios:(Capuchón Pericoronario) se constituye en
“nicho” que favorece la acumulación de bacterias que conduce a pericoronitis.
5 Malposición dentaria: acumulación de PB en zonas de difícil acceso; frecuente
en dientes apiñados anteriores y molares inferiores ligeramente inclinados hacia
lingual.
6 Terapia ortodóncica: aparatos ortodóncicos favorecen la acumulación de restos
alimenticios y PB.
7 Odontología restauradora defectuosa y materiales dentales: los excesos de
material de obturación y defectos en los contornos especialmente el
11
sobrecontorno, coronas defectuosas, desadaptación de prótesis parcial fija,
defectos en la reconstrucción de los espacios interproximales.
8
Respiración bucal: pierde su arquitectura normal y se forma una especie de
repisa que favorece la acumulación de PB.
9 Hábitos orales: hábitos contraídos por el paciente que agravan la condición
como el tabaquismo, hábitos del palillo, entre otros. Fuente: Barrios, G. “Odontología” (2004).
Elaborado por: Nataly Huertas Pantoja.
2.6 Composición
Principalmente la composición de la placa consta de materiales orgánicos e inorgánicos
derivados de la saliva, microorganismos proliferantes, células epiteliales, leucocitos, y
macrófagos presentes en la matriz intercelular adhesiva que constituyen entre un 20% de la
placa y el resto es agua. (Eley, B. et al 2012).
Mientras que las bacterias constituyen un aproximado de 70-80 % de material sólido,
pueden encontrarse más de 325 especies bacterianas diferentes; y el restante representa a la
matriz intercelular. (Eley, B. et al 2012).
2.6.1 Matriz de la placa
Según Glickman, I. (1974) & Eley, B. (2012) la matriz de la placa tiene dos contenidos.
Contenido Orgánico:
Consta de un complejo tanto de proteínas como polisacáridos, cuyos componentes
principales son los carbohidratos, siendo el dextrano el más común que además está en
mayor cantidad en un 9.5 % del total de sólidos; también se encuentra levano y galactosa,
las proteínas, en un aproximado de 30 por cada 100, mientras que los lípidos en un 15%; la
naturaleza del resto de los componentes no es muy definida y lo representan productos
extracelulares de las bacterias conformantes de la placa, sus restos citoplasmáticos y de la
membrana celular, restos de alimentos y derivados de glucoproteínas de la saliva.
(Glickman, I. 1974 & Eley, B. 2012).
12
Contenido Inorgánico:
En la matriz de la placa los componentes inorgánicos más importantes son el calcio y el
fósforo, y en menores cantidades sodio, potasio, magnesio y flúor. En la superficie lingual
de dientes anteriores inferiores el contenido de sales inorgánicas es más alto, pero el
contenido inorgánico total de la placa incipiente es bajo se produce mayor aumento cuando
la placa se transforma en cálculo dental. (Eley, B. el al 2012).
2.6.2 Bacterias de la placa
En la medida que se va desarrollando la placa, la población bacteriana también se va
modificando desde un predominio inicial de cocos que generalmente son grampositivos
hasta alcanzar una mayor complejidad con bacilos filamentosos y no filamentosos.
(Glickman, 1974).
La población bacteriana varía de paciente a paciente en las diferentes zonas de la boca, a
diferentes horas del día elevándose en la noche, sin embargo la edad, la higiene bucal, la
cantidad y viscosidad de la saliva son factores influyentes en el aumento y disminución de
la microflora bacteriana.(Bascones, A. 2001).
Cuadro N° 2Porcentajes de bacterias de la placa a medida que madura.
Microorganismos Cocos facultativos grampositivos Estreptococos S. mutans S. sanguis Otros Estafilococos
Día 1
46
2
50
3
69
4
3
9
1
5 53
7 51 3
9 36
14 43 4
21 39
28 50 1
28 o
más
días
28
17-27 Pocos
Bacilos facultativos grampositivos Corynebacterium (filamentos difteroiddes) Nocardia(difteroide aerobio) Odontomyces
3 6
1 0.5
6 1
8 0.2
9 0.1
24
23
13
viscosus
Cocos facultativos gramnegativos Neisseria
9
12
8
17
6
10
2
5
11
4
35 2-3
Bacilos facultativos gramnegatrivos Ninguno
0
Cocos anaerobios grampositivos Peptoestreptococos
13
Bacilos anaerobios grampositivos Leptotrichia buccalis (filamentosos) Actinomyces (difteroide filamentoso) A. naeslundi A. israelí Corynebacterium (difteroide filamentoso) Propionibacterium (difteroide)
0
3 1 0
1
1.5 1 0
6
1.5 18 0 0
23
2 1 1
4 14 0
4 11.5 2
18 6
Cocos anaerobios gramnegativos Veionella
1.4
3.7
15.5
14
12.5
6 6
Bacilos anaerobios gramnegativos Espirilos Vibriones Fusobacterias (filamentosas) Bacteroides (filamentosos)
0
15 1.4
0.1
13 1
0.3
2 1.2
0.8
17 3
4 2
7 2
10 2-4 4
Espiroquetas anaerobias gramnegativas
-
0.1
Fuente: Glickman, I.”Periodontología Clínica´´ (1974).
Las bacterias liberan y producen diversos polímeros de carbohidratos extracelulares,
que sirven como depósitos de energía y anclaje para asegurar su permanencia en la placa,
además las bacterias tienen vías metabólicas para sintetizar material extracelular. (Lindhe,
J. 2011).
14
2.7 Clasificación de la placa bacteriana
Carranza, F. (1978) dijo con base a la ubicación la placa se clasifica de manera amplia
como supra o subgingival.
2.7.1 Placa Supragingival
Para Carranza, F. (1978) y Barrios, G. (2004) la placa denominada supragingival se
acumula de manera específica a nivel del tercio gingival del diente o por arriba del margen
gingival; y si se encuentra en contacto directo con el margen gingival se denomina placa
marginal.
Figura 3. Corte delgado de placa supragingival. Fuente: “Periodontología clínica e implantología odontológica”, Lindhe, 2011, pág. 194
2.7.2 Placa Subgingival
La PB subgingival se la encuentra por debajo del margen gingival, entre el surco
gingival y el diente o sobre el surco gingival y la bolsa periodontal. (Bascones, A. 2001)
La saliva que tiene un papel importante en la formación de la PB supragingival, no
constituye elemento fundamental en la formación de la PB subgingival. (Barrios, G. 2004).
15
Las biopelículas de PB no se forman solo sobre los dientes naturales, sino también se
las encuentra en las superficies artificiales expuestas en la cavidad bucal como son
implantes orales, aparatos protésicos u ortodóncicos, hilos de sutura que se colocan luego
de una intervención quirúrgica, por lo tanto la formación de la PB sobre estas superficies
merece atención de estudio.
Figura 4. Corte delgado de placa subgingival. Fuente: “Periodontología clínica e implantología odontológica”, Lindhe, 2011, pág. 195
2.8 Características del Biofilm o PB
Presentan características que les confieren propiedades relevantes como las que se
describen a continuación en el siguiente cuadro:
Cuadro N° 3Características del Biofilm o PB.
Heterogeneidad
Fisiológica
Dentro del biofilm se encuentran micronichos separados por
mínimas distancias con variedad en el contenido, tensión de
O2 y CO2, PH, etc., ésta heterogeneidad confiere la resistencia
a las bacterias cuando se producen.
Fenotipos en el
biofilm
Los fenotipos de las bacterias que crecen en el biofilm son
más resistentes frente a los antimicrobianos y mantienen la
resistencia incluso cuando se desprenden del biofilm.
Señales en el biofilm Cuando las bacterias están dentro del biofilm tienen capacidad de comunicación entre ellas ya sea por señales químicas o transferencia del material genético.
Capacidad
adaptativa
El biofilm presenta un equilibrio entre el crecimiento en
condiciones favorables de aporte de nutrientes, de medio
ambiente y el mantenimiento de la estructura del mismo.
16
Resistencia frente
antimicrobianos
Resistencia a los antimicrobianos ya que las bacterias en
biofilm crecen por mil, por lo cual deberían multiplicarse hasta
por mil las concentraciones de antimicrobianos a emplearse. Fuente: Fuenmayor Fernández. SEPA. “Manual de Higiene Bucal”. (2009)
Elaborado por: Nataly Huertas P.
2.9 Enfermedades Consecuentes de la PB.
Aunque en las enfermedades más comunes a causa de la placa bacteriana se detallan la
gingivitis y la periodontitis, existen otras patologías que se relacionan con ésta como es la
enfermedad de la caries dental. Newman, M. (2014).
Así como los diferentes estilos de vida, hábitos de higiene bucal y alimentación generan
impacto en la salud oral de los pacientes, la placa dentaria se manifiesta como un indicador
de influencia para el origen y desarrollo de patologías bucales, acompañado del consumo
de alimentos cariogénicos.
A continuación se detallan las enfermedades más comunes a causa de la placa
bacteriana o biofilm.
2.9.1 Gingivitis
La gingivitis que se relaciona con la placa dental es la manifestación más común de
enfermedad gingival, como resultado de la interacción entre microorganismos, tejidos y
células inflamatorias del huésped; es posible que se propague sin pérdida de inserción o
con pérdida previa de inserción que está estable y no avanza. (Newman, M.2014).
Figura 5. Gingivitis por placa Fuente: “Periodoncia clínica e implantología oral”, Bascones, 2001, pág. 92
17
Según Fuenmayor, V. (2009) al examinar clínicamente el tejido gingival se aprecian
cambios:
El contorno regular de la encía aparece más redondeado con manifestación de
edema o fibrosis, y puede existir profundidad del surco gingival debido a las
pseudobolsas que se forman. (Newman, M.2014).
El sangrado al sondaje es el primer signo de inflamación y su intensidad es variable
e influenciada por características anatómicas como de la raíz dental e incluso de
restauraciones presentes, la hemorragia de la encía al sondaje es producto de la
dilatación de los capilares del tejido conectivo y su causal adelgazamiento.
Los cambios de color de la encía varían con la intensidad de la inflamación; en
pacientes de piel clara cambia de rosado normal a rojo o rojo azulado, mientras que
en los pacientes de piel oscura los cambios no son tan marcados.
Se pierde el punteado característico de piel de naranja aunque en algunos pacientes
no desaparece.
Al análisis radiográfico existe una lámina dura sin pérdida de la continuidad (distancia a
la unión amelocementaria 2mm). (Fuenmayor, V. 2009).
2.9.2 Periodontitis
La periodontitis se define como ¨una enfermedad inflamatoria de los tejidos de soporte
de los dientes provocada por microorganismos o grupos de microorganismos específicos,
que tiene como resultado la destrucción progresiva del ligamento periodontal y el hueso
alveolar con formación de bolsas, recesión o ambas¨.(Newman, M. 2014 p.66).
Figura 6. Periodontitis Fuente: www.wikipedia.com
18
La pérdida clínicamente detectable de la inserción, es la característica principal que le
diferencia de la gingivitis. (Newman, M. 2014). Pero existen otras características propias
de la periodontitis como:
Formación en el periodonto de bolsas, cambios en la altura y densidad del hueso
alveolar.
Recesión de la encía marginal.
Signos clínicos de inflamación como: cambios del color, consistencia y hemorragia
al sondaje.
Se han presentado en los últimos años un sinnúmero de clasificaciones de periodontitis,
por lo cual se detallan las más destacadas en el siguiente cuadro.
Según los consensos de los talleres de Estados Unidos en 1989 y en Europa 1993, y el
consenso de la AAP (Tomado de Newman, M. 2014):
Cuadro N° 4Clasificación de Periodontitis
Periodontitis en el adulto Aparición 35 años.
Avanza lentamente, sin defectos en las defensas del
huésped.
Periodontitis de Aparición
Temprana( prepuberal,
juvenil o progreso rápido)
Aparición 35 años.
Avanza rápidamente, defectos en las defensas del
huésped; relacionada con microflora específica.
Periodontitis relacionada
con enfermedad sistémica
Enfermedades que predisponen: diabetes, síndrome de
Down, VIH.
Periodontitis ulcerativa
necrotizante.
Igual a la GUNA pero con pérdida clínica de inserción.
Periodontitis Necrotizante Necrosis de tejido con pérdida ósea y de la inserción.
Periodontitis Crónica Prevalencia en adultos pero también se da en niños.
Destrucción consistente con factores locales.
Relacionada con patrón microbiano variable.
Periodontitis Agresiva Pérdida de inserción y destrucción ósea rápida.
Cantidad de depósitos microbianos inconsistentes Fuente: Newman, M. “Periodontología Clínica de Carranza”. (2014)
Elaborado por: Nataly Huertas P.
2.10 Control de Placa Bacteriana
Los procedimientos del control de PB son tan antiguos como la historia misma del ser
humano, en restos paleontológicos de dientes de Atapuerca se encontraron huellas a nivel
19
cervical, compatibles con instrumentación utilizada para limpieza dental. (Fuenmayor, V.
2009).
La literatura nos indica que desde la antigüedad existió el interés por el cuidado y
limpieza de los dientes por lo que existieron sugerencias, tratados, escritos para el cuidado
de los mismos.
Por ejemplo los romanos utilizaron pómez, talco, esmeril, alabastro, polvo de coral y
óxido de hierro. ¨La utilización de polvos para limpiar los dientes aparentemente era
común y entre más compleja era su preparación y más numerosos sus ingredientes, eran
considerados de mayor valor. (Ring. Dentistry. An Ilustrated History, 1985).
Diocles de Carystus médico de la época de Aristóteles aconsejaba: ¨Todas las mañanas
usted debe fregar sus encías y dientes con los dedos desnudos y con menta finamente
pulverizada, por dentro y por fuera y remover en esta forma las partículas adheridas de
alimentos¨. (Barrios, G. 2004).
El objetivo principal del control de PB, es la eliminación de depósitos blandos en la
cavidad bucal, por la acción significativa que tiene con el desarrollo de enfermedades
periodontales como la gingivitis y periodontitis. (Hoag, P. 1992).
2.10.1 Elementos del control de PB
Los elementos utilizados para el control de PB son:
Cepillos dentales
Dentífricos
Técnicas de Cepillado dental
Higiene Interdental
Ayudas especiales (irrigación a presión)
Fármacos como la clorhexidina
20
2.10.1.1 Cepillos dentales:
El cepillo dental es el instrumento más utilizado para la remoción de PB desde siglos
pasados y para la actualidad sigue siendo indispensable, pero no brinda higiene interdental
adecuada; no se aconseja la utilización de cepillos con cerdas duras por lo que pueden
lesionar la encía y producir la retracción gingival; los más aconsejables son cerdas
sintéticas redondeadas en las puntas. y se aconseja una presión no mayor a 300-
400g.(Barrios, G. 2004 & Wolf, H. 2009).
Básicamente existen dos clases de cepillos para la prescripción:
Cepillo manual: se aconseja que tenga las características de cerdas suaves con un
diámetro de 2mm aproximadamente y las puntas redondeadas.(Barrios, G. 2004).
Cepillo eléctrico: se aconseja en pacientes con limitación en movimientos físicos
al igual que en comprensión. (Barrios, G. 2004).
La ADA aconseja para el cepillo dental las siguientes dimensiones: que la superficie
activa sea de 25.4 a 31.8 mm de longitud, de ancho las dimensiones de 7.9 a 9.5 mm y de 2
a hileras de cerdas y por cada cerda 5 a 12 por hilera en casa de adultos, y para niños el
cepillo debe ser más pequeño, las cerdas 1mm de diámetro y la longitud de 8.7mm.
(Barrios, G. 2004).
No todos los cepillos dentales son para todos los pacientes, es necesario verificar las
necesidades de cada uno, además de la edad que es un factor importante a la hora de la
elección del cepillo adecuado.
Cuadro N° 5 Cepillos dentales manuales según la edad del paciente.
Niños menores de 2 años Cepillos dentales con cerdas extrasuaves y mango
antideslizante para los padres.
Niños entre 2 y 8 años Cepillos dentales con cabezal estrecho, mango de agarre fácil
y cerdas suaves.
Niños mayores de 8 años Cepillos con cerdas suaves.
Pacientes con grandes apiñamientos
yo enfermedad periodontal
Cepillos con cabeza pequeña, recto, plano y suaves cerdas.
Procedimientos quirúrgicos Cepillos con cerdas extrasuaves.
Portadores de Prótesis removibles Cepillos de prótesis.
Portadores de Ortodoncia Cepillos con filamentos dispuestos en dos alturas diferentes y
suaves.
Fuente: Fuenmayor, V.SEPA “Manual de Higiene Bucal” (2009).
21
2.10.1.2 Dentífricos:
Se denomina dentífrico a la sustancia que se utiliza junto con un cepillo dental, con el
propósito de limpiar las superficies a nivel de la cavidad bucal, facilitando la remoción de
PB, protegiendo al esmalte, cuello y raíz del diente en caso de recesión y conservar en un
buen estado de higiene. (Bartolucci, E. 2007).
Por lo general el paciente cree que con un buen cepillado dental es suficiente para su
boca sana, pero es necesario insistir en el uso de un buen dentífrico; hoy en día y desde los
años 25 y 30 los dentífricos contienen flúor, pero en las últimas décadas aparecen ya en el
mercado componentes antiplaca, o para tratar la sensibilidad, halitosis, etc. (Curull, G.
Arias, M. 2001).
Los dentífricos se pueden encontrar en el mercado en forma de polvos, pastas
dentífricas, geles, líquidos y sus finalidades son:
Cuadro N° 6 Objetivos de los dentífricos
1 Mejorar la funcionalidad para remoción de PB.
2 Producir un aliento fresco.
3 Eliminar manchas extrínsecas.
4 Proporcionar una limpieza completa a nivel bucodental.
5 Ser el vehículo de los elementos terapéuticos de afecciones bucodentales
como: caries, enfermedad periodontal, sarro, etc. Fuente: Battle, C. Conte, O. “Farmacia Profesional”. (2001)
Elaborado por: Nataly Huertas P.
2.10.1.3 Técnicas de cepillado dental
Son conjuntos de procedimientos que el paciente emplea para control de su PB,
acompañados de los elementos auxiliares de limpieza dental. (Wolf, H. 2009).
Técnica Horizontal o de Zapatero
Las cerdas del cepillo dental se deben colocar en un ángulo de 90 grados sobre la
superficie vestibular linguopalatina y masticatoria de los dientes, acompañado de
22
movimientos repetitivos de vaivén en toda la arcada. Recomendada en niños de hasta 3
años de edad. (Loscos, G. 2005).
Técnica de Starkey
Técnica realizada por los padres en la que se coloca al niño por su espalda y apoyado
sobre la pierna o el pecho del tutor, pero si el niño ya tiene más de 3 años se realiza de pie
y delante el espejo. Las cerdas dentales toman una inclinación de 45 grados hacia apical,
acompañados de movimientos horizontales. Indicado para bebés y niños de hasta los siete
años de edad. (Loscos, G. 2005).
Técnica de Charters
Técnica descrita por Charters en 1928, el propósito de esta técnica es la eliminación de
PB de los espacios interproximales. El cepillo se coloca en dirección de 45 grados respecto
al eje dentario dirigiendo las cerdas hacia el borde incisal, alejándose de la encía,
presionando ligeramente para que las cerdas puedan penetrar de este modo en el espacio
interdental, y requiere mucha habilidad manual. Indicado en pacientes adultos con
enfermedades periodontales. (Loscos, G. 2005& Perry, D. et al. 2014).
Con esta técnica se logra hacer masaje gingival y está indicada cuando los espacios
interproximales son muy amplios y las cerdas dentales puedan ingresar con mayor
facilidad. (Barrios, G. 2004).
Técnica de Bass
Técnica descrita por Bass en 1954. Según Loscos, G. (2005) la técnica es boca
ligeramente abierta, el cepillo con dirección de 45 grados respecto al eje dental, con
movimiento suave se debe introducir la punta de las cerdas dentales por debajo del margen
gingival y los movimientos acompañantes deben ser cortos y de adelante hacia atrás
(movimiento vibratorio) para forzar las cerdas con mayor eficacia dentro de los surcos y
entre los dientes. Indicado en pacientes adultos con tejido periodontal sano, y pacientes con
gingivitis yo periodontitis. (Perry, D. et al. 2014).
23
Técnica de Stillman
“Stillman, aconsejaba masajear con el cepillo para llenar con sangre oxigenada los
vasos de la gingiva colocar las cerdas con dirección hacia apical, sin ninguna angulaciòn,
la presión se ejercía sobre las cerdas, haciendo que se flexionasen y que el tejido se
blanqueara, luego liberar la presión repetir el procedimiento entre todos los dientes y
enjuagar la boca varias veces tras el procedimiento.(Perry, D. et al. 2014).
Con esta técnica se utiliza la parte lateral de la cerda y no la punta; está indicado en
pacientes con retracción gingival progresiva y exposición de superficie radicular. (Barrios,
G. 2004).
2.10.1.4 Higiene Interdental
Los cepillos dentales que son parte fundamental en la limpieza bucal, no limpian de una
manera adecuada las superficies interproximales, por este motivo para lograr una exitosa
limpieza a este nivel es recomendable el uso de accesorios como: hilo dental, cepillos
interproximales. (Perry, D. 2014).
Hilo dental : el uso de hilo dental está indicado tanto para pacientes sanos, así
como para casos leves ya sean de gingivitis o periodontitis, sin embargo el uso de
este accesorio es bastante bajo (Wolf, H. 2009).
El hilo dental se encuentra disponible en el mercado en una amplia gama de tamaños y
grosores; cuando se utilizan de manera correcta logran limpiar las superficies
interproximales de los dientes, extendiéndose desde el margen gingival hasta el epitelio de
unión, para una adecuada técnica se utiliza 45cm de largo y así lograr sujetar
correctamente, el hilo se introduce en el espacio interproximal, deslizando desde hacia
atrás hacia adelante por debajo de la papila y envolviéndole alrededor del diente. (Perry,
D. 2014).
Cepillos Interproximales: según Sanz, M. (2003) “Los cepillos interdentales
permiten la limpieza de espacios interproximales más amplios que los que puede
limpiar de manera efectiva la seda dental”; para Wolf, H. (2009) “los cepillos
interdentales son indicados para la remoción de placa si los espacios interdentales
están abiertos”.
24
“Los cepillos interproximales facilitan la limpieza mecánica de las superficies
radiculares proximales y mejoran el acceso a las fositas y furcas en desarrollo. Son de gran
utilidad en pacientes con patología periodontal que presentan pérdida de inserción,
superficies radiculares expuestas durante mucho tiempo y una arquitectura radicular
compleja” (Perry, D. 2014, p. 176).
2.10.1.5 Ayudas especiales (irrigación)
Según Barrios, G. (2004) & Perry, D. (2014) la irrigación de la cavidad bucal es un
complemento para el control de la placa dental con la ayuda de irrigadores de chorro
pulsátil, forzando de ese modo el paso de agua entre los dientes con uno o varios chorros
de agua; la técnica de irrigación consiste en dirigir el chorro entre los dientes con un
ángulo recto dirigido hacia las papilas interdentales durante algunos segundos, la
utilización de los elementos de agua a presión se deben realizar de manera correcta, para
evitar el riesgo de introducir bacterias en el tejido gingival que conduciría a bacteriemias
así como a la formación de abscesos gingivales periodontales.
2.10.1.6 Control químico de la placa
En la prevención y tratamiento de las enfermedades periodontales se utilizan con
eficacia distintos agentes químicos (Waite, I. 1992).
La sustancia química terapéutica efectiva debe conseguir una reducción promedio del
80% de placa, para la actualidad éste nivel de efectividad ha logrado la clorhexidina en
todas sus formas comerciales disponibles. (Wolf, H. 2009).
Cuadro N° 7 Propiedades de las sustancias químicas
Propiedades de las sustancias químicas
- Acción Antiplaca Puede ser bactericida o bacteriostática.
- Sustantividad Capacidad para adherirse a estructuras de
la boca y liberarse de manera lenta a lo largo
del tiempo.
- Toxicidad baja y no ser irritante Baja toxicidad para no dañar los tejidos del
huésped.
- Permeabilidad baja Para permitir que quede retenida en la
cavidad oral. Fuente: Perry, D. “Periodontología para el higienista dental”. (2014)
Elaborado por: Nataly Huertas P.
25
2.11 SUTURA
2.11.1 Concepto
Según Escoda, G. (2004) ¨la sutura consiste en la reposición de los tejidos blandos que
están separados debido a un traumatismo¨ (p.131).
La sutura según Raspall, G. (2006) representa el paso final de la técnica operatoria, con
el propósito de cerrar la herida mediante la sutura con los biomateriales quirúrgicos e
inclusive con otros componentes como adhesivos, pegamentos que aseguran la fusión y
cicatrización.
2.11.2 Objetivos
A través de la sutura se logra la reposición de de los bordes de una herida sea de
etiología traumática o quirúrgica. (Donado, M. 2013). Entre los objetivos principales de la
sutura se conocen los siguientes:
La coaptación
La hemostasia
Cicatrización de los tejidos
(Donado, M. 2013).
2.11.3 Sutura en Cirugía Periodontal
¨Es la parte de la técnica quirúrgica que tiene como objetivo unir los cabos de la herida
a fin de asegurar y acelerar la cicatrización. Su principal objetivo es mantener los tejidos
unidos hasta que el nuevo tejido de reparación tenga la resistencia suficiente como para
soportar las fuerzas fisiológicas normales a las que están sometidos esos tejidos¨
(Romanelli, H. 2004, p.105).
Tanto en la cirugía periodontal como en otras cirugías a nivel bucal la sutura se
convierte en un elemento esencial en la reposición de colgajos además de mantenerlos en
el lugar adecuado para que la sutura cumpla el objetivo en beneficio del paciente, de una
manera eficiente y acompañada del menor número de complicaciones.
26
Una técnica quirúrgica depurada además del tratamiento correcto de la herida son
factores determinantes para el éxito del tratamiento, de este modo el cirujano bucal debe
lograr la perfección, ya que el estado final de la herida quirúrgica permite calificar la labor
del cirujano. (Felzani, R. 2007).
2.11.4 Clasificación de los hilos de sutura
En décadas del pasado siglo, se utilizaron varias suturas, tanto de origen animal, vegetal
y metálico. Ya en el año de 1931 se logró obtener la primera sutura reabsorbible sintética,
la fibra de polivinilalcohol, más tarde surgió la poliamida en los laboratorios de BASF con
el nombre de Supramid, que se introdujo en la práctica médica en el año 1946, para esta
fecha también se desarrolló la fibra colágeno en forma de hilo que se ingresa al mercado a
partir de 1950, año también en el que surge el poliéster (.Bonilla, C. et al. .2011).
Hoy en día ya existen un sinnúmero de suturas en el mercado a elección del profesional,
incluso para los diversos tejidos; por lo cual debe existir un buen criterio a la hora de
utilizar el biomaterial de sutura idóneo en las condiciones específicas del paciente.
Cuadro N° 8 Clasificación de los hilos de sutura
Hilos de Sutura
1.-Según su Reabsorbilidad -Reabsorbibles
-No reabsorbibles---
2.-Según su origen Naturales :
-Naturales
reabsorbibles:
(catgut)
-Naturales no
reabsorbibles:
(seda)
Sintéticos:
-Sintéticas
reabsorbibles:
(vicryl )
-Sintéticas no
reabsorbibles:
(nylon)
3.-Según su número de filamentos -Monofilamentos
-Multifilamentos
4.- Según su diámetro Fuente: Romanelli, H. “Fundamentos de Cirugía Periodontal”. (2001)
Elaborado por: Nataly Huertas P.
2.11.4.1 Según su Reabsorbilidad
Se diferencian dos tipos de sutura en función de su absorción:
27
2.11.4.1.1 Reabsorbibles
Estos hilos son digeridos progresivamente por la acción enzimática del organismo, por
lo cual ya no es necesario su retiro. (Braun, B. 2014).
2.11.4.1.2 No reabsorbibles
Los tipos de suturas no reabsorbibles sufren también absorción pero en menor velocidad
al resto de materiales reabsorbibles y deben ser retirados luego de cierto tiempo ya que no
se afectan por la acción enzimática del organismo. (Yaltirik, M. 2003).
Cuadro N° 9 Ventajas y desventajas de suturas reabsorbibles y no reabsorbibles
Reabsorbibles No reabsorbibles
Ventajas Desventajas Ventajas Desventajas
Útiles en zonas
de difícil acceso,
planos profundos.
Resistencia
decreciente.
Se logran utilizar en
pacientes con
hipersensibilidad a las
suturas reabsorbibles.
Mayor
respuesta tisular
Útiles en suturas
intradérmicas.
La reabsorción
se acelera por la
humedad de la
cavidad oral, que
mantiene húmeda a
la sutura.
La cita para retirar
puntos sirve para
control de la herida.
Deben ser
retiradas así el
acceso a la sutura
sea complicado.
Pacientes con
heridas y bloqueos
intermaxilares.
Loa factores
(fiebre, infección)
inciden en la
resistencia de la
sutura.
Asegura soporte y
resistencia.
Fuente: Yaltirik, M. “Comparison of four different sutures material in soft tissues of rats.” (2003).
Elaborado por: Nataly Huertas
2.11.4.2 Según su origen
Las suturas reabsorbibles así como las no reabsorbibles a su vez se clasifican en:
naturales o de origen natural y sintético o artificial. López, A. (2012).
2.11.4.2.1 Suturas reabsorbibles naturales
Entre este tipo de suturas se pueden señalar las siguientes:
28
2.11.4.2.1.1 Catgut Simple
Es una sutura reabsorbible de origen natural, que se obtiene básicamente de la
submucosa del intestino delgado de ciertos animales tales como vaca u oveja, es un
material de difícil manipulación con poca resistencia a la fuerzas de tracción, su duración
en boca es de aproximadamente 5-7 días. (Raspall, G. 2006).
Se recomienda su uso en:
Tejidos que cicatricen en poco tiempo como las mucosas y submucosas.
Cierre de heridas en planos profundos.
Para control de las hemorragias.
La desventaja de este hilo es la reacción hística que se genera por la acción proteolítica
de las enzimas del organismo. El catgut absorbe líquidos al poco tiempo de ser colocado
tomando consistencia blanca y viscosa que ocasiona la pérdida prematura de los puntos.
(Vajdi, G. 2011).
2.11.4.2.1.2 Catgut Crómico
Básicamente la diferencia del catgut crómico con el anterior radica en que al ser tratado
con sales de cromo, puede permanecer en los tejidos en un período de 2 a 3 semanas,
favorablemente genera menor reacción hística a comparación del catgut simple. (Vajdi, G.
2011).
No se recomienda en heridas de piel más aún si son superficiales.
2.11.4.2.2 Suturas reabsorbibles sintéticas
Entre este tipo de suturas se pueden señalar los siguientes:
2.11.4.2.2.1 Dexon (ácido poliglicólico)
29
Es un polímero derivado del ácido glicólico, se degrada por hidrólisis por lo que
presenta menor reacción tisular, se reabsorbe en un período de tiempo de 2 a 8 semanas.
(Raspall, G. 2006 & Vajdi, G. 2011).
2.11.4.2.3 .-2 Vicryl (ácido poliláctico)
Material absorbible sintético de ácido glicólico y ácido láctico; lleva una de Poliglactina
y esterato de calcio. (Vajdi, G. 2011). Es de fácil manipulación y presenta más resistencia a
la tracción, para la ayuda de la cicatrización que es en un período de tres semanas
aproximadamente, su degradación completa es por mecanismos agresivos en un período de
60 a 90 días. (Godinez, C. 2001).
2.11.4.2.3.1 PDS (Polidioxanoma)
Es un material de origen sintético y monofilamentoso, su tiempo de reabsorción en los
tejidos es de manera lenta con un aproximado de 6 meses, es para criterio de cirujanos de
difícil manipulación pero con la ventaja de evitar la colonización bacteriana, útil en heridas
extensas en las que es necesario mayor resistencia a la tracción. (Raspall, G. 2006 & Vajdi,
G. 2011).
2.11.4.2.4 Suturas no reabsorbibles de origen natural
Se pueden señalar los siguientes:
2.11.4.2.4.1 Lino
Material de origen natural vegetal, no reabsorbible y multifilamentoso, con superficie
áspera que dificulta la manipulación, se considera más resistente que la seda. (Vajdi. G.
2011).
2.11.4.2.4.2 Seda
Según Denardo, G. (1996) Gabrielli, F. (2001) la seda es conocida como el material
más utilizado en los procedimientos de cirugía bucal; no reabsorbible de origen natural
30
confeccionada del gusano de seda, de fácil manejo con nudos más resistentes, la seda es
muy bien tolerada por los tejidos bucales.(Vajdi, G. 2011).
Tiene como desventaja el favorecer la acumulación de placa y alterar la cicatrización
por el fenómeno de capilaridad que permite el ingreso de gérmenes al ingreso de la herida
causando también su infección e inflamación. (García, S. 2008).
2.11.4.2.5 Suturas no reabsorbibles de origen sintético
Entre este tipo de material se puede señalar:
2.11.4.2.6 Nylon
Material de sutura de origen sintético y no reabsorbible, es muy bien tolerado por el
organismo por lo que se lo utiliza con mayor frecuencia en los casos de microcirugía, más
aséptico y resistente en comparación con la seda. Es de difícil manipulación por la
memoria elástica que presenta, por la rigidez se recomienda tener cuidado con los cabos ya
que puede generar lesión y traumatizar los tejidos bucales, la desventaja común es el
número de nudos que deben ser realizados por la tendencia a soltarse. (Vajdi, G. 2011).
2.11.4.3 Según su número de filamentos
Los hilos de sutura también se clasifican de acuerdo a su número de filamentos
2.11.4.3.1 Monofilamentos
Según López, A. (2012). Están hechas de un solo hilo continuo o hebra y las
características son:
Mejor tolerancia a nivel de los tejidos, es decir son histocompatibles y
atraumáticos.
Resistentes a la invasión de bacterias.
Dejan menor cicatriz.
Se recomiendan varios nudos para evitar que se desaten.
Tienen un manejo más difícil.
31
2.11.4.3.2 Multifilamentos
Según López, A. (2011). Este tipo de hilos es el conjugado de varias hebras o fibras
trenzadas y sus ventajas son:
Mayor resistencia o fuerza tensil.
Ductibilidad y flexibilidad.
Fácil manipulación.
La fijación del nudo es más duradera.
Pero la desventaja es la acumulación bacteriana con mayor riesgo de infección, mayor
cicatriz y los fenómenos de capilaridad que interfieren en el proceso de cicatrización.
(López, A. (2012).
2.11.4.4 Según su diámetro
El diámetro se expresa en número de ceros de acuerdo al grosor del hilo de sutura, a
menor diámetro mayor cantidad de ceros y viceversa para los de mayor diámetro, se
determina en milímetros en unidades USP, con una secuencia descendente de 5,4,3,2,1, 1-
0,2-0 hasta 11-0, siendo 5 el mayor diámetro y 11-0,el menor. (Ávila, M. 1988; Pestaña, T.
1999 & Hupp, J. et al 2014).
En Cirugía Bucal el diámetro más utilizado para la mucosa es 3-0 (000); las suturas muy
finas como las 6-0 se emplean en lugares más estéticos como la piel de la cara ya que
empleadas de buena manera dejan una cicatriz menos visible.(Hupp, J. et al. 2014
cuadro 10 Técnicas de sutura
1.- Sutura Continua:
Permite un cierre adecuado de las heridas
mediante un trayecto lineal.
Continua simple: soporta mal tensiones
locales. Se pasa el primer punto, se anuda
y se sigue.
Sutura de piel, subcutáneo y aponeurosis
Sutura de reverdin o continua cruzada:
soporta poca tensión, permite ir fijando la
sutura. Sutura de subcutáneo.
Sutura de colchonero: correcta eversión
de los bordes de la herida, soporta bien
tensiones locales, mayor grado de
isquemia local. Sutura de piel, subcutáneo
32
y aponeurosis.
Sutura intradérmica: precisa una buena
aproximación del plano subcutáneo,
resiste bien la tensión local, cicatriz
estética. Sutura de piel.
2.- Sutura Discontinua:
Es condición ineludible que los puntos
queden perpendiculares a la línea de
incisión, equidistantes de la herida y
simétricos en cuanto al espesor de tejido.
Puntos simples: puntos sueltos, no
aguanta mucha tensión. Sutura de piel,
subcutáneo y aponeurosis.
Puntos recurrentes horizontales: puntos
sueltos, aguanta alta tensión, produce
cierta isquemia que depende de lo
separados que estén los puntos. Sutura de
piel, subcutáneo y fascia lata.
Puntos recurrentes verticales: puntos
sueltos, aguanta alta tensión isquemia
baja. Sutura de piel, subcutáneo y
aponeurosis.
Puntos en cruz: puntos sueltos, soporta
muy bien tensiones locales, sutura muy
rápida y muy hemostática.
3.- Sutura Subcutánea: se utiliza para aproximar de forma eficaz los bordes de la piel
y colapsar el tejido muerto en el espacio subcutáneo.
Fuente: López, A. “Cirugia Oral y Maxilofacial” (2012).
Elaborado por: Nataly Huertas
33
CAPÍTULO III
3 METODOLOGÌA
3.1 Tipo de Investigación
Esta investigación se realizó dentro de un contexto descriptivo transversal, ya que se
describieron los hallazgos en un tiempo corto de las variables independientes.
Además fue descriptiva, ya que se realizó una revisión de artículos científicos, libros en
los que se buscó información de aporte para la investigación.
Fue de tipo experimental, llevado a cabo con las muestras de hilos de sutura tomadas de
la Clínica de Postgrado de Periodoncia de la Facultad de Odontología, y analizados en el
Laboratorio Químico Analítico Gruentec, en el que se realizó el procedimiento de
cuantificación de placa bacteriana mediante el espectrofotómetro.
Para finalizar se realizó una comparación de análisis con los resultados obtenidos, en los
tres tipos de hilos de sutura utilizados.
3.2 Población y muestra
Población:
La población en este caso es desconocida, ya que se desea comparar los hilos de sutura,
mas no las personas, para ello se usó la fórmula experimental para comparación de medias.
Muestra: 10 hilos de seda negra.
10 hilos de nylon.
10 hilos de vicryl.
34
3.2.1 Criterios de Inclusión
Pacientes masculinos y femeninos que se les realice tratamiento quirúrgico periodontal
cuya sutura utilizada sea nylon, seda negra o vicryl en la Clínica de Postgrado de
Periodoncia de la Facultad de Odontología.
3.2.2 Criterios de Exclusión
Pacientes en los que se utilice otro tipo de sutura diferente al del estudio.
Pacientes que no pueden ser suturados con hilos.
Pacientes no colaboradores.
Pacientes a los cuales no se les retire los puntos en un tiempo de 8 días.
3.3 Operacionalización de las variables
VARIABLES
DEFINICIÒN
DETERMINANTES
INDICADORES
ESCALA
Dependiente:
Placa
Bacteriana
Masa blanda y
adherente de
colonias
bacterianas.
Placa
bacteriana
adherida al hilo
de sutura.
Concentració
n de placa
bacteriana en
el solvente
agua destilada
10ml.
Absorbancia de la
espectrofotometrí
a
(numérica)
Independientes:
Nylon
Sutura no
absorbible
monofilamento
sa, utilizada
para sinéresis
de tejidos.
Nylon 4-0 en
10ml de agua
destilada.
Retiro de
puntos a los 8
días.
Nominal
Seda Negra
Sutura no
absorbible
multifilamento
sa, utilizada en
sinéresis de
tejidos.
Seda negra 4-0
en 10ml de
agua destilada.
Retiro de
puntos a los 8
días.
Nominal
Vicryl
Sutura
absorbible tipo
trenzado,
utilizada en
sinéresis de
tejidos.
Vicryl 4-0 en
10ml de agua
destilada.
Retiro de
puntos a los 8
días.
Nominal
35
3.4 Procedimiento
3.4.1 Proceso de selección de pacientes.
Se seleccionaron 10 pacientes por cada tipo de hilo de sutura, de los pacientes que
acudieron a la Clínica de Postgrado de Periodoncia para tratamientos quirúrgicos
periodontales; a los mismos que se les obsequió la sutura respectiva y se registró su firma
de autorización en el consentimiento informado.
Figura7. Seda negra y vicryl 4-0 marca Braun Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
Figura 8.Nylon 4-0 marca Braun Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
36
3.4.2 Sutura
Luego del tratamiento quirúrgico para la sutura se utilizó seda negra 4-0 de la marca
comercial Braun en 10 pacientes; nylon 4-0 en un número de 10 pacientes y así mismo
vicryl 4-0 en 10 pacientes más, siendo todos de la misma marca comercial.
Figura 9.Suturando con vicryl 4-0 Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
Figura 10.Sutura con vicryl 4-0 Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
3.4.3 Retiro de puntos
A los 8 días de la cirugía periodontal, se retiraron los hilos de sutura de la boca del
paciente con el material respectivo tijeras, pinzas.
37
Figura 11. Instrumental para retiro de puntos Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
Figura 11. Retiro de puntos Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
3.4.4 Toma de muestra
El hilo que se retiró, se depositó en un tubo de ensayo de vidrio con 10ml de agua
destilada, cantidad de agua que fue calibrada con una jeringa plástica de 10ml, luego se
tapó el tubo de ensayo para guardar con seguridad la muestra, este procedimiento se realizó
con cada tipo de hilo.
38
Figura 12. Calibración de 10ml de agua destilada para la muestra
Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
Figura 12. Punto de vicryl para la muestra Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
Figura 13. Colocación de muestra en el tubo de ensayo
Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
39
Figura 13. Muestra de vicryl para espectrofotómetro Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
3.4.5 Determinación de transmitancia por espectrofotometría
La cantidad de luz transmitida a través de una solución es conocida como transmitancia
(T). Esta se define como la relación entre la energía de la luz transmitida a través de una
solución problema y la energía transmitida a través de una solución de referencia, también
llamada Blanco de referencia, que generalmente es el solvente utilizado en la solución
problema. Cortesía del Laboratorio Químico – Analítico Gruentec.
El laboratorio de análisis químico llevó a cabo el siguiente procedimiento:
Verificar el etiquetado de cada una de las muestras
Colocar el hilo limpio en los tubos y añadir agua desionizada para el blanco.
Encender el espectrofotómetro y escoger el programa determinado para la turbidez.
Colocar el blanco y encerar el equipo. Este procedimiento se realizó para cada una
de las muestras.
Luego se leyeron las muestras con su respectivo blanco, en absorbancia y luego
convertir a % de Transmitancia.
40
Figura 14. A) Muestras para espectrofotómetro. B) Muestras blanco Fuente: Investigación
Elaboración: Lic. Paulina Quintana.
Figura 15. Calibración de espectrofotómetro Fuente: Investigación
Elaboración: Lic. Paulina Quintana.
A B
41
Figura 16. Lectura de transmitancia Fuente: Investigación
Elaboración: Lic. Paulina Quintana.
3.5 Aspectos Éticos
El presente estudio fue de tipo experimental con la ayuda del espectrofotómetro, pero
las muestras que se utilizaron fueron tomadas de pacientes por lo cual se realizó con una
aprobación del consentimiento informado.
Según Domínguez, A. 2007. Define al consentimiento como una parte legal, que de
manera libre voluntaria y consciente, a un paciente con todas sus facultades físicas y
mentales se le ha informado sobre el tratamiento a realizarse y acepta firmando.
42
CAPÍTULO IV:
4 ANÀLISIS E INTERPRETACIÒN DE RESULTADOS
4.1 Análisis Estadístico
Se evaluó la acumulación de placa bacteriana en tres tipos de hilos de sutura, y esto fue
realizado en espectrofotómetro.
Lo que se quiso comprobar es la diferencia de acumulación de placa bacteriana en los
tres tipos de hilo de sutura, comparando los resultados e identificando cual es el hilo que
acumula menor cantidad de placa bacteriana.
Para llevar a cabo el estudio, el tamaño de la muestra se obtuvo de la siguiente manera:
Tabla de apoyo al cálculo de tamaño de una muestra por niveles de confianza.
Certeza 95% 94% 93% 92% 91% 90% 80% 62,27% 50%
Z 1,96 1,88 1,81 1,75 1,69 1,65 1,28 1 0,6745
Z2 3,84 3,53 3,28 3,06 2,86 2,72 1,64 1 0,45
e 0,05 0,06 0,07 0,08 0,09 0,1 0,2 0,37 0,5
e2 0,003 0,0036 0,0049 0,0064 0,0081 0,01 0,04 0,1369 0,25
Tabla 1. Nivel de confianza de la muestra. Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina.
CÁLCULO DE LA MUESTRA
n = tamaño de la muestra
Z= valores correspondientes al riesgo deseado.
S2= varianza de la variable cuantitativa (Grupo de control observado)
s = 0.25
d= valor mínimo de la diferencia que se desea detectar (datos cuantitativos)
43
d = 0.40
n= 2 * 1,960 + 1,645 * 0,0625
0,16
n= 1,625 n= 10.2
0,16
El resultado obtenido de la fórmula indica que en el estudio se utilizó 10 muestras de
cada tipo de sutura, con un 95% de confianza, con 5% de margen de error.
Los datos que se consiguieron con la transmitancia dada por el espectrofotómetro y el
porcentaje de transmitancia se detallan en los siguientes cuadros:
HILOS DE SUTURA DE MUESTRA: SEDA NEGRA, VICRYL, NYLON
Muestra (seda negra) Transmitancia % Transmitancia
SNH-1512185-LIQ001.1 0.4842 48.42%
SNH-1512185-LIQ001.2 0.4740 47.4%
SNH-1512185-LIQ001.3 0.4699 46.99%
SNH-1512185-LIQ001.4 0.4840 48.40%
SNH-1512185-LIQ001.5 0.4769 47.69%
SNH-1512185-LIQ001.6 0.4847 48.47%
SNH-1512185-LIQ001.7 0.4990 49.90%
SNH-1512185-LIQ001.8 0.4659 46.59%
SNH-1512185-LIQ001.9 0.4801 48.01%
SNH-1512185-LIQ001.10 0.4910 49.10%
Tabla 2. Valores de los resultados de la sutura seda negra Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
Muestra (vicryl) Transmitancia % Transmitancia
SNH-1512185-LIQ002.1 0.8531 85.31%
SNH-1512185-LIQ002.2 0.8870 88.70%
gSNH-1512185-LIQ002.3 0.7931 79.31%
SNH-1512185-LIQ002.4 0.8485 84.85%
SNH-1512185-LIQ002.5 0.8347 83.47%
SNH-1512185-LIQ002.6 0.7966 79.66%
SNH-1512185-LIQ002.7 0.8485 84.85%
SNH-1512185-LIQ002.8 0.8209 82.09%
SNH-1512185-LIQ002.9 0.8048 80.48%
SNH-1512185-LIQ002.10 0.8505 85.05%
Tabla 3. Valores de los resultados de la sutura vicryl Fuente: Investigación
Elaboración: Autor
44
Muestra (nylon) Transmitancia % Transmitancia
SNH-1512185-LIQ003.1 0.4913 49.13%
SNH-1512185-LIQ003.2 0.4979 49.79%
SNH-1512185-LIQ003.3 0.4899 48.99%
SNH-1512185-LIQ003.4 0.5415 54.15%
SNH-1512185-LIQ003.5 0.5607 56.07%
SNH-1512185-LIQ003.6 0.5936 59.36%
SNH-1512185-LIQ003.7 0.5185 51.85%
SNH-1512185-LIQ003.8 0.5758 57.58%
SNH-1512185-LIQ003.9 0.5042 50.42%
SNH-1512185-LIQ003.10 0.5208 52.08%
Tabla 4. Valores de los resultados de la sutura nylon. Fuente: Investigación Elaboración: Autor
Al contar con los datos del estudio, se procedió al análisis de los mismos, para lo cual se
empleo la técnica estadística ANOVA.
El análisis de varianza ANOVA, sirve para comparar varios grupos de variables
cuantitativas. Se aplica para contrastar la igualdad de medias de tres o más poblaciones
independientes, con distribución Normal.
Inicialmente se verifica que las muestras tomadas provienen de una población con
distribución Normal, esto se realiza con las pruebas de Kolmogorov - Smirnov o con la
prueba de Shapiro - Wilk (menor a 20 datos), luego a demostrar:
Ho (Hipótesis nula): La muestra proviene de una población con distribución Normal.
Ha (Hipótesis alterna): La muestra NO proviene de una población con distribución
Normal.
Pruebas de normalidad
Kolmogorov-Smirnova Shapiro-Wilk
Estadístic
o
gl Sig. Estadístic
o
gl Sig.
SEDA
NEGRA
,153 10 0,200 ,980 10 0,965
VICRYL ,190 10 0,200 ,933 10 0,479
NYLON ,192 10 0,200 ,909 10 0,272
Gl: grados de libertad
Tabla 5. Resultado de las Pruebas de Normalidad Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina.
45
Seda negra: Sig. = 0,965 > 0,05 (95% de confiabilidad), luego la muestra proviene de
una población con distribución Normal.
Vicryl: Sig. = 0,479 > 0,05, luego la muestra proviene de una población con
distribución Normal.
Nylon: Sig. = 0,272 > 0,05, luego la muestra proviene de una población con
distribución Normal.
Las tres muestras presentadas se asemejan a una curva normal, luego se procede a
realizar el análisis Anova para comparar el valor de las medias de cada muestra.
4.2 ANOVA de un factor:
Ho (Hipótesis nula): Las medias de los tres grupos son similares
Ha (Hipótesis alterna): Alguna o varias de las medias de los tres grupos NO es similar a las
demás.
Descriptivos
(%)
N Media Desviación
típica
Error típico Intervalo de confianza para la
media al 95%
Mínim
o
Máximo
Límite inferior Límite superior
seda negra 10 0,480970 0,0098588 0,0031176 0,473917 ,488023 0,4659 0,4990
vicryl 10 0,833770 0,0297440 0,0094059 0,812492 ,855048 0,7931 0,8870
nylon 10 0,529420 0,0368671 0,0116584 0,503047 ,555793 0,4899 0,5936
Total 30 0,614720 0,1610901 0,0294109 0,554568 ,674872 0,4659 0,8870
Tabla 6. Media por cada grupo de sutura de investigación. Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina.
46
En la tabla se observa los valores promedio de cada grupo de sutura de investigación, en
donde no se aprecian grandes diferencias entre la seda negra y nylon.
Gráfico 1. Medias de los hilos de sutura por grupo de estudio Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina
Prueba de homogeneidad de varianzas
(%) Estadístico de
Levene
gl1 gl2 Sig.
7,242 2 27 0,003
Tabla 7. Prueba de homogeneidad. Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina.
No son similares las desviaciones
ANOVA de un factor
(%)
Suma de cuadrados gl Media cuadrática F Sig.
Inter-grupos ,731 2 ,366 468,682 0,000
Intra-grupos ,021 27 ,001 Total ,753 29
Tabla 8. Prueba de ANOVA de un factor. Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina
De la prueba ANOVA el valor de Sig. es menor que 0,05 (95% de confiabilidad), luego
se rechaza Ho, esto es alguna de las medias no es similar a las demás, para verificar cuales
don distintas se realiza a prueba de Tukey dos a dos.
47
Pruebas post hoc
Comparaciones múltiples
Variable dependiente: (%)
HSD de Tukey (I)
MUESTRAS
(J)
MUESTRAS
Diferencia de
medias (I-J)
Error típico Sig. Intervalo de confianza al 95%
Límite inferior Límite superior
seda negra vicryl
-,3528000* ,0124929 0,000 -,383775 -,321825
nylon -,0484500* ,0124929 0,002 -,079425 -,017475
vicryl seda negra
,3528000* ,0124929 0,000 ,321825 ,383775
nylon ,3043500* ,0124929 0,000 ,273375 ,335325
nylon seda negra
,0484500* ,0124929 0,002 ,017475 ,079425
vicryl -,3043500* ,0124929 0,000 -,335325 -,273375
*. La diferencia de medias es significativa al nivel 0.05.
Tabla 9. Comparación de medias. Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina
Subconjuntos homogéneos
(%)
HSD de Tukeya MUESTRAS N Subconjunto para alfa = 0.05
1 2 3
seda negra 10 ,480970
nylon 10 ,529420
vicryl 10 ,833770
Sig. 1,000 1,000 1,000
Tabla 10. Prueba de Tukey. Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina
De la prueba de Tukey se formaron tres grupos diferentes, luego todos los valores de
medias son diferentes.
48
Gráfico 2. Parámetros de medida. Fuente: Investigación
Elaboración: Ing. Jaime Molina
En las gráficas no se observa puntos atípicos (extremos), en todas las muestras están los
datos dentro de sus parámetros de medida.
DISCUSIÓN
El estudio e interés de materiales utilizados en la Odontología se ha incrementado en la
actualidad, en su mayoría los destinados a controlar o eliminar un agente causal de
enfermedades bucales, como es el caso de las suturas usadas en el tratamiento quirúrgico
de cavidad bucal, siendo su propósito fundamental conseguir una sinéresis con el menor
número de complicaciones. (Felzani, 2007).
En el presente estudio se tuvo como objetivo principal evaluar y comparar la
cuantificación de placa bacteriana con la ayuda de espectrofotometría, tanto en la seda
negra, nylon y vicryl, suturas tomadas de los pacientes de la Clínica de Postgrado de
Periodoncia de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
Así la cantidad de placa bacteriana acumulada en la seda negra, nylon y vicryl fue
comprobada tras la absorbancia o transmitancia del espectrofotómetro que permite
comparar la radiación absorbida o transmitida por una solución que contiene una cantidad
49
desconocida de soluto, y una que contiene una cantidad conocida de la misma sustancia
conocida en este caso como prueba “blanco”.
Se les atribuye a las suturas ciertas características o propiedades que benefician su uso y
otras que no, como es el caso de la seda negra que se ha demostrado en estudios que
generan menor confort a los pacientes sobretodo en el retiro de puntos, además
estadísticamente acumula mayor cantidad de placa bacteriana.(Gabrielli, 2001; García,
2008 & López, 2012);concordando nuestros resultados obtenidos de la seda negra con las
investigaciones realizadas por los autores.
El estudio de (García, Bravo, Bardales & Ríos 2008) determinó que la acumulación de
placa bacteriana en dos de los materiales que con mayor frecuencia se utilizan en la sutura
en cirugía periodontal, el vicryl presentaba una menor acumulación de placa bacteriana en
un lapso de tiempo de 8 días. De manera que se encuentra similitud en la acumulación de
placa bacteriana obtenida del vicryl en los resultados de nuestra investigación.
El presente estudio realizado en treinta pacientes en la clínica de postgrado, tuvo de
igual manera los mismos resultados pues se concluyó que el vicryl que es una sutura
multifilamentosa absorbible sintética tuvo una menor acumulación de placa bacteriana, de
igual manera en un lapso de ocho días de estar presente en la zona quirúrgica, a
comparación de la seda negra que tuvo mayor cantidad de placa bacteriana después de 8
días de retirar los puntos, por lo tanto se apreció que la seda negra presentó menor
transmitancia con un promedio de 0.4809 (T) seguido del nylon con una transmitancia
promedio de 0.5294 (T) y el valor mayor promedio de absorbancia 0.8337(T)
correspondiente al vicryl; mientras que el valor promedio del nylon fue sin gran
comparación estadística con la seda negra.
Mientras los valores obtenidos por estos autores mencionados fue para el vicryl un valor
promedio de 0.7576 (T); similares al promedio de absorbancia del estudio.
A comparación con el estudio realizado por (Aragonés & Molina 2012) que encontraron
que el promedio de absorbancia para el vicryl es 0.7033 (T) y de la seda negra 0.3548,
estos autores argumentan además que la elección correcta de los biomateriales de sutura en
50
cirugía periodontal es fundamental para el tratamiento quirúrgico validando los resultados
obtenidos en este estudio.
Grigg, Liewehr & Patton (2005) encontraron que las suturas de multifilamento albergan
una mayor cantidad de bacterias comparadas con suturas de monofilamento. Por lo que
tiene cierta similitud con ésta investigación teniendo en cuenta que las bacterias forman
parte de la placa bacteriana.
Por otra parte, aunque aparentemente los antibióticos sistémicos reducen la respuesta
tisular a las suturas orales, se ha demostrado que con el suministro de éstos no hay
diferencia significativa en cuanto a la acumulación de placa bacteriana presente en sus
filamentos y realmente el factor que más aporta a la acumulación de placa es la naturaleza
física de dichos materiales de sutura. (Abanella & Parirokh 2004). Por lo que se puede
argumentar el resultado de la seda negra en nuestro estudio
Sin embargo muchos clínicos prefieren las suturas de multifilamento sintético que al
monofilamento (nylon) ya que esto es de más difícil manipulación menos seguridad en el
nudo e inclusive las puntas que quedan irritan a los tejidos.
Adicionalmente, después de la cirugía periodontal los biofilm pueden desarrollarse en
las suturas, dando lugar a la inflamación de tejidos circundantes, la formación de depósitos
de agentes patógenos. (Grigg et al. 2005) y de acuerdo a los resultados de nuestra
investigación se confirma que las suturas sí acumulan ciertas cantidades de placa
bacteriana.
En las suturas los investigadores consideraron la transmisión bacteriana pasiva a través
del movimiento frecuente de las bacterias del biofilm; Cuffari (2007) según los resultados
in vitro sugirió que la seda produce más movimiento de fluidos por la acción capilar y eso
parece transmitir a las bacterias mecánicamente a diferencia de otras suturas, cabe recalcar
que la seda negra es considerada como la sutura que mayor placa acumula resultado que
concuerda con nuestro estudio.
Según Gabrielli (2001) & Parirokh (2004). Aunque los investigadores han realizado una
variedad de estudios ya sean in vivo o in vitro por identificar características de los
51
materiales de sutura que den menor acumulación de placa bacteriana, la diferencia entre
monofilamentos y multifilamentos no son muy marcados, resultados que coinciden con
esta investigación ya que la seda negra y el nylon no tuvieron gran diferencia estadística en
los valores promedios de resultados.
Finalmente Otten et al. (2005) demostró que las bacteremias pueden resultar de la
remoción de suturas induciendo un riesgo posible para las endocarditis, involucrando las
bacterias orales como S. Sanguis, S.oralis y S. Salivarius por lo tanto la sugerencia fue
hecha para quitar suturas lo más pronto (6- 10 días) posterior a la cirugía.
52
CAPÍTULO V
5 CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
5.1 CONCLUSIONES
Los hilos de sutura utilizados en el postquirúrgico de una cirugía sí acumulan placa
bacteriana en cantidades diferentes.
A menor valor de transmitancia registrado por el espectrofotómetro mayor
cantidad de placa acumulada en la sutura.
Según los análisis estadísticos no se encontraron diferencias significativas entre las
suturas de seda negra y nylon, siendo así estas suturas las que acumulan mayor
cantidad de placa bacteriana.
De acuerdo a los análisis estadísticos existe diferencia significativa entre vicryl con
respecto a las suturas de seda negra y nylon.
La sutura de vicryl registra mayor absorbancia por lo que se deduce que es el hilo
que acumula menos cantidad de placa bacteriana a comparación con la seda negra y
nylon.
53
5.2 RECOMENDACIONES
Se debería realizar estudios, enfocándose en otros tipos de sutura como los
cyanocrilatos (adhesivos), para poder recomendar el uso de la sutura idónea en la
sinéresis de tejidos blandos.
Al llevarse a cabo este estudio con la ayuda de espectrofotometría y resultados
satisfactorios, debería utilizarse la sutura de vicryl luego de las cirugías.
Se recomienda a los odontólogos utilizar las suturas que acumulen menor cantidad
de placa bacteriana para tener resultados óptimos en el postquirúrgico.
Se recomienda a los odontólogos tener en cuenta al factor placa bacteriana en la
recuperación de cirugía bucal.
54
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57
ANEXOS
ANEXO 1: Fotografías de tratamientos quirúrgicos periodontales y materiales para
la investigación.
Foto 1. Seda negra 4-0 Foto 2. Nylon 4-0
Foto3. Vicryl 4-0
Foto 4. Materiales para la investigación
58
Foto 5. Espectrofotómetro
Foto 6. Sutura con vicryl Foto 7. Sutura con nylon
Foto 8. Sutura con seda negra
59
Foto 9. Muestras en tubos de ensayo de vidrio
Foto 10. Muestras de cada tipo de sutura
60
Foto 11. Muestras etiquetadas y empaquetadas.
61
ANEXO 2: Solicitud para la realización del estudio en la Clínica de Postgrado de
Periodoncia de la Facultad de Odontología de la Universidad Central del Ecuador.
62
ANEXO 3. Formato de Consentimiento Informado
63
64
ANEXO 4. Consentimientos Informados firmados
65
ANEXO 5. Informe del Laboratorio Gruentec.
66
ANEXO 6. Certificado del estadístico.