I

U N I V Z R S I D U AUTONOMA X3TROPOLITANA

UNIDAD IZTX¿iL+APA

/DIVISION C.B.S.

4 Y l J D A N T I A DEL LABORATORIO DE TECNICBS

HIDROBIOLOGICAS Y ORGAVISXOS ACUATICOS EN L A PROBLENAITICA NACIONAL I1

1580-81

Infome f i n a l para acred i ta r s e r v i c i o soc ia l .

.

.. PRESENTADO POR: ZJUAELDO BATLLORI SAbPEDRO

MATRICULA: 76319165 ALUMNO DE L A CARRERA DE BIOLOGIA CON

S Z B DE CONCENTRBCION ZN HIDROBIOLOGIA

TUTOR:

m FRANCISCO CONTRZRBS Z. DEPtlllTAIYLENTO ill3 ZOOTECNIA (HIDROBIOLOGIA)

D I V I S I O N C.B.S. U.A.M. IZTAPALAPA.

INDICE :

I Pág.

INTRODUCi3ION ........................................ 1 *

OBJZTIVOS ........................................... 1

METODOLOGIA ......................................... 2

f i ! iSULTMOY .......................................... 4

DISCUSION ........................................... 5

CONCLUSIONES ........................................ 61

AN EX0 S : a) Bibliografía.

b) Técnica.

. .- .l.

E?--

INPilODUCCION :

Originalmente, la actividad de servicio social estaba enfo- cada a colaborar en la ayudantía del laboratorio "Técnicas Hidrobio - lógicas" impartida en el 7 O trimestre del área de concentración de Hidrobiologia (Dpto. de Zootecniaj DCBS.), durante un periodo de 2 trimestres. ilebido a que en el trimestre 81-1 no se impartia dicha ma€eria, la ayudantía se traspasó al laboratorio de la materia "Or-

(Seminario 11) de senalado de 2 --

I

-4

ganismos Acuáticos en ia grobiemática iiacionai II" periodo go trimestre, concluyendo de esta forma el

trimestres.

OBJZYIVOS :

1) Técnicas Hidrobiológicas: a) Que el alumno analice y maneje 1 s difer ntes aparatos pa -

ra estudios hidrobiológicos y las técnicas de colecta. b) Analizar y poner en práctica l o s métodos seleccionados pb -

ra las determinaciones mas usuales y de importancia en es - tudios hidrobiológicos.

c) Conocer la importancia e influencia de l o s diferentes pa- rámetros abióticos en el medio acuático.

2) Seminario 11: a) Que el alumno sea capaz de comprender l o s estudios inte-

grativos del sistema acuático lagunar costero y estuarino. b) Que sea capaz de comprender las interacciones de l o s pari -

metros bióticos y abióticos de l o s sistemas estuarino y - lagunar.

c) Que el alumno sea capaz de realizar un estudio integrctti- vo trabajando en equipo.

-2-

METODOLOGIA :

1) Técnicas Hidrobiológicas: . El programa de estudio contempla 10 prácticas de laboratorio

a) Calcio, Dureza y Magnesio en aguas epiconzinentales. b) Oxigeno disuelto. c) Salinidad. d) Nitritos. e) Nitratos. f) honiaco. g) Ortofosfatos y Fósforo total. h) Silicatos. i) pH y Alcalinidad en oceanografía.

. para las determinaciones de los siguientes parámetros:

Al inicio de clases se realizó una práctica introductoria en el manejo, cuidado y mantenimiento de l o s diferentes instrumentos mas usados en l o s muestreos hidrobiológicos, y se explicó detallada - mente los métodos de niuestreo en su caso.

una introducción ai tema, con énfasis en ia importancia del paráme- tro a estudiar en el medio acuático, l o s principios básicos de la técnica y las precauciones necesarias para lograr su máxima presi+- ción; posteriormente se explican l o s pasos de la técnica y se reali - za esta. final de ia práctica se resuelven las dudas y se pian-- tea un cuestionario para investigación bibliográfica posterior.

La práctica se reporta siguiendo los lineamientos del método científico (introducción, objetivo ,material, método, resultados, +-

discusión, conclusiones y bibliografia consultada. ) anexando el --- cuestionario resuelto.

La evaluacion se Basa en el trabajo de laboratorio, intervem - cion en clase, reporte de la práctica, cuestionario y trabajo de -- campo.

En forma general, las horas de práctica se estructuraban en

1

.

. I

La htima frase se refiere al desenvoivimiento, entusiasmo y trabajo realizado durante la práctica de campo efectuada en los ca- nales de Xochimilco el dia 24 de Noviembre de 1980. También se eva-

El grupo se dividió en 4 equipos de trabajo, máximo de 5 per . sonas, las cuales realizaban las diferentes determinaciones en el -

. iÚa el informe de dicha actividad.

laboratorio y campo.

2) Organismos Acuáticos en la Problemática Nacional I1 (Seminario 11):

El programa de estudio del laboratorio abarca de manera funda - mental para su desarrollo una práctica de campo que fué realizada en el sistema estuarino-lagunar de Tuxpam-Tampamachoco, en la Cd. de -- Tuxpam de R. C. en el Edo. de Veracruz, l o s días 11 a l 14 de Febrero de 1981.

El estudio abarca l a hidrología básica del sistema (temperatu - ra, salinidad, oxígeno disuelto, pH, alcalinidad, transparencia, clg rofilas); nutrientes (nitritos, nitratos, amoniaco, ortofosfatos, -- fósforo tota1,silicatos); productividad (incubaciones de botellas -- claras y obscuras); parámetros bióticos como fitoplancton y zooplanc - ton (diversidad y abundancia); y ciclos de 24 hrs. con intervalos de muestre0 de 4 hrs. abarcando todos los parámetros anteriores menos - los bióticos.

El grupo se dividió en equipos de 5 personas, las cuales se - concentoaban en los diferentes aspectos del estudio. De esta manera, un equipo se dediaaba a l a determinación y análisis de hidrología bá - sics, otro equipo del ciclo de 24 hrs,,otro más de productividad,.-- otro de fitoplancton y otro de eaopiancton.

Después de este paso, los diferentes equipos exponen sus re-- suitauos y se someten a un análisis integrativo de todos l o s aspec-- tos que abarca el estudio.De esta manera,los alumnos discuten el tra - bajo logrando sus propias conclusiones y compartiendo experiencias.

El laboratorio se impartía todos los diad a partir de las 15

* En ambas materias, el laboratorio constaba un 50 de la ca -

.

.. hrs. hasta las 21;30 hrs.

lificacion final.

ñ3SUL"ilT)OS :

1) Técnicas Hidrobiológicas : . Las 10 practicas de laboratorio fueron realizadas satisfacto-

riamente, aunque en momentos existieron problemas en cuanto a mate-- rial y equipo neeesaria en ei área de docencia, pero fueron resuel-- tos gracias a la cooperación del Laboratorio de Oceanografia del De- partamento de Zootecnia de la DCBS.

La práctica de campo mostró a l o s alumnos las dificdtades me - todológicas que acompañan a l o s estudios de este tipo; mostró tam--- bien los problemas de organización y administración del equipo,así - como ia importancia de diseñar ei tip'o de muestreo según las caracte - rísticas y objetivos del trabajo a realizar.

.

. 2) Organismos Acuáticos en la Probledtica Nacional I1 :

(Seminario ii)

El trabajo de campo en la Cd. de Tuxpam, Ver., se realizó sin contratiempos importantes. Los alumnos presentaron buen desenvolvi-- miento y entuskasmo, aunque las condiciones ciimáticas imperantes se presentaban adversas para el desarrollo óptimo de la metodologia dis - puesta. Los fuertes vientos provenientes del norte y la lluvia conti - nua hicieron mas problemática la colecta de muestras y el manejo del equipo, traduciéndose en un mayor tiempo de muestreo.

E l análisis de las muestras se realizó en la Universidad Auto - noma hletropolitanz - Iztapalapa en los laboratorios del área de do--

cencia. En este punto, el problema principal fue la falta de labora- toristas que proporcionaran el material necesario para las diferent-

te a los alumnos, perdiendo mucho tiempo,ya que la organisación y as

Cada equipo realizó un análisis de sutrabajo, el cual se pre-

. tes determinaciones, por lo que me vi obligado a atender personalmen -

. ministración de l o s laboratorios no es de mi competencia.

sentó al grupo para su discusión e integración . .

i ) ISCUSION :

Los resultados del trabajo realizado en ambas materias fue sa -

prácticas estipuladas. Para "Organismos Acuáticos en la Problemática

nal se encuentra en el Laboratorio de Oceanografia, Dpto. de Zootec- nia, CBS.

Los alumnos mostraron disponibilidad y entusiasmo durante el - trabajo de Xaboratorio y campo. Es necesario mencionar aquí la impoz tancia de las prácticas de campo como un complemento indispensable - del aspecto teórico impartido .en la Universidad. Este punto debe con - siderarse y brindarle más apoyo en cuanto a infraestructura y presu- puesto, ya que ei campo representa la línea de acción fundamental -- del Hidrobiólogo, tanto en materia de producción como de investiga- ción básica. Otro punto importante es la falta de material y equipo en los laboratorios de docencia, por lo que muchas veces se debe re- currir a las áreas de investigación para cumplir con las prácticas -

. tisfactorio. En Técnicas Hidrobiológicae se cumplió con todas las --

. Nacional 11" (Seminario II),se presentó un informe final, cuyo origi

!

, de laboratorio. Por otro lado, el sistema trimestral no brinda holguras en --:

l o s programas de las unidades de enseñanaa-aprendizaje. No represen- ta gran proniema cuando ei curso es únicamente teórico, pero cuando es teórico-práctico, y más aún, cuando se requiere de prácticas de - camoo, el tiempo neto de aprovechamiento del alumno se reduce enorme mente para cada UEA, aportando, en casos extremos, lo indispensable para aprobar la materia. Esto puede reducir el nivel académico del - alumno.

Es importante señalar la necesidad de un curso sobre el tópi- co "Diseño de Muestreos", ya que representa la base para la selec--- ciÓn de la metodología a seguir en cualquier estudio hidrobiológico. La falta de información sobre este tema puede traducirse en el Eraca - so de todo un proyecto de investigación por utilizar una metodología inadecuada en el área de estudio.

. *

Para finalizar, se anexa a este informe la bibliografia utili - zada y recomendada para ambas materias (Técnicas Hidrobiologícas y - Seminario I I ) , así como el diseño de la técnica “Determinación de Ma - teria Orgánica Particulada en Agua“ que presenté para ser incorpora- da a las prácticas de laboratorio.

CONCLUSIONZS :

1) Existe disponibilidad y entusiasmo por parte de l o s airnos en -- las actividades prácticas.

2 ) Hace falta un mayor apoyo para la realización de trabajos de camp. 3) Proporcionar a los laboratorios de docencia el material y ea-uipo -

suficiente para el buen desarrollo de las prácticas, evitando asi, ia interferencia con las áreas de investigación.

4) ~i sistema trimestral puede crear deficiencim académicas en ei a- lumno por lo extenso de l o s programas de eetudio y el corto tiempo disponible.

de metodologízs apropiadas en l o s proyectos de investigación, 5) Se propone un curso sobre “Diseños de Muestreo” para la selección

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W I V E R S I M O AUTONOMA MTROPOLITANA

IZTAPALAW

CETERMINKIMI E MATERIA DRGAMICA P A R T I C M A W EN AGUA (CARBON OAGANICO).

CFPARTAMmiTO OE ZOOTECNIA

LAB(RATORI0 OE CCEANOGRAFIA.

PREPARAW WR:

E W A R W EATLLORI S.

. I .

I Intmducci6n: I

.. i

La mate& orgánica particulada consiste principalmente de detritus (or- I ganismos muertos), fitoplancton y zooplancton.La cantidad da CEC~OM orgánico

particulado originado a par t i r de l o s detritos es una fraccidn a l t a del t o t a l I

I de carbom orgánico particulado presente,cuyas concentraciones oscilan entre

10 ug C/1 en aguas pmfundas y 100 a 500 ug C/1 en aguas superficiales. La 3

concentración de carbono orgbnico particulado en l a s cqlwnnas de agua oceani-

ca es siempre cuando menos un orden de magnitud mayor que l a productividad - primaria actual.La concentrecidn en l a capa eufdtica es relativamente a l t a y

variable y puede correlacionarse con l a ac t iv idad fitoplanctbnica.

t

I

La materia orgánica particulada es una parte importante de l a cadena a-

lirnenticia,ya que pmvee alimento para organismos en varios niveles troficos.

E l ana l i s i s d e l material organico particulado en e l agua de mar es un indice

de l a abundancia d e plancton y sirve para obtener una medida de l a d is t r ibu- -

cidn del carbono orgánica particulado.

E l siguiente metodo ha sido diseñedo para dar una rapida estimecion de

l a cantidad de material organico particulado en e l agua de mar.El metoda en-

vuelve l a oxidacidn humeda d e l carbon con acido dicromato y se basa en e l me-

todo descrito por Johnson (J.Bio1. Chem., 181:M7, 1949) adaptado por Strick-

land y Parsons (1972) para espectrofotometria.El metodo pueda dar resultados

mas a l t o s que l a s determinaciones clasicas de carbon por mediciones de bioxi-

do de carbono.

Los resultados obtenidos por este metodo se dan en terminos de carbono - de glucosa.El contenido real de carbono en e l material organico particulado

podria apmximarse a este valor si todo e l carbon estuviera presente como caz

bohidratos.Normalmente los resultados podrian ser a l t o s o bajos, de acuerdo a

l a naturaleza d e l material organico,pem l a conposicidn promedio de fitoplanc

ton y d e t r i t u s es t a l que e l verdadero contenido de carbono d i f ie re de 10 a - 2% del valor de oxidacidn obtenido por e l presente metodo.El "carbon oxida-

b1e"es una medida rea l de l a energia almacenada en l a bimasa del sistema.

Fundamento :

< . - .

A La mater'$& o r g a n i c e en e l mar puede d i v i d i r s e en 2 categorias: materia

o r g a n i c e d i s u e l t a y materia orgdnioa p a r t i c u 1 a d a . b m a t e r i a o r g a n i c a d i s u e l -

ta comprende e l material d i s u e t o a s i como e l material c o l o i d a l que pase por

un filtro de membrana de 0.5 un. ( R i l e y , 1 9 7 5 i n R o s a l e s , 1 9 7 9 ) .

La materia p a r t i c u l a d a es f i l t r a d a atreves de un filtro de f i b r a de vi--

c l r io .E l carbon es entonces d e t e m i n a d o por las " c e n i z a s humedas"con una mez-

c la d e d i c m m a t o de p o t a s i o y a c i d o s u z f u r i c o c o n c e n t r a d o , midiendo la dismi-

nucidn en l a e x t i n c i d n de l a s o l u c i o n d i c m m a t o amarilla despues de que esta

ha sido r e d u c i d a p o r l a materia o r g a n i o a .

R e a c c i ó n :

+++ c H o + C r o= + H so = co2 + Cr + H ~ O n 2n n 2 7 2 4

Material :

a) Filtms de v i d r i o Whatman GF/C

b) Equipo de f i l t r a c i ó n M i l l i p o r e

c ) P i n z a s metaiicas

d) F r a s c o s Er lenmayer 1 2 5 m l

e ) Agua d e s t i l a d a

f ) V i d r i o s de r e l o j

g ) Baños de a r e n a o parri l la de c a l e n t a m i e n t o y mechem

h ) T e m o m e t m - 1 0 a 150 C.

i) P r o b e t a s graduadas 100 m l

j ) Tubo de c e n t r i f u g e y c e n t r i f u g a

k) E s p e c t m f o t o m e t m

i) Pipetas 5 m i , IO m i

O O

i

I

i

1 Reactivos :

D i s a l u c i d n oxidante:

Disolver 4.84 g. de dicxwmato de potasio (K Cr O ) en 20 m l de agua des-

ti1ada;agregar 500 m l de acido s u l f u r i c m concentrado (H SO ) g.e. 1.82, grado

* L

2 2 7

. 2 4 1 reactiv0,lentamente en l a disolucidn anterior en un matraz volumetrice de ---

1000 ml.Enfriar l a mezcla a temperatura ambiente y l levar a 1003 ml. con mas

ac ido concentrado.Guardar l a disolwcidn en una botella con tapan de v i d r i o ,

l a d i s o l u c i d n es estable indefinidamente.

Msolucidn de ácida fosfarico:

User acid0 fosforico (H W ) graetdo analit ico de 7& de concentracidn. 3 4

Disolucidn de sulfato de sodio:

Disolver 45 g. de sulfato de sadio anhidro (Ne SO ) grado analit ico, en 2 a

1000 ml de agua destilada.

Disolucidn estandar de glucosa:

D i s o l v e r 7.50 g. de glucosa pura (C H O ) y urns cuantos cristales de 6 12 6

clorum mercurio (HgC1 ) en un frasco volwetrico de 1W ml y aforar. 2

1.0 m l de sol. es t . de glucosa = 30 mg de carbón.

Esta disolucidn es eatable si se guarda bajo refrigeration p e r o debe &scar--

tarse si se pone turbia.

Disoluoidn estandar diluida de cilucosa:

D i l u i r 10 m l . de estandar de glucosa a 1 litro con agua destilada en un

frasco volmetrico.Prepararla en e l momento de usarse.

1.0 m l . de sol. est. diluida de glucosa = 300 ug d e carbon. 9

Procedimiento :

. - í I 1 ) F i l t r a r u&lumen adecuado de agua (0.5 a 10 1)a traves de un filtro de

e l f i l trado,cerrar e l vacio y agregar 2 ml. de l a solucidn de sulfato de sor-

i I ! v i d r i o Whatmen GF/C usando un vado no mayor de 113 d e atmosfera.Drenar todo

!

dio,aplicar vacio de nuevo y succionar a que e l f i l t m quede seco, repetir u-

sando 2 m l . mas de l a d i s o l u c i b n de sulfato de sodio.Esto se lleva acabo para

parnover e l clom prncedente de l a muestwa de agua de mar atrapadoen e l p a p e l ,

con lavados rapidos y usando volumcenes pequehs de l a d i s o l u c i d n de sulfato

de sndio no se mmpe el material celular y noa,hay perdida de carbono a tmves

del filtro.

2 ) Guitar e l papel d e l embudo con unas'pinzas metalicas y co l oa r l o en l a par

t e interior plana de un frasco limpio Erlenmayer de 125 m l .

3 ) Agregar 1 m l . de acido fosfor ico y 1 m l de agua destilada,mazclar.

4) O u b r i r los matraces con un vidrio de r e l o j y colocarlos en un baño de are-

na o perr i l la de calentamiento durante media hora (30 m i n . ) a 100 - 110

E l calentamiento debe ser homogenm.

O C.

5) Agregar un volumen de agua y un volumen adecuado de disnluci6n oxidante,de

acuerdo a l a cantidad de carbon que se espere encontrar en l a muestra.En l a

tabla I se dan l a s cantidades de agua y de disolucion oxidante,asi como la -- celda que se debe usar según e i carbono presente en l a muestra.

6) C u b r i r los metiaces c o n un vidrio de r e l o j y calentar por 60 min. a 100 - 110 C. y x€ efectuar una oxidacidm cMpleta.Un calentamiento mas pmlonga-

do amenta l a s posibilidades de contaminacibn.

O

3) Enfriar les disoluciones y l levarlas junto con el filtro a una probeta

I graduada de 100 ml.Lavar los netraces qua contenian l a muestra con agua desti - lada y junta s aguas del lavado don l a muestra. i

I

8) Aforar y mezclar,dejando que l a s f i b r a s de vidrio se sedimenten y enfriar

e l contenido del c i l i n d r a a tRnperatura ambiente.

9 ) &cantar un volumen adecuado d e l liquido sobrenadante en un tubo de centri

fuga y centrifugar a 2000 r p m por 5 min. con objeto de eliminar residuos de

l a s f ibras de vidrio d e l f i l t r o y particulas suspendidas de material inorga-

nico.

-

10)Colocar l a disolwcidn ya centrifugada en una celda eepectmfotometrica y

leer a Mo nm. E l blanco t iene una extinción mayor que l a soluoión de l a mues tra,por l o que se coloca e l blanco en el lugar de l a muestra y l a muestra en

e l lugar de l a celda de referencia,de esta manera l a diferencia entre l a muez

tra y e l blanco,que es una medida de l a reducción del dicrumato se l ee d i r e c -

tamente en e l espectrufotometm trabajando en l a región m8s sensible,esto pro - duce valores más precisos que si se leyeran e l blanco y la muestra contra Uh

blanco de agua y e l valor de l a s 2 extinciones fuera restado.

CBlculOs :

C o r r e g i r l a absorbancia obtenida d e l c m m trivalente por medio de l a ex - presión :

A = 1 . 1 A obtenida. 3

E l carbon particulado en mg C / m se calcula por l a formula: .

A = absorbancia corregida

V = volumen de muestra en l i t m s

F = factor calculado (se describe a continuaci6n)

v = ml. de oxidante usados

c

: c

j I

i

! i

'.

:

i

I i L

I , i i '

. f 1

i

1

i I f

!

i Calibración: (evaluación del factor F )

l

*ah: I 1) En 5 matraces limpios de 125 m l colocar los filtros de v idr io humedecidos

wn 1 m l . de acido fosforico.

2 ) Calentar en baño de arena o pa r r i l l a por 30 min.

3 ) A regar a 2 matraces 10 m l de l a disolución oxidande y 4 m l de agua desti-

lada .

4) Adicionar a los 3 metraces restantes 10 m l . de l a disolucibn oxidante y 4

m l . de estandar

5) Continuar e l

partir del paso

diluida de glucosa.

procedimiento exactamente como se describio anteriormente a

6 (pag. 4) .

6) Mezclar l as 2 disoluciones de blanco y usarlas para obtener l a lectura de

l o s 3 estandares.

7) Calcular e l f ac tor F de l a expresión:

F = 120 / AC

Ac = pmmedio de absorbancia de los 3 estandares.

E l va lor de F debe aproximarse a 275.

Blanco :

Dos blancos se determinan con cada grupo de muestras.

i ~

I 1) En 2 matraces limpios se colocan los f i l t r o s de vidrio humedecidos con 1 17

m l de acido

2) Se calientan l o s matraces en un baña de arena o parr i l la por 30 m i n .

3) Agregar un volumen de agua y un volumen de disolucidn oxidante igual a l a

cantidad que se agregd a l a s muestras.

4) C u b r i r l o s matraces con un vidrio dd r e l o j y calentar por M3 m i n .

5) Enfriar l a s disoluciones y transferiil las a una probeta graduada ( v o l w n

igual a l usado en l a s muestras), lavar l o s matraces que wntenian e l b l a w

con agua destilada y juntar l a s aguas de lavado con l a muestra.

6) Aforar y mezclar.

7 ) Decantar un volumen adecuado del l i q u i c h sobrenadante en un tuba de centri

fuga y centrifugar a 2000 r p m por 5 m i n .

-

ü) Leer l a fracaión centrifugada en un espectmfotometm a 440 nm.

TABLA I

ug carbon m l oxidante m l agua aforu celda cm

- 300 2.00 0.8 l levar a 100 m l 10

300 - 700 4.00 1.6 50 m l 2.5

1 .o 700 - 2000 10.00 4.0

TI 9 I I 0 ,

I , 8, 11 I, 50 ml

I

Interferencias: .

E ! i E l ion u r o in ter f iere en l e oxidación del materiel carbonico con e l

dicmmeto, reduciendo e l cmmatP.El tratemiento con acido fosforico volati-

l i z a l e mayoria de los iones clorums como cloruro de hidmgeno y reduce los

halogenos restantes e un nivel aceptable (menos de 0.1 mg de iones cloruro).

Limpieza de material:

Todo el d t e r i a l da v i d r i o usado en este metodo debe limpiarse en mezcla

cmmica caliente.Debe evitarse l a contaminecidn por polvo. i

P r e c i s i d n :

f A niveles de concentraciones de 800 ug de C / l l e precisidn es de - 12O/V

o ug de carbon . 0 E dividiendo por e l volumen de muestra de agua marine us%& en l i t m s pare

obtener e l dato en mg/m . 3

b

, ' C !

I

CUESTIONARIO : '

1 J.- Cual es @pinion de usar arbitFEriamentI3 f i l t r o s de 0.5 un. para sepa-

rar l a materia organica particulada de l a disuelta. Que metodalogia al--

ternativa puede sugerir?

l

2j.- Mencione l a s diferencias basicas entre materia organica disuelta y part2

culada con sus posibles origenes.

3J.- Como se distribuye l a materia organioa particulada en las aguas marinas

en forme vertical?

41.- La materia organice particulada está constituida principelmente de orga-

nismos v ivos y detritos; mencione 1.3 naturaleza o conp~sici6n de cada u-

na.

51.- C u a l es e l significado ecologico y e l destino de 18 materia orgenic8 par-

ticulada en: , a ) zona eufotica.

: ' I .

i ' 6 Í

b ) zona profunda.

LíTERATURA E C N I C A :

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