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Ana Maria Milani RA 058855Bruna Fernandes Mendes Silva RA 059257Celene Yukimi Kubo RA 059713Érika Domingos Silva RA 060438 Gisele Maria Metta RA 061160
RoteiroIntroduçãoConceitosMateriais e MétodosAplicaçõesConclusãoReferências
IntroduçãoEsterilidade - total ausência de formas viáveis
de MO capazes de reprodução.
IntroduçãoConhecimento atual - questionamentos quanto à afirmação absoluta da esterilidade dos produtos;
Ausência total de microrganismos: não factível matematicamente.
IntroduçãoTerapêutica parenteral - origem no século XIX;
Primeiro método oficializado de teste de esterilidade – Inglaterra (1932): teste em produtos sob a forma liquida, mediante utilização do caldo peptonado e incubação a 37°C durante 5 dias, a fim de detectar bactérias aeróbicas.
Introdução
Teste de esterilidade: visa verificar com mais segurança a qualidade do processo esterilizante, empregado durante a fabricação de medicamentos estéreis, bem como manipulações assépticas, levando-se em consideração respectivamente o aspecto probabilístico da esterilização e o risco da contaminação.
IntroduçãoLimitações do teste de esterilidade:
problemas microbiológicos e dificuldades na obtenção de amostras representativas de um determinado lote;
Afirmar esterilidade absoluta de um produto exigiria que todas as suas frações fossem submetidas ao teste, o que não é aplicável.
Introdução• Teste busca proporcionar condições ideais ao
desenvolvimento de bactérias, bolores, e leveduras. Não abrange condições que permitam o crescimento de vírus - quando há ausência de bactérias e fungos extrapola-se o resultado negativo também aos vírus.
• Dois problemas principais nos testes de esterilidade: 1) tamanho da amostra a ser empregada; 2) condições de recuperação dos microrganismos
Tamanho da amostraTeste do tipo destrutivo - não pode ser
aplicado a todo o lote;Método estatístico de amostragem -
determinado pelo n° de amostras tomado e incidência de contaminação do lote. O n° de unidades a ser testado depende do tamanho do lote e do tipo do produto.
Tamanho da amostra• Probabilidade de aprovar um lote contaminado
diminui com aumento do tamanho da amostra; • Probabilidade de se aprovar um lote problema
aumenta à medida que o índice de contaminação diminui;
• Tamanho da amostra - estabelecido arbitrariamente, e não fornece uma população estatisticamente significante para estimar esterilidade.
Condições de Recuperação • Identidade de todos os potenciais
contaminantes é desconhecida - comprometimento na escolha do meio de cultura, temperaturas e tempos de incubação;
• Escolha destes meios – questionável. Sugere-se que uso de meio sólido ao invés de líquido seria mais apropriado.
Condições de RecuperaçãoProdutos oleosos: células microbianas podem
estar na matriz do produto - necessário extração com um solvente adequado, ou propiciar o contato do contaminante com fatores nutricionais do meio de cultura.
Condições de Recuperação• Produtos com componentes (conservantes)
que apresentem atividade antimicrobiana – inativação por diluição ou pela adição de inativador específico ao meio de cultura;
• MOs expostos a antimicrobianos - agredidos de forma sub-letal. Teste de esterilidade não incorpora mecanismo de recuperação, mas permite tempo para a sua restauração.
Outros Pontos Críticos
Evitar contaminação da amostra sob teste.
Outros Pontos CríticosCondições de Trabalho - qualidade do ambiente de
execução do ensaio deve ser muito bem controlada e conhecida, a fim de evitar resultados falso-positivos.
Outros Pontos Críticos• Preparo da Amostra - desinfecção da superfície
externa dos frascos, ampolas, ou outros materiais de acondicionamento e ou embalagem, com soluções anti-sépticas;
• Tempo de contato determinado experimentalmente frente aos contaminantes + prováveis de estarem presentes nas amostras.
• Eficiência destas soluções - comprovada periodicamente.
• No final - perfeita remoção deste agente químico.
Outros Pontos CríticosArmazenar unidades em ambiente apropriado, e violá-
las no momento da inoculação aos meios de cultura ou da dissociação ou diluição nos líquidos diluentes;
Cuidados de identificação das amostras - não provocar misturas, principalmente entre lotes diferentes do mesmo produto.
Meios de InoculaçãoInoculação Inoculação Direta Inoculação Indireta
InoculaçãoHá 2 possibilidades de inoculação da amostra no meio
de cultura: Direta Indireta
Técnica escolhida depende de diversos fatores: facilidade e disponibilidade da circunstância, a eficiência desejada e as limitações de ordem econômica.
Para qualquer forma de inoculação da amostra é importante que se avalie e comprove a sua não interferência ocasionando resultado falso-negativo.
Inoculação DiretaUtilizado desde a oficialização inicial da prova
de esterilidade em 1932;Consiste na inoculação de quantidades ou
volumes pré-estabelecidos da amostra em volumes estipulados de diversos meios de cultura, tanto na forma líquida, quanto na semeadura da amostra em nutriente sólido.
Inoculação DiretaFarmacopéias alíquotas devem ser transferidas
para o meio de cultura, a partir de cada unidade integrante da amostra representativa do lote;
Se o volume pequeno (de 0,5 a 1,0 mL) é recomendável que toda a quantidade existente seja analisada;
Se o volume for maior apenas uma quantidade parcial será analisada.
Suas VantagensSimplicidade;Seu histórico de uso;Fácil execução requer pouco treinamento;Necessidade de pouca manipulação;Baixo nível de contaminação ambiental.
De acordo com a natureza da amostra exigência de alguns recursos intermediários resultado do teste seja válido.
Suas DesvantagensBaixa representatividade da amostra;Consumo elevado de meios de cultura e
vidrarias;Possibilidade de geração de resíduos de
agentes inibitórios;Tempo de incubação necessário;Restrição para volumes a partir de 100mL;Interferência da turbidez do produto.
Inoculação IndiretaIntroduzida em 1957 por Holdowsky;
Baseia-se no tratamento prévio da amostra com solubilização ou lavagem em líquidos fisiológicos, seguida de filtração esterilizante e inoculação da membrana filtrante ao meio de cultura;
O produto a ser testado não entra em contato com o meio de cultura.
Membrana FiltranteComposição: ésteres de celulose, ou materiais
sintéticos que resistam a produtos agressivos;Diâmetro de 47mm, com borda hidrofóbica, e com
um tamanho de poro de 0,45 ± 0,02µm;Requisito primordial: satisfaça aos testes de
retenção microbiana e também de integridade.
Suas VantagensMaior representatividade estatística;
Redução de falso-negativos;
Redução no consumo de meios de cultura;
Abrangência a produtos com volumes de 1 mL até 5L.
Suas DesvantagensMaior nível de manipulação e preparações
prévias;Exigência de maior treinamento técnico;Não aplicável em suspensões, óleos, cremes e
pomadas não solubilizáveis; Aumenta o risco de falso-positivo.
Meios de CulturaNão é do conhecimento do analista qual é o
contaminante viável residual ou agente de recontaminação do produto antes de efetuar o ensaio.
Requer meios não-seletivos, para crescimento de diversos tipos de microorganismos.
Meios de CulturaForma líquida;Ao menos 2 tipos diferentes: meio para
aeróbios e para anaeróbios;Pode-se usar mais de 2 meios, visando
crescimento diferenciado.
Meios de CulturaIntrodução inicial da metodologia 1932Diversos nutrientes propostos e adotados ao
longo das revisões das farmacopéias.
Meio TioglicolatoComposição:
Hidrolisado pancreático de caseína 15 g
Extrato de leveduras (solúvel em água) 5 g
Glicose monoidratada/anidra 5,5g/5.0g
Cloreto de sódio 2,5 g
L-Cisteína 0,5 g
Tioglicolato de sódio 0,5 g
Solução 0,1% de resazurina de sódio 1 mL
Agar granulado (umidade não mais que 15%) 0,75 g
Água purificada 1000 mL
Polisorbato 80 (opcional) 5 mL
Meios de Cultura – AeróbiosUSP XVIII introduziu o emprego do meio de
caseína-soja.Detecção de bactérias aeróbicas e psicrófilas,
podendo abranger também fungos.
Meio Caseína-SojaComposição:Hidrolisado pancreático de caseína 17 g
Hidrolisado de soja por papaína 3 g
Glicose monoidratada/anidra 2,5 g / 2,3 g
Cloreto de sódio 5 g
K2HPO4 2,5 g
Água purificada 1000 mL
Polisorbato 80 (opcional) 5 mL
Meios de Cultura - FungosSeletividade questionável do caldo caseína-
soja para com bolores e leveduras.Recomendação da utilização do meio de
Sabouraud devido a sua conhecida seletividade para fungos.
Meio SabouraudComposição:
Hidrolisado pancreático de caseína 5 g
Hidrolisado péptico de tecido animal 5 g
Glicose 40 g
Ágar 23,5 g
Meios de CulturaDeve-se verificar a capacidade promotora de
crescimento dos meios verificação, ao menos, a cada lote de meio.
Neste teste: inoculação de 10 a 100 microorganismos viáveis, podendo ser de Staphylococcus aureus, Bacillus subtilis, Candida albicans, Clostridium sporogenes, Bacteroides vulgatus, Plectridium sphenoide etc.
Incubar todos os tubos nas condições idênticas do teste a ser executado com as amostras e observar o aparecimento de turvação até o sétimo dia.
TEMPO E TEMPERATURA DE INCUBAÇÃO
Tempo de IncubaçãoO primeiro método oficial, de 1932,
recomendava tempo de incubação de 5 dias. No decorrer das revisões farmacopeicas houve mudanças, passando a se adotar período de 7, 10 e 14 dias.
USP XXIV, de 2000, oficializou o período de incubação de 14 dias.
Tempo de IncubaçãoAtualmente, há 2 tendências:1) Farmacopéicas;2) Delegar ao fabricante o estabelecimento
do tempo de incubação, uma vez que este é quem melhor conhece as características do seu produto e as condições de produção do mesmo.
Tempo de IncubaçãoEm quase todos os casos, o microorganismo
contaminante encontra no produto farmacêutico condições adversas, muitas vezes mantendo a viabilidade sob a forma esporulada, o que exigiria cuidados quanto ao tempo de incubação das amostras para evitar resultado falso-negativo.
Temperatura30º a 37ºC para o meio de tioglicolato20º a 25ºC para outros
INTERPRETAÇÃO DO TESTE
InterpretaçãoObservação macroscópica do crescimento
microbiano, manifestado sob a forma de turvação do meio líquido ou aparecimento de colônias no meio sólido.
Interpretação
AplicaçõesInjetavéis
Preparações oftálmicas
Soluções parenterais
Implantes
Materiais médico-hospitalares
Aplicações
Métodos manuais
Equipamentos automatizados
O BacT/ALERT 3D Sistema de detecção microbiana
automatizada com tecnologia de ponta;
O equipamento, através de um sensor,detecta as mudanças de cor decorrentes da formação de CO2, gerado por mircrorganismos.
Vantagens
Alta capacidade de recuperação;Resultados rápidos, metade do tempo do teste
convencional; As amostras não são destrutíveis; Detecta os microrganismos positivos e
determina os negativos mais rapidamente do que com os métodos convencionais;
Reduz o trabalho do laboratório; Os frascos são continuamente agitados e a temperatura controlada;
Indicadores de EsterilizaçãoAssegurar a eficiência do processo esterilizante;
Os indicadores biológicos são os mais aconselhados;
Os indicadores biológicos ou bioindicadores, consistem em cepas de microrganismos na forma esporulada, de alta resistência ao processo esterilizante;
A inoculação dos bioindicadores deve ser feito no próprio produto para simular a condição em que se encontraria o contaminante natural.
Indicadores BiológicosCalor úmido: Bacillus stearothermophilus;
Radiação: Clostridium sporogenes, Strptococcus faecium, Bacillus sphericus, Bacillus pumilus e Micrococcus radiodurans;
Óxido de etileno: Bacillus subtilis var. niger.
REUTILIZAÇÃO SIMULADA DE PRODUTOS MÉDICO-HOSPITALARES DE USO
ÚNICO, SUBMETIDOS À ESTERLIZAÇÃO COM ÓXIDO DE ETILENO
Mônica Valero da Silva Terezinha de Jesus A. Pinto
Faculdade de Ciências da Saúde, Departamento de Farmácia, Fundação Universidade de BrasíliaDepartamento de Farmácia,Faculdade de Ciências Farmacêuticas, Universidade de São Paulo
Eletromicrografia de varredura da superfície interna de cateter intravenoso, mostrando aglomerado de Bacillus subtilis..
Eletromicrografia de varredura da superfície interna de torneira três vias, com presença de Bacillus subtilis.
Eletromicrografia de varredura da superfície externa do balonete de tubo de traqueostomia mostrando presença de Bacillus subtilis.
Conclusão: Estufa não se demonstrou efetiva na esterilização, 12% apresentou irregularidades.
ConclusãoEvolução da técnica;
Etapas críticas: amostragem, temperatura de incubação;
Método não é totalmente abrangente;
Garantia da Qualidade
Papel do farmacêutico: Novas Metodologias
Bibliografia Terezinha de Jesus Andreoli Pinto; “Controle biológico de qualidade de
produtos farmacêuticos, correlatos e cosméticos”; 2ª edição, Ateneu Editora São Paulo, 2003.
Jeanne Moldenhauer and Scot VW Suton; “Towards an Improved Sterility Test”; PDA Journal of Pharmaceutical Science and Technology; Vol. 58, N° 6, 2004.
http://www.biomerieux.com.br – Acessado em 01/10/09 Mônica Valero da Silva, Terezinha de Jesus A. Pinto; “Reutilização
simulada de produtos médico-hospitalares de uso único, submetidos à esterilização com óxido de etileno”; Revista Brasileira de Ciências Farmacêuticas, vol. 41, n. 2, abr./jun., 2005.
Maria Emiliana Magalhães Prado, Silvana Soléo Ferreira dos Santos, “Avaliação das condições de esterlização de materiais odontológicos em consultórios na cidade de Taubaté”; Rev. biociênc.,Taubaté, v.8, n.1, p.61-70, jan.-jun.2002.
USP (United States Pharmacopeia) 30 – NF 25 - volume 1 - <71> Sterility Tests