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Generalidades de la PCR: MÉTODO DE DIAGNÓSTICO MOLECULAR DE Foc RT4 1) Bioversity International, Costa Rica 2) INISAV – Cuba. 3) Universidad de Costa Rica Miguel Dita (1) Einar Martínez de la Parte (2) Monica Blanco (3) Quevedo, Ecaudor, Diciembre 2013

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Generalidades de la PCR: MÉTODO DE DIAGNÓSTICO MOLECULAR DE Foc RT4

1)  Bioversity International, Costa Rica 2)  INISAV – Cuba. 3)  Universidad de Costa Rica

Miguel Dita (1)

Einar Martínez de la Parte (2)

Monica Blanco (3)

Quevedo,  Ecaudor,  Diciembre  2013  

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1  2  3  4  

AISLAMIENTO DE PROTEINAS O ADN

REACCIONES ENZIMATICAS

PREPARACION DEL GEL

ELECTROFORESIS

+ -

MUESTRAS

1      2      3      4  

Esquema de trabajo para el empleo de los Marcadores Moleculares

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1  2  3  4  

AISLAMIENTO DE PROTEINAS O ADN

REACCIONES ENZIMATICAS

PREPARACION DEL GEL

ELECTROFORESIS

+ -

MUESTRAS

1      2      3      4  

Esquema de trabajo para el empleo de los Marcadores Moleculares

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Saiki, R. K., Scharf, S., Faloona, F., Mullis, K. B., Horn, G. T., Erlich, H. A., Arnheim, N. 1985. Primer-directed enzymatic amplification of β-globin genomic sequences and restriction site analysis for diagnosis of sickle cell anemia. Science 230, 1230-1350. Mullis, K.B. and Faloona, F. 1987. Specific sinthesis of DNA in vitro via polymerase catalysed chain reaction. Methods Enzymol. 55:335-350. Cetus Corporation, Department of Human Genetics, Emeryville, CA 94608.

Incluida en el título o resumen de más de 250000 publicaciones científicas

REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA

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La PCR se realiza en un “Thermo Cycler” o Termociclador. Es una máquina que calienta y enfría la reacción en periodos cortos de tiempo.

TERMOCICLADOR

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ü Amortiguador (Buffer 10x): 50mM KCl, 10mM Tris HCl (pH 8.3) y 1.5

mM MgCl2. ü MgCl2: Puede estar en forma de MgCl2, MgSO4. Se usa 25mM -Es un

cofactor para la función de la polimerasa. ü dNTP’s (Deoxyribonucleotidos trifosfatados): dATP, dGTP, dCTP,

dTTP. ü Cebadores o “primers”: Son secuencias cortas de 20-24 nucleótidos de

longitud, complementarias a una región del DNA que se quiere amplificar. ü DNA molde: El DNA puede emplearse a diferentes concentraciones, el

mínimo va de 10-100 ng. y el máximo entre 400-500 ng. ü Taq Polimerasa: DNA polimerasa de Thermus aquaticus

Reactivos necesarios para PCR:

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TAQ ADN

dCTP

dATP

dGTP

dTTP

Primers

94°

50-65°

20°

72°

Pasos o etapas de PCR:

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AISLAMIENTO DE PROTEINAS O ADN

REACCIONES ENZIMATICAS

PREPARACION DEL GEL

ELECTROFORESIS

+ -

MUESTRAS

1      2      3      4  

Esquema de trabajo para el empleo de los Marcadores Moleculares

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•  Agarosa / Bromuro de etidio •  Poliacrilamida / Nitrato de plata

Métodos de separación/detección

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Marcadores  morfológicos  "  Influencia  del  ambiente  "  Bajo  número  "  Entrenamiento  y  subje@vidad  

Marcadores    moleculares  "  Sin  influencia  ambiental  "  Can@dad  ilimitada  "  Sencillos,  rápidos  y  obje@vos  

MARCADORES MOLECULARES vs

MARCADORES MORFOLÓGICOS

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"  Marcadores bioquímicos-isoenzimas Formas moleculares múltiples de enzimas, que tienen orígenes genéticos similares y que poseen actividades catalíticas muy semejantes, no exactamente superpuestas. "  Marcadores basados en el polimorfismo del ADN

1.  Detectados por Hibridación-(RFLP)

2.  Detectados por amplificación-basados en PCR

(DAF, RAPD, AFLP, SCAR, CAPS)

MARCADORES MOLECULARES

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"   DNA AMPLIFICATION FINGERPRINTING (DAF) "   RANDOM AMPLIFIED POLIMORPHIC DNA (RAPD)

Polimorfismo del ADN Amplificado al Azar. "   SEQUENCE CHARACTERIZED AMPLIFIED REGIONS (SCAR).

Regiones Amplificadas de Secuencia Caracterizada "   AMPLIFIED FRAGMENT LENGTH POLYMORPHISM (AFLP).

Polimorfismo de Longitud de los Fragmentos Amplificados . "   CLEAVED AMPLIFIED POLYMORPHIC SEQUENCE (CAPS).

Secuencias Polimórficas Amplificadas y Cortadas, PCR-RFLP.

MARCADORES DETECTADOS POR AMPLIFICACIÓN

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•  Estudios de diversidad genética •  Estudios taxonómicos (relaciones filogenéticas) •  Establecimiento de genealogías •  Determinación de pureza híbrida •  Elaboración de mapas genéticos •  “Etiquetado” de genes •  Identificación de material microbiológico •  Diagnóstico

APLICACIONES DE LOS MARCADORES MOLECULARES

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Las regiones o genes más comúnmente empleados en estudios de variabilidad genética o en el diseño de cebadores para la identificación de especies fúngicas son:

• Los genes del ADN ribosomal nuclear (ADNr) y sus regiones espaciadoras ITS e IGS.

• Los genes del ADN mitocondrial (ADNmt) • El gen de la ß-tubulina, • El gen del factor de elongación 1 alfa (EF-1α o TEF). • Otros marcadores (secuencias ERIC y elementos de

transposición).

MARCADORES MOLECULARES

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18s 5.8s 5s 28s

ITS 1 ITS 2 IGS 1 IGS 2

UNIDAD REPETITIVA DEL ADNr

"   Regiones que codifican para los genes 18S, 5.8S y 28S del ARNr

"   Espaciadores internos transcritos (Internal Transcribed Spacer; ITS1 e

ITS2) que se encuentran entre estos genes

"   Espaciadores intergénicos (Intergenic spacer; IGS1 e IGS2)

GENES DEL ADN RIBOSOMAL NUCLEAR(ADNr)

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"  Codifica una parte esencial de maquinaria de traslación proteica, "  Tiene una gran utilidad filogenética ya que es : (i) altamente informativo a nivel de especie dentro del género Fusarium (ii) se han desarrollado cebadores o primers universales que funcionan

a través del género

GEN TEF EF-1α

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Las razones para amplio uso en estos estudios reside en características intrínsecas de esta molécula tales como: "   Reducido tamaño "   Alta tasa evolutiva, "   Falta de bases metiladas, "   Alto contenido de residuos adenina-timina (AT) "   Molécula haploide donde la mayoría de los alelos poseen la misma

función e inclusive poseen regiones universalmente conservadas

Codifican para: "   Proteínas mitocondriales " ARNt "   Las subunidades del ARNr (LSU y SSU ARNr)

GENES MITOCONDRIALES

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ü  Fusarium spp.- FUSARIUM-ID (Geiser et al., 2004) Amplificación y Secuenciación de TEF o IGS

ü  Fusarium oxysporum- Edel et al. (2000) POF2 y POF3 (dominios variables del ext. 5´del gen 28s del ARNr)

ü  Fusarium oxysporum f. sp. cubense

Foc-1 y Foc-2(fragmentos RAPD)- Lin et al.(2008) ü  Fusarium oxysporum f. sp. cubense RT 4

FocTR4-F y FocTR4-R(secuencias TEF e IGS por SNPs)- Dita et al. (2010)

EMPLEO DE MARCADORES MOLECULARES EN EL DIAGNÓSTICO DE FUSARIUM

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FUSARIUM-ID v. 1.0-Esquema de trabajo

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FUSARIUM-ID v. 1.0 http://fusarium.cbio.psu.edu

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Resultado de la comparación de secuencias mediante la herramienta de búsqueda BLAST del servidor FUSARIUM-ID.

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Electroforesis en gel de agarosa y visualización del producto amplificado

Cultivo monospórico

Aislamiento de la cepa Haces vasculares del pseudotallo de plantas enfermas

Extracción de ADN

Amplificación (PCR) con el empleo de los cebadores FocTR4-F/ FocTR4-R

IDENTIFICACION POR PCR DE Foc RT4

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Primers: FocTR4-F: 5´- CACGTTTAAGGTGCCATGAGAG – 3´ FocTR4-R: 5´- CGCACGCCAGGACTGCCTCGTGA – 3´ 68C FocTR4-R: 5´- -----------GCCAGGACTGCCTCGTGA – 3´ 60C Temperatura de anillamiento: 60 C Amplicón: 463 pb

95°

60° 20°

72°

30 ciclos

IDENTIFICACION POR PCR DE Foc RT4

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0 1 2 3 4 5 6 8 9 10 11 13 14 15 18 19 20 22 24 12 M M

242 bp

Lin  et  al.  (2008)-­‐  Foc-­‐1/  Foc-­‐2  

Primers  -­‐  FocTR4-­‐F/  FocTR4-­‐F  (Dita  et  al.  2010)  

VCG 01213

Foc1/Foc2: Positivo aislados de Honduras, Brasil, Costa Rica, Australia, Indonesia, Taiwan

Diagnóstico molecular para TR4 (GVC01213)

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Electroforesis en gel de agarosa de los productos de amplificación de 20 VCG de Foc mediante el empleo de Foc-1/ Foc-2 (Lin et al., 2008) panel superior y de FocTR4-F/FocTR4-R panel inferior (Dita et al., 2010): Línea 1-VCG 0120; Línea 2- VCG 0121, Línea 3 VCG 0122, Línea 4 -VCG 0123, Línea 5-VCG 0124, Línea 6-VCG 0125, Línea 7- VCG 0126, Línea 8-VCG 0128, Línea 9 -VCG 0129, Línea 10- VCG 01210, Línea 11- VCG 01211, Línea 12 -VCG 01212, Línea 13 -VCG 01213, Línea 14- VCG 01214, Línea 15 -VCG 01215, Línea 16 -VCG 01218, Línea 17- VCG 01221, Línea 18- VCG 01222, Línea 19- VCG 01223, Línea 20- VCG 01224. M: marcador de peso molecular

IDENTIFICACION POR PCR DE Foc

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Electroforesis en gel de agarosa de los productos de amplificación de la reacción PCR duplex com plantas sanas e inoculadas con Foc RT4: Línea 1, Musa balbisiana cv. Buthohan (BB); 2, Musa acuminata cv. Pisang Mas (AA); 3, Grand Naine; 4, Silk (AAB); 5, Prata Ana˜ (AAB); 6, rizomas de plantas Gran enano no inoculadas; 7–9, rizomas de plantas Gran enano inoculadas con aislados de Foc TR4; 10-11, pseudotallos infectados de plantas Gran enano inoculadas con Foc TR4; 12, control positivo control usando ADN de cultivo puro de cepa VCG 01213 .

IDENTIFICACION POR PCR DE Foc

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Gracias Preguntas?