clase de toma de muestras
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TOMA DE MUESTRAS EN AVES
DESTINO DE LA MUESTRA
INVESTIGACIÓN
SEXADO
BACTERIOLOGÍA
VIROLOGÍA
PARASITOLOGÍA
CITOLOGÍA
TOXICOLOGÍA
HISTOPATOLOGÍA
TIPOS DE MUESTRAS
SANGRE
ISOPADOS
SEMEN
MATERIA FECAL
ECTOPARÁSITOS
ENDOPARÁSITOS
RASPAJES
PUNCIONES
PLUMAS
BIOPSIAS
SANGRE
• Factores que pueden influir en el resultado
– Formas y lugar de donde se obtiene la muestra desangre.
– Manipulación de la misma.
– Técnicas utilizadas para el procesamiento.
– Variaciones en el ambiente.
– Estado fisiológico del animal, edad, sexo, estado nutricional y el uso de anestésicos.
MATERIALES NECESARIOS
GUANTES DESCARTABLES : LATEX O VINILO
BARBIJO
AGUJA HIPODÉRMICA O UNA AGUJA CON ALETAS: 22G, 23G, 25G ó 27G
JERINGAS: 12 mL, 10 mL, 6 mL, 3 mL ó 1mL
GASAS
ALGODON
ALCOHOL (etanol 70%/isopropilico)/ AGUA OXIGENADA
TUBOS DE EXTRACCIÓN
CAPILARES
CATERERES ENDOVENOSOS Y/O BUTTERFLY
PINSAS : de diferentes tipos según necesidad
RECIPIENTES ESTERILES Y DE BOCA ANCHA
BISTURIES
ELEMENTOS DE CONTENCIÓN : cajas de contención, caperuzas, pihuelas, guantes resistentes, etc
AGUJAS HIPODERMICAS/BUTTERFLY
JERINGAS
TUBOS DE EXTRACCIÓN
EXTRACCIÓN DE SANGRE
Vena Braquial/Ulnar del ala
Vena Yugular DERECHA
Vena Metatarsal media de la pata
Hidratación subcutanea: Pliegue de
piel inguinal
ES SEGURO EXTRAER ENTRE 0,3 CC Y 0,6 CC DE SANGRE POR CADA 100 grs DE MASA CORPORAL
Para HEMATOLOGÍA se recomienda el uso de agujas de 22G a 25G y NO 27G o menor
TÉCNICA
TÉCNICA
¿QUÉ ESTÁ BIEN Y QUÉ ESTÁ MAL?
¿Qué está bien y qué está mal?
VENA METATARSIANA
PASO SIGUIENTE…
Se pasará inmediatamente la sangre de la jeringa a un tubo de gel separador de suero (tapón rojo) o a un tubo de gel separador de plasma (tapón verde). Algunos laboratorios prefieren el plasma y otros el suero dependiendo de las pruebas que se deban realizar.
Los tubos de plasma se deben refrigerar o sumergir inmediatamente en un baño de agua fría hasta su centrifugado en una centrifugadora portátil.
Las muestras de suero deben dejarse coagular a temperatura ambiente (37°C) y después mantenerse refrigeradas o sumergidas en un baño de agua fría hasta su centrifugación.
Una vez centrifugados, tanto el suero como el plasma se deben transferirá un criovialutilizando una pipeta de transferencia estéril o, si no se dispone de ésta, se deben verter cuidadosamente en el criovial, que se congelará.
HISOPADOS
MATERIAL NECESARIO
• Guantes de látex o de vinilo +/- máscara N95 o FFP2, protección para los ojos, etc.
• Crioviales de 2-2,5 ml con tapa de rosca (que se puedan colocar en nitrógeno líquido) que contengan un medio de transporte
• Hisopos: Para muestras virales: punta de rayón o dacrón
Para muestras bacteriana: punta de algodón
• Tijeras
• Refrigerador o bloque de hielo o contenedor con nitrogeno liquido para almacenar el medio de transporte y las muestras
• Formularios
TOMA DE MUESTRA
PROCEDIMIENTO1. Para el manejo de aves y la apertura de viales de muestra, se llevará un equipo
personal de protección adecuado
2. Retirar el hisopo desde el mango (elíjase un tamaño de hisopo adecuado para el ave) y póngase cuidado en no tocar la punta del hisopo.
4. Desprender los fragmentos fecales de gran tamaño (>0,5 cm)
5. Abrir el criovial y colocar la punta del hisopo en el medio de transporte aproximadamente a una altura de ¾ partes hacia el fondo del criovial.
6. Etiquetar el tubo con la información apropiada (identificación de la muestra y clase
de la misma (cloacal o traqueal) asegurándose de que la identificación del tubo
pueda remitir a la hoja de datos donde exista más información sobre la muestra
9. Registrar el número del tubo de muestra en la hoja de datos junto con el número
de identificación, la fecha, la especie, la clase de muestra (cloacal o traqueal), la
edad, el sexo, la ubicación (preferiblemente mediante coordenadas GPS), número
de banda, observaciones u otros datos
TÉCNICA
HISOPADO CLOACAL
TOMA DE MUESTRA
HISOPADOS TRAQUEALES
SEMEN
Extracción por fricción o presión.
Siempre es necesario una estimulación previa o estar en período reproductivo
Objetivos:
Inseminación artificial
Programas de conservación
Estudio de enfermedades
Variabilidad genética
Estudio de malformaciones
PARÁSITOS
ECTOPARÁSITOS: Se los toma del cuerpo del ave con pinzas o utilizando eldedo pulgar he índice y se los introduce en un frasco estéril con alcohol al 70%y se lo envía a temperatura ambiente, debidamente rotulado e identificado.
En caso de ácaros se hacen raspajes con bisturí hasta el sangrado y serecolecta la muestra en un portaobjetos y se la observa al microscopio óptico
ENDOPARÁSITOS: Se puede tomar muestra de materia fecal fresca reciéndefecada o extraer directamente de la cloaca del ave. Se introduce la muestraen una bolsa de plástico teniendo el cuidado de retirar el aire. Se lo envía arefrigerada al laboratorio para diagnóstico por coprocultivo u observación dehuevos por métodos de flotación o sedimentación.
ROTULACIÓN DE LAS MUESTRAS Y DE SER POSIBLE ADJUNTAR ANAMNESISDEL O LOS ANIMALES MUESTREADOS.
ENVÍO Y REMISIÓN DE LAS MUESTRAS
MICROBIOLOGÍA: Aerobios/ Anaerobios
Muestra representativa.
Envío refrigerada a 4°C.
Medio de cultivo o transporte.
Rotular.
VIROLOGÍA: Medio de transporte «stuart».
Muestra representativa.
Envío refrigerada a 4°C.
Rotular.
«Las muestras deben llegar al laboratorio dentro de las 24hs de recolectadas.»