univesidad politÉcnica salesiana
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UNIVESIDAD POLITÉCNICA SALESIANA
SEDE CUENCA
CARRERA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
TRABAJO EXPERIMENTAL:
“DETERMINACIÓN DE VALORES REFERENCIALES EN HEMOGRAMA Y
QUÍMICA SANGUÍNEA EN BOVINOS HOLSTEIN MACHOS
APARENTEMENTE SANOS EN CONDICIONES DE ALTITUD”
AUTOR:
JEYNSON RICARDO RUILOVA MOROCHO
TUTOR:
DR. JUAN LEONARDO MASACHE MASACHE
CUENCA – ECUADOR
2019
Trabajo de titulación previo a
la obtención del título de
Médico Veterinario Zootecnista
CESIÓN DE DERECHOS DE AUTOR
Yo, Jeynson Ricardo Ruilova Morocho con documento de identificación No. 190068098,
manifiesto mi voluntad y cedo a la Universidad Politécnica Salesiana la titularidad sobre los
derechos patrimoniales en virtud de que soy autor del trabajo de titulación:
“DETERMINACIÓN DE VALORES REFERENCIALES EN HEMOGRAMA Y
QUÍMICA SANGUÍNEA EN BOVINOS HOLSTEIN MACHOS APARENTEMENTE
SANOS EN CONDICIONES DE ALTITUD”, mismo que ha sido desarrollado para optar
por el título de: Médico Veterinaria Zootecnista, en la Universidad Politécnica Salesiana,
quedando la Universidad facultada para ejercer plenamente los derechos cedidos
anteriormente.
En aplicación a lo determinado en la Ley de Propiedad Intelectual, en mi condición de autor,
me reservo los derechos morales en la obra citada. En concordancia suscribo este documento
en el momento que hago la entrega del trabajo final en formato digital a la Biblioteca de la
Universidad Politécnica Salesiana.
Cuenca, diciembre del 2019
Jeynson Ricardo Ruilova Morocho
C.I. 1900680198
CERTIFICACIÓN
Yo, declaro que bajo mi tutoría fue desarrollado el trabajo de titulación:
“DETERMINACIÓN DE VALORES REFERENCIALES EN HEMOGRAMA Y
QUÍMICA SANGUÍNEA EN BOVINOS HOLSTEIN MACHOS APARENTEMENTE
SANOS EN CONDICIONES DE ALTURA”, realizado por Jeynson Ricardo Ruilova
Morocho, obteniendo el Trabajo Experimental que cumple con todos los requisitos
estipulados por la Universidad Politécnica Salesiana.
Cuenca, diciembre del 2019
DECLARATORIA DE RESPONSABILIDAD
Yo, Jeynson Ricardo Ruilova Morocho con documento de identificación No. 190068098,
autor del trabajo de titulación: “DETERMINACIÓN DE VALORES
REFERENCIALES EN HEMOGRAMA Y QUÍMICA SANGUÍNEA EN BOVINOS
HEMBRAS DE RAZA HOLSTEIN EN CONDICIONES DE ALTITUD”, certifico
que el total contenido del Trabajo Experimental es de mi exclusiva responsabilidad y
autoría.
Cuenca, diciembre del 2019
Jeynson Ricardo Ruilova Morocho
C.I. 1900680198
DEDICATORIA
Este trabajo está dedicado a mis padres Rosa Morocho y Marcos Ruilova, por ser el pilar
fundamental en esta etapa de mi vida, a mi hermano Ronal Ruilova que me brindó su apoyo
en cada momento de este proceso.
AGRADECIMIENTO
Quiero expresar mis agradecimientos a:
Mi Dios, por darme la fuerza y valentía para poder seguir adelante en los momentos más
difíciles; Rosa Morocho y Marcos Ruilova, mis amados padres, que supieron entenderme en
todo momento y brindarme su confianza; mi querido hermano, que supo siempre estar a mi
lado, por brindarme su cariño y animarme en cada momento, Dr. Juan Masache, mi tutor, por
todos los conocimientos compartidos y por ser mi guía en la realización de este proyecto y a
todos mis profesores, ya que gracias a sus experiencias y conocimientos impartidos durante
sus vidas, logré formarme como persona y profesional.
ÍNDICE GENERAL
RESUMEN .............................................................................................................................. 11
ABSTRACT ............................................................................................................................ 12
1. INTRODUCCIÓN. .......................................................................................................... 13
1.1 Problema ................................................................................................................... 14
1.2 Delimitación ............................................................................................................. 14
1.2.1 Temporal ........................................................................................................... 14
1.2.2 Espacial ............................................................................................................. 14
1.2.3 Académica ......................................................................................................... 17
1.3 Explicación del problema ......................................................................................... 17
1.3.1 Hipótesis nula .................................................................................................... 17
1.3.2 Hipótesis alternativa .......................................................................................... 18
1.4 Objetivos ................................................................................................................... 18
1.4.1 Objetivo general ................................................................................................ 18
1.4.2 Objetivos específicos ......................................................................................... 18
1.5 Fundamentos teóricos ............................................................................................... 18
2. MARCO TEÓRICO ......................................................................................................... 19
2.1 Historia del bovino. .................................................................................................. 19
2.2 Raza Holstein. ........................................................................................................... 19
2.2 Composición de la sangre .............................................................................................. 20
2.3. Obtención de la sangre ................................................................................................. 21
2.4. Obtención y Manejo de la muestra. .............................................................................. 24
2.5 Hematología................................................................................................................... 25
2.5.1 Eritrocitos. ............................................................................................................... 26
2.5.2 Leucocitos ............................................................................................................... 26
2.5.2 Neutrófilos .............................................................................................................. 27
2.5.3 Monocitos ............................................................................................................... 27
2.5.4 Linfocitos ................................................................................................................ 28
2.5.5 Hematocrito ............................................................................................................. 29
2.5.6 Hemoglobina ........................................................................................................... 29
2.5.7 Hemoglobina corpuscular media. ........................................................................... 29
2.5.8 Concentración de hemoglobina corpuscular media ................................................ 29
2.5.9 Volumen Corpuscular Medio (MCV) ..................................................................... 29
2.5.10 Plaquetas ............................................................................................................... 30
2.5.11 Valores Hematológicos de referencia en Bovinos. ............................................. 31
2.6. Bioquímica.................................................................................................................... 33
2.7. Perfil renal .................................................................................................................... 34
2.7.1. Urea. ....................................................................................................................... 34
2.7.2 Creatinina ................................................................................................................ 35
2.8. Perfil enzimático del hígado ......................................................................................... 36
2.8.1 ALT. ........................................................................................................................ 36
2.8.2. AST ........................................................................................................................ 36
2.8.3. FAL y GGT ............................................................................................................ 37
2.9. Bilirrubinas ................................................................................................................... 37
2.10. Perfil enzimático del páncreas y tracto gastrointestinal ............................................. 38
2.10.1 Amilasa. ................................................................................................................ 38
2.10.2 Lipasa .................................................................................................................... 38
2.11. Enzima musculo esquelético ...................................................................................... 39
2.11.1. CK-NAC .............................................................................................................. 39
2.12. Lípidos ........................................................................................................................ 39
2.12.1. Colesterol ............................................................................................................. 39
2.12.2. Triglicéridos. ........................................................................................................ 40
2.13. Proteínas Plasmáticas ................................................................................................. 40
2.13.1. Albúmina .............................................................................................................. 41
2.13.2. Globulina .............................................................................................................. 41
2.14. Ácido úrico ................................................................................................................. 41
2.15 Glucosa ........................................................................................................................ 42
2.16. Resumen del estado del arte del estudio del problema. .............................................. 46
3. MATERIALES Y METODOS. ....................................................................................... 48
3.1 Diseño Estadístico. ................................................................................................... 48
3.2 Población y muestra.................................................................................................. 49
3.2.1 Selección y tamaño de la muestra. .................................................................... 49
3.2.2 Obtención de muestras sanguíneas. ................................................................... 49
3.2.3 Procedimiento para realizar el hemograma. ...................................................... 49
3.2.4 Proceso para realizar la química sanguínea. ............................................................... 50
3.2.5 Variables de estudio. ............................................................................................... 54
3.3 Materiales. ................................................................................................................ 56
3.3.1 Biológicos. .............................................................................................................. 56
3.3.2 Químicos. ................................................................................................................ 56
3.3.3 Físicos. .................................................................................................................... 57
3.4 Consideraciones éticas. .................................................................................................. 58
4. RESULTADOS Y DISCUSIONES. ................................................................................... 60
4.1 Resultados. ..................................................................................................................... 60
4.2 Discusión. ...................................................................................................................... 74
4. CONCLUCIONES Y RECOMENDACIONES .............................................................. 85
5.1. Conclusiones. ................................................................................................................ 85
5.2 Recomendaciones. ......................................................................................................... 87
6. BIBLIOGRAFÍA ............................................................................................................. 88
7. ANEXOS ......................................................................................................................... 93
7.1 Ficha clínica. ............................................................................................................. 93
7.4 Imágenes de trabajo experimental ............................................................................... 108
7.4.1 Sujeción del paciente, revisión y toma de muestra ................................ 108
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla 1: Valores de referencia del cuadro eritrocitario en bovinos. ...................................... 31
Tabla 2: Valores de referencia de hemograma en bovinos Holstein ...................................... 32
Tabla 3: Valores de referencia de hemograma en bovinos Holstein ...................................... 33
Tabla 4: Parámetros de laboratorio, útiles para el diagnóstico hepático en el bovino. ........ 43
Tabla 5: Valores de referencia del perfil bioquímico en bovinos. .......................................... 44
Tabla 6: Valores bioquímicos de referencia en bovinos ......................................................... 45
Tabla 7: Parámetro química sanguínea. ................................................................................. 54
Tabla 8: Parámetro hemograma. ............................................................................................ 55
Tabla 9: Materiales biológicos. ............................................................................................... 56
Tabla 10: Materiales químicos. ............................................................................................... 56
Tabla 11: Materiales físicos. ................................................................................................... 57
Tabla 12: Resultados de valores referenciales hematológicos en bovino machos Holstein en
condiciones de altitud. ............................................................................................................. 60
Tabla 13: Valores de referencia de hemograma en bovinos Holstein machos. ...................... 61
Tabla 14: Resultados de valores referenciales de química sanguínea en bovino machos
Holstein en condiciones de altitud. ......................................................................................... 62
Tabla 15: Valores de referencia de química sanguínea en bovinos Holstein machos. ........... 63
Tabla 16: Hemograma en terneros Holstein. .......................................................................... 64
Tabla 17: Hemograma en toretes Holstein. ............................................................................ 65
Tabla 18: Hemograma en toros Holstein. ............................................................................... 66
Tabla 19: Química Sanguínea en terneros Holstein. .............................................................. 68
Tabla 20: Química Sanguínea en toretes Holstein. ................................................................. 69
Tabla 21: Química Sanguínea en toros Holstein. ................................................................... 70
ÍNDICE DE FIGURAS
Figura 1: Mapa de la ciudad de Cuenca .................................................................................. 15
Figura 2: Mapa de la Parroquia Tarqui ................................................................................... 16
Figura 3: Mapa de la Parroquia Cumbe .................................................................................. 17
Figura 4: Inmovilización del paciente ................................................................................... 108
Figura 5: Revisión y manejo del paciente. ............................................................................ 108
Figura 6: Extracción de la muestra de sangre ....................................................................... 109
Figura 7: trasporte u manejo de las muestras de hemograma ............................................... 109
Figura 8: Trasporte y manejo de la muestra para química sanguínea ................................... 109
Figura 9: Procesamiento de la muestra para hemograma ...................................................... 110
Figura 10: obtención del suero de la sangre para el proceso de la química sanguínea. ........ 110
Figura 11: Procesamiento de la muestra para la química sanguínea. .................................... 110
Figura 12: Equipos de laboratorio ......................................................................................... 111
Figura 13: Reactivos para química sanguínea. ...................................................................... 112
Figura 14: laboratorio clínico (UPS) ..................................................................................... 112
11
RESUMEN
En varias haciendas del cantón Cuenca, situadas a una altitud de 2500-3000 msnm,
se obtuvo muestras de sangre en 100 bovinos machos, teniendo como objetivo principal, la
determinación de valores referenciales en hemograma y química sanguínea en bovinos
Holstein machos aparentemente sanos en condiciones de altitud. Las muestras sanguíneas
se procesaron por equipos automáticos de uso veterinario de la Universidad Politécnica
Salesiana. El análisis estadístico se realizó mediante el programa Microsoft Excel y
Minitab 19. Se aplicó un diagrama de caja para identificar datos atípicos y a continuación
un análisis estadístico descriptivo media, mediana, desviación típica, Varianza, como
medida de tendencia central y por último el coeficiente de variación (medida de
dispersión), para cada analito se determinó sus rangos identificando el valor mínimo y
valor máximo. Se elaboró el gráfico de probabilidades para obtener el valor de la “Prueba
de Kolmogorov Smirnov”, que nos permitió verificar si los datos siguen o no una
distribución normal. La obtención de datos de referencia, en el caso de los valores que
siguen una distribución normal; se realizó mediante un método paramétrico aplicando la
fórmula (media ±2 SD), mientras que en el caso de datos que no seguían una distribución
normal se calcularon mediante el método no paramétrico del percentil. Los valores
referenciales obtenidos en esta investigación fueron distintos en comparación a los de la
literatura descrita, en el hemograma la línea roja se encuentra elevado como explicación a
esta circunstancia que los animales de estudio residen a una altura de 2550 – 3000 msnm.
12
ABSTRACT
In several properties of Canton Cuenca, located at an altitude of 2500-3000 meters, blood
samples are obtained in 100 male bovine animals, with the main objective: determining
reference values for hematology and blood chemistry in apparently healthy male Holstein
cattle conditions of altitude. Blood samples were processed by automatic veterinary
equipment of the Universidad Politécnica Salesiana. Statistical analysis was performed using
the program: Microsoft Excel and Minitab 19. A cash flow chart was applied to identify
outliers and then a descriptive statistical analysis: mean, median, standard deviation, variance,
as a measure of central tendency and finally the coefficient of variation (measure of
dispersion), for each analyte it will be determined ranges identifying the minimum value and
maximum value. The probability graph was drawn up to obtain the value of the “Kolmogorov
Smirnov Test”, which allows us to verify whether or not the data follows a normal
distribution. Obtaining reference data, in the case of values that follow a normal distribution;
It was performed using a parametric method applying the formula (mean ± 2 SD), while in the
case of data that did not follow a normal distribution, they were calculated using the non-
parametric percentile method. The reference values obtained in this research were different
compared to those of the literature described, in the blood count the red line is elevated as an
explanation to this circumstance that the study animals reside at a height of 2550 - 3000
meters above sea level.
13
1. INTRODUCCIÓN.
La Medicina Veterinaria hoy en día, como toda ciencia ha avanzado considerablemente
en los estudios para llegar a un buen diagnóstico, como tal, es de suma importancia la
utilización de nuevas técnicas de diagnóstico como el hemograma y química sanguínea
mediante el cual podemos interpretar el estado fisiológico de nuestro paciente y posibles
patologías que pueda presentar, brindando así un tratamiento adecuado.
Las técnicas de diagnóstico en hematología, son una parte esencial de los datos básicos
para hacer un diagnóstico. Casi siempre es la interpretación del perfil hematológico junto con
la bioquímica, el análisis de orina, la historia y los hallazgos físicos lo que dirigen al clínico
en la selección de las otras técnicas de diagnóstico por imagen y recogida de muestras (Day,
Mackin, y Littlewood, 2004, p. 3).
Pensamos que la hematología es una de las herramientas de diagnóstico más útiles, y al
mismo tiempo más infrautilizadas de la practica veterinaria. La composición de la sangre
cambia rápidamente en respuesta a la enfermedad. Una muestra de sangre se obtiene
fácilmente y con los analizadores modernos, se puede analizar de forma rápida y a precios
económicos. El hemograma completo proporciona una excelente información sobre el estado
de salud de un paciente. (Rebar, MacWilliams, Feldman, Metzger, Pollock, y Roche , 2002, p.
1).
14
1.1 Problema
La investigación surge del problema con los ganaderos al querer realizar
exámenes clínicos tales como, un hemograma y química sanguínea en animales que son
pertenecientes a un nivel de 2550 a 3800 msnm, se ven obligados a usar parámetros
referenciales de otros países, zonas pertenecientes a regiones de baja altitud y de otras
razas de bovinos (Brahman), con lo cual los datos que se utiliza como referencia para la
lectura de dichos exámenes nos pueden dar resultados erróneos, teniendo en cuenta las
constantes fisiológicas con respecto a animales pertenecientes a zonas andinas, cambian
notablemente a comparación de animales criados a nivel del mar, por esta razón la
investigación se realiza con el fin de obtener datos propios de la región y así poder realizar
un diagnóstico efectivo con respecto a exámenes hematológicos.
1.2 Delimitación
1.2.1 Temporal
La presente investigación alcanzó una duración de 400 horas que se distribuye en el
proceso experimental y en la redacción final del documento.
1.2.2 Espacial
La investigación se realizó en las instalaciones del laboratorio de la clínica POLIVET
de la Universidad Politécnica Salesiana-Cuenca-Ecuador. Las muestras para realizar el
estudio investigativo se obtuvieron de bovinos machos de raza Holstein provenientes de las
parroquias Tarqui y Cumbe perteneciente al cantón Cuenca.
15
El cantón Cuenca pertenece a la provincia del Azuay- Ecuador, latitud de 2º 53’ 57" S
y una longitud de 79º 00’ 55"O, su superficie es de 15.730 hectáreas y presenta un clima
con temperaturas que oscilan entre los 14ºC y los 18ºC durante todo el año, situada a 2.538
m.s.n.m. Localizada en la Región Interandina o Sierra, en la parte austral del territorio
ecuatoriano. Al norte limita con la provincia de Cañar, al sur con las provincias de El Oro
y Loja, al este con las provincias de Morona Santiago y Zamora Chinchipe, y al oeste con
la provincia de Guayas. La provincia es el resultado de la división del Departamento de
Azuay. Su capital es la ciudad de Cuenca llamada la "Atenas del Ecuador" con
aproximadamente 330.000 habitantes en el área urbana. En esta provincia se encuentra la
represa Daniel Palacios, en el río Paute, que además de los proyectos Mazar y Sopladora,
la convierten en la principal abastecedora de electricidad al país. Específicamente en las
haciendas ganaderas a nivel de la provincia ya mencionada.
Figura 1: Mapa de la ciudad de Cuenca
Fuente: (Google Maps, 2019).
La Parroquia Tarqui se encuentra ubicada en el suroeste del Cantón Cuenca, de la
provincia del Azuay, en la cordillera oriental de los Andes. Tiene una superficie de las 15.100
hectáreas. El centro urbano parroquial se encuentra a 17 Km., del centro de Cuenca, sus
coordenadas son Longitud X = 718720 Latitud Y = 9667003 La parroquia Tarqui, posee 26
16
comunidades que aglutina a 8.921 habitantes. Sus límites con otras parroquias del Cantón
Cuenca son:
Al norte: Baños, Turi y el Valle.
Al sur: Victoria del Portete y Cumbe.
Al este: Quingeo y Santana.
Al oeste: Baños y Victoria del Portete.
Figura 2: Mapa de la Parroquia Tarqui
Fuente: (Google Maps, 2019).
La Parroquia Cumbe se encuentra ubicada al Sur del cantón Cuenca, provincia del
Azuay, está situada a 27 kilómetros de Cuenca, En la carretera Cuenca-Loja hasta llegar al
centro parroquial, sus coordenadas son Longitud X = 721290 Latitud Y = 9659000. Tiene una
altitud media de 2680 m.s.n.m. con una extensión de 70,14 Km2 y una población de 4.985
habitantes.
17
Figura 3: Mapa de la Parroquia Cumbe
Fuente: (Google Maps, 2019).
1.2.3 Académica
La investigación fue ejecutada dentro del área de Laboratorio Clínico, mediante el cual
fortalecemos los conocimientos adquiridos durante nuestra formación profesional.
1.3 Explicación del problema
Los análisis de hemograma y química sanguínea son de suma importancia debido a que
nos facilita el diagnostico de muchas enfermedades o patologías, que pueden padecer nuestros
pacientes, las cuales en nuestro medio son muy limitadas debido a que no existen valores
referenciales en el cual nos podemos guiar.
1.3.1 Hipótesis nula
HO: No se encuentra variación alguna en los valores el estudio de hemograma y
química sanguínea de los toros Holstein en Cuenca en relación a los valores referenciales
citados.
18
1.3.2 Hipótesis alternativa
H1: Se encontró variación en los valores el estudio de hemograma y química sanguínea
de los toros Holstein machos a nivel de altura 2550 a 3800 msnm en relación a los valores
referenciales citados.
1.4 Objetivos
1.4.1 Objetivo general
Determinación de valores referenciales en hemograma y química sanguínea en
bovinos Holstein machos aparentemente sanos en condiciones de altitud.
1.4.2 Objetivos específicos
Realizar el hemograma y química sanguínea a toros Holstein aparentemente sanos
Definir el valor medio de los parámetros del hemograma y química sanguínea
Relacionar resultados con referencias bibliográficas
Elaborar una tabla con valores referenciales en hemograma y química sanguínea en
condición de altitud.
1.5 Fundamentos teóricos
El presente trabajo tiene como fundamento principal obtener valores de referencia en
analitos para hemograma y química sanguínea en bovinos machos raza Holstein en zonas
geográficas de gran altitud, por el cual podremos dar resultados de laboratorio más concretos
y así concluir con un diagnóstico más precisó para el paciente.
Hoy en día los análisis de laboratorio forman una parte muy importante dentro de
herramientas de trabajo de un médico veterinario para poder dar un diagnóstico más confiable
y así dar un tratamiento farmacológico eficaz al paciente. Tomando en cuenta que esta
investigación proveerá de información científica para consultas en el área de laboratorio
clínico veterinario.
19
2. MARCO TEÓRICO
2.1 Historia del bovino.
Se considera al Gelocus como el fósil más antiguo, origen de todos los rumiantes, entre
ellos lo bovinos. La especie bovina tuvo una importancia notable en las culturas antiguas
como animal totémico símbolo de la fuerza, preferente en el sacrificio de los dioses, en la vida
diaria y llegando a ser un dios. (Sañudo, 2008, p. 14).
La especie bovina es la tercera especie más carne produce a nivel mundial, con casi una
cuarta parte del total. En el mundo se produce más de 500 millones de toneladas de leche de
vaca, lo que supone algo más del 85% de la leche total producido. (Sañudo, 2008, pp. 20-22).
2.2 Raza Holstein.
De origen holandés, mejorada en los Estados Unidos y en varios países latinos.
Peso del macho: 1.000 kg, de la hebra; 679 kg; la cría al nacer pesa de 36 a 56 kg. Se
adapta a praderas y establos, comen bien forrajes secos concentrados. (Durán, 2006, p.
222).
El color particular de los ejemplares Holstein es blanco con manchas negras
definidas. En los climas cálidos, sobre todo tratándose de animales obligados a pastorear al
sol, el color más conveniente es el que presenta mayor porcentaje de blanco, ya que este
color es capaz de reflejar mayor porcentaje de radiaciones solares por lo que al existir una
mayor capacidad de reflexión de las radiaciones la temperatura interior del cuerpo es
menor afectada. Son animales grandes y fuertes; su cabeza es larga pero fina y estrecha, la
grupa ancha; posee gran capacidad respiratoria y un vientre amplio que le permite una gran
capacidad para trasformar grandes cantidades de alimento. (Castro, 2002, p. 44).
“Temperamento: Son animales dóciles y mansos”. (Castro, 2002, p. 44).
20
“Utilización: Para la producción de leche en clima templado y con buenas
condiciones de manejo, so obtiene en Costa Rica alrededor de 6000 litros de leche con
3,5% de grasa, constituyendo la raza mayor productora de leche”. (Castro, 2002, p. 44).
Este tipo de ganado es uno de los más grandes y sus características son bastantes
definidas, la hembra presenta la forma típica triangular, que se caracteriza a la raza lechera.
En general los animales de esta raza son dóciles y fáciles de manejar. (Koeslag, 2015, p.
37).
Por su alta producción, los animales puros de raza Holstein no soportan bien los
climas tropicales. Por tal razón se realiza cruza de esta raza con el ganado cebú. El
resultado es un animal más resistente y con mayor producción de leche. (Koeslag, 2015, p.
37)
2.2 Composición de la sangre
La sangre es un líquido viscoso, formado por componentes celulares los cuales se
encuentran suspendidos en un medio coloidal denominado plasma. Es opaca debido al gran
número de células que se encuentran en ella y de color rojo por la hemoglobina contenida
en los glóbulos rojos (eritrocitos). La composición de la sangre en los organismos animales
se mantiene siempre dentro de límites normales o fisiológicos, gracias a mecanismos
especiales que dan nutrición, que eliminan de ellas sustancias de desecho y que producen
las células hemáticas características. (Urroz, 1991, p. 136).
La sangre es el medio de transporte más importante del organismo, mantiene la
constancia del “medio interno” (la homeostasis) y participa decisivamente en la defensa
contra los agentes patógenos. La sangre transporta gases como el oxígeno y el dióxido de
carbono, posibilita el intercambio de sustancias entre los órganos y recibe de los tejidos los
productos finales del metabolismo para transportarlos hacia el pulmón, el hígado y los
21
riñones con fines de eliminación. Además, la sangre asegura la distribución de las
hormonas en el organismo. (Koolman y Rohm, 2005, p. 274)
La sangre está compuesta de células (eritrocitos, leucocitos, plaquetas) que circulan
en un líquido llamado plasma. Los eritrocitos son los más numerosos, habiendo varios
millones de eritrocitos por microlitros de sangre en los mamíferos. Dependiendo de la
especie, los eritrocitos representan de un cuarto a la mitad del volumen sanguíneo total,
como se mide determinando el hematocrito. Las plaquetas o trombocitos son siguiente tipo
celular más numeroso en la sangre, con recuento de plaquetas desde 100 x 10^3/UL en
caballos sanos a varios cientos de miles por microlitro en otras especies de mamíferos. El
recuento total de leucocitos o glóbulos blancos es muy inferior a los de eritrocitos o
plaquetas, variando los primeros de 5x10^3uL aproximadamente 20x10/uL en los
mamíferos. (Mayer y Hervey, 2007, p. 17).
“El plasma consiste principalmente en agua que contiene aproximadamente 6-8
g/uL de proteína plasmática y 1,5 g/dl de sales inorgánicas, lípidos, carbohidratos,
hormonas y vitaminas”. (Mayer y Hervey, 2007, p. 17)
“El volumen sanguíneo total es aproximadamente el 10-11% en caballos, 8-9% en
perros, 6-7% en gatos, rumiantes, roedores, 5-6% en cerdos”. (Mayer y Hervey, 2007, p.
18).
2.3. Obtención de la sangre
Para minimizar el daño celular potencial durante el muestreo, se recomienda obtener la
sangre por venopunción de la yugular, más que la obtención de venas periféricas (…). No
obstante, con agujas de poco calibre la probabilidad de causar daño celular y la
subsiguiente hemólisis es mayor (…). Después de obtener la muestra, la aguja se retira de
22
la jeringa y la muestra se transporta con cuidado a un tubo con anticoagulante adecuado.
(Villiers y Blackwood. 2009, p. 33)
“Es de suma importancia la correcta obtención y manejo de la muestra sanguínea,
técnicas inadecuadas pueden llevar a resultados erróneos y a artefactos morfológicos. La
calidad de la muestra es el principal factor responsable de los errores analíticos”. (Rebar,
MacWilliams, Feldman, Metzger, Pollock, y Roche, 2002, p. 9).
“Lógicamente la sangre debe estar en solución liquida para poder ser analizada”. (Rebar
et al., 2002, p. 9).
“La sangre se recoge en viales o jeringas que contiene anticoagulante. El EDTA es el
anticoagulante de elección en la mayoría de las pruebas hematológicas”. (Rebar et al.,
2002, p. 9).
Para el muestreo deben tenerse en cuenta la lactancia y la reproducción, los dos eventos
de mayor significación en el bovino adulto. Con respecto a la hora del muestreo, no deben
obtenerse muestras inmediatamente después de la ingestión. Las investigaciones realizadas
demuestran un aumento en las concentraciones de glucosa y urea plasmática. (Alvarez,
2004, pp. 3-4).
La toma correcta de la muestra de sangre para fines bioquímicos asegura la calidad de
diagnóstico. Es importante conocerlos cambios que experimenta la sangre, tanto in vitro
como in vivo; es allí es donde se encuentran las principales fuentes de error en el análisis
sanguíneo: en los requisitos que debe reunir el animal donante durante la toma de la
muestra y en su conservación. Los cambios in vivo tienen que ver con el sitio de obtención
de la muestra, el período previo de ayuno, la excitación del animal y si éste se halla bajo
tratamiento con drogas; los cambios in vivo son causados por el metabolismo celular y por
la coagulación, hemólisis, desecación, envejecimiento y contaminación de la muestra.
23
Sitios de obtención de la sangre: las fuentes principales de obtención de sangre son la vena
yugular, la arteria coccígea y la vena mamaria. (Alvarez, 2004, pp. 4-5).
La vena yugular es una de las fuentes más usadas para extraer sangre venosa, pues
ofrece mucha garantía en cuanto a volumen y pocos riesgos de hemólisis. Algunos
investigadores señalan que las concentraciones de glucosa y fosforo inorgánico se pueden
incrementar ligeramente al compararlas con las obtenidas en sangre de otras fuentes; el
argumento son las modificaciones que sufre este fluido durante su paso por las glándulas
salivares. (Alvarez, 2004, p. 5 cómo se citó en Thielmann, 1973: 19).
La arteria coccígea es otra importante fuente de sangre para fines bioquímicos. Es la que
ofrece mayor estabilidad en los indicadores hematoquímicos del perfil. Sin embargo, la
relativa suciedad del sitio y el estrés que se produzca en el animal durante la manipulación
afectan las concentraciones de varios metabolitos y limitan su uso. En la vena mamaria se
obtiene fácilmente muestras de sangre; sin embargo, los resultados evidencian una mayor
variabilidad en su composición probablemente por el tránsito de la sangre a través de la
glándula mamaria. (Alvarez, 2004, p. 5).
Al extraer sangre venosa deben evitarse ligaduras o puentes por tiempos prolongados,
ya que afectan las concentraciones de algunos metabolitos, en particular, glucosa, potasio,
lactato, piruvato, y los indicadores del estado ácido básico. La punción de la vena o arteria
se realiza con agujas desinfectadas, preferiblemente del tipo california; se elimina los
primeros chorros y se colecta la sangre en tubos o frascos, dejándola correr lentamente por
las paredes de los mismos; se evita así la formación de espuma y con ello la hemólisis. En
casos que se precise de jeringuilla, la sangre obtenida se transferirá a los tubos luego retirar
la aguja, observando las reglas descritas anteriormente los tubos colectores con tapa y
24
vacío brindan seguridad y confiabilidad en el material obtenido, y la técnica es rápida.
(Alvarez, 2004, p. 5).
“Tras la obtención de la muestra, las extensiones se deben preparar tan pronto como sea
posible, la exposición prolongada al EDTA ocasiona artefactos en los neutrófilos y en las
plaquetas. Los eritrocitos muestran una mayor susceptibilidad a la lisis después de más de
24 horas en EDTA”. (Rebar et al., 2002, pp. 9-10)
“Invierta varias veces el vial después de su llenado para asegurar una adecuada mezcla
de la sangre y el anticoagulante”. (Rebar et al., 2002, p. 9).
2.4. Obtención y Manejo de la muestra.
Una vez la muestra ha sido regida en el tubo correcto debe ser procesada lo antes posible.
Para la hematología siempre es mejor realizar una o más extensiones en el momento de la
recogida y dejar que se seque al aire. (…). Las muestras deben mantenerse en refrigeración
antes de enviarlas y/o antes del análisis. Las extensiones sanguíneas y las preparaciones
citológicas no deben almacenarse en el frigorífico ni cerca de la formalina. (Villiers y
Blackwood, 2013, p. 17)
“Las muestras para plasma y suero deben manejarse con precaución para evitar la
hemólisis y deben transferirse a tubos de almacenaje adecuados y almacenarlos a una
temperatura correcta para el test (nevera o congelador)”. (Villiers y Blackwood, 2013, p. 17)
Nuñez y Bouda (2007), menciona que “hay ciertas condiciones que deben cuidarse al
decidir tomar una muestra para enviarla al laboratorio, tales como: especie, fin zootécnico,
tipo de pruebas a realizar, volúmenes a colectar, tiempo transcurridos entre toma y análisis,
etc”. (p.12)
25
“La sangre debe procesar lo antes posible después de su obtención y las extensiones
sanguíneas deberían realizar inmediatamente. Si se demora el análisis de la muestra, debemos
mantener la muestra en refrigeración”. (Rebar et al., 2002, p. 10)
“Tener la muestra un tiempo excesivo a temperatura ambiente ocasionar hemolisis”.
(Rebar et al., 2002, p. 11).
Los recuentos de plaquetas son los que se ven más afectados por los retrasos en el análisis
de la muestra. La plaqueta tiene un tiempo de vida media corta y además tienden a agregarse a
medida que discurre el tiempo, incluso en presencia de anticoagulante. Los recuentos
plaquetarios realizados tras más de 4-6 horas de la recogida son poco fiables. (Rebar et al.,
2002, p. 10).
“Las muestras de sangre deben mezclase varias veces inmediatamente antes de tomar una
pequeña cantidad su análisis, se debe evitar agitar la muestra durante un tiempo prolongado
para prevenir el físico a las células”. (Rebar et al., 2002, p. 11)
2.5 Hematología
Para la hematología de rutina el anticoagulante de elección es el EDTA (sal de sodio y
potasio). Es el que causa un menor número de artefactos en la morfología de las células de
la sangre en la mayoría de las especies de mamíferos, aunque es inadecuado para las
células sanguíneas de muchas aves y reptiles. Si la concentración de EDTA es excesiva en
relación al volumen de sangre las células se encogen y disminuyen falsamente el
hematocrito (PCV) obtenido. Los tubos de EDTA llenados con menos de la mitad indican
(>3,0 mg ETDA/ml sangre) reducen el PCV un 5 %, mientras que el hematocrito medido
por el analizador no se ve afectado por que los eritrocitos son expandidos de nuevo cuando
se mezclan con el diluyente en el analizador. (Villiers y Blackwood, 2013, p. 16 cómo se
citó en Cornbleet, 1983)
26
Si se utiliza EDTA líquido se puede añadir un error al diluir la muestra, disminuyendo
además el contaje celular. Por el contrario, una cantidad insuficiente de EDTA en relación
al volumen de sangre provocará la formación de coagulo. Los pequeños coágulos en la
muestra, que pueden pasarse por alto a simple vista, pueden causar errores de los
parámetros medidos por la máquina, especialmente los relacionados con el recuento de
plaquetas y de leucocitos. (Villiers y Blackwood, 2013, p. 16).
2.5.1 Eritrocitos.
“Se producen en la medula ósea. La función primaria de los eritrocitos en transporte el
oxígeno a los tejidos y extraer el dióxido de carbono. La fisiología del eritrocito está
estructurada para facilitar su función y proteger su integridad”. (Rebar, MacWilliams,
Feldman, Metzger, Pollock, y Roche, 2002, pp. 31-33)
La evaluación de los eritrocitos debe incluir la observación del color, tamaño, forma y
el examen de inclusiones. La anisocitosis se refiere a la variación en el tamaño de la célula.
Los eritrocitos inmaduros (reticulocitos) son más grandes (macrocíticos) que las células
maduras y también se tiñes de un color azul-gris, que se describe como policromasia.
Solamente se ve un pequeño número (<1%) de eritrocitos inmaduros en los animales
normales. (Villiers y Blackwood, 2013, pp. 42-43).
2.5.2 Leucocitos
(Le Vay, 2004) afirma que “Si esta cantidad se eleva marcadamente, como en una
enfermedad infecciosa, hablamos de leucocitosis; si disminuye, como en la alteración
tóxica de la medula ósea, se habla de leucopenia”. (p.250).
“Los leucocitos eosinófilos son similares a los anteriores, pero los gránulos de su
protoplasma son más grandes y se tiñen con colorantes ácidos como la eosina, tienen su
origen en la medula ósea”. (Guitierrez, 2004, p. 214)
27
2.5.2 Neutrófilos
“Los neutrófilos son producidos en la medula ósea, se liberan en la sangre, circulan
brevemente, y migran a los espacios tisulares o a las superficies epiteliales, como las que
existen en el sistema respiratorio, digestivo o urogenital”. (Rebar et al., 2002, p. 73).
“La medula ósea precisa aproximadamente de 4 a 6 días para formación de nuevos
neutrófilos, y es capaz de mantener en reserva el aporte de neutrófilos maduros para cinco
días”. (Rebar, et al., 2002, p 73).
“Las lesiones o la invasión bacteriana de los tejidos desencadenan la producción y
liberación de factores estimulantes de colina (FSC) que controla la proliferación y
maduración de los neutrófilos inmaduros de la medula ósea”. (Rebar, et al., 2002, p 73).
“Los neutrófilos construyen la principal defensa contra la invasión de los tejidos por
microorganismos. Los neutrófilos eliminan bacterias, pero también pueden dañar o
participar en la estructura de hongos, algas o virus (Rebar, et al., 2002, p 74)
“El número de neutrófilos cuantificados en el hemograma de pende de los cambios en la
producción y liberación por la medula ósea, el intercambio entre el compartimento
marginal y circulante, y/o el ritmo de migración tisular”. (Rebar, et al., 2002, p 75)
“Tamaño de 12 a 15 micras, el diámetro de 2 a 5 veces más del eritrocito, núcleo
lobulado o parcialmente segmentado con cromatina densa, de coloración purpura oscura”.
(Rebar, et al., 2002, p 83).
2.5.3 Monocitos
“Los monocitos se originan en la médula ósea. A diferencia de los granulocitos, se
liberan a la circulación periférica todavía como células inmaduras y se transportan a los
tejidos donde pueden diferenciarse en macrófagos, células epitelioides, o células
inflamatorias gigantes multinucleadas”. (Rebar, et al., 2002, p 101)
28
“La evolución continua de monocitos a macrófagos representa la segunda línea de
defensa del sistema fagocítico circulante”. (Rebar, et al., 2002, p 101).
“Los monocitos circulantes presentan las siguientes características. Tamaño de 15-20
micras, núcleo de forma irregular, cromatina ligeramente reticulada, citoplasma abundante
de gris a azul grisáceo. Debido al manejo de la muestra pueden producirse variaciones en
la morfología normal”. (Rebar, et al., 2002, p 102).
2.5.4 Linfocitos
Los linfocitos de la sangre periférica pueden originarse tanto en la medula ósea como en
el timo. A diferencia de los granulocitos y de los monocitos que se mueven de forma
unidireccional de la medula ósea hacia los tejidos, los linfocitos sanguíneos recirculan en
ambos sentidos. El patrón de movimiento es de sangre a los ganglios linfáticos, a la linfa, y
de vuelta a la sangre. Los linfocitos circulantes son células de vida larga con esperanzas de
vida de meses a años. (Rebar, et al., 2002, p 107).
“Los linfocitos son las células del sistema inmunitario específico”. (Rebar, et al., 2002,
p 107)
“Linfocitos B inmunidad humoral y linfocitos T son responsables de la inmunidad
celular”. (Rebar, et al., 2002, p 107).
“Los linfocitos de la sangre periférica constituyen las células de memoria dl sistema
inmunitario”. (Rebar, et al., 2002, p 107).
“Las características de los linfocitos normales incluyen: Tamaño de 9 a 12 micras,
núcleo redondo, excéntrico, de cromatina agregada, citoplasma escaso y en forma de anillo
delgado, de azul pálido”. (Rebar, et al., 2002, p 110).
29
2.5.5 Hematocrito
“El hematocrito indica la relación entre el volumen de los eritrocitos y el de la sangre
total y se define clásicamente, como el volumen ocupado por los hematíes contenidos en
100 ml de sangre (expresado en %)”. (Juste y Carretón, 2015, p. 35).
2.5.6 Hemoglobina
La concentración de hemoglobina se mide según la absorbancia de la muestra a una
determinada longitud de onda, característica de esta proteína. Puede variar
fisiológicamente por las mismas razones que varía en número de eritrocitos. La altitud
sobre el nivel del mar produce cierto grado de hipoxia que, dependiendo de la duración y la
continuidad, puede elevar la concentración de hemoglobina. (Juste y Carretón, 2015, p.37).
2.5.7 Hemoglobina corpuscular media.
“Indica el peso de la hemoglobina por eritrocito. Es el índice eritrocitario de menor
importancia. Se obtiene bien utilizando contadores celulares automáticos o bien aplicando
la siguiente formula: HMC = Hb x 10 / nº hematíes”. (Juste y Carretón, 2015, p.38).
2.5.8 Concentración de hemoglobina corpuscular media
Indica la relación entre el peso de la hemoglobina y el volumen de los glóbulos rojos.
Junto con el VCM es el índice eritrocitario de mayor importancia desde el punto de vista
clínico. Se calcula utilizando contadores automáticos o bien multiplicando la hemoglobina
por cien dividiendo el resultado por el hematocrito. Se mide en gramos / decilitros (gr/dL).
(Juste y Carretón, 2015, p.38).
2.5.9 Volumen Corpuscular Medio (MCV)
Este dato forma parte de los índices eritrocíticos que se obtienen por citometría de
flujo y se mide en fentolitros (fL), siendo un dato indispensable para clasificar el tipo de
anemia que presenta el paciente, e indica si los eritrocitos son microcíticos, macrocíticos
30
o normocíticos. (Galarza , 2017). Como se citó en (González, 2012, p.64).
2.5.10 Plaquetas
Las plaquetas constituyen el tampón inicial de hemostasia siempre que se produce una
hemorragia (…). Las plaquetas se producen en la médula ósea a partir de los megacariositos,
bajo la influencia de la trombopoyetina. Las plaquetas circulantes están repletas de gránulos
densos que contienen ATP, ADP y calcio, así como serotonina, lisosomas, glucógeno,
mitocondrias y un sistema canalicular intracelular. La agregación plaquetaria local es
estimulada por el ADP con la formación en el último término del tapón plaquetario primario.
(Kahn, 2007, p. 7)
Los trastornos plaquetarios son tanto cualitativos (trombocitopenia o trombocitosis) como
cualitativos (trombocitopatías). La trombocitopenia es una de las causas más comunes de
trastornos hemorrágicos de los animales. En general, los recuentos de plaquetas deben
disminuir hasta <30 000/uL para que exista peligro de hemorragia. La producción disminuida
de plaquetas en la médula puede estar causada por fármacos, toxinas o trastornos primarios de
la médula como la aplasia, fibrosis o malignidad hematopoyética. La trombocitosis ocurre
raramente y suele ser idiopática. Puede estar relacionada con una enfermedad primaria de la
médula, como la leucemia megacariocítica. (Kahn, 2007, p. 7).
31
2.5.11 Valores Hematológicos de referencia en Bovinos.
Tabla 1: Valores de referencia del cuadro eritrocitario en bovinos.
Analito Valor referencial Valor referencial
Hematócrito (Hto)
Hemoglobina (Hb)
Numero de eritrocitos
Volumen corpuscular medio
(VCM)
Hemoglobina corpuscular
media (HbCM)
Concentración media de
hemoglobina
Contenido de Fe en suero
Capacidad total de ligar Fe
0,2-0.39(l/l)
5,6-8.7 mmol/l
5-8 millones/ul
45-65 fl
0,9-1,5 fmol
16-21 mmol/l
13-44 Umol/l
29-53 Umol/l
28-39%
90-140 g/l
14-24 pg
26-34 g/100ml
750-2500 ug/l
1620-3000 ug/l
Fuente: (Dirksen, Günder, y Stöber, 2005, p. 192).
32
Tabla 2: Valores de referencia de hemograma en bovinos Holstein.
Analitos Unidades Valor referencial
Hematocrito L/L 0.24 – 0.46
Hemoglobina g/l 80 – 150
Eritrocitos x 10 a la 12/L 5.0 – 10.0
VGM Fl 40 – 60
CGMH g/l 300 – 360
Plaquetas x 10 a la 9/L 100 – 800
Leucocitos x 10 a la 9/L 4 – 12
Linfocitos x 10 a la 9/L 2.5 – 7.5
Monocitos x 10 a la 9/L 0.0 – 0.8
Fuente: (Nuñes y Bouda, 2007, p. 276).
33
Tabla 3: Valores de referencia de hemograma en bovinos Holstein.
Analito Unidades Valores referenciales
WBC x109/l 4.0-12.0
Linfocitos x109/l 2.5-7.5
Monocitos x109/l 0-0.8
GRA - -
RBC x1012
/l 5-10
Hemoglobina g/dl 8.0-15.0
MCHC g/l 300-360
MCH Pg 11-17
MCV Fl 40-60
HCT - -
PLT x109/l 100-800
Fuente: (Blood y Studdert, 1988, pp. 1164,1165).
2.6. Bioquímica
“Existen numerosos parámetros bioquímicos que pueden ser analizados y determinados.
El panel bioquímico básico incluye grupos de parámetros que reflejan disfunción o daño en
uno o varios sistemas orgánicos, por lo que el empleo de técnicas bioquímicas resulta de
extrema utilidad”. (Juste y Carretón, 2015, p. 101)
Las pruebas bioquímicas se pueden realizar tanto en suero como en plasma. Muchos
laboratorios prefieren el suero, ya que este reduce la probabilidad de formación de
coágulos de microfibrina en la muestra y la interferencia con la instrumentación automática
34
de muestreo. Las sales de heparina (sodio, amonio o litio) se unen e inhiben la trombina,
previniendo la formación del coágulo; por tanto, la sangre puede ser procesada
rápidamente para producir el plasma que se utiliza para muchos tests de hormonas y para la
bioquímica de rutina. El plasma de sangre almacenada o muestra no separadas suele
contener pequeños coágulos que interfieren con la fase analítica. (Villiers y Blackwood,
2013, p. 16)
Si se necesita suero, se puede utilizar un tubo al vacío o uno que contenga el gel
separador, y las muestras deben mantenerse a temperatura ambiente hasta que el coagulo se
forme por completo normalmente, 15 minutos en pequeños animales, antes de la
centrifugación. Si no se forma un coágulo completo o no se centrifuga, se pueden formar
coágulos de fibrina en la muestra que acusarán problemas durante el análisis: los coágulos
pequeños o grandes, pueden producir errores en la hematología, bioquímica y análisis de
los gases sanguíneos, y también en las pruebas de coagulación y por tanto deberían
evitarse. Con los tubos que contiene gel separador no se necesita más manipulación, tras la
centrifugación, ya que el gel es inerte y separa las células y su metabolismo continuado del
suero/plasma. La mayoría de analitos no se ven afectados por esta sustancia, pero los tubos
de gel no son adecuados para monitorización terapéutica de muchos fármacos. Para otros
tubos, el suero/plasma se debe separar del sedimento de células con precaución y situarlo
en un tubo (plástico/cristal) lo antes posible. (Villiers y Blackwood, 2013, p. 16)
2.7. Perfil renal
2.7.1. Urea.
La dieta es el principal producto de desecho de los mamíferos y, en última
instancia, se excreta casi de forma exclusiva en la orina. Se sintetiza en el hígado a partir
del dióxido de carbono y del amoníaco utilizado la vía del ciclo de la urea. La síntesis
hepática de urea es un proceso que requiere energía, y permite la excreción del exceso de
35
amoníaco, que se forma en gran parte durante la desaminación de los aminoácidos. La
mayor parte del amoníaco incorporado a la urea proviene de la degeneración de las
proteínas. Por tanto, la tasa de formación de urea es muy dependiente del contenido
proteico de la dieta y de la tasa de catabolismo endógeno de las proteínas, especialmente
las que contienen mucha proteína de bajo valor biológico, o la hemorragia
gastrointestinal aumenta un poco la concentración de urea en el suero. (Villiers y
Blackwood, 2013, p. 239)
Las proteínas de la dieta o proteínas endógenas del organismo se catabolizan en
aminoácidos. Estos a su vez se degradan en diferentes compuestos, entre los que están el
amonio. En el hígado, la urea se sintetiza a partir del amonio. La urea se excreta por vía
renal principalmente, a través del filtrado glomerular. Los valores de urea se expresan en
milimoles por litro (mmol/l) en el Sistema Internacional, o en mg/dL. (Tepán, 2017, pág.
23). Como se citó en (Juste y Carretón, 2015, p. 122).
2.7.2 Creatinina
La creatinina es un producto de degradación espontánea no enzimática de creatina y
fosocreatina en el músculo. La creatinina es proporcional a la masa muscular y no aumenta
con la dieta; es excretada por los riñones mediante filtración glomerular, sin ser
reabsorbida por túbulos renales. (Juste y Carretón, 2015, pp. 122-123)
Cuando se eleva la urea y la creatinina, se denomina azotemia renal y es indicativo de
que al menos el 75%de nefronas renales (las unidades filtradoras del riñón) están afectadas.
La interpretación de las concentraciones de estos dos parámetros requiere un urianálisis,
prestando especial atención a la densidad urinaria. (Juste y Carretón, 2015, p. 123)
La creatinina es un producto de degradación espontánea no enzimática de creatinina y
fosfocreatina en el músculo. La creatinina es proporcional a la masa muscular y no
aumenta con la dieta; es excretada por los riñones mediante filtración glomerular, sin ser
36
reabsorbida por los túbulos renales. (Juste y Carretón, 2015, pp. 122-123).
2.8. Perfil enzimático del hígado
2.8.1 ALT.
La ALT es una enzima ubicada en el citosol de muchos tipos celulares, con una
concentración relativamente alta en el hígado y cantidades menores en el riñón, corazón,
músculo esquelético y glóbulos rojos. Como resultado, la ALT es un indicador más
específico de lesión hepática que la AST. La ALT puede liberarse desde las células con
lesión o necrosis celular subletal (filtración), o a través de inducción enzimática (aumento
de síntesis). La colestasis y obstrucción de tracto biliar puede aumentar la ALT por medio
de efectos tóxicos de las sales biliares en lo hepatocitos. Los niveles de ALT en suero, en
general, no se consideran importantes, a menos que sean 2-3 veces superior a los normales.
(Vaden, Knoll, Smith, y Tilley, 2011, p. 12)
“También se denomina glutámico-pirúvico transaminasa (GPT). El aumento de la
actividad de la ALT en suero/plasma indica una alteración de la permeabilidad de los
hepatocitos, y su aumento proporcional al número de hepatocitos afectados”. (Juste y
Carretón, 2015, p. 129)
La ALT (alanino aminotransferasa) que están dentro del hepatocito y aumentan en
sangre cuando se lesiona este. (Tepán, 2017, p. 49).
2.8.2. AST
También denominada glutámico-oxacético transaminasa (GOT). Al contrario que la
ALT, no es una enzima hepatoespecífica, ya que se puede encontrar en hígado, músculo,
cerebro y riñón. Se localiza en las mitocondrias y citoplasma de los hepatocitos. Un
aumento de su actividad en suero/plasma puede indicar lesión del hepatocito o lesiones
musculares. Para diferenciar su origen, se debe realizar otras pruebas: ALT para determinar
si el origen es hepático o CK (creatínin quinasa) para determinar si el origen es muscular.
37
(Juste y Carretón, 2015, p. 129)
“La AST se encuentra tanto en el citosol como dentro de las mitocondrias del
hepatocito”. (Tepán, 2017, p.49).
2.8.3. FAL y GGT
La fosfatasa alcalina (FA) es una enzima presente en muchas células. Su función
biológica en la célula se desconoce, pero es una enzima ligada a la membrana, y su
producción y liberación hacia el suero puede inducirse mediante colestasis, tratamiento con
medicamentos, corticoesteroides, etc. Debido a que es una enzima ligada a la membrana,
no debería producirse aumento de la actividad enzimática en suero con daño o necrosis
celular, a menos que también se produzca colestasis (u otra inducción). Formas variables
de FA (isoenzimas) se producen en diferentes tejidos y con diferentes agentes de
inducción. (Vaden, Knoll, Smith, y Tilley, 2011, p. 296)
“La FAL (fosfatasa alcalina) y GGT (gammaglutamiltransferasa) que están en las
membranas del sistema de conducción biliar y de los hepatocitos. Estas enzimas aumentan
por causas que inducen su síntesis como colestasis o corticoides”. (Tepán, 2017 p, 49 como
se citó en Cerón, J, 2013, p.150)
El aumento de la concentración de hormonas de crecimiento, es, por lo menos en parte,
responsable del aumento del fosfato circulante. El crecimiento esquelético provoca un
aumento del nivel circulante de fosfatasa alcalina como resultado del aumento de la
actividad de la isoenzima ósea. (Mayer y Hervey, 2007, p. 221)
2.9. Bilirrubinas
Nombre que recibe uno de los pigmentos que forma parte de la bilis hepática. Después
de ser eliminados la proteína y el hierro (Fe) de la hemoglobina (Hb), queda un pigmento
verde, la biliverdina. Esta es reducida a B que se transporta al hígado por la albúmina
sanguínea. Aquí es conjugada y pasa a la bilis de la vesícula biliar y finalmente al intestino,
38
donde la mayor parte de ella se reduce a bilinógenos, que son excretados por las heces o
por la orina como urobilinógeno. La reducción la realiza los microorganismos del
intestino. (Barioglio, 2001, p. 51)
La bilirrubina es el principal pigmento biliar y producto de la degradación de las
hemoproteínas de la hemoglobina, mioglobina y enzimas que contienen el grupo hemo
(por ejemplo, los citocromos). Las células fagocitarias del MPS (sistema mononuclear
fagocítico), especialmente en el hígado, bazo y médula ósea, eliminan eritrocitos
senescentes y anormales, y convierten la hemoglobina a bilirrubina vía biliverdina. (Tepán,
2017 p. 52)
La bilirrubina en suero u orina se oxida a biliverdina con una exposición prolongada a la
luz fluorescencia
2.10. Perfil enzimático del páncreas y tracto gastrointestinal
2.10.1 Amilasa.
En animales solo hay α-amilasa. Es una metaloenzima dependiente de calcio, secretada
en forma activa que hidroliza a carbohidratos complejos en el enlace α-1,4 para dar
maltosa y glucosa. El páncreas, hígado e intestino delgado, son las fuentes principales de
actividad de amilasa en el suero. (Latimer, Mahaffey, y Prasse, 2005, pp. 263-264)
2.10.2 Lipasa
La Lipasa es una enzima pancreática normalmente segregada al duodeno durante la
digestión. En condiciones patológicas puede activarse dentro del páncreas como
consecuencia de lipemia o traumatismo pancreático. En ocasiones, la necrosis pancreática
eleva la actividad de la lipasa sérica hasta 2-7 veces su valor normal en 48 horas. (Galarza,
2017, p. 35)
La lipasa hidroliza a los triglicéridos. Haya varios tipos de lipasas: lipasa pancreática,
colipasa y lipoproteína lipasa. El páncreas secreta lipasa pancreática en su forma activa la
39
lipasa presenta una actividad óptima a un pH alcalino y es potenciada por la bilis. Las
únicas fuentes conocidas de lipasa son el páncreas y la mucosa gástrica. La lipasa y
colipasa son eliminadas del plasma e inactivadas por los riñones. (Latimer, Mahaffey, y
Prasse, 2005, p. 266).
2.11. Enzima musculo esquelético
2.11.1. CK-NAC
Creatinin Quinasa (CK/CPK). “La CK posee tres isoenzimas que se localizan
principalmente en el músculo esquelético, en el miocardio y cerebro, por lo que
alteraciones en estos órganos nos provocarán elevaciones de su actividad plasmática”.
(Juste y Carretón, 2015, pp. 126-130).
El más alto nivel de concentración de Creatinine Kinasa (CK) se destaca en músculo
esquelético, seguido por el tejido cerebral y miocardio. El cerebro puede desperdiciarse
como una fuente de elevada actividad de CK por que la barrera sanguínea en el cerebro,
evidentemente no permite el pasaje de CK. Un aumento de la actividad del CK en el suero,
solamente se puede esperar cuando existe daño al músculo esquelético y cardíaco. (Bogin,
Otto, Ibáñes, Lippi, Wittwer, y Uriarte, 1989, pp. 48-49)
2.12. Lípidos
2.12.1. Colesterol
El colesterol y los ésteres de colesterol son lípidos importantes en la dieta y provienen
de las grasas y fosfolípidos de las plantas. El colesterol es el esterol más abundante en los
tejidos animales, tanto libre como esterificado. Es un derivado del
ciclopentanoperhidrofenantreno que posee el -OH del C3 en posición cis o beta y una
doble ligadura entre el C5-6. En la regulación del nivel de colesterol tienen importancia las
hormonas tiroideas ya que afectan a todos los aspectos del metabolismo de los lípidos, su
efecto más acentuado es en la lipólisis. Uno de los efectos particulares de las hormonas
40
tiroideas es la tendencia a disminuir el colesterol del plasma. Esto incluye dos efectos: por
un lado, hay un aumento en la absorción celular de las lipoproteínas de baja densidad
(LDL) con las moléculas de colesterol relacionadas y por otro una tendencia para
incrementar la degradación del colesterol y las lipoproteínas de baja densidad (LDL).
(Aranda, Brave, y Casagrande, 2002, p. 1).
“Colesterol. Se deriva de la dieta y de la síntesis hepática, y sufre una recirculación
enterohepática” (Villiers y Blackwood, 2012, p. 268).
2.12.2. Triglicéridos.
Los trigliceroles o triglicéridos, llamados también grasas neutras, son ésteres de la
glicerina o glicerol y ácidos grasos, que constituyen reservas de energía en los mamíferos.
Los ácidos grasos que más corrientemente se encuentra en la Naturaleza formando ésteres
con la glicerina son los de 16 y 18 átomos de carbono. (Lajusticia, 2002, pág. 23)
“En la actualidad los métodos utilizados se basan en la cuantificación de su contenido
en glicerol. Al igual que en el colesterol, podemos considerar dos tipos de métodos: los
químicos y los enzimáticos”. (Días, Fernández y Paredes, 1997, p. 76)
2.13. Proteínas Plasmáticas
Se denomina proteínas totales a todas las que se encuentran en el plasma, con excepción
del fibrinógeno (factor de la coagulación), ya que la medición se realiza en suero. La
medición de proteínas totales proporciona importante información acerca del estado
nutricional del paciente y también como indicador de la presencia de enfermedades
hepáticas orgánicas graves. (Galarza, 2017, p.33 como se citó en González, 2012, p. 75).
En los mamíferos domésticos la concentración total de proteínas plasmáticas es baja en
el momento del nacimiento (4 a 6 g/dL) pero aumenta tras la absorción de las
inmunoglobulinas del calostro. La concentración total de proteínas plasmáticas sigue
incrementando con la edad de forma gradual como resultado de la producción de
41
inmunoglobulinas en respuesta a antígenos externos. Las concentraciones normales de
proteínas plasmáticas en los mamíferos adultos varían con la especie, pero generalmente se
encuentran entre 6 y 8 g/dl. (Mayer y Hervey, 2007, p. 229).
2.13.1. Albúmina
La albúmina es una única proteína plasmática homogénea que contiene una pequeña
cantidad de carbohidratos. La albúmina y otras proteínas pueden ser glucosiladas por
interacciones no enzimáticas con la glucosa. La albúmina glucosilada y las proteínas
totales glucosiladas (que pueden ser determinadas como fructosaminas) se encuentran
incrementadas en humanos y en animales con una diabetes no tratada o mal controlada.
(Tepán.2017, p. 58).
2.13.2. Globulina
La concentración de globulinas totales se calcula en el plasma o suero restando la
concentración de la albúmina de las proteínas totales determinadas por el método de biuret.
(…). La concentración total de globulinas en el plasma puede ser baja (hipoglobulinemia)
por una sobrehidratación, perdida de globulinas del cuerpo (hemorragia, exudados
masivos, enteropatía con pérdida de proteínas). (…) La hiperglobulinemia puede aparecer
por una deshidratación a un aumento de la síntesis de globulinas. (Meyer y Harvey, 2007,
p. 234).
2.14. Ácido úrico
Es un metabolito de excreción hepático de la degradación de purinas, y su aumento
sérico se puede utilizar como marcador de disfunción hepática (Reyers et al., 2001). Sin
embargo, el ácido úrico también se acumula en perros con anormalidades hereditarias en
el metabolismo de las purinas. Los dálmatas son un ejemplo. (Tepán.2017, p 60) como
se citó en (Villiers y Blackwood, 2012, p. 276).
“La formación de ácido úrico tiene lugar mayoritariamente en el hígado, que al igual
42
que la mucosa intestinal presenta una gran actividad xantinoxidasa. En la mayoría de los
animales el ácido úrico formado es degradado por la enzima uricasa.” (Días et al., 1997,
p. 91).
2.15 Glucosa
La glucosa es el azúcar sanguíneo sube después de comer o beber algo además del agua.
Un nivel alto de glucosa (la hiperglicemia) puede ser una señal de la enfermedad de
diabetes. Un nivel alto de azúcar sanguíneo a largo plazo puede dañar los ojos, nervios,
riñones y el corazón (Córdoba Aguilar, 2009, p.13). La concentración de glucosa
disminuye por el ayuno o por el ejercicio prolongado, por el exceso de insulina ya sea por
un insulinoma o por dosis altas de insulina como terapia; en toxemia, inanición y lesiones
hepáticas; también disminuye en hipoadrenocorticalismo debido a una reducción en la
secreción de las glándulas adrenales o a una producción reducida de ACTH por la glándula
pituitaria. Fisiológicamente en momentos de estrés la insulina y epinefrina aumentan y el
hígado produce más glucosa. (Galarza , 2017, pág. 33). Como se citó en (Máxime, 1967)
El contacto prolongado de los eritrocitos con el suero va a reducir la concentración de
glucosa sérica a una velocidad de cerca de un 10% cada hora. La mayor parte de los
valores bioquímicos son estables en el suero almacenado 4ºC durante por lo menos 24
horas. (Mayer y Hervey, 2007, p. 223).
43
2.16. Valores referencia de química sanguínea en bovinos.
Tabla 4: Parámetros de laboratorio, útiles para el diagnóstico hepático en el
bovino.
Parámetro Límite normal
Superior
Bilirrubina Total (BT) 8,5 μmol/l
Bilirrubina I 6,8 μmol/l
Bilirrubina II 3,4 μmol/l
Concentración total de ácidos biliares 40 μmol/l (hasta 380 μmol/l)
Aspartato Amino Transferasa (AST) A: 40-50 U/L
Alanina Amino Transferasa (ALT) A: 20 U/L
Gamma Glutamil Transferasa (ɣGT) A: 20 U/L
T: 20-50 U/L
Ornitina Carbamil Transferasa (OCT) A: 20 U/L
Sorbitol Deshidrogenasa (SDH) A: 10 U/L
Glutamato Deshidrogenasa (GLDH) A: 10 U/L
Fuente: (Dirksen, Gründer y Stöber, 2003, p.573).
44
Tabla 5: Valores de referencia del perfil bioquímico en bovinos.
Analito Unidades Valor referencial
Glucosa mmol/L 2.6 – 4.9
Urea mmol/L 2.5 – 6.6
Creatinina umol/L <129
Bilirrubina total umol/L 0 – 11.7
AST U/L < 120
Fosfatasa Alcalina U/L < 237
GGT U/L < 29
CK U/L < 300
Proteinas totales g/l 59.5 – 80.0
Albuminas g/l 27.7 – 40.4
Globulinas g/l 26.2 – 45.2
Fuente: (Núñez, Bouda 2007, p.277).
45
Tabla 6: Valores bioquímicos de referencia en bovinos
Analito Unidades Valores referenciales
FA: fosfatasa alcalina U/l 41-90
GGT:gammaglutamil
transpeptidasa
U/l 13-32
AST:aspartato
aminotransferasa
U/l 42-98
ALT: alanina transaminasa U/l -
Glucosa mg/dl 35-55
Proteínas totales g/dl 5.7-8.1
Urea mmol/l 2.1-9.6
Ácido úrico - -
Amilasa U/l 41-94
Lipasa U/l -
Creatinina mg/dl 1.2-2.7
CK-Nac: creatina kinasa U/l 66-220
46
Bilirrubina total mg/dl 0-1.9
Bilirrubina directa mg/dl 0-0.4
Bilirrubina indirecta - -
Albúmina g/l 21-36
Globulina g/l 7-12
Colesterol mg/dl 39-177
Triglicéridos - -
Fuente: (Blood y Studdert, 1988, pp. 1162,1163).
2.16. Resumen del estado del arte del estudio del problema.
La medicina veterinaria en el transcurso del tiempo ha ido evolucionando, en su
aplicación de la medicina y el diagnóstico de enfermedades o problemas en el sistema
fisiológico de un organismo vivo, por lo tanto, una de las áreas que hoy en día sobresale
dentro de la medicina veterinaria tenemos el diagnostico por medio de resultados
hematológicos dentro de laboratorio clínico.
En los últimos años, el aumento en el uso y el mayor conocimiento de la biopatología
clínica nos ha llevado a una detección más precisa de la enfermedad y al uso de los
enfoques terapéuticos racionales. Ahora es posible realizar un amplio rango de análisis en
los laboratorios y los clínicos han de elegir entre laboratorio interno o externo. (Villiers y
Blackwood, 2012, p. 1).
Los resultados obtenidos se analizan de acuerdo a los datos de referencia hematológico
(limites e intervalos de referencia, promedios y valores ¨normales¨), descritos por los
distintos autores. Los datos de referencia, aquellos que son sometidos a comparar, con los
resultados obtenidos del paciente, por la razón que estos datos de referencia son resultados
47
obtenido en investigaciones con animales aparente mente sanos, así obteniendo
conclusiones concretas a cerca de los resultados de laboratorio clínico de nuestros
pacientes.
Los animales sanos pueden tener incrementos transitorios o reducciones en los
resultados de pruebas fuera del rango normal debido a cambios en el ambiente, estado
emocional, dieta u otros factores; y un pequeño porcentaje de animales sanos simplemente
tienen valores superiores a los de la población general de animales normales. Los animales
aparentemente sanos pueden también tener enfermedades ocultas que provoquen uno o
más resultados anormales en las pruebas de laboratorio; y los errores en la toma de
muestra, manejo y procedimientos de laboratorio pueden resultar en resultados falsamente
elevados o reducidos en animales sanos. Consecuentemente, no es apropiado simplemente
emplear el rango de valores real de todos los animales aparentemente sanos evaluados.
Para desarrollar intervalos de referencia útiles, uno debe decidir qué animales van a ser
evaluados, cuantos deben evaluarse y que método(s) va a emplearse para eliminar lo que se
escapan por encima y por debajo, que de otro modo tenderían a reducir el valor del
intervalo como referencia. (Mayer & Hervey, 2007, p. 3).
48
3. MATERIALES Y METODOS.
3.1 Diseño Estadístico.
Para el análisis estadístico de los datos en este estudio se empleó, la estadística
descriptiva: medidas de dispersión la cual abarca conceptos de valor mínimo, valor
máximo, media, mediana, moda, desviación típica, varianza y coeficiente de variación;
luego se realiza un diagrama de caja, para considerar aquellos valores atípicos los cuales
alterarían la información, a pesar de no incluirlo dentro de mi propuesta, para esto se
utilizó el programa Microsoft Excel 2016.
A continuación, se manipuló los datos con la ayuda del programa Minitab 19
aplicando la prueba de normalidad la cual nos permite encontrar el valor de la “Prueba de
Kolmogorov-Smirnov”, donde si el valor p es < 0.01 los datos no siguen una distribución
normal y si el valor p es > 0.01 los datos si siguen una distribución normal.
Los datos que se encuentran con una distribución normal se utiliza la prueba de
ajuste en la cual se aplica la formula Media ±2SD, para el límite superior y límite inferior
y con los datos que no siguen una distribución normal se utiliza el método de percentil con
49
un 95% de confianza; con el percentil 2.5 que se obtiene mediante la fórmula (n+1)*0.025
para el límite inferior y 97.5 para el límite superior que se obtiene con (n+1)*0.975.
3.2 Población y muestra.
3.2.1 Selección y tamaño de la muestra.
En la investigación se tomó encuentra que el animal a estudio debe estar en condiciones
saludables, por esta razón se realizó un examen clínico general en donde se demostró que
nuestras unidades experimentales se encuentran aparentemente sanos, el cual se procedió a
realizar un examen de hemograma y química sanguínea, a 100 unidades bovinas machos raza
Holstein sin una edad específica.
3.2.2 Obtención de muestras sanguíneas.
Se inmovilizó al animal, utilizando una manga o métodos de sujeción físicos en
bovinos, procedimos a canalizar la vena (yugular, coxígea), utilizando camisa y agujas
multimuestra hipodérmica 20G x 1 (0,90mm x 25mm) Vacuette, para un solo uso, se
obteniendo un total de 6 ml de sangre, de lo cual 1ml se colocó en el tubo vacutainer con
anticoagulante EDTA, el cual nos sirvió para realizar el hemograma y los 5ml restantes se
depositó en el tubo estéril al vacío (vacutainer) de 10 ml sin anticoagulante, para la obtención
del suero el cual se utiliza en la química sanguínea.
3.2.3 Procedimiento para realizar el hemograma.
Se realizó un examen general, este siendo particular para el paciente, el cual se
comprobó su estado de salud aparentemente sano, procediendo a la canalización de la vena y
extracción de sangre (1ml), utilizando camisa y agujas hipodérmica 20G x 1 (0,90mm x
25mm), Vacuette, aguja multimuestra para un solo uso, colocando en un tubo vacutainer con
anticoagulante EDTA, se homogenizo la muestra y procedimos a colocar en un equipo
50
automatizado marca Rayto RT-7600 específico para uso veterinario, el cual absorbe 10 landas
de sangre y en cuestión de 1 minuto obtenemos los valores del hemograma.
3.2.4 Proceso para realizar la química sanguínea.
Se realizó un examen general, este siendo particular para el paciente, el cual se comprobó su
estado de salud aparente mente sano, procediendo a la canalización y extracción de 5ml
sangre, utilizando camisa y agujas hipodérmica 20G x 1 (0,90mm x 25mm), Vacuette, aguja
multimuestra para un solo uso, colocando en un tubo estéril al vacío (vacutainer) de 10 ml sin
anticoagulante.
La muestra de sangre que se obtuvo, se procedió a centrifugar por 5minutos a 3400
rpm, así obteniendo la separación del suero, para su procedimiento de química húmeda, se
utilizó cantidades específica de suero y reactivo, teniendo en cuenta la temperatura y tipo de
procedimiento de la muestra ya sea de punto final o cinética. Estos análisis de química
sanguínea se realizaron en un equipo automatizado MRC-1190CV de uso veterinario.
Glucosa; este es una prueba rápida de punto final por lo tanto su resultado es
inmediato, se coloca 10 landas de suero del paciente y 1000 landas de reactivo glucosa
HUMAN, en un tubo de ensayo el cual se coloca en el termo bloque por 10min a 37ºC,
cumplido el tiempo se lee la muestra en el espectrofotómetro.
PT; es una prueba rápida de punto final, en un tubo de ensayo se coloca, 20 landas de
suero del paciente y 1400 landas de reactivo (Proteínas Totales WINNER), se coloca en el
termo bloque por 10min a 37ºC, cumplido el tiempo se lee la muestra en el espectrofotómetro
con resultado inmediata.
Triglicéridos; está dentro de las pruebas rápidas de punto final, por lo tanto, su
resultado es inmediato, se coloca en un tubo de ensayo 10 landas de suero de nuestro paciente
51
y 1000 landas del reactivo (Triglicéridos HUMAN), se coloca en el termo bloque por 10min a
37ºC, cumplido el tiempo se lee la muestra en el espectrofotómetro.
Colesterol; es una prueba rápida de punto final por lo que su resultado es inmediato,
utilizamos un tubo de ensayo donde se coloca 10 landas de suero de nuestro paciente y 1000
landas de reactivo (Colesterol HUMAN), se coloca en el termo bloque por 10min a 37ºC,
cumplido el tiempo se lee la muestra en el espectrofotómetro.
Ácido úrico; es una prueba rápida de punto final por lo que su resultado es inmediato,
utilizamos un tubo de ensayo donde se coloca 20 landas de suero de nuestro paciente y 1000
landas de reactivo (Ácido Úrico HUMAN), se coloca en el termo bloque por 5min a 37ºC,
cumplido el tiempo se lee la muestra en el espectrofotómetro.
FA; es una prueba de cinética a 37ºC, para su análisis se coloca en un tubo de ensayo,
20 landas de suero del paciente y 1000 landas de reactivo (Fosfatasa Alcalina WINER LAB),
se lee de inmediato la muestra en el espectrofotómetro y su resultado lo obtenemos de
inmediato.
GGT; es una de las pruebas de cinética a 37ºC, en un tubo de ensayo se coloca 50
landas de suero del paciente y 1000 landas de reactivo (GGT SPINREACT) y se lee de
inmediato en el espectrofotómetro, y obtuvimos el resultado en 3 min.
AST; es una prueba de cinética a 37ºC, en un tubo de ensayo se coloca 100 landas de
suero del paciente y 1000 landas de reactivo (AST SPINREACT) y se lee de inmediato en el
espectrofotómetro, y obtuvimos el resultado en 3 min.
ALT; es una prueba de cinética a 37ºC, en un tubo de ensayo se coloca 100 landas de
suero del paciente y 1000 landas de reactivo (ALT SPINREACT) y se lee de inmediato en el
espectrofotómetro, y obtuvimos el resultado en 3 min.
52
CK-NAC; es una prueba de cinética a 37ºC, en un tubo de ensayo se coloca 100 landas
de suero del paciente y 1000 landas de reactivo (CK-NAC QCA) y se lee de inmediato en el
espectrofotómetro, y obtuvimos el resultado en 4 min.
Amilasa: es una prueba rápida de punto final, para su análisis se utiliza 2 tubos de
ensayo de 10ml el cual el primer tubo será el control y el otro ira la muestra de suero, por la
razón que en el espectrofotómetro se lee en absorbancias, en los dos tubos se depositó 500
landas de reactivo A (amilasa WIENER LAB), y se los coloco en el termobloque a 37ºC por
dos minutos, transcurrido ese tiempo en el segundo tubo se depositó 10 landas de suero de
nuestro paciente y se dejó por 7 min y 30 seg en el termobloque, una vez cumplido el tiempo
se sacó los tubos del termobloque y se colocó en la gradilla y a continuación se deposita 500
landas de reactivo B (amilasa WIENER LAB) conjunto con 4 ml de agua destilada en los dos
tubos de ensayo y se deja reposar por 5 min y leemos primero el control en el
espectrofotómetro (absorbancias) y luego el tubo con la muestra de suero, se observó un
resultado inmediato.
Lipasa; es una prueba de cinética a 37ºC, se depositó en un tubo de ensayo 10 landas
de suero de nuestro paciente y 1000 landas de reactivo A (Lipasa QCA), en el termobloque se
coloca por 5 min a 37ºC, cumplido el tiempo se deposita 600 landas de reactivo B (Lipasa
QCA) y dejamos 5 min más en el termobloque a 37ºC al terminar el tiempo leemos de
inmediato en el espectrofotómetro, el resultado lo obtendremos en 2 min y 30 sec.
Urea; es una prueba rápida de punto final a 37ºC, en un tubo de ensayo de 10ml
colocamos 10 landas de suero de paciente, una gota de ureasa y dejamos por 5 minutos en el
termobloque a 37ºC, cumplido el tiempo agregamos 1000 landas de reactivo de urea
WIENER LAB, dejamos por 5 minutos más en el termo bloque a 37ºC, al terminar este
tiempo sacamos el tubo de ensayo del termobloque y colocamos 5 ml de agua destilada y
53
dejamos reposar 10 min, a continuación leemos en el espectrofotómetro, su resultado es
inmediato.
Albúmina; es una prueba rápida de punto final a 25ºC, en un tubo de ensayo
colocamos 10 landas de suero de nuestro paciente y 1000 landas de reactivo albúmina
WIENER LAB, dejamos de 2-10 min en el termo bloque a 37ºC, cumplido el tiempo leemos
en espectrofotómetro, los resultados son inmediatos.
Creatinina; es una prueba de cinética a 25ºC, en un tubo de ensayo se coloca 100
landas de suero de nuestro paciente, 142 landas de agua destilada, 571 landas de reactivo A
(LABTEST) y 71 landas de reactivo B (LABTEST), agitamos y dejamos reposar por 10 min,
leemos en el espectrofotómetro, el resultado se obtuvo en 2 minutos.
Bilirrubina total; es una prueba rápida de punto final a 25ºC, se prepara dos tubos de
ensayo el primero es el blanco y el segundo la muestra, en el primer tubo (blanco) se coloca
1000 landas de agua destilada, 100 de activo 2 y 50 landas de suero del paciente, en el
segundo tubo (muestra) se coloca 1000 landas de reactivo 1, 50 landas de suero del paciente y
100 landas de diazo reactivo, dejamos reposar 5 minutos y leemos en el espectrofotómetro
primero el blanco y después la muestra y el resultado se obtuvo de inmediato.
Bilirrubina directa; es una prueba rápida de punto final a 25ºC, se prepara dos tubos de
ensayo el primero es el blanco y el segundo la muestra, en el primer tubo (blanco) se coloca
1000 landas de agua destilada, 100 landas de activo 2 y 50 landas de suero del paciente, en el
segundo tubo (muestra) se coloca 1000 landas de agua destilada, 50 landas de suero del
paciente y 100 landas de diazo reactivo, dejamos reposar 5 minutos y leemos en el
espectrofotómetro primero el blanco y después la muestra y el resultado se obtuvo de
inmediato.
54
Bilirrubina indirecta; es el resultado de la resta de la bilirrubina total menos la
bilirrubina directa.
Globulina, se obtiene de la resta de las proteínas totales menos la albúmina.
3.2.5 Variables de estudio.
Tabla 7: Parámetro química sanguínea.
FA: fosfatasa alcalina
GGT: gammaglutamil transpeptidasa
AST: aspartato aminotransferasa
ALT: alanina transaminasa
Glucosa
Proteínas totales
Urea
Ácido úrico
Amilasa
Lipasa
55
Creatinina
CK-Nac: creatina kinasa
Bilirrubina total
Bilirrubina directa
Bilirrubina indirecta
Albúmina
Globulina
Colesterol
Triglicéridos
FA: fosfatasa alcalina
Tabla 8: Parámetro hemograma.
WBC: número total de glóbulos blancos
LYM: número de linfocitos
MID: número de monocitos
GRA: número de granulocitos
LYM: porcentaje de linfocitos
MID: porcentaje de monocitos
GRA: porcentaje de granulocitos
RBC: recuento de glóbulos rojos
HGB: hemoglobina
HCT: hematocrito
MCV: volumen corpuscular medio
MCH: hemoglobina corpuscular media
56
MCHC: concentración media de hemoglobina corpuscular
PLT: Plaquetas
3.3 Materiales.
3.3.1 Biológicos.
Tabla 9: Materiales biológicos.
DESCRIPCIÓN CANTIDAD
Animales
Estudiante
100
1
3.3.2 Químicos.
Tabla 10: Materiales químicos.
DESCRIPCIÓN UNIDAD CANTIDAD
Reactivo Glucosa HUMAN Unidad 1
Reactivo Colesterol HUMAN Unidad 1
Reactivo Triglicéridos HUMAN Unidad 1
Reactivo Ácido úrico HUMAN Unidad 1
Reactivo Urea WIENER LAB Unidad 1
Reactivo Creatinina LABTEST Unidad 1
Reactivo ALT SPINREACT Unidad 1
Reactivo AST SPINREACT Unidad 1
Reactivo GGT SPINREACT Unidad 2
Reactivo FA WIENER LAB Unidad 1
Reactivo Proteínas Totales WIENER
LAB
Unidad 1
57
Reactivo Albúmina WIENER LAB Unidad 1
Reactivo CK NAC QCA Unidad 3
Reactivo Amilasa WIENER LAB Unidad 2
Reactivo Bilirrubina WIENER LAB Unidad 1
Reactivo Lipasa QCA Unidad 2
Diluent 20 L Unidad 1
Cleanser 1
litro
Lyse 500 ml
Agua
destilada
Alcohol
Unidad
Unidad
Pomo
Pomo
1
1
1
1
3.3.3 Físicos.
Tabla 11: Materiales físicos.
DESCRIPCIÓN UNIDAD CANTIDAD
Hojas de papel bond Resma 1
Esferos Unidad 2
Libreta de notas Unidad 1
Marcadores Unidad 2
Laptop Unidad 1
Folders Unidad 1
Carpetas Unidad 1
Engrampadora Unidad 1
Caja de grapas Unidad 1
Papel térmico Rollo 1
Guantes nitrilo Caja 2
Mascarilla Caja 1
Tubos al vacío rojo 10 V Caja (50 U) 2
58
Tubos la vacío tapa lila 5V Caja (100 U) 1
Agujas de toma múltiple 20Gx1 Caja (100 U) 1
Puntas amarillas graduadas Funda 1
Puntas azules graduadas Funda 2
Puntas blancas Funda 1
Tubos eppendorf 1,5 ml Funda (250 U) 1
Tubos de ensayo 5 ml Caja x125U 1
Tubos de ensayo 10 ml Caja x125U 1
Gorros quirúrgicos desechables Caja 1
Capsulas vacutainer plástico
becto/usa
Unidad 10
Gradilla universal Unidad 2
3.4 Consideraciones éticas.
La sanidad animal es uno de los componentes más importantes dentro del bienestar
animal por lo cual se debe dotar de la respectiva asepsia en el momento de manipular al
animal para así evitar el contagio de enfermedades, como también la respectiva asepsia de
todos los materiales que se utilizó durante esta investigación como jeringas, agujas, tubos de
ensayo y otros.
(Tepán, 2017, pp. 74,75) como se citó en (Cardozo, 2008).
Brindar los cuidados adecuados a los animales según su etiología.
Evitar el dolor innecesario, sufrimiento, estrés o lesiones prolongadas.
Evitar duplicación o repetición innecesaria de experimentos
Reducir al mínimo el número de animales para garantizar la validez del estudio a
realizar.
59
El ejercicio permanente alrededor de los procedimientos, el análisis holístico de las
condiciones de uso y cuidado de los animales promueven una constante reflexión de
investigadores y comunidad en general sobre formas de interrelacionarse con otros seres vivos
atendiendo a sus condiciones de bienestar, a su etiología, a la calidad de la investigación, la
inversión social y económica en investigación biomédica e inclusive a la relación costo
beneficio. La constante capacitación de los investigadores y el personal auxiliar y técnico, la
aplicación de normas y principios de calidad, la verificación de la calidad y validez de los
resultados de la investigación que cuida y usa modelos animales experimentales, constituyen
un ambiente de profundo respeto y reflexión constante sobre los seres vivos que entregan su
vida por una causa y que son reconocidos como sensibles y vulnerables por lo que necesitan
protección y cuidado. Finalmente, el ejercicio constante del equipo de trabajo investigativo de
pensar en las mejores condiciones de trabajo con el animal, les obliga a aplicar principios no
solo de respeto sino de justicia y sensibilidad con los seres vivos.
60
4. RESULTADOS Y DISCUSIONES.
4.1 Resultados.
Tabla 12: Resultados de valores referenciales hematológicos en bovino machos Holstein en condiciones de altitud.
Variables Nº LI LS Unidad Media Mediana Rango S S2 CV Valor p
Kolmogrorov-
Smimov
WBC 100 7 101.66 x109/l
50,076 51 113.2 25.79 665.31 0.51 0.164
LYM 98 2.6 78.1 x109/l 33.29 30.65 75.5 20.51 420.80 0.61 <0.005
MID 91 0.4 5.6 x109/l 1.46 0.8 5.2 1.38 1.90 0.94 <0.005
GRA 97 1.37 23.81 x109/l 12.59 12.8 25.2 5.60 31.45 0.44 0.209
LYM 98 33.50 100.74 Porcentaje 67.12 68 72.9 16.80 282.54 0.25 0.005
MID 100 0.6 11.5 Porcentaje 4.56 3.95 10.9 3.16 10.00 0.69 <0.005
GRA 97 5.6 63.2 Porcentaje 26.92 23.6 57.6 13.99 195.74 0.51 <0.005
RBC 94 5.66 8.59 x1012
/l 7.12 7.13 3.28 0.73 0.53 0.10 0.576
HGB 94 11.23 17.11 g/dl 14.17 14.1 6.7 1,46 2.15 0.10 0.820
MCHC 91 437.04 533.64 g/l 485.34 481.8 128.9 24.15 583.27 0.04 0.293
MCH 92 17.83 21.89 Pg 19.86 19.7 4.4 1.01 1.03 0.05 0.016
MCV 98 34.50 46.78 Fl 40.64 40.35 14.9 3.06 9.41 0.07 0.473
HCT 96 21.25 36.94 Porcentaje 29.1 29.5 21 3.92 15.37 0.13 0.543
PLT 97 58 5283 x 109/l 1198.35 435 5225 1270.09 1613147.88 1.05 <0.005
61
Tabla 13: Valores de referencia de hemograma en bovinos Holstein machos.
Variable Valor calculado Valor Bibliográfico Unidad
WBC 7-101.66 4.0-12.0 x109/l
LYM 2.6-78.1 2.5-7.5 x109/l
MID 0.4-5.6 0-0.8 x109/l
GRA 1.37-23.81 0.5-10.5 x109/l
LYM 33.50-100.74 40-70 Porcentaje
MID 0.6-11.5 2-8 Porcentaje
GRA 5.6-63.2 15-45 Porcentaje
RBC 5.66-8.59 5-10 x1012
/l
HGB 11.23-17.11 8.0-15.0 g/dl
MCHC 437.04-533.64 300-360 g/l
MCH 17.83-21.89 11-17 Pg
MVC 34.50-46.78 40-60 Fl
HCT 21.25-36.94 24-46 Porcentaje
PLT 58-5283 100-800 x 109/l
62
Tabla 14: Resultados de valores referenciales de química sanguínea en bovino machos Holstein en condiciones de altitud.
Variables Nº LI LS Unidad Media Mediana Rango S S2 CV Valor p K-S
FA 91 1.39 184.72 UI/l 62.58 44.44 183.33 50.80 2580.71 0.81 <0.005
GGT 100 0.18 232.71 UI/l 37.25 19.9 232.53 40.69 1656.14 1.09 <0.005
AST 94 62.59 135.32 UI/l 98.96 97.82 93.81 18.18 330.63 0.18 0.834
ALT 96 23.06 46.53 UI/l 34.79 34.90 29.57 5.86 34.42 0.16 0.753
GLU 96 57.72 152.95 mg/dl 105.34 102.98 111.23 23.80 566.74 0.22 0.208
PT 98 3.80 9.00 g/dl 6.40 6.57 5.83 1.29 1.68 0.20 0.071
UREA 96 0.09 3.86 mg/dl 1.80 1.79 4.51 1.02 1.05 0.56 0.274
AU 92 1.69 3.49 mg/dl 2.59 2.62 2.22 0.45 0.20 O.17 0.750
AMI 96 2.49 211.83 UI/l 66.22 53.70 209.34 49.78 2478.57 0.75 <0.005
LIP 98 7.02 45.03 UI/l 20.56 17.55 38.28 6.94 48.24 0.33 <0.005
CR 87 0 0.64 mg/dl 0.29 0.24 0.64 0.13 0.01 0.44 <0.005
CK-NAC 95 47.48 625.55 UI/l 231.93 196.19 578.07 138.76 19254.50 0.59 <0.005
BT 88 0.02 1.6 mg/dl 0.62 0.49 1.58 0.45 0.20 0.72 <0.005
BD 88 0 0.05 mg/dl 0.01 0.01 0.05 0.01 0.00 0.77 <0.005
BI 97 0.03 2.14 mg/dl 0.66 0.49 2.11 0.52 0.27 0.78 <0.005
ALB 97 0.34 2.56 g/dl 1.30 1.26 2.19 0.47 0.23 0.36 0.671
GLO 96 2.55 7.75 g/dl 5.15 5.2 5;96 1.30 1.69 0.25 0.453
CHOL 94 74.48 155.60 mg/dl 115.04 113.43 97.84 20.28 411.34 0.17 0.901
TG 99 4.93 83.73 mg/dl 35.76 30.54 79.8 20.20 408.35 0.56 <0.005
63
63
Tabla 15: Valores de referencia de química sanguínea en bovinos Holstein machos.
Variable Valor calculado Valor Bibliográfico Unidad
FA 1.39-184.72 41-90 UI/L
GGT 0.18-232.71 13-32 UI/L
AST 62.592-135.32 42-98 UI/L
ALT 23.06-46.53 20 UI/L
GLU 57.72-152.95 35-55 mg/dl
PT 3.80-9.00 5.7-8.1 g/dl
UREA 0.09-3.86 2.1-9.6 mg/dl
AU 0.09-3.49 mg/dl
AMI 2.49-211.83 41-94 UI/L
LIP 7.02-45.03 UI/L
CR 0-0.64 1.2-2.7 mg/dl
CK-NAC 47.48-625.55 66-220 UI/L
BT 0.02-1.6 0-1.9 mg/dl
BD 0-0.05 0-0.4 mg/dl
BI 0.03-2.14 0.2 mg/dl
ALB 0.34-2.56 21-36 g/dl
GLO 2.55-7.75 7-12 g/dl
CHOL 74.48-155.60 39-177 mg/dl
TG 4.93-83.73 0-140 mg/dl
64
64
Tabla 16: Hemograma en terneros Holstein.
Variable Nº Mínimo Máximo Media Mediana Rango Unidad
WBC 7 13.5 102.8 42.97 37.1 89.3 x109/l
LYM 7 7.5 63.7 28.27 25.5 56.2 x109/l
MID 7 0.6 9.3 2.32 0.9 8.7 x109/l
GRA 7 4.7 30.2 12.42 10.7 25.5 x109/l
LYM 7 6.8 83.2 56.77 60.2 76.4 Porcentaje
MID 7 1.9 11.5 5.24 5.1 9.6 Porcentaje
GRA 7 14.9 45.8 28.55 31.4 30.9 Porcentaje
RBC 7 4.89 8.57 6.49 6 3.68 x1012
/l
HGB 7 9.3 16.7 13.38 12.8 7.4 g/dl
MCHC 7 461.8 787.3 577.32 552.8 325.5 g/l
MCH 7 18.4 27 20.64 19.9 8.6 Pg
MVC 7 34.4 39.9 35.98 35.9 5.5 Fl
HCT 7 17.6 34.2 23.67 23 16.6 Porcentaje
PLT 7 130 7623 4404.42 4155 5493 x 109/l
65
65
Tabla 17: Hemograma en toretes Holstein.
Variable Nº Mínimo Máximo Media Mediana Rango Unidad
WBC 26 10.6 94.3 56.43 61.5 83.7 x109/l
LYM 26 4.8 76.2 38.75 44.85 71.4 x109/l
MID 26 0.5 8 2.64 0.85 7.5 x109/l
GRA 26 4.5 29.2 15.03 14.8 24.7 x109/l
LYM 26 36.9 89.9 68.02 68.45 53 Porcentaje
MID 26 0.7 10.8 5.18 3.8 10.1 Porcentaje
GRA 26 8.9 59.4 26.79 23 50.5 Porcentaje
RBC 26 5.48 8.19 6.85 6.88 2.71 x1012
/l
HGB 26 10.7 16.7 13.53 13.6 6 g/dl
MCHC 26 425.1 522 483.78 478.4 96.9 g/l
MCH 26 17.9 180 26.06 19.75 162.1 Pg
MVC 26 36.1 46.8 40.99 40.75 10.7 Fl
HCT 26 20.8 35 28.06 28 14.2 Porcentaje
PLT 26 134 4159 1179 507 4025 x 109/l
66
66
Tabla 18: Hemograma en toros Holstein.
Variable Nº Mínimo Máximo Media Mediana Rango Unidad
WBC 67 7 120.2 48.35 48.6 113.2 x109/l
LYM 67 2.6 110.7 33.96 30 108.1 x109/l
MID 67 0.4 7.3 1.65 0.8 6.9 x109/l
GRA 67 2.2 29.9 12.43 11.15 27.7 x109/l
LYM 67 6.1 93.7 66.04 68.1 87.6 Porcentaje
MID 67 0.6 11 4.24 3.7 10.4 Porcentaje
GRA 67 5.6 72.4 28.74 25.2 66.8 Porcentaje
RBC 67 3.97 20.79 7.52 7.26 16.82 x1012
/l
HGB 67 8.8 19.8 14.51 14.7 11 g/dl
MCHC 67 4.94 727.9 474.22 481.7 722.96 g/l
MCH 67 4.2 31.5 19.99 19.9 27.3 Pg
MVC 67 33.4 49.5 41.25 40.6 16.1 Fl
HCT 67 15.8 101.7 31.27 30.5 85.9 Porcentaje
PLT 67 58 6672 1122.74 400 6614 x 109/l
En las tablas 16, 17, 18, se observan los resultados obtenidos del hemograma en las
distintas categorías (terneros 7 %, toretes 26% y toros 67%) se encuentran diferencias
significativas entre sus valores, en la línea blanca el recuento de glóbulos blancos (WBC) en
terneros con un valor de 42.97 x 109/l, toretes 56.43 x 10
9/l, toros 48.35 x 10
9/l, linfocitos con
un valor en terneros de 28.27 x 109/l, toretes 38.75 x 10
9/l, toros 33.96 x 10
9/l, monocitos con
un valor de 2.32 x 109/l en terneros , toretes 2.64 x 10
9/l, toros 1.65 x 10
9/l y granulocitos con
un valor para terneros de 12.42 x 109/l, toretes 15.05 x 10
9/l y para toros un valor de 12.43 x
109/l. Respectivamente nos indican que la serie blanca en terneros es inferior o menor a
comparación con los valores obtenidos en toretes y toros, debido a que los animales jóvenes y
67
67
adultos presentan un estrés más elevado, al ser utilizados como animales de trabajo (yuntas) o
por el libido sexual que ocasionan agresiones, debido a que pasan sueltos en corrales.
Respectivamente los valores obtenidos en la serie roja, se observa las tablas 16, 17, 18,
indica, el recuento de glóbulos rojos (RBC) en terneros es de 6.49 porciento, toretes 6.85
porciento, toros 7.52 porciento, hemoglobina en terneros se obtuvo un valor de 13.38 g/dl,
toretes 13.53 g/dl, toros 14.51, la concentración media de hemoglobina corpuscular (MCHC)
en terneros es un valor de 577.32 g/l, toretes 483.78 g/l, toros 474.22 g/l, el valor en terneros
es superior a toretes y toros.
La hemoglobina corpuscular media (MCH) en terneros se obtuvo un valor de 20.64
Pg, toretes 26.06 Pg, toros 19.99 Pg, y el volumen corpuscular medio (MCV) e terneros con
un valor de 35.98 Fl, toretes 40.99 Fl, toros 41.25 Fl, hematocrito (HCT) se obtuvo un valor
en terneros de 23.67 porciento, toretes 28.06 porciento, toros 31.27 porciento. En cuanto a
estos valores obtenidos el RBC, MCH y hemoglobina, se encuentran valores más altos en
animales adultos a comparación con terneros y toretes, esto se debe a que hay una mayor
actividad física por parte de animales adultos por ser animales de trabajo. Con relación al
MCV y HCT en terneros se observó valores inferiores respecto a toretes y toros, esto se debe
a que los terneros solo son amantados con leche por lo tanto sufren una deficiencia fisiológica
de hierro el cual se ve expresada en los valores obtenidos,
Los valores de plaquetas obtenidos para terneros es 4404.42 x 109/l, mientras que en
los toretes un valor de 1179 x 109/l, y en toros un valor de 1122.74 x 10
9/l. de acuerdo a lo
obtenido se observa que el valor plaquetario en los terneros es mayor al comparar con los
valores de toretes y toros, esto se debe a la deficiencia fisiológica de hierro que pueden
presentar los terneros y su hiperactividad y estrés.
68
68
Tabla 19: Química Sanguínea en terneros Holstein.
Variable Nº Mínimo Máximo Media Mediana Rango Unidad
FA 7 16.67 298 155.81 166.67 281.33 UI/L
GGT 7 5.77 85.73 33.87 20.14 79.96 UI/L
AST 7 48.46 111.03 78.38 63.45 62.57 UI/L
ALT 7 10.15 49.27 25.74 23.98 39.12 UI/L
GLU 7 76.49 191.93 128.97 130.88 115.44 mg/dl
PT 7 2.94 13.27 6.30 5.21 10.33 g/dl
UREA 7 0.51 14.5 3.86 2.47 13.99 mg/dl
AU 7 1.75 21.22 5.26 2.74 19.47 mg/dl
AMI 7 2.49 85.53 37.46 21.05 83.04 UI/L
LIP 7 14.03 250.69 50.91 17.41 236.66 UI/L
CR 7 0.08 0.88 0.48 0.56 0.8 mg/dl
CK-NAC 7 51.8 336.05 187.24 136.74 284.25 UI/L
BT 7 0.67 1.76 1.02 0.86 1.09 mg/dl
BD 7 0 0.12 0.03 0.01 0.12 mg/dl
BI 7 0.66 1.75 0.98 0.84 1.09 mg/dl
ALB 7 0.49 2.65 1.83 1.96 2.16 g/dl
GLO 7 0.62 6.12 3.04 3.18 5.5 g/dl
CHOL 7 81.53 157.79 118.32 110.79 76.26 mg/dl
TG 7 29.56 55.17 53.20 47.29 55.17 mg/dl
69
69
Tabla 20: Química Sanguínea en toretes Holstein.
Variable Nº Mínimo Máximo Media Mediana Rango Unidad
FA 26 1.39 301.39 37.05 19.44 300 UI/L
GGT 26 0.18 142.3 32.31 14.53 142.12 UI/L
AST 26 11.52 180.9 95.94 93.89 169.38 UI/L
ALT 26 22.97 46.03 35.06 35.15 23.06 UI/L
GLU 26 76.49 182.81 116.71 111.40 106.32 mg/dl
PT 26 2.31 7.79 6.06 6.11 5.58 g/dl
UREA 26 0.17 4.26 1.65 1.75 4.09 mg/dl
AU 26 1.19 3.3 2.59 2.62 2.11 mg/dl
AMI 26 3.82 237.5 81.04 61.93 233.68 UI/L
LIP 26 7.02 31.58 18.23 17.42 24.56 UI/L
CR 26 0.08 0.67 0.31 0.32 0.59 mg/dl
CK-NAC 26 53.65 489.2 252.29 229.62 435.55 UI/L
BT 26 0.09 2.81 0.75 0.64 2.72 mg/dl
BD 26 0 0.26 0.03 0.02 0.26 mg/dl
BI 26 0.07 2.8 0.7 0.62 2.73 mg/dl
ALB 26 0.33 2.7 1.41 1.40 2.37 g/dl
GLO 26 0.31 6.49 4.64 4.52 6.18 g/dl
CHOL 26 20.62 174.58 113.41 117.03 153.96 mg/dl
TG 26 7.88 72.91 33.73 28.08 65.03 mg/dl
70
70
Tabla 21: Química Sanguínea en toros Holstein.
Variable Nº Mínimo Máximo Media Mediana Rango Unidad
FA 67 1.39 575 90.06 66.67 573.61 UI/L
GGT 67 0.29 232.71 39.52 23.24 232.42 UI/L
AST 67 52.98 164.7 102.53 101.57 111.72 UI/L
ALT 67 19.7 52.78 34.95 34.86 33.08 UI/L
GLU 67 32.81 167.37 100.80 98.25 134.56 mg/dl
PT 67 3.12 8.77 6.58 6.79 5.65 g/dl
UREA 67 0.09 12.7 2.18 1.88 12.61 mg/dl
AU 67 1.15 18.32 3.38 2.62 17.17 mg/dl
AMI 67 9.31 323.56 74.62 55.76 314.25 UI/L
LIP 67 13.74 143.06 23.56 20.76 129.32 UI/L
CR 67 0 1.54 0.40 0.32 1.54 mg/dl
CK-NAC 67 47.48 915.19 270.57 194.31 867.81 UI/L
BT 67 0.05 3.38 0.80 0.52 3.33 mg/dl
BD 67 0 0.6 0.04 0.01 0.6 mg/dl
BI 67 0.03 3.33 0.75 0.48 3.3 mg/dl
ALB 67 0.28 2.73 1.26 1.23 2.45 g/dl
GLO 67 1.27 7.53 5.31 5.38 6.26 g/dl
CHOL 67 14.97 274.82 115.70 113.19 259.85 mg/dl
TG 67 4.93 169.36 36.72 30.54 164.43 mg/dl
71
71
Los valores obtenidos de acuerdo a las categorías (terneros 7%, toretes 26%, toros
67%) se observan en las tablas 20, 21, 22, indica diferencias significativas entre los valores
obtenidos. La fosfatasa alcalina (FA) con un valor: en terneros de 155.81 UI/L, toretes 37.05
UI/L, y en toros un valor de 90.06 UI/L, de acuerdo a estos resultados se observa que los
valores obtenidos en terneros se encuentran en mayor cantidad a diferencia de toretes y toros,
esto se debe a la edad en la que se encuentran estos animales teniendo en cuenta que la FA se
encuentra en niveles más altos de manera fisiológica en animales en crecimiento debido a que
es una enzima actúa en la línea de crecimiento encargándose del desarrollo óseo.
El valor de la media para la GGT en: terneros es de 33.87 UI/L, toretes 32.31 UI/L,
toros 39.52 UI/L, como podemos observar el valor de la GGT en toros se encuentra más
elevado en relación a terneros y toretes, esto se debe a la diferente actividad que realizan estos
animales, ya que los toros ejercen mayor desgaste muscular al ser utilizados como animales
de trabajo, entonces esta enzima se encuentra en mayor proporción.
AST en terneros es de 78.38 UI/L, toretes 95.94 UI/L, toros 102.53, y en la enzima
ALT obtuvimos un valor de: en terneros 25.74 UI/L, toretes 35.06 UI/L, toros 34.95 UI/L, la
diferencia que hay en los valores de AST y ALT en terneros, toretes y toros, se debe a la
diferencia de edad y actividad física que tiene los animales, porque esta enzima se encuentra
en la actividad muscular especialmente en el músculo cardiaco.
La glucosa en terneros se obtuvo un valor de 128.97 mg/dl, toretes 116.71 mg/dl, toros
100.80 mg/dl, de acuerdos a estos valores, en terneros y toretes la glucosa se encuentra en
niveles más altos con respecto a los toros, los animales jóvenes son más nerviosos y
experimentan más estrés, por lo que se encuentra niveles más altos de glucosa de manera
fisiológica.
72
72
El valor de la media para proteína totales en terneros es de 6.30 g/dl, toretes 6.06 g/dl,
toros 6.58 g/dl, y proteínas plasmáticas como albúmina se obtuvo un valor para terneros de
1.83 g/dl, toretes 1.41 g/dl, toros 1.26 g/dl, y en cuanto a globulinas para terneros con un valor
de 3.04 g/dl, toretes 4.64 g/dl, toros 5.31 g/dl. La diferencia que se observa en los valores
obtenidos para proteínas totales y plasmáticas (albúmina y globulina) entre terneros, toretes y
toros es porque son utilizadas como proteínas de transporte en diferentes procesos fisiológicos
en el organismo, también se debe a la demanda de proteína que necesita el animal según en el
estado de desarrollo en el que se encuentra y la capacidad del organismo que tiene para
sintetizarlas.
La urea en terneros es de 3.86 mg/dl, toretes 1.65 mg/dl, toros 2.18 mg/dl, y en cuanto
al ácido úrico se obtuvo un valor para terneros de 5.26 mg/dl, toretes 2.59 mg/dl, toros 3.38
mg/dl. La diferencia que se observa en sus valores obtenidos de acuerdo a sus distintas
categorías (terneros, toretes y toros) se debe al aporte proteico en su dieta ya que su valor
varía según la proteína consumida.
En cuanto al valor de la creatinina para: terneros es de 0.48 mg/dl, toretes 0.31 mg/dl,
toros 0.40 mg/dl. La diferencia de los valores que se observa entre terneros, toretes y toros se
debe a la condición corporal en la que se encuentran estos animales, por lo que una mejor
condición corporal más alto el nivel de creatinina y viceversa.
El valor de la media obtenido para CK-NAC en: terneros es de 187.24 UI/L, toretes
252.29 UI/L, toros 270.57 UI/L, se observa un nivel más alto de CK-NAC en toros al ser
comparado con los valores de terneros y toretes, esta diferencia se debe a que son animales
utilizados para trabajo, por lo que generan un mayor gasto del músculo cardiaco, por lo tanto,
este analito se encuentra en mayor proporción en estos animales.
73
73
El resultado obtenido de la media para amilasa en terneros es de 37.46 UI/L, toretes
81.04 UI/L, toros 74.62 UI/L, y lipasa se obtuvo un valor para terneros de 50.91 UI/L,
terneros 18.23 UI/L, toros 23.56 UI/L, se observa una clara diferencia en los valores
obtenidos de amilasa y lipasa en las distintas categorías (terneros, toretes y toros) debido a la
cantidad ingerida de hidratos de carbono que se encuentra en su alimentación diaria.
Se obtuvo para bilirrubina total (BT) en terneros un valor de 1.02 mg/dl, toretes 0.75
mg/dl, 0.80 mg/dl, en cuanto a la bilirrubina directa (BD)se obtuvo un valor para terneros
0.03 mg/dl, toretes 0.03 mg/dl, toros 0.04 mg/dl, y el valor obtenido para bilirrubina indirecta
(BI) en: terneros es de 0.98 mg/dl, toretes 0.7 mg/dl, toros 0.75 mg/dl, se presenta diferencia
entre los valores obtenidos en BT, BD, BI, entre los grupos (terneros, toretes y toros) esto es
debido a la condición corporal que se encuentra el animal dependiendo de la edad.
La media obtenida en cuanto al valor de colesterol para ternero es de 118.32 mg/dl,
toretes 113.41 mg/dl, 115.70 mg/dl, en triglicéridos se obtuvo un valor de 53.20 mg/dl en
terneros, toretes 33.73 mg/dl, toros 36.72 mg/dl, se observa diferencia en los valores
obtenidos de colesterol y triglicéridos entre terneros, toretes y toros, debido a tipo de
alimentación y cantidad de alimentos energéticos que se administren es su alimentación
diaria.
74
4.2 Discusión.
Los valores obtenidos en la presente investigación, la serie blanca presente en la sangre, su
recuento de leucocitos es de 7-101.66 x109/l, Linfocitos 2.6-78.1 x10
9/l, monocitos 0.4-5.6
x109/l, y granulocitos 1.37-23.81 x10
9/l, no concuerdo con los resultados obtenidos por
(Blood y Studdert, 1988, p. 1165) y (Nuñes y Bouda, 2007, p. 276) el recuento de leucocitos
es de 4.0-12.0 x109/l, linfocitos 2.5-7.5 x10
9/l, monocitos 0-0.8 x10
9/l, y en la literatura de
(Palacios y Narváez, 2018) indica un valor de 0.5-10.5 x109/l para granulocitos.
Con respecto a los resultados en la serie blanca, se encuentran elevados los valores
analizados, debido a una leucocitosis fisiológica, que se produce por el estrés que sufre el
animal en el momento de la manipulación para la extracción de la muestra, la leucocitosis
fisiológica también es causada por la excitación del animal, actividad muscular, balance
hídrico, temperatura ambiente, así produciéndose una respuesta leucocitaria fisiológica,
corroborado por (Arango, López, y Agudelo, 2015, pp. 53,54) como se citó en (Witter y
Bohmwald 1974) “los valores leucocitarios descritos en varios países demostraron la
existencia de variaciones causadas por diversos factores, principalmente: raza, edad y
condiciones ambientales entre otros”.
“Otros factores tales como la hora del día, la ingesta de alimentos, el ejercicio, la
epinefrina (endógena o exógena) y además condiciones como la tensión debido al “stress”
contribuyen a la leucocitosis fisiológica” (Arango, López, y Agudelo, 2015, p. 54).
(Scaglione, 2006, p. 24) como menciona (Piccione y Caola 2002), “los ritmos
circadianos de células rojas y de sus parámetros relacionados donde una baja amplitud,
mientras aquéllos de linfocitos circulantes y granulocitos son de alta amplitud y pueden ser
importantes en el diagnóstico”.
75
(Arango, López y Agudelo, 2015, p. 54) como menciona (Rave 1980), afirman que, en
los bovinos, (…) el número total de leucocitos se afectan por diferencias fisiológicas como:
excitación del animal, actividad muscular, balance hídrico del individuo y edad promedio,
además otros factores tales como momento de la toma de la muestra, temperatura ambiente,
tipo y calidad de la nutrición.
La diferencia de resultados obtenidos entres los datos de nuestra investigación con la
de los autores citados, demuestra que los datos se encuentran levemente dispersos con
relación a su desviación típica, varianza. Su coeficiente de variación (CV) en cuando a
leucocitos es 51 porciento, linfocitos 61 porciento, monocitos 94 porciento y granulocitos
44porciento, están elevados puede deberse a factores externos (estrés, miedo) que involucró el
estudio de estos parámetros.
En la serie roja el recuento de los glóbulos rojos (RBC) se obtuvo un valor de (5.66-
8.59 x1012
/l) estoy de acuerdo con lo obtenido por (Blood Studdert, 1988, pp. 1164, 1165)
indica valores de: (5-10 x1012
/l) para RBC.
El Hematocrito (HCT) con un valor de (21.25-36.95 porciento) concuerdo con lo
obtenido por (Dirksen, Günder, y Stöber, 2005, p. 192) nos da valores de (28-39 porciento)
para HCT.
El volumen corpuscular medio (MVC) se obtuvo es de (34.50-46.78 fL), yo concierto
con el valor de (Nuñez y Bouda, 2007, p. 227), 40-60 fL.
El valor calculado en esta investigación correspondiente a la hemoglobina en su límite
inferior y superior es (11,23-17.11 g/dl) discrepando con (Blood y Studdert, 1988, pp. 1164,
1165) es de (8-15 g/dl) para hemoglobina y con respecto a la concentración de hemoglobina
corpuscular media (MCHC) se obtuvo (436.04-533.64 g/l) discrepando con (Blood 1
Studdert, 1988, pp. 1164, 1165) con un valor de (300-360g/dl), y la hemoglobina corpuscular
76
media (MCH) con recuento de (17,83-21.89 Pg) no estoy de acuerdo con lo obtenido por
(Blood y Studdert, 1988, pp. 1164, 1165) consiguió (11-17 Pg).
Estos parámetros elevados dentro de la serie roja, se debe a las unidades
experimentales utilizadas para esta investigación se encontraban ubicados en explotaciones
ganaderas a una altitud de 2500 a 3000 m.s.n.m, en donde nuestro paciente no incorpora el
oxígeno correspondiente, produciendo una hipoxia fisiológica debido a que mayor altura
menor presión del oxígeno atmosférico y los pulmones no podrán incorporar el oxígeno hacia
el organismo esto a su vez produce un estímulo de eritropoyesis desencadenada por la
eritropoyetina producida en el riñón pero para la liberación de la misma depende de un
estímulo producido por el cobalto que en el organismo ocasiona un estado local anóxico en el
riñón, que permite la liberación de eritropoyetina, desencadenando un aumento de la
producción celular, que se manifestará con el incremento de los componentes de la serie roja,
Hemoglobina, MCHC, MCH esto se ratifica (Garzón, García , y Pérez, 2016, p. 96):“En
bovinos se demostró que los animales que viven a mayor altitud tienen los glóbulos rojos de
mayor talla y tuvieron mayores niveles de hemoglobina, hematocrito, eritrocitos, VCM, HCM
y CHCM”.
El resultado obtenido en cuanto a plaquetas en la presente investigación muestra una
distribución de datos con un límite inferior y superior de (58-5283 x109/l), presentando un
rango muy amplio, discrepando con (Nuñez y Bouda, 2007) da un valor de (100-800 x109/l).
De acuerdo al resultado obtenido en la investigación realizada a una altitud de (2500 a 3000
m.s.n.m), presenta una trombocitosis de carácter fisiológico, debido al estrés en la hora de la
extracción de la muestra y porque estos pacientes de estudio pasaban en constante actividad
física, siendo animales de trabajo (yuntas) o se encontraban sueltos en corrales, por lo que
estos datos obtenidos nos hace referencia a una trombocitosis fisiológica, corrobora por
(Cremaschi, 2016, p. 15) como menciona (Jones y Allison 2007) un aumento en el número de
77
plaquetas o trombocitosis es generalmente secundario (trombocitosis reactiva) y se puede
presentar con el ejercicio, stress o condiciones inflamatorias. En rumiantes una elevación en el
conteo de las plaquetas puede producirse a causa de un recuento alto de glóbulos rojos
pequeños por parte de los analizadores automáticos.
En este parámetro el valor de su desviación típica (1270.09), varianza nos señala que
existe una heterogeneidad en los datos con relación a su media y al analizar su CV (1.05
porciento) este se encuentra elevado debido a ciertos factores externos (altitud, estrés,)
involucraron su medición.
Los resultados obtenidos en la química sanguínea se observó que FA con un límite
inferior y superior de (1.38-184.32 UI/l) estoy de acuerdo con lo obtenido por (Nuñez y
Bouda, 2007) <227 UI/l, es una enzima que se encuentra presente niveles altos en animales
jóvenes o recién nacidos siendo un enzima que actúa en la línea de crecimiento, esta enzima
no se ve afectada por condiciones ambientales en las que se encuentran nuestras unidades
experimentales así se encuentra dentro de las parámetros de referencia
El parámetro obtenido en esta investigación para GGT es de (0.18-232,71 UI/l)
indicando un rango muy amplio, en desacuerdo con (Nuñez y Bouda, 2007) que obtuvo un
valor de <29 UI/l, esto se debe al desgaste del músculo, por el trabajo al que son sometidos
(yuntas) o posibles parásitos. Esto corroboro con lo indicado por (Idme Hañari, 2015, p. 46)
cómo se citó en Doxey (1987) y Gilverto (1993) indica que los valores de GGT se elevan
intensamente en casos de obstrucción de los conductos biliares por fibrosis o parásitos, lo que
se debe a un mecanismo de inducción enzimática a nivel microsomal.
(Idme Hañari, 2015, p. 46) como se citó en (Leguia 1988) manifiesta que estas
diferencias se deben a los cambios en el nivel de proteínas séricas por efecto de mayor o
menor infección por distomatosis que produce lesiones tisulares. (…). Manifiesta que los
78
animales afectados con distomatosis están anémicos y tienen bajos valores de proteínas
séricas con modificaciones en la composición corporal y metabolismo energético,
consecuentemente, hay aumento de la GGT.
Al fijarnos y analizar su desviación típica (40.69), varianza nos indica que en estos
analitos los datos se encuentran dispersos a lo largo de la media indicando una heterogeneidad
de los mismos, su CV (109 porciento) se encuentra elevado el cual nos indica que la medición
de estos analitos estuvo afectada por algún factor externo (manipulación del paciente,
sujeción, altitud) ya sea en la toma o análisis de la muestra.
En la presente investigación que se llevó a cabo en animales que pertenecen a una
altitud de 2500 a 3000 msnm, se obtuvo datos de AST con un límite inferior y superior de
(62.59-135,52 UI/l) leve mente incrementado, discrepando con los datos indicados por
(Nuñez & Bouda, 2007) el valor obtenido es de (<120 UI/l).
(Idme Hañari, 2015, p. 25), como menciona (Braunwald 2001) y (Balcells 2001) la
AST se encuentra principalmente presente en grandes cantidades en el corazón, hígado,
músculo esquelético y riñones. Cuando se lesionan las células que contienen la AST o se
altera la permeabilidad de la membrana celular se libera al plasma junto con otras enzimas
incrementando su concentración sérica. Mientras mayor sea la concentración intracelular de la
AST, más alta y más rápida sea la elevación en el suero con el daño celular.
(Idme Hañari, 2015, pág. 25) cómo se citó en (Balcells 2001) y (Wilson 2008) se
encuentran cantidades elevadas de AST en suero en casos de infarto agudo de miocardio,
hepatopatía aguda, miopatías, por el empleo de determinados fármacos y en cualquier
enfermedad o trastorno en el cuál resulten seriamente dañadas las células. Valores muy altos
de AST (>500 UI/L) son sugerentes de hepatitis u otra clase de necrosis hepato celular, pero
también tumores necróticos grandes, necrosis o hipoxia, falla congestiva y shock.
79
Para la enzima de ALT el resultado es de (23.06-46.53 UI/L) se encuentra elevada
presentando un rango amplio, discrepando con los datos obtenidos en la literatura de
(Dirksen, Günder, y Stöber, 2005) es de (20 UI/L), esto se debe a que los pacientes en estudio
tienen algún desgaste muscular por ser animales de trabajo (yuntas) y disputas entre ellos
debido a que se encontraban sueltos en corrales y ser animales enteros, esto se corrobora con
lo que indica (Idme Hañari, 2015, p. 25) como se citó en: (Burtis 2008) y (Balcells 2001). La
ALT en una enzima citoplasmática hepatocelular, con gran concentración en el hígado y en
menor medida en los riñones, corazón y músculo, por eso un aumento sérico de ALT es más
específico de lesión hepática que la AST. La enzima es exclusivamente citosólica. (…). En
mucha menor porción, se encuentra actividad de ALT en músculo esquelético corazón, riñón,
páncreas y eritrocitos (en orden decreciente). Cuando hay una lesión de estos órganos la ALT
es liberada a la sangre y aparece elevada en los análisis. (…) ALT, es una enzima que en
bovinos que no es relevante su estudio, el cambio elevado nos podría dar como resultado un
daño hepático.
“Esto no quiere decir que todos los animales tengan un daño en el hígado,
simplemente este resultado también podría estar alterado debido a un manejo erróneo de los
animales al momento de realizar las pruebas de laboratorio” (Rosero y Holguín, 2018, p. 32).
“La actividad de la ALT hepática es muy baja en caballos, rumiantes, cerdos y aves.
Probablemente, el aumento de la actividad de ALT sérica en estas especies se deba a daño
muscular”. (Lamiter, Mahaffey, y Prasse, 2005, p. 240).
En cuanto a glucosa, el valor obtenido en la investigación corresponde a un límite
inferior y superior de (57.72-152.95 mg/dl) y con una media de (102.98 mg/dl) discrepando
con la literatura descrita por (Blood y Studdert, 1988) indica valores de (35-55 mg/dl). Este
aumento de la glucosa es producido por el estrés, miedo, que a su vez libera catecolaminas, en
80
el momento de la extracción de la muestra de sangre, esto se ratifica con lo que se menciona a
continuación: “La hiperglicemia aparece generalmente en el curso de reacciones de estrés
(parto, transportes, medidas de sujeción) luego de la infusión de soluciones de glucosa o grave
acidosis láctica del contenido ruminal” (Wilhelm, 1985).
(Scaglione, 2006, pág. 51) cómo se menciona en (Swenson y Reece, 1999): en
bovinos, debe tenerse en cuenta las particularidades del metabolismo de los hidratos de
carbono, debido a que los carbohidratos precursores de glucosa ingeridos con la dieta, son
utilizados por microorganismos ruminoreticulares, convirtiéndolos primeramente en ácidos
grasos de cadena corta. Después de que tales ácidos son absorbidos y llegan al hígado, se
sintetiza glucosa por neoglucogénesis (NG) para pasar a la sangre como glucosa, que es
utilizada en los tejidos o acumulada en forma de glucógeno.
El resultado obtenido de Proteína Total en su límite inferior y superior es de (3.8-9.00
g/dl) y su media es (6.40 g/dl) encontrándose dentro de los parámetros referenciales
establecido por la literatura de (Blood y Studdert, 1988) de (5.7-8.1g/dl), pero el rango
obtenidos en esta investigación es más amplio con respecto a lo indicado por el autor ya
mencionado. Esto resultado se obtuvo en animales que se encontraban a una altitud de 2500 a
3000 m.s.n.m. Los valor obtenido se dan por un deshidratación que pueden sufrir los animales
por ser de trabajo, y desde el punto de vista productivo los machos no reciben los cuidados
que una hembra productora, esto se corrobora con lo indicado por (Scaglione, 2006, pp. 56-
57) como se citó en (García Sacristán, 1995) el incremento en las proteínas totales puede
deberse a la deshidratación, la cual presenta una hemoconcentración por vómitos o diarreas,
también por un aumento en el nivel de globulina cuando no existe deshidratación, como en
enfermedades hepáticas avanzadas (cirrosis), infecciones crónicas y en algunos casos de
neoplasias. Este estudio se realizó a una altitud de 94 m.s.n.m.
81
En esta investigación los datos obtenidos de límite inferior y superior en cuanto
albumina es de (0.34-2.56 g/dl) y globulina con (2.55-7.75g/dl) en desacuerdo con los datos
indicados por (Nuñes y Bouda, 2007) 2.8-4.0 g/dl para albúmina y datos de (2.6-4.5 g/dl) para
globulina.
Estos resultado son el reflejo de que estos animales no tenían un buena condición
corporal, ganancia de masa muscular bajo, pequeños debido a su alimentación que estaba
conformado por forraje que no satisfacía las necesidades nutriciones de los animales, estos
factores influyen en los resultados obtenidos, a su vez estos animales presentan estas
características porque no son considerados animales de alta producción por ser una raza
lechera y no de carne, esto se ratifica con lo indicado por; (Pari Manzano, 2015, p. 10) como
se citó en: (Parker y Blowey, 1976): ”La concentración de proteínas plasmáticas totales y
fraccionadas (albúmina, y globulinas) representan un método de diagnóstico que refleja
situaciones patológicas en múltiples sistemas orgánicos como: deficiencia proteica severa,
malnutrición, mala absorción, enfermedades hepáticas y renales entre otras”.
En urea se obtuvo en su límite inferior y superior (0.09-3.86 mg/dl), discrepando con
el valor descrito por (Blood & Studdert, 1988) es (2.1-9.6 mmol/l) transformado a mg/dl nos
da (12.61-57.66 mg/dl) encontrándose por debajo de los daos de referencia. Este resultado se
debe a que estos animales se alimentaban solo de forraje indicando una pobre alimentación en
cuanto a nutrientes requerido por el animal en su dieta por lo tanto hay baja ingesta de
proteína en su dieta, esto se corrobora con lo indicado por (Scaglione, 2006, p. 58) “La
concentración de urea en sangre y en otros fluidos orgánicos varía según la proteína
consumida, y la relación proteína consumida/energía metabolizada de la dieta” (Sommer,
1975; Olther y Wiktorsson, 1983; Stogdale y Gundin 1983).
82
(Scaglione, 2006, p. 60) cómo se citó en (Wilhelm, 1985): “Bajos niveles sanguíneos
(junto a la hemoglobina y albúmina) indican un pobre aporte proteico en la dieta. Su valor
puede encontrase disminuido en insuficiencia hepática crónica”.
La creatinina en su límite inferiros y superior es de (0-0.64 mg/dl), valores obtenidos
en animales que se encuentran a una altitud de 2500 a 3000 m.s.n.m. Discrepo con lo indicado
por (Blood y Studdert, 1988) que es de (1.2-2.7 mg/dl).
Los datos de esta investigación nos indica que su rango está por debajo de los valores
de referencia, esto debido a baja condición corporal que presentaba el paciente por una
alimentación pobre en nutrientes lo cual se ve reflejado en baja ganancia de masa muscular,
esto corrobora con lo que se cita, (…). El bajo valor de creatinina esté asociado con la
condición corporal, porque la movilización de tejido adiposo y muscular reflejada en los
niveles bajos de reservas pudo ocasionar la caída de la creatinina por aumento de la tasa de
excreción durante el período de pérdida de condición corporal. (Quinteros Pozo, Vargas
Burgos, Barbona, y Marini, 2017, p. 126). También se corrobora con lo mencionado por
(Cremaschi, 2016, p. 21) cómo se citó en (Russell y Roussel, 2007). La concentración de
Creatinina se ve mínimamente afectada por la dieta y el catabolismo proteico, pero puede
verse afectada por el nivel de masa muscular del animal. (… ). Su concentración puede ser
demasiado baja en animales con baja masa muscular. Al no verse afectada su concentración
por factores externos, es la prueba de elección para evaluar la función renal en rumiantes.
En el caso de la CK-NAC el valor obtenido tanto para el límite inferior y límite
superior es de: (47.48-625.55 UI/l) con una media de (231.93 UI/l) discrepo con el valor
obtenido por (Nuñez y Bouda, 2007) <300 UI/l por lo que se observa un rango más amplio,
se debe por el desgaste muscular, esfuerzo del musculo cardiaco debido a los niveles altos
sobre el mar (2500-3000 msnm) en los que se encuentran nuestros pacientes, por lo tanto hay
83
un mayor esfuerzo cardiaco para bombear más sangre o con oxígeno a todo el organismo ,
además que son animales utilizados como yuntas, para el arado de la tierra, lo mencionado se
confirma con lo indicado por (Carda Aparici, 1960, pp. 48, 49). El más alto nivel de la
concentración de Creatine Kinasa (CK) se detecta en músculo esquelético, seguido por el
tejido cerebral y miocardio. (…). Un aumento de la actividad del CK en el suero, solamente
se puede esperar cuando existe daño al músculo esquelético y cardíaco.
Al revisar su desviación típica (138.36), varianza podemos decir que los datos se
encuentran dispersos con relación a su media, su CV (59/100) se encuentra elevado debido a
motivos externos (altitud atmosférica, ejercicio, excitación del animal durante la sujeción del
mismo), que influye en el valor obtenido de este analito.
Para bilirrubina total valores tanto de límite inferior y superior es de (0.02-1.6mg/dl),
bilirrubina directa (0-0.05 mg/dl) , concertando con los valores obtenidos por (Blood y
Studdert, 1988) indica que bilirrubina total tiene un valor de (0-1.9 mg/dl), y bilirrubina
directe de (0-0.4 mg/dl), mientras que el valor obtenido en la presente investigación de
bilirrubina indirecta es (0.03-2.14 mg/dl), discrepando con los dato obtenido por (Dirksen,
Günder, y Stöber, 2005) 0.2 mg/dl. Estos valores se obtuvieron en animales que se
encontraban a una altitud de 2500 a 3000 msnm.
De acuerdo a estos resultado de bilirrubina total (BT) y bilirrubina directa (BD) se
encuentran dentro del rango referencial, mientras que la bilirrubina indirecta (BI) su rango es
más amplio con respecto a la bibliografía, debido que la extracción de la muestra se realizó en
horas de la mañana (5-6 am) el paciente se encontraba en ayunas y presentaba una condición
corporal baja, esto se corrobora con lo indicado por (Cremaschi, 2016, pág. 19) cómo se citó
en (Allison, 2012). Cuando el ganado no presenta hemólisis o una enfermedad hepática
84
severa, la hiperbilirrubinemia se asocia con estasis ruminal y anorexia. Es normal que en el
ganado bovino en ayunas se desarrolle hiperbilirrubinemia leve (< 1,4 mg/dL).
Si analizamos su varianza nos podemos dar cuenta que no hay dispersión en los datos,
su CV de BT es (72 porciento), BD (77 porciento) y BI (78 porciento) se encuentra elevado
debido a factores externos (ayuno, altitud, ejercicio).
En la presente investigación se obtuvo amilasa con valores tanto para límite inferior y
superior de (2.49-211.83 UI/L), discrepando con los datos referenciales descritos por (Blood y
Studdert, 1988) de (41-94 UI/L). (Scaglione, 2006, p. 66) como se citó (Meyer 2000) el
intervalo de referencia para el valor de amilasa plasmática en bovinos adultos se encuentra
entre 12- 107 U/l, estos valores se obtuvieron en animales que se encontraban a una altitud de
2500 a 3000 m.s.n.m.
(Cremaschi, 2016, p. 19) cómo se citó en (Meuten, 2012) el aumento de la actividad
de la Amilasa Sérica rara vez se ha reportado en bovinos. Aumentos de la misma pueden ser
causados por lesiones en la mucosa intestinal.
Tomamos en cuenta su desviación típica (49.78) y varianza nos indica que los datos
están mayormente dispersos alrededor de la media, su CV de 74 porciento el cual se encuentra
elevado nos señala que los datos son heterogéneos, debido a factores externos (altitud,
alimentación).
El valoro obtenido de colesterol es de (74,48-155.60 mg/dl) y triglicéridos (4.93-83-73
mg/dl), concuerdo con los valores de referencia obtenidos por, (Blood y Studdert, 1988) es de
(39-177 mg/dl) para colesterol, mientras que (Roa Vega, Ladino Romero, Herandez Martinez,
2017, p. 147) nos indica que el valor para triglicéridos es (0-140mg/dl).
La lipasa y ácido úrico no se encontró datos de referencia por lo tanto los valores
obtenidos en esta investigación servirán de referencia.
85
4. CONCLUCIONES Y RECOMENDACIONES
5.1. Conclusiones.
La serie blanca (leucocitos, linfocitos, monocitos y granulocitos) se encuentran
elevados, presentando rangos más amplios con respecto a la descrita en la literatura, debido a
una leucocitosis fisiológica, que se produce por el estrés que sufre el animal en el momento de
la manipulación para la extracción de la muestra, al igual que influye la excitación del mismo
producido por la adrenalina, actividad muscular, balance hídrico, temperatura ambiente.
En la serie roja los valores obtenidos con respecto a Hemoglobina, MCHC, MCH,
se encuentran por encima de los descritos en la literatura, se debe a que esta investigación se
realizó a altitud de 2500 a 3000 m.s.n.m, produciendo una hipoxia fisiológica debido a mayor
altura menor presión del oxígenos atmosférico por lo tanto los pulmones no podrán incorporar
el oxígeno hacia el organismo esto su vez produce un estímulo de eritropoyesis
desencadenada por la eritropoyetina producida en el riñón, pero para la liberación de la
misma depende de un estímulo producido por el cobalto que en el organismo ocasiona un
estado local anóxico en el riñón, que permite la liberación de eritropoyetina, desencadenando
un aumento de la producción celular, que se manifestará con el incremento de los
componentes de la serie roja, Hemoglobina, MCHC, MCH
En cuanto a plaquetas se obtuvo un valor con un rango muy amplio con respecto a los
datos referenciales descritos por los diferentes autores en la literatura, observando una
evidente trombocitos pero de carácter fisiológico, resultado del estrés en el momento de la
extracción de la muestra y por qué estos pacientes de estudio pasaban en constante ejercicio,
eran animales de trabajo como yuntas o se encontraban sueltos en corrales, por lo que estos
datos obtenidos nos hace referencia a una trombocitosis fisiológica.
86
En la química sanguínea ciertos parámetros se encontraron elevados con respecto a la
literatura descrita por distintos autores. El valor de GGT, AST, ALT y CK-NAC, presentan un
rango amplio a comparación con el de la literatura debido al desgaste muscular en
consecuencia de ser animales de trabajo y por disputas entre los mismos ocasionadas por ser
animales enteros.
Los valores de la glucosa con referencia a la literatura se encuentran elevado, este
aumento de la glucosa es producido por el estrés, miedo, que a su vez libera catecolaminas, en
el momento de la extracción de la muestra de sangre.
Las proteínas totales como la globulina están elevados levemente en la presente
investigación esto es debido a la deshidratación que presentaban estos animales mientras que
la albúmina presentaba un rango más reducido, esto es debido a la baja condición corporal del
animal debido a que su alimentación depende solo del forraje que a su vez carece de
componentes nutricionales requeridos por el animal.
En cuanto a la urea se obtuvo un valor inferior al descrito en la literatura, es resultado
se debe a la pobre alimentación nutricional que tienen esto animales especialmente la baja
ingesta de proteína en su dieta debido a que su fuente de alimento es únicamente el forraje
indicando un déficit de nutrientes en su dieta diaria por lo que la concentración de urea en
sangre y en otros fluidos orgánicos varía según la proteína consumida, y la relación
proteína/energía metabolizada de la dieta esto es debido que estos animales consumen
únicamente forraje.
El valor obtenido de la creatinina está por debajo de los valores de referencia, debido a
baja condición corporal que presentaba, por una alimentación que se basa solo en forraje
pobre en nutrientes lo cual se ve reflejado en baja ganancia de masa muscular.
87
La bilirrubina indirecta su rango es más amplio con respecto a la bibliografía, debido a
que la extracción de la muestra se realizaba a tempranas horas de la mañana (5-6 de la
mañana), presentaba una condición corporal baja con lo que se produce una
hiperbilirrubinemia leve.
Los valores obtenidos en esta investigación con respecto a hemograma y química
sanguínea en bovinos machos raza Holstein aparentemente sanos difieren con respecto a los
descritos en la literatura por lo tanto estos resultados de referencia obtenidos en este trabajo
investigativo se deben utilizar en animales que se encuentren exclusivamente a una altura de
2500 a 3000 msnm.
5.2 Recomendaciones.
Se recomienda que el animal se encuentre en ayuno 12 horas.
Los parámetros obtenidos en la presente investigación se deben utilizar en todos los
laboratorios y clínicas veterinarias, como valores de referencia en regiones situadas a una
altitud de 2500-3000 msnm, para poder dar diagnósticos más confiables a nuestros pacientes,
bovinos.
Ser recomienda extender la presente investigación, realizando estudios en más especies
como, aves, cerdos, equinos, ovejas, cabras, incorporando más analitos a estudiar tales como,
sorbitol deshidrogenasa (SD), glutamato deshidrogenasa (GD), y medir el cortisol.
El clínico durante el procesamiento de las muestras en el laboratorio debe utilizar la
protección adecuada para así mantener una inocuidad de las muestras y obtener resultados
totalmente confiables al mismo tiempo llevar un registro de los reactivos utilizados y su
tiempo de caducidad, el equipo debe calibrarse periódicamente ya que esto puede influir en
los resultados. (Alvarez, 2004)
88
6. BIBLIOGRAFÍA
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7. ANEXOS
7.1 Ficha clínica.
FICHA CLÍNICA DEL PACIENTE
ANIMAL N°: ESPECIE: FECHA: PROCEDENCIA: DATOS DEL ANIMAL DATOS DEL PROPIETARIO NOMBRE: ARETE: FECHA NACIMIENTO: NOMBRE: SEXO: TELÉFONO: EDAD: DIRECCIÓN: RAZA: MAIL: TIPO DE ALIMENTACIÓN: Forraje __ Concentrado __ Mixto __ CONSTANTES FISIOLÓGICAS
ESTADO DE DESARROLLO: Ternero/a __ Torete/Novilla __ Adulto __ FC: T°: MUCOSAS: ESTADO REPRODUCTIVO: Gestante __ Lactante __ Seca __ FR: C.C TURGENCIA DE LA PIEL:
HEMOGRAMA QUÍMICA SANGUÍNEA
ANALITO RESULTADOS VALOR REFERENCIAL ANALITO RESULTADOS VALOR REFERENCIAL
WBC: 4 - 12 x 109 / L FA: <237 UI/L
LYM#: 2.5-7.5 x 109 / L GGT: <29 UI/L
MID#: 0.0 - 0.8 x 109 / L AST: < 120 UI/L
GRA#: 0.5 – 10.20 x 109 / L ALT: 14-38 UI/L
LYM % 40 - 70 % GLUCOSA: 46.84-88.28.mg/dl
MID% 2 – 8 % PROTEÍNAS TOTALES: 5.95.-8 g/dl
GRA% 15 - 45 % UREA: 15.02-39.65mg/dl
RBC: 5.0 - 10.0 x 1012 / L ÁCIDO URICO: mg/dl
HGB: 8 - 15 g/dL AMILASA: 12-107 UI/L
HCT: 24 - 46 % LIPASA: UI/L
MCV: 40 - 60 fL CREATININA: < 1.36 mg/dl
MCH: 11-17 pg CK-NAC: < 300UI/L
MCHC: 300 - 360 g/L BILIRUBINA TOTAL: 0.0- 0.68 mg/dl
PLT: 100 - 800 x 109 / L BILIRUBINA DIRECTA: 0.0- 04 mg/dl
BILIRUBINA INDIRECTA: 0.0-0.2mg/dl
OBSERVACIONES: ALBÚMINA: 2.77 – 4.04 g/dl
GLOBULINA: 2.62 – 4.52 g/dl
COLESTEROL: 39-177 mg/dl
TRIGLICÉRIDOS: 0-140 mg/dl
**
94
7.2 Datos de hemograma en bovinos machos Holstein.
Nº WBC LYM# MID# GRA# LYM% MID% GRA% RBC HGB MCHC MCH MCV HCT PLT
1 37.1 21.3 1.8 14 60.2 5.4 34.4 5.99 12.1 583.7 20.2 34,6 20.7 2130
2 10.6 4.8 O.7 5.1 44.8 7 48.2 5.76 10.7 515.3 18.6 36.1 20.8 1328
3 13.5 8.1 0.7 4.7 59.6 5.1 35.3 4.89 9.3 527.2 19 36.1 17.6 3291
4 43 26.5 2.6 13.9 64.5 6.8 28.7 6.41 12.8 576.4 20 34.6 24.2 5283
5 81 54.8 7.3 18.9 51.8 11 17.2 6.88 14.1 458 20.5 44.8 30.8 243
6 42.6 29.4 2.6 10.6 71.6 6.9 21.5 6.97 14.1 481.8 20.2 42 29.3 166
7 74.5 48.7 6.4 19.4 69.5 10.4 20.1 7.14 13.5 423.9 18.9 36.1 25.8 432
8 42.6 25.5 2.2 14.9 6.8 5.8 31.4 5.29 14.3 787.3 27 34.4 18.2 7623
9 36.3 21.2 1.7 13.4 6.1 5.3 33.6 4.74 11.5 727.9 24.3 33.4 15.8 6672
10 33.3 27.2 0.6 5.5 83.2 1.9 14.9 6.69 12.8 532.5 19.1 35.9 24 4723
11 102.8 63.7 9.3 30.2 66.8 11.5 21.7 8.57 15.8 461.8 18.4 39.9 34.2 2725
12 38.5 24.6 1.1 12.8 66.6 3.3 30.1 7.26 13.8 503.9 19 37.8 27.4 3399
13 55.3 40.1 0.5 14.7 75.4 1 23.6 6.83 13.3 501.4 19.5 38.9 26.5 2735
**
95
14 79.6 63.3 0.7 15.6 82.4 1 16.6 6.76 13 487.6 19.2 39.5 26.7 280
15 53.9 42.7 0.7 10.5 81.5 1.5 17 7.07 15.2 471.3 21.5 45.6 32.3 355
16 21.8 7.1 0.5 14.2 34.4 2.4 63.2 7.41 14.1 469.8 19 40.5 30 2170
17 30.4 20.2 0.6 9.6 68.5 2.1 39.4 6.65 13.8 446.6 20.8 46.5 30.9 772
18 17.9 9.7 0.7 7.5 54.3 4 41.7 6.66 12 473.9 18 38 25.3 323
19 45.9 23.7 2.1 20.1 54.9 5.2 39.9 7.5 14.6 482.2 19.6 40.6 30.5 371
20 47.4 28.2 2.7 16.5 62.6 6.5 30.9 6.86 13.2 507.9 19.2 37.9 26 3326
21 41.7 26 2.4 13.3 65 6.4 28.6 13.96 19.6 316.4 14 44.4 62 336
22 36.7 4.7 2.2 9.8 69.7 6.7 23.6 20.79 8.8 86.6 4.2 48.9 101.7 1002
23 11.8 6.8 0.6 4.4 57.3 4.9 37.8 6.37 13.1 526.5 20.6 39.1 24.9 2261
24 13 2.7 0.9 9.4 20.8 6.8 72.4 6.92 13.1 493.2 18.9 38.4 26.6 327
25 23.8 18.5 0.6 4.7 79.9 2.6 18.5 8.32 16.2 494.9 19.5 39.3 32.7 281
26 16.5 11.6 0.5 4.4 70.5 3.3 26.2 6.49 12.9 499.1 19.9 39.8 25.9 423
27 20 13.3 0.8 5.9 66.5 4.2 29.3 8.17 17.1 519.5 20.9 40.3 32.9 331
28 13 6.5 1 5.5 49.8 7.8 42.4 7.51 14 462.8 18.6 40.3 30.3 307
29 14.1 7.4 0.7 6 52.3 4.8 42.9 8.24 15.3 454.2 18.6 40.9 33.7 272
**
96
30 11.1 3.9 0.8 6.4 35 7.5 57.5 3.97 12.6 635.8 31.5 49.5 19.7 315
31 8.8 5.4 0.5 2.9 60.5 5.7 33.8 8.37 17.1 478.1 20.4 42.7 35.8 267
32 11.1 8.3 0.6 2.2 74.3 5.4 20.3 5.9 12.1 535.8 20.5 38.3 22.6 334
33 7 2.6 0.5 3.9 37.3 6.7 56 5.64 11.7 526.2 28.8 39.4 22.2 385
34 15.3 7.5 0.8 7 39.1 5.1 45.8 6 12.7 552.8 19.9 36 23 4155
35 56.2 44.6 0.9 10.7 81.7 1.9 16.4 8.01 16.7 596 20.9 35 28 6184
36 63.6 54.8 0.5 8.3 87.9 1 11.1 6.87 14.7 500.6 21.4 42.7 29.4 1262
37 56.8 49.2 0.6 7 88.2 1.3 10.5 7.09 15.8 466.5 22.3 47.8 33.9 58
38 78.9 70.9 0.5 7.5 91.5 0.8 7.7 6.84 14 514.4 20.5 39.8 27.2 2137
39 74.6 52.3 6.5 15.8 73.8 10.6 15.6 7.24 15.9 495.7 22 44.3 32.1 323
40 51.4 34.3 3.6 13.5 69.8 8 22.2 7.47 14.7 4.94 19.7 39.8 29.7 2456
41 83.7 73.7 0.5 9.5 89.9 0.8 9.3 7.19 17.2 492.6 23.8 48.3 34.7 249
42 90.4 78.1 0.8 11.15 88.6 1.2 10.2 8.35 17.4 503.5 20.8 41.4 34.6 211
43 59.9 50 0.8 9.1 85.4 1.6 13 8.53 16 439.9 18.8 42.7 36.4 103
44 50.8 19.1 1.8 29.9 41.1 4.2 54.7 7.26 14.7 509.2 20.3 39.8 28.9 538
45 82.4 56.22 1.6 24.6 72.3 2.5 25.2 6.55 13.6 509.8 20.8 40.7 26.7 1668
**
97
46 58.5 49.2 0.7 8.6 86 1.5 12.5 7.61 14.9 483.6 19.3 40 30.8 847
47 37.5 30 0.8 6.7 81.5 2.4 16.1 7.82 15 406.4 19.2 37.9 29.6 229
48 56.4 48.5 0.6 7.3 87.7 1.3 11 7.46 15.9 496 21.3 43 32.1 376
49 86.9 63.7 0.8 22.4 77.1 1.2 21.7 7.73 15.2 520.2 19.7 37.8 29.2 3374
50 43.9 22.5 0.6 20.8 54.6 1.15 43.9 8.03 15.6 476.3 19.4 40.80 32.8 2433
51 94.3 57.1 8 29.2 65.7 10..8 23.6 7.64 15.4 479.6 20.4 42.6 32.1 319
52 63 37.8 3.7 21.5 64 7.1 28.9 7.98 15.7 477.4 19 41.2 32.9 381
53 76.4 43.6 5.4 27.4 61.8 8.6 29.6 7.8 15.1 480.9 19.4 40.3 31.4 400
54 60.1 38.6 4 17.5 67.8 7.9 24.3 6.9 13.5 476.7 19.4 40.8 28.1 141
55 34.9 22.6 0.7 11.6 67.3 2.2 30.5 6.49 13.7 450.7 21.1 46.8 30.4 701
56 23.6 6.7 0.6 16.3 30.1 2.6 67.3 7.35 13.7 471.5 18.6 39.5 29.1 2395
57 51.6 33.4 3.5 14.7 68.1 7.8 24.1 7.22 14.9 444.7 20.6 46.4 33.5 800
58 51.2 37.7 0.6 12.9 76.3 1.3 22.4 6.86 13.5 484.3 19.7 40.7 27.9 340
59 33 19.2 1 12.8 60.7 3.4 35.9 6.42 12.2 452.1 19 42.1 27 1434
60 36.4 19.3 0.8 16.3 55.9 2.6 41.5 7.12 14.2 466.4 19.9 42.8 30.4 480
61 78 52.1 6.8 19.1 70.9 10.6 18.5 6.51 14.5 497.9 22.3 44.7 29.1 405
**
98
62 76.5 52.5 6.7 17.3 72.5 10.6 16.9 6.95 14.2 477.2 20.4 42.8 29.8 316
63 25 20 0.5 4.5 81.1 2.3 16.6 6.94 12.5 495.4 180 36.4 25.2 3414
64 61.7 35.2 3.5 23 61.1 6.8 32.1 5.48 11.7 472.5 21.4 45.2 24.8 248
65 55.6 46.8 0.5 8.3 86 1 13 5.63 11.7 517.6 20.8 40.1 22.6 1967
66 53.5 36.2 3.8 13.5 70.8 8.3 20.9 8.06 16.1 505.3 20 39.6 31.9 3602
67 25.1 11.3 0.9 12.9 47.1 3.7 49.2 5.87 12.3 474.5 21 44.2 25.9 1109
68 35 25.3 0.7 9 74.3 2.2 23.5 7.84 15 490 19.1 39 30.6 3402
69 92.5 76.2 0.8 15.5 85.2 1.2 13.6 5.96 13.1 502.5 22 43.7 26.1 134
70 65.7 51.7 0.6 13.4 81.4 1.2 17.4 6.52 14 474.8 21.5 45.2 29.5 228
71 73.6 46.5 5.5 21.6 67.4 9 23.6 7.07 13.5 508.1 19.1 37.6 26.6 3647
72 21 7.4 0.7 12.9 36.9 3.7 59.4 6.66 12.7 471.7 19.1 40.4 26.9 209
73 42.2 25 2.1 15.1 62.2 5.6 32.2 7.51 13.9 488.2 18.5 37.9 28.5 435
74 49.1 31.1 3.2 14.8 66.6 7.4 26 7.75 15.7 485.5 20.3 41.7 32.3 458
75 23.2 11 0.7 11.5 49.1 3.4 47.5 6.67 12.6 475.1 18.9 39.8 26.5 428
76 22.6 5.6 0.6 16.4 26.3 2.6 71.1 6.66 13 463.2 19.5 42.2 28.1 148
77 61.3 46.3 0.5 14.5 78.4 1 20.6 6.63 12.7 522 19.2 36.7 24.3 4159
**
99
78 53.6 27.9 2.8 22.9 55.9 6 38.1 6.83 14.6 482.9 21.4 44.3 30.2 1488
79 68.8 41.4 4.6 22.8 64.4 8 27.6 7.55 15.4 480.3 20.3 42.2 31.9 337
80 57 45.7 0.7 10.6 82.4 1.4 16.2 7.66 15.1 491.4 19.7 40.1 30.7 187
81 48.6 38.7 0.5 9.4 81.7 1.3 17 6.42 11.9 481.7 18.6 38.5 24.7 363
82 43.7 25.8 2.5 15.4 62.2 6.5 31.3 7.24 13.4 476.8 18.5 38.8 28.1 2748
83 74.7 47.6 5.8 21.3 67.9 9.5 22.6 6.61 12.6 449.7 19.1 42.4 28 338
84 46.7 30.2 2.7 13.8 67.6 6.6 25.8 7.38 15.2 475.7 20.6 43.3 32 1625
85 30.4 18.2 0.8 11.4 62 2.9 35.1 7.26 13.9 471.6 19.1 40.6 29.5 2424
86 25.3 9.3 0.9 15.1 38.5 3.9 57.6 7.99 14.3 425.1 17.9 42.1 33.6 2546
87 87.8 75 0.5 12.3 87.7 0.7 11.6 8.19 16.7 476.5 20.4 42.8 35 689
88 24 8.2 0.6 15.2 36.2 2.8 61 7.7 14.5 471.1 18.8 40 30.8 2530
89 59.7 51.5 0.5 7.7 87.9 1 11.1 8.37 16.3 453.4 19.5 43 36 350
90 72.9 45.6 5.6 21.7 66.7 9.3 24 7.22 13.5 510.7 18.7 36.6 26.4 1616
91 120.2 110.7 0.6 8.9 93.7 0.7 5.6 9.49 19.8 505.2 20.9 41.3 39.2 452
92 81.1 73.7 0.4 7 92.3 0.6 7.1 7.61 15.4 476 20.3 42.5 32.4 485
93 80.5 70.9 0.8 8.8 89.9 1.2 8.9 8.01 15.4 476.6 19.2 40.3 32.3 2469
**
100
94 67.3 44.8 5 17.5 70.3 8.9 20.8 6.9 13.8 505.5 20 39.6 27.3 153
95 117.8 107.1 1 9.7 92.6 1.1 6.3 7.53 16.2 493.6 21.5 43.6 32.8 396
96 62 50.4 0.5 11.1 83.5 0.9 15.6 7.67 15.5 479.1 20.2 42.2 32.4 307
97 68.9 44.9 5.4 18.6 69.1 9.3 21.6 6.83 13.9 467 20.2 43.3 29.6 335
98 73.7 48.3 5.8 19.6 69.6 9.6 20.8 7.27 14.4 483.6 19.8 41 29.8 579
99 52.6 47.5 0.5 4.6 91.4 1 7.6 7.78 14.8 472.6 19 40.3 31.3 376
100 20.4 8.3 0.9 11.2 42.2 4.6 53.2 7 13 463 18.6 40.1 28.1 435
**
101
7.3 Datos de química sanguínea en machos raza Holstein.
N° FA GGT AST ALT GLU PT UREA AU AMI LIP CR CK -
NAC
BT BD BI ALB GLO CHOL TG
1 298 13.90 111.03 26.68 76.49 13.27 2.73 3.30 63.09 16.31 0.56 223.34 0.67 0.00 0.67 2.65 0.62 157.79 47.29
2 55.56 4.29 11.52 38.36 80.70 5.54 3.07 2.62 59.44 17.14 0.67 197.29 0.23 0.01 0.22 1.74 3.8 174.58 43.35
3 29.17 85.73 106.31 40.04 97.89 5.21 1.28 2.90 85.53 17.41 0.8 132.06 0.86 0.02 0.84 2.47 2.74 153.00 44.33
4 162.5 48.39 121.51 33.12 75.44 6.86 2.22 2.46 13.06 24.43 1.21 140.07 0.52 0.03 0.49 1.23 5.57 76.64 26.60
5 154.17 8.20 119.12 35.92 73.33 7.01 0.51 2.82 323.56 24.39 1.13 437.45 0.86 0.03 0.83 0.9 6.09 110.79 23.65
6 62.5 5.81 110.13 32.62 78.95 5.43 0.77 2.85 96.29 20.90 1.21 328.62 2.09 0.02 2.07 1.10 4.33 107.43 18.72
7 88.89 4.1 123.46 29.88 90.88 7.49 0.6 1.79 66.05 13.94 0.89 214.82 1.04 0.01 1.03 1.29 6.20 92.09 25.62
8 166.67 71.48 63.45 17.89 151.23 5.03 3.58 2.30 2.49 250.69 0.08 336.05 1.76 0.01 1.75 1.24 3.79 110.79 29.56
9 38.89 110.61 77.56 21.85 154.74 3.82 3.15 1.79 89.06 13.93 0.16 141.40 1.66 0.01 1.65 0.93 2.89 118.94 32.51
10 125 5.77 48.46 12.19 191.93 2.94 1.96 2.74 66.92 14.03 0.24 136.74 1.03 0.12 0.91 1.75 1.19 86.81 31.53
11 16.67 8.59 60.21 10.15 101.40 5.14 2.47 1.75 17.61 16.21 0.24 101.74 1.51 0.09 1.42 1.96 3.18 87.29 77.83
12 154.17 1.62 102.91 24.93 110.18 5.80 2.3 3.22 25.24 38.30 0.97 291.87 0.20 0.00 0.20 1.07 4.73 100.72 9.85
**
102
13 308.33 13.28 118.19 40.51 73.68 6.24 3.1 1.93 82.24 45.30 0.57 256.57 1.26 0.02 1.24 0.82 5.42 119.90 5.91
14 94.44 6.81 79.6 32.95 98.25 5.62 2.05 1.95 50.70 24.54 0.32 146.44 1.06 0.01 1.05 1.35 4.37 86.33 4.93
15 91.67 0.60 77.5 34.45 118.6 7.63 3.5 3.34 85.71 24.37 1.29 330.53 0.07 0.04 0.03 1.07 6.56 100.24 21.67
16 27.78 3.78 110.98 41.95 84.91 8.55 3.92 2.42 14.64 34.82 0.56 165.53 0.14 0.02 0.12 1.08 7.47 117.99 24.63
17 98.61 28.95 107.23 31.52 112.63 8.77 3.33 2.98 28.13 17.41 0.48 214.44 0.18 0.01 0.17 1.71 7.06 140.05 23.65
18 22.22 12.01 110.35 39.24 109.12 5.72 6.82 3.02 21.04 13.93 0.32 685.98 0.27 0.01 0.26 1.42 4.3 116.07 26.60
19 109.72 15.66 115.96 42.17 113.68 6.97 2.9 2.66 27.71 17.41 0.41 540.74 0.63 0.02 0.61 0.68 6.29 125.18 14.78
20 318.06 40.70 164.7 41.61 154.74 8.04 2.56 2.70 50.63 13.93 0.32 553.01 0.13 0.07 0.06 0.98 7.06 127.1 17..73
21 143.06 232.71 93.12 35.06 79.65 8.04 2.90 3.26 159.39 143.06 0.08 105.08 0.27 0.04 0.23 0.67 7.37 123.74 27.59
22 40.28 85.63 80.72 36.05 85.96 4.55 3.58 2.38 45.28 43.74 0.08 82.13 0.22 0.02 0.20 0.34 4.21 109.83 34.48
23 33.33 23.24 93.46 35.15 70.88 8.04 3.24 2.30 21.77 24.48 0.16 95.23 0.29 0.03 0.26 1.23 6.81 117.03 33.50
24 65.28 5.86 96.04 37.11 65.26 6.79 1.88 2.38 221.06 20.82 0.16 122.20 0.65 0.00 0.65 1.40 5.39 126.14 33.50
25 66.67 89.52 118.56 43.44 69.47 7.30 2.47 2.11 229.72 21.05 0.24 133.63 0.38 0.01 0.37 1.04 6.26 128.54 15.76
26 102.78 0.47 77.80 37082 56.14 5.72 0.17 2.94 19.23 20.53 0.24 116.89 1.48 0.03 1.45 1.42 4.30 84.89 24.63
27 40.28 11.46 100.83 38.92 77.54 5.8 2.30 2.19 109.29 20.57 0.16 162.78 1.80 0.00 1.80 0.60 5.20 100.72 50.25
28 77.78 26.14 78.40 41.38 80.35 4.29 2.90 2.19 80.23 17.57 0.24 159.54 1.48 0.05 1.43 1.19 3.10 96.88 20.69
**
103
29 87.5 15.05 84.39 36.98 85.26 7.71 2.90 2.19 81.66 17.45 0.24 121.90 3.01 0.01 3.00 1.02 6.69 108.39 169.36
30 111.11 4.34 143.12 31.64 83.51 8.73 3.33 2.54 10.43 20.91 0.32 355.65 3.38 0.05 3.33 1.67 7.06 113.67 29.56
31 12.50 14.21 64.44 37.66 98.25 5.38 1.45 2.62 104.32 27.85 0.16 160.22 0.41 0.01 0.40 0.28 5.10 146.76 41.38
32 166.67 3.50 80.03 31.57 75.79 5.68 0.60 1.91 84.82 27.44 0.16 333.20 0.14 0.00 0.14 0.92 4.76 105.52 52.22
33 48.28 18.87 68.25 28.89 92.98 4.77 0.77 2.07 36.02 28.58 0.16 146.05 0.23 0.01 0.22 1.13 3.64 119.90 43.35
34 276 31.53 48.70 23.98 130.88 5.91 14.5 2.62 21.05 17.41 0.88 51.80 0.68 0.01 0.67 2.26 3.65 81.53 84.73
35 179.17 20.14 110.55 49.27 152.98 6.61 0.51 21.22 5.56 24.37 0.57 329 0.67 0.01 0.66 0.49 6.12 151.08 57.14
36 52.78 44.62 88.43 38.04 75.79 7.67 2.39 11.84 35.18 13.97 0.32 915.19 0.47 0.01 0.46 1.29 6.38 94.96 40.39
37 94.44 94.55 111.65 31.17 100.00 7.52 0.34 17.96 39.92 17.46 0.40 122.38 0.52 0.01 0.51 0.81 6.71 107.43 37.44
38 101.39 19.66 111.59 26.32 89.12 7.38 1.45 18.32 171.37 17.53 0.24 887.72 0.65 0.00 0.65 1.01 6.37 135.25 51.23
39 77.78 36.06 79.56 29.93 94.74 6.09 4.60 16.57 200.30 16.40 1.54 86.17 0.18 0.02 0.16 0.62 5.47 107.91 48.28
40 184.72 35.29 97.73 30.91 87.02 7.12 1.36 2.90 120.99 31.41 0.24 113.20 1.19 0.02 1.17 2.11 5.01 96.40 61.08
41 118.06 8.48 89.02 34.75 85.61 7.16 1.79 2.50 58.40 17.53 0.24 136.29 1.19 0.00 1.19 1.5 5.56 135.73 67.00
42 63.89 20.39 86.23 32.92 90.53 7.49 1.71 2.23 97.47 28.05 0.30 133.42 2.18 0.04 2.14 1.44 6.05 110.79 53.20
43 575.00 121.48 113.62 38.89 32.81 7.71 12.70 3.89 52.72 17.43 0.32 140.01 1.01 0.14 0.87 0.83 6.88 133.81 72.91
44 106.94 49.51 90.32 47.38 95.44 4.07 1.27 1.79 9.31 21.00 0.16 106.73 1.21 0.30 0.91 1.42 2.65 107.43 61.08
**
104
45 108.33 93.98 84.38 28.40 103.16 5.17 8.78 2.42 9.36 17.42 0.00 159.03 0.23 0.18 0.05 0.74 4.09 126.62 62.07
46 52.78 132.46 156.32 25.61 61.40 7.74 2.13 2.03 53.47 17.47 0.24 123.99 0.11 0.02 0.09 1.54 6.10 82.97 66.01
47 48.61 71.13 52.98 19.70 122.11 7.96 0.17 3.74 43.95 14.03 0.36 64.19 0.76 0.60 0.16 0.61 7.35 33.38 74.88
48 289.22 76.40 82.70 31.71 107.72 6.46 1.28 2.86 211.83 24.16 0.56 423.04 0.05 0.02 0.03 1.53 4.92 101.20 49.26
49 9.72 87.56 107.78 45.71 87.37 6.75 1.45 2.54 49.89 20.81 0.40 382.02 0.13 0.01 0.12 0.92 5.83 108.39 52.22
50 34.72 78.99 118.46 31.25 132.98 6.53 1.11 2.66 19.37 17.14 0.56 357.32 0.11 0.02 0.09 1.25 6.28 14.97 60.10
51 30.56 38.04 95.66 32.74 111.58 6.97 0.85 2.89 53.94 20.89 0.56 467.57 0.14 0.03 0.11 1.26 5.71 133.33 60.10
52 126 1.84 84.23 31.58 137.54 6.64 1.79 2.86 90.65 35.10 0.24 795.62 0.70 0.13 0.57 2.37 4.27 113.19 56.16
53 22.22 8.97 110.43 32.52 115.09 7.34 0.94 2.70 104.30 24.08 0.40 142.56 2.02 0.55 1.47 1.96 5.38 108.87 61.08
54 13.89 4.61 70.98 22.97 182.81 5.87 0.34 2.34 69.70 20.49 0.40 223.32 1.37 0.26 1.11 1.55 4.32 109.35 54.19
55 301.39 3.00 108.76 34.95 90.18 6.68 1.19 2.30 112.14 27.55 0.23 152.82 1.12 0.05 1.07 2.17 4.51 119.90 55.17
56 113.9 76.89 80.87 29.03 119.65 6.75 1.79 2.66 50.37 38.32 0.89 71.81 0.29 0.01 0.28 0.94 5.81 106.00 48.28
57 13.89 33.81 119.17 31.93 95.44 7.60 0.17 1.87 48.82 24.43 0.64 300.79 1.24 0.01 1.23 1.85 5.75 71.46 61.08
58 6.94 65.15 88.86 27.44 94.04 6.83 0.85 2.74 104.20 24.42 0.32 98.76 2.30 0.1 2.29 1.83 5.00 138.13 41.38
59 11.11 142.30 108.42 35.36 111.23 6.90 1.88 2.03 113.76 17.41 0.32 167.16 0.76 0.04 0.72 0.57 6.43 20.62 72.91
60 8.33 31.88 97.13 34.86 130.18 6.79 2.30 2.66 115.10 17.57 0.37 297.14 0.49 0.01 0.48 1.09 5.70 196.64 4.93
**
105
61 113.89 80.00 88.32 32.83 90.18 6.02 1.88 3.22 5.57 31.58 0.32 413.86 0.23 0.01 0.22 1.23 4.79 117.51 58.3
62 12.50 11.26 93.77 43.91 104.56 5.58 1.02 2.46 26.78 17.41 0.24 352.12 0.27 0.02 0.25 1.38 4.20 128.06 65.02
63 80.56 50.63 87.53 39.60 110.88 7.56 1.79 2.82 22.38 7.02 0.08 256.95 0.76 0.02 0.74 1.26 6.30 96.88 59.11
64 9.72 97.91 94.02 28.30 86.67 5.54 0.68 2.15 178.43 10..53 0.16 437.12 0.36 0.02 0.34 1.64 3.90 92.57 45.32
65 13.89 16.72 86.45 37.47 92.33 7.89 1.45 2.26 40.81 13.72 0.24 369.64 0.25 0.00 0.25 1.40 6.49 104.08 68.97
66 41.67 67.5 121.81 37.65 108.77 3.12 1.19 1.67 9.32 24.64 0.16 318.51 1.33 0.01 1.32 1.38 1.74 128.54 56.16
67 111.11 6.09 97.55 30.74 87.72 3.45 2.30 1.15 40.66 17.41 0.24 291.32 0.34 0.00 0.34 2.18 1.27 117.99 12.81
68 25.00 35.94 101.57 41.52 137.89 3.63 2.39 1.91 55.76 17.48 0.24 196.19 0.41 0.01 0.40 1.26 2.37 140.53 22.66
69 23.61 25.40 86.61 27.84 112.28 2.31 3.50 1.19 22.64 17.44 0.24 235.95 0.34 0.00 0.34 2.00 0.31 111.75 7.88
70 9.33 12.20 134.66 46.03 135.09 2.94 1.79 2.07 3.82 10.45 0.24 385.75 0.67 0.02 0.65 1.37 1.57 92.09 8.87
71 18.06 2.96 100.10 30.89 106.32 5.28 0.17 2.46 208.8 15.4 0.32 93.46 0.22 0.00 0.22 1.43 3.85 81.06 12.81
72 16.67 5.19 99.69 36.87 102.81 6.02 0.51 2.62 64.42 24.44 0.16 131.34 0.83 0.04 0.79 1.77 4.25 169.30 18.72
73 5.56 43.61 95.41 34.72 128.42 6.35 2.22 2.74 53.00 17.53 0.32 206.37 0.18 0.02 0.16 0.33 6.02 91.61 19.70
74 27.78 3.86 91.76 35.04 121.40 6.02 2.90 2.98 26.64 13.74 0.24 245.53 0.22 0.01 0.21 1.28 4.74 108.87 8.87
75 4.17 15.46 93.17 37.39 174.74 5.72 4.26 2.98 24.73 17.31 0.32 245.88 2.81 0.01 2.80 1.41 4.31 130.46 19.70
76 45.83 16.57 103.93 38.88 120.35 6.83 1.71 3.46 56.30 37.80 0.81 47.48 0.25 0.01 0.24 2.17 4.66 103.60 12.81
**
106
77 1.39 47.48 88.92 27.39 137.19 6.17 2.56 3.02 102.04 24.05 0.40 290.96 0.61 0.02 0.59 1.63 4.54 127.10 23.65
78 12.50 14.94 107.18 37.13 140.28 6.39 1.71 2.46 101.60 24.37 0.40 679.83 0.49 0.00 0.49 1.54 4.85 136.21 26.40
79 27.78 97.10 97.92 52.78 108.07 6.20 0.85 2.58 56.75 20.89 0.16 264.63 0.47 0.02 0.45 1.13 5.07 110.31 12.81
80 44.44 42.78 94.78 27.83 115.79 5.03 0.34 2.34 40.74 20.95 0.16 410.02 0.27 0.01 0.26 1.02 4.01 128.06 10.84
81 1.39 0.52 119.68 31.97 80.50 6.75 2.73 3.22 67.49 21.05 0.40 143.53 0.47 0.01 0.46 1.85 4.90 126.04 24.63
82 116.67 11.60 109.86 32.51 131.23 5.17 1.88 2.58 101.22 20.57 0.32 380.51 1.31 0.01 1.30 2.29 2.88 95.92 19.70
83 12.50 29.27 146.79 40.66 94.04 6.75 1.88 3.06 29.94 20.92 0.32 625.55 1.64 0.02 1.62 1.63 5.12 149.64 23.65
84 20.83 32.26 100.08 37.83 107.37 6.31 2.30 3.02 48.88 17.42 0.24 322.89 0.63 0.03 0.60 0.50 5.19 135.73 24.63
85 26.39 13.61 110.72 40.04 98.25 6.31 1.79 2.94 8.08 13.75 0.32 306.52 0.88 0.02 0.86 1.09 5.22 120.38 29.56
86 40.28 68.51 81.15 39.34 126.67 6.06 1.79 3.22 49.01 21.04 0.40 167.41 0.09 0.02 0.07 0.86 5.20 135.73 16.75
87 20.83 13.61 180.9 41.58 156.14 6.31 0.53 2.42 13.64 24.37 0.40 101.25 0.23 0.02 0.21 0.77 5.54 124.70 12.81
88 75.00 89.41 125.69 41.97 167.37 6.24 0.26 2.42 68.00 17.41 0.32 593.91 0.20 0.00 0.20 0.87 5.37 121.82 19.70
89 143.06 55.82 95.75 31.37 110.88 877 0.09 2.42 81.87 13.92 0.16 194.31 0.79 0.01 0.78 1.24 7.53 90.17 41.38
90 40.28 0.18 66.79 31.31 121.40 5,25 2.56 2.62 70.07 17.53 0.16 489,20 0.13 0.01 0.12 1.03 4.22 97.84 10.84
91 122.22 4.99 114.16 43.59 121.05 7.85 1.36 4.33 38.02 17.41 0.32 133.36 1.26 0.02 1.24 1.09 6.76 2.74,82 64,04
92 40.28 16.01 137.67 41.19 102.81 7.23 1.36 2.78 105.05 13.93 0.24 204.98 1.12 0.04 1.08 1.60 5.37 133.81 32.51
**
107
93 27.78 10.54 98.31 33.44 98..60 7.49 1.19 2.62 237.50 17.54 0.24 53.65 1.55 0.02 1.53 1.42 6.07 106.00 27.59
94 44.44 0.97 125.00 38.58 133.68 6.83 1.28 2.78 197.53 13.92 0.24 222.10 1.31 0.00 1.31 1.34 5.49 134.29 28.57
95 30.56 0.29 117.75 37.97 110.88 7.74 1.62 2.86 175.43 17.57 0.16 583.35 1.60 0.02 1.58 1.51 6.23 154.92 31.53
96 181.94 128.70 97.34 35.57 143.16 8.37 0.85 2.62 65.74 20.76 1.05 67.26 0.27 0.01 0.26 1.18 7.19 103.12 21.67
97 11.11 0.83 88.92 31.37 119.65 6.02 1.71 2,58 152.65 17.14 0.48 140.81 1.01 0.01 1.00 1.64 4.38 74.82 7.88
98 23,61 65.73 109.93 41..03 132.28 7.12 2.05 3.30 112.11 14.05 0.47 352.42 0.97 0.01 0.96 2.70 4.42 116.55 7.88
99 19.44 12.49 103.33 28.64 95.44 8.04 2.30 2.50 46.29 14.05 0.32 75.89 1.60 0.04 1.56 2.73 5.31 139.57 30.54
100 4,17 26.47 104.28 29.95 114.74 6.94 0.85 2.66 24.11 13.75 0.32 48.74 0.47 0.01 0.46 1.88 5.06 137.65 21.67
108
******
7.4 Imágenes de trabajo experimental
7.4.1 Sujeción del paciente, revisión y toma de muestra
Figura 5: Inmovilización del paciente.
Figura 4: Revisión y manejo del paciente.
109
******
Figura 6: Extracción de la muestra de sangre.
7.4.2 Manejo transporte de las muestras y equipos de laboratorio.
Figura 7: trasporte u manejo de las muestras de hemograma.
Figura 8: Trasporte y manejo de la muestra para química sanguínea.
110
******
Figura 9: Procesamiento de la muestra para hemograma.
Figura 10: obtención del suero de la sangre para el proceso de la química sanguínea.
Figura 11: Procesamiento de la muestra para la química sanguínea.
111
******
Figura 12: Equipos de laboratorio.
112
******
Figura 14: laboratorio clínico (UPS).
Figura 13: Reactivos para química sanguínea.