31st Annual Report

Central Veterinary Research LaboratoryPO Box 597, Dubai, UAE

www.cvrl.ae

2017

CVRL Organogram - 2018 (74 staff members)

Dr. Ali RidhaDirector General

Dr. Dr. habil. Ulrich WerneryScientific Director

Office SecretaryMr. Abdul LatheefMiss. Jeanne VillarealMr. Francis JosephMrs. Susan Titus

Animal HusbandryDr. Vijaya BaskarMr. Thanveer SharifMr. Waqas KamalMr. MatinMr. Fazal WaheedMr. Zaheer Ahmed

AccountsMr. Nasarullah ChaudhryMrs. Farida Al-HashmiMr. Mustafa Jaffar

Information TechnologyMr. Rajan BabuMr. Dhilshad MaliakkalMr. Jamsheer MoideenMr. Sajith Jalal

Purchase & StoresMr. Suresh BabuMr. Nijum NazarullaMr. Abdul Rehman

Wildlife Protection OfficeMr. Khalid Shaikh

Analytical ChemistryMrs. Jyothi AnandhMrs. Preetha VargheseMr. Yousuf AbubakerMr. Razaul Karim

Haematology & BiochemistryMrs. Ringu MareenaMr. BalakrishnanMr. Tahir Zaman

BacteriologyMrs. Bobby JohnsonMrs. Marina JosephMrs. Sherry JoseMrs. Shanty JoseMr. ShanmugarajaMrs. Jeeba JohnMr. Alam Gir SiddiqueMr. Mathai VergheseMr. Albert Loria RosalesMr. Pratap Lama

SerologyMiss. Rekha RaghavanMrs. Ginu SyriacMr. John ChristopherMrs. Shruti ThomasMrs. Nayana PailyMr. Anwar Sadath

VirologyMrs. Renate Wernery

(PR Manageress)Dr. Sunitha JosephMrs. Nissy GeorgyMrs. Shyna KorahMrs. Rubeena MuhammedMr. Abdul KhadarNissarudeen

ParasitologyProf. Dr. Rolf SchusterMrs. Saritha SivakumarMr. Zulfiqar Ali

Pathology/HistopathologyDr. Jörg KinneMr. Chellapan VishwanathanMrs. Sweena LiddleMr. Aamir AliMr. Zia Ur Rehman

TaxidermyMrs. Corina BernersMr. Andre AppeltMr. Dean TugadeMr. Tilak ChettriMr. Upakar Tamang

Public RelationMr. Cherian SajiMr. Nijab Nazarulla

DriversMr. Ibrahim KoothradanMr. Muhammed Ashar

MaintenanceMr. Salim AliMr. Muhammad BilalMr. Dildar Riaz

GardeningMr. Uzair GhulamMr. Muhammad Sohail

1

2

General Information 

This is CVRL’s 31th Annual Report. All previous Annual Reports are available at CVRL. They are 

an immense source of information on animal diseases in the United Arab Emirates and abroad. 

Additionally, research results from the last three decades are also presented. This information 

is crucial for prophylaxis and prevention of animal diseases. CVRL has so far written more than 

625 scientific publications. It should additionally be mentioned that over the span of 31 years, 

CVRL’s scientists have isolated and archived more than 5000 bacterial, viral and fungal strains 

in our microbank. This is a unique and irreplaceable culture collection for future research.  

 

CVRL  was  awarded  the  CERTIFICATE  OF  ACCREDITATION  in  June  2014,  after  it  met  the 

requirements  of  the  IAS  Accreditation  Criteria  for  Testing  Laboratories  (AC89),  by 

demonstrating  compliance  with  ISO/IEC  Standard  17025:2005.  In  2018  CVRL  will  expand  its 

scope of accreditation including the BLS3. 

 

CVRL has successfully implemented the complete panel of import/export testing for pet travel 

including Rabies antibody testing (Page 33). 

 

We also can announce with pride that most of our veterinary vaccines are now registered with 

the  UAE Ministries  of  Climate  Change  and  Environment  (MOCCAE)  and  Health  (MOH)  (Page 

36). 

 

 

3

Haematology / Biochemistry Department    Table 1: Haematology and biochemistry of camels, horses, falcons and other animal species* 

 Owner  Species  2016  2017

No of Samples  No of Tests No of Samples No of Tests

H.H. Sh. Mohammed bin Rashid Al Maktoum   Camel 5,954  33,616 10,672 45,725

H.H. Sh. Hamdan Bin Rashid Al Maktoum  “  1,684  17,827 304 3,463

Sh. Hamdan Bin Mohammed Al Maktoum  “  102  845 22 325

Other Sheikhs  “  498  5,111 44 609

Abu Dhabi Camel Racing Club  “  ‐  ‐ 6,091 24,348

Bedouins  “  1,178  13,173 841 11,278

Total  Camel  9,416  70,572 17,974 85,748

‐  Equine  1,182  18,444 906 17,562

‐  Falcon  112  784 66 901

‐  Canine 162  1,841 170 2,685

‐  Feline 148  1,998 97 1,408

‐  Gazelle 107  1,812 321 2,044

‐  Human 49  1,188 23 582

‐  Dolphin 213  1,610 134 1,463

‐  Others*  453  3,480 440 3,889

Total  11,842  101,729 20,131 116,282

  *  Goat, sheep, cattle, birds, giraffe, etc. 

4

Table 2: Early inflammatory response 

Test  Species  Year  Total  Normal  Elevated 

Serum Amyloid A  (SAA) 

Falcon 2016  3  3  0 

2017  1  1  0 

Equine 2016  803  637  166 

2017  671  592  79 

Others* 2016  4  ‐  ‐ 

2017  8  ‐  ‐ 

Fibrinogen (Fb) 

Equine 2016  401  362  39 

2017  98  98  0 

Dolphin 2016  188  ‐  ‐ 

2017  85  ‐  -

Others* 2016  35  ‐  ‐ 

2017  16     

*Seal, Dolphin, Camel, etc 

Reference values: SAA (Falcon)  : 0‐4 µg/ml ;  

SAA (Equine)   : 0‐20 µg/ml 

Fb (Equine)   : 100 – 400 mg/dl 

 

Table 3: Hormone analysis 

Hormones  2016  2017 

T3  50  54 

T4  63  89 

Progesterone  387  269 

Esteradiol  75  66 

Testosterone  293  255 

Cortisol  187  127 

Vitamin B12  ‐  48 

Troponin T  ‐  16 

Total  1,055  924 

5

Table 4: Results of blood parasites and bacteria investigation of blood smears  

Year Total no. of 

samples tested

Positive 

Species  *Parasites/Bacteria 

2016  596 

Camel  18 Trypanosoma 

Avian  10 Haemoproteus spp. 

Equine  3 Piroplasma 

Feline  1 Cytanxzoon felis 

Bovine  1 Theileria annulata 

2017  462 

Camel  2 Trypanosoma 

Avian  6 Haemoproteus 

Equine  1 Piroplasma 

Feline  3 Mycoplasma haemofelis 

Goat  1 Anaplasma 

Bovine 1 Anaplasma 

2 Theilaria annulata 

* See also under Parasitology Department, Page No: 18

6

Bacteriology Department  

Table 5: Consignments and total number of specimens   

Species Number  Consignments  Number  Specimens 

2016  2017  2016  120 7 

Camels  1,234  30.8%  1,372  28.5%  5,016  42.0%  5,969  41.5 

Equine  733  18.3%  907  18.9%  1,404  11.8%  1,650  11.5 

Bovine  642  16.0%  674  14.0%  1,180  9.9%  1,552  10.8 

Canine  148  3.7%  314  6.5%  229  1.9%  437  3.0 

Feline  79  2.0%  199  4.1%  122  1.0%  305  2.1 

Falcons  111  2.8%  87  1.8%  327  2.7%  269  1.9 

Others*  1,063  26.5%  1,254  26.1%  3,665  30.7%  4,216  29.3 

TOTAL  4,010    4,807    11,943    14,398   

* See Table 6 

Year  Consignments  Specimens 

1995  1,354  5,103 

1996  1,677  7,215 

1997  2,914  12,114 

1998  3,044  12,024 

1999  2,919  9,698 

2000  2,686  9,826 

2001  3,802  13,536 

2002  4,887  18,093 

2003  4,975  17,533 

2004  3,788  14,493 

2005  3,923  16,248 

2006  4,204  20,146 

2007  3,934  19,481 

2008  3,636  20,211 

2009  4,031  19,706 

2010  3,165  8,870 

2011  3,344  9,554 

2012  3,240  9,090 

2013  3,279  9,322 

2014  3,869  12,575 

2015  3,961  12,134 

2016  4,010  11,943 

2017  4,807  14,398 

7

Table 6: Consignments and total number of specimens of ‘Others’ from Table 5  

Species  Consignments Specimens  Species  Consignments Specimens 

Avian  144  446  Rhea  5  19 

Bustard  102  467  Rhinoceros  1  1 

Chicken  63  547  Rodent  4  9 

Crocodile  19  77  Ruminant  1  1 

Dolphin  37  94  Sea Lion  1  1 

Donkey  1  5  Seahorse  2  3 

Fish  30  65  Seal  6  9 

Fox  1  5  Sheep  21  74 

Francolin  1  2  Snail  1  1 

Frog  4  8  Snake  23  94 

Gazelle  101  396  Socotra cormorant  3  4 

Giraffe  10  19  Sting Ray  1  4 

Goat  16  72  Swan  1  3 

Guinea Pig  10  41  Tinamou  3  11 

Hamster  3  3  Tortoise  9  24 

Hare  2  5  Turkey  1  4 

Hippopotamus  2  21  Turtle  17  64 

Hornbill  1  5  Vulture guinea fowl  1  4 

Human  23  27  Wallaby  3  12 

Hyena  2  4  Wolf  4  11 

Ibis  1  1  Other Samples     

Lizard  4  9  Air Settle Plates  2  7 

Meerkat  1  4  Alfalfa  2  2 

Mixed  2  5  Biological indicator  92  184 

Mouse  1  8  Date Syrup  1  7 

Ostrich  7  31  Feed  79  154 

Otter  1  1 Food for Human Consumption  16  47 

Owl  7  21  Hay  1  1 

Parrot  29  104  Honey  49  75 

Pelican  1  4  Ice  2  2 

Penguin  11  61  Oil  6  6 

Pheasant  16  53  Sand  2  5 

Pigeon  39  118  Slide  1  1 

Porcupine  1  5  Soil  1  1 

Primates  36  124  Water  80  144 

Quail  26  159  Others  29  122 

Rabbit  12  31  Total (2017)  1,254  4,216 

Reptile  16  57  Total (2016)  1,063  3,665 

*Species not mentioned 

8

Table 7: Submissions by the following senders  

Sender  Consignments Specimens 

Count % Count  %

Emirates Industries for Camel Milk and Products  531  11.0  2,518  17.5 

Dr. Zahid Naeem  630  13.1  1,384  9.6 

Central Veterinary Research Laboratory  211  4.4  1,144  7.9 

Dubai Equine Hospital  637  13.3  1,002  7.0 

Dr. Ashraf Abdulla   140  2.9  836  5.8 

Zabeel Veterinary Hospital  272  5.7  711  4.9 

Nakhli Dairy Farm  314  6.5  685  4.8 

Dr Mohamed Ali Soyi   37  0.8  403  2.8 

Dubai Safari  90  1.9  392  2.7 

Mr. Khalifa Saif Magoodi  62  1.3  325  2.3 

Dr. Adriana Nielsen   85  1.8  311  2.2 

Two Feet Four Paws Vet. Clinic  167  3.5  259  1.8 

Dr. Muhammed Amir Saeed   29  0.6  238  1.7 

Dubai Camel Hospital  98  2.0  203  1.4 

Al Wasl Vet Clinic  49  1.0  192  1.3 

Dubai Falcon Hospital  45  0.9  145  1.0 

Dr. Andrew Dalglish   32  0.7  120  0.8 

Dr. Yousef Kassab (Government ‐ QAT)  79  1.6  110  0.8 

Houbara Breeding Center  17  0.4  108  0.8 

Mr. Kevin Hyland  24  0.5  90  0.6 

Dr Salman Ahmed (UAE)  11  0.2  80  0.6 

Pet Connection Vet Clinic  73  1.5  77  0.5 

Dubai Racing Club  21  0.4  75  0.5 

Mr. Declan O Donovan   18  0.4  75  0.5 

Dubai Dolphinarium  18  0.4  74  0.5 

Camel Reproduction Centre  39  0.8  73  0.5 

Others  1,078  22.4  2,768  19.2 

Total (2017)  4,807  ‐  14,398  ‐ 

Total (2016)  4,010  ‐  11,943  ‐ 

Total (2015)  3,961  ‐  12,134  ‐ 

 

9

Table 8: Total number of milk samples and milk products tested 

Sample  No. of samples 

Raw Milk  2,729 

Pasteurized Milk & Products  2,288 

Milk Powder  11 

Grand Total (2017)  5,028 

Grand Total (2016)  4,638 

Grand Total (2015)  4,761 

Grand Total (2014)  4,487 

Table 9:  Bacteriological results of raw milk samples tested for human consumption 

Species  Owner  Location 

No. of samples 

Total Suitable*  Not suitable 

Count  %  Count  % 

Camel 

HH Sh Hamdan Bin Mohammed Al Maktoum  

Nad Al Sheba Camel Farm 

783  351  44.8  432  55.2 

HH Sh Hamdan Bin Rashid Al Makthoum  

Al Safa  728  616  84.6  112  15.4 

HH Sh Mohammed Bin Rashid Al Makthoum  

Mahmiya Camel Milking Farm 

154  118  76.6  36  23.4 

Others  48  28  58.3  20  41.7 

Total  1,713  1,113  65.0  600  35.0 

Bovine 

HH Sh Hamdan Bin Rashid Al Makthoum  

Al Aweer  634  421  66.4  213  33.6 

HH Sh Mohammed Bin Rashid Al Makthoum 

Nakhli Dairy Farm  13  12  92.3  1  7.7 

Sheikha Mariyam bint Rashid Al Maktoum   78  28  35.9  50  64.1 

Others  9  0  0.0  9  100.0

Total  734  461  62.8  273  37.2 

Grand Total (2017)  2,447  1,574  64.3  873  35.7 

  Grand Total (2016)  2,499  1,599  64.0  900  36.0 

*   All milk samples were judged according to the European Union cow milk regulations Not suitable:  Total Plate Count(TPC) ≥ 50,000 cfu/ml, Coliform count ≥ 20 cfu/ml 

Staphylococcus aureus count ≥ 100 cfu/ml, CMT: positive 

10

Table  10:   Bacteriology results of pasteurized milk  

* Suitability of samples were judged according to UAE.S/GSO 1016:2014 standards.  

 

Table  11:   Bacteriology results of special culture for the isolation of Mycoplasma sp.  and Brucella sp. from raw milk samples

Test  Species  Year Total 

Samples Isolated 

Not Isolated 

Mycoplasma sp.  Bovine 

2015  2  0  2 

2016  9  0  9 

2017  6  0  6 

Brucella sp. 

Bovine 

2015  14  5*  9 

2016  7  2*  5 

2017  3  1*  2 

Camel 

2015  57  3* 54 

2016  30  12*  18 

2017  19  0  19 

* B.melitensis  

Species  Year 

No. of Samples 

Total Suitable*  Not Suitable* 

Count  %  Count  % 

Camel 

2017 (EICMP)  1,610  1,574  97.8  36  2.2 

2016 (EICMP)  1,606  1,514  94.3  92  5.7 

2015 (EICMP)  1,466  1,456  99.3  10  0.7 

Bovine 

2017 (Nakhlee farm) 567  518  91.4  49  8.6 

2016 (Nakhlee farm) 322  314  97.5  8  2.5 

2015 (Nakhlee farm) 289  285  98.6  4  1.4 

11

Table  12:  Salmonella  strains  isolated  from  different  animal  species 

Species Salmonella 

isolates Species 

Salmonella  

Isolates 

Avian  8  Pintail Sandgrouse  1 

Bustard  10  Primate  47 

Camel  59  Quail  8 

Canine  1  Reptile  7 

Cattle  3  Snake  44 

Chicken  21  Toad  1 

Cockatoo  1  Tortoise  4 

Crocodile  9  Total (2017)  305 

Equine  42  Total (2016)  231 

Falcon  13  Total (2015)  295 

Feline  9  Total (2014)  209 

Flamingo  2  Total (2013)  187 

Gazelle  1  Total (2012)  110 

Goat  2  Total (2011)  158 

Lizard  4  Total (2010)  199 

Parrot  1  Total (2009)  232 

Pheasant  1  Total (2008)  181 

Pigeon  6     

12

Table  13:  Mycoplasma  strains  isolated  from  different  animal  species 

 

Species Mycoplasma sp. isolates

Chicken  1 

Goat  2 

Falcon  1 

Total (2017)  4* 

Total (2016)  13* 

Total (2015)  15 

Total (2014)  20 

Total (2013)  1 

Total (2012)  3 

Total (2011)  11 

Total (2010)  12 

Total (2009)  64

* Isolated strains are not serotyped 

 

Table  14:  Brucella strains  isolated  during the year 2017 (not from milk) 

 

Species Brucella sp. isolates

Camel**  36* 

Total (2017)  36 

Total (2016)  41* 

Total (2015)  1* 

Total (2014)  2* 

Total (2013)  4* 

* All Brucella melitensis 

** Brucella project trial camels 

13

Special Isolates: 

Bacteria: 

Bacteria No. of strains

Source 

Bordetella avium  2  Quail (lung), plate for identification 

Brucella melitensis 36 

Camel (lymph nodes, organs of Brucella project trial camels) 

1  Bovine (milk) 

Campylobacter coli  2  Squirrel monkey (faecal swab) 

Campylobacter fetus ssp fetus  2  Primates (faecal swab) 

Campylobacter jejunii ssp. jejuni  6  Chicken (intestine) 

Corynebacterium pseudotuberculosis 

9 Camel (abscess, abscess swab, lung, joint fluid) 

Erysipelothrix rhusiopathiae  1  Common marmoset (organs) 

Ignatzschineria dubaiensis  5  Camel (foot cancer cases, leg wound) 

Legionella pneumophila  13  Tap water, tank water 

Methicillin Resistant Staphylococcus aureus (MRSA) 

21 

Equine (guttural pouch, wound swab, abscess, uterine swab, incision swab), Falcon (oropharyngeal swab), Canine (swab, tissue mass), Dolphin (blowhole swab), Hamster (hind leg swab) 

Methicillin Resistant Staphylococcus pseudintermedius (MRSP) 

20 Canine (skin swab, wound swab, urine, lung, ear swab, vaginal swab, ear skin, skin scrapings)  

Mycobacterium avium ssp. avium  1  Duck (liver) 

Mycobacterium spp   3  Camel (lung), Elephant (trunk wash) 

Mycobacterium tuberculosis  1  Gibbon (liver, spleen) 

Pasteurella testudinis  2  Tortoise (nasal discharge swab) 

Rhodococcus equi  23 Equine (transtracheal wash, abscess, abscess swab, lung, uterine swab) 

Streptococcus intermedius  1  Canine (throat swab) 

Fungus: Malassezia pachydermatis  ‐ Canine and Feline: mainly from ear swab Microsporum canis  ‐ Canine and Feline Zygosaccharomyces bailii  ‐ Honey Cryptococcus albidus  ‐ Feline (Eye swab) Zygosaccharomyces bailii  ‐ Honey  Algae: 

Prototheca zopfii   ‐ Camel (lung 

14

Fig.  1:  Results of enterotoxaemia ELISA for Clostridium perfringens and its toxins 

*Others: Bovine, Giraffe, Reptile etc. Table 15:  Number of samples (culture supernatants) confirmed as Clostridium 

perfringens and its toxins 

 Species  Cl. perfringens Alpha toxinBeta toxin 

Epsilon toxin 

Non toxic 

Avian  91  76  ‐  1  14 

Camel  95  90  ‐  2  3 

Canine  35  30  ‐  ‐  5 

Caprine/Ovine  12  12  ‐  3  ‐ 

Dolphin  5  5  ‐  ‐  ‐ 

Equine  38  37  ‐  ‐  1 

Falcon  43  41  ‐  ‐  2 

Feline  33  30  ‐  ‐  3 

Gazelle/Antelope  34  32  ‐  1  1 

Others*  50  31    ‐  19 

Total (2017)  436  384  ‐  7  48 

Total (2016)  324  319  ‐  9  3 

Total (2015)  355  355  ‐  6  ‐ 

*Others: Bovine, Giraffe, Reptile etc.

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

100

No. o

f cases

Species

Cl Perfringens

Alpha

Beta

Epsilon

15

Table 16:   Feed samples tested for mycotoxins   

Toxin test  Consignments Feed samples and toxin levels detected 

2016  2017 

Aflatoxin (ELISA) 

2016  2017 No. of Samples 

 20ppb No. of Samples 

 20ppb 

79  93  167  0  179  1 

Fumonisin 

(ELISA) 

2016  2017 No. of Samples 

 5ppb No. of Samples 

 5ppb 

10  29  29  0  60  0 

Aflatoxin:   20ppb levels in feed is considered as TOXIC Fumonisin   5ppm levels in feed is considered as TOXIC 

16  

Department of Parasitology The  Parasitology  department  examined  3,637  routine  samples  in  the  year  2017.  The majority  of  the  samples  originated  from  camels  (n=1176)  followed  by  birds  (n=806), canids  (n=415),  game  (n=326),  equids  (n=241) and  felids  (n=241)  (Table 17). Amongst other examined hosts were reptiles (n=115), primates (n=46), rodents and lagomorphs (n=43) and fish (n=27). Samples from marsupials, sea mammals and mongoose occurred in  lower  numbers.  The  sample  consisted  mainly  of  faecal  samples,  intestines,  skin scrapings and blood samples and isolated parasites sent in for determination (Table 18).  

Table 17: Number of samples from different host species 

Host Year

2012  2013  2014  2015  2016  2017 

Camelids 4,192  2,948  4,864  3,351  2,037  1,178 

Birds 268  350  410  411  687  806 

Game 96  76  118  79  131  326 

Goat and sheep 87  35  266  70  80  74 

Felids 156  115  94  69  112  241 

Canids 189  199  207  136  197  415 

Equids 119  110  134  342  392  241 

Others 161  124  141  159  298  365 

Total 5,268  3,959  6,241  4,617  3,934  3,637 

 

Table 18: Materials sent for parasitological examination in 2017 

Material Month 

TotalJan  Feb  Mar  Apr  May  Jun  Jul  Aug  Sep  Oct  Nov  Dec 

Faeces  285  201  161  151  267 194  196  290  147  257  257  326  2,732

Intestines  33  21  42  31  51  36  44  57  36  52  44  111  558 

Helminths  1  4  4  1  1  3  3  1  4  1    3  26 

Skin scrapings  7  6  8  14  12  15  10  8  3  4  1  3  91 

Ticks                  48      1  49 

Feed/water  4  9  2  1        2  2  3  5  3  31 

Blood  7  8  2  8  6  1  4  13  6  1  3  4  63 

Cysts  2    1  3  1    2  1    1  2  3  16 

Flies/maggots          2    1        1    4 

Carcasses  2      1  2                5 

Stomachs  16  4      1  2            1  24 

Plants    1                      1 

Others      5    6  1  8  3    10  2  2  37 

Total  357  254  225  210  349 252  268  375  246  329  315  457  3,637

 

   

17  

Camels 

Out of 935 faecal samples from racing and breeding camels, 177 (18.9%) were positive for endoparasites.  

Oocysts of Eimeria cameli (8.1%) followed by E. dromedarii (4.2%), E. rajasthani (1.7%) and Nematodirus  eggs  (2.2%) were  the most  frequently diagnosed camel parasites while other nematodes Trichostrongylus  spp.  (1.4%), Capillaria  sp.  (1.1%), Trichuris spp. (0.6%) and cestode eggs (Moniezia 0.9%), were less frequent. 

Out of 161 camel calf samples, 8 faecal samples were positive for Cystoisospora orlovi and two for Cryptosporidium oocysts.   E. cameli oocysts were found  in one sample only. Nematodirus  and Strongyloides  eggs were  detected  in  five  and  one  samples, respectively.  

Out  of  9  camel  stomachs  examined  6  abomasi  were  positive  for  Physocephalus dromedarii.  

Hyalomma dromedarii was the only tick found on UAE camels (22 cases).  

Sarcoptes scabiei mites were detected in two out of 13 submitted skin scrapings. 

Five cases of hydatid cysts in the lung and/ or liver of adult camels were seen. 

Three cases of maggot infestation mainly with “foot‐ cancer” were presented. All fly larvae belonged to Sarcophagidae. 

 

Birds 

The spectrum of examined birds consisted of more than 100 species.  

Chicken (n=129) and other galliform birds  (n=109) were  infected with Eimeria spp., Ascaridia galli, Heterakis gallinarum and Raillietina spp. 

In  falcons  (n=59) Porocaecum angusticolle was  the most  frequent parasite  (22% of samples).  Serratospiculum  sp.,  Cladotaenia  sp.  and  Avispora  megafalconis  and  A. neofalconis were less frequent. 

Twenty‐one  (=16%)  out  of  132  bustards  were  infected  with  parasites  (Avispora megafalconis,  Hispaniolepis  falsata,  Otiditaenia  conoides,  Hispaniolepis  falsata, Idiogenes otidis, Empodius taeniatus and Sphaerirostris embae) were diagnosed. The feather louse, Otidoecus houbarae, was the only ectoparasite found.  

One out of  seven barn owls was  infected with hypopi  (Deutonymphs nestmites) of Tytodectes sp. 

 Philophthalmus aweerensis was found under the eyelids of two rheas and one pigeon.  

   

18  

Equids 

Out of 241 equid samples, 107 were diarrhetic foal faeces of which 62 (=58%) were positive for Cryptosporidium oocysts. Cryptosporidiosis seems to be an increasing foal disease. 

Four cases of Habronema muscae in stomachs of adult horses. 

Parascaris  equorum  and  small  strongyles  were  seen  in  four  and  two  samples, respectively 

Eggs of Gastrodiscus aegyptiacus, a trematode that  lives  in the gut of equids was a remarkable finding since water snails are involved in the life cycle of this parasite. 

 

Canids  

Out of 415 canid samples, 248 were routine check‐ups with coccidians (Cystoisospora canis and C. ohioensis), ascarids (Toxocara canis and Toxascaris leonina), hookworms (Ancylosoma sp.) and whipworms (Trichuris vulpis) being the most frequent species found. 

Trematode  eggs  in  three  samples  and  lungworm  larvae  in  one  sample  were remarkable findings. 

Out  of  121  screened  diarrhetic  samples  nine  (=7.4%)  were  positive  for  flagellates (Giardia and Trichomonas like). 

The  spectrum  of  diagnosed  arthropods  consisted  of  four  cases  of  tick  infestation (Rhipicephalus  sanguineus),  three  cases  of  demodicosis  and  each  one  case  of Neotrombicula  sp.  and  Ctenocephalides  canis.  The  latter  parasites  are  remarkable because harvest mites and dog fleas are untypical for the UAE. 

A  total  of  31  blood  samples  were  tested  for  Dirofilaria microfilariae;  all  samples negative. 

 

Felines 

Out of 241 feline samples, 197 were routine check‐ups. Of these, 25 (=10%) samples were positive for parasites (Toxascaris leonina, Cystoisospora felis, Ancylostoma sp.). 

All 21 diarrhetic faecal samples were tested for the presence parasitic flagellates with negative result. 

A  total  of  10  blood  samples  were  tested  for  Dirofilaria  microfilariae;  all  samples negative. 

   

19  

Game 

Out of 326 samples from game, 288 were sent for routine examination or originated from  necropsied  animals.  Of  these,  86  (=26%)  samples  were  positive  mainly  with Eimeria spp. (n=58) and/or nematode eggs (n=32). 

All 16 diarrhetic faecal samples were tested negative for parasites. 

 

Reptiles 

Out of 16 tortoises five were infected with nematodes of the genus Tachygonetia. 

Caryospora oocysts were found in one out of 53 snake samples 

Two  saw  scaled  vipers  were  infected  with  intestinal  tapeworms  of  the  genus Ophiotaenia. The same snakes showed a heavy infection with larval stages of feline cestodes of the genus Joyeuxiella and Diplopylidium. 

Larval  stages  of  the  acanthocephalans  Macracanthorhynchus  catulinus  and Centrorhynchus aluconis were found in an indigenous wadi racer. 

 

Tick survey 

A  tick  survey  organised  by  Dubai  Municipality  Veterinary  Services  revealed  the presence  of  Hyalomma  dromedarii  on  camels  and  H.  anatolicum  excavatum,  H. detritum detritum and H. marginatum marginatum on cattle, sheep and goats. A single specimen of Rhipicephalus senegalensis was found on sheep. 

 

Antigen production 

A  total  of  5  batches  of  dourine  antigen was produced  (69  vials  of  one ml/vial)  for serology department plus 2 batches for immunisation of a horse donated by ERA. The serum of this horse is used as positive control.

 

20

Serology Department   Table 19:  Consignments and total number of sera tested  

Species Consignments  Sera 

2015  2016 2017 2015 2016  2017 

Equine  3,264  3,528 3,291 12,012 11,945  10,801 

Camel  1,062  774 727 11,520 8,289  8,099 

Avian  143  133 157 342 280  217 

Caprine/Ovine  62  106 62 618 1082  591 

Bovine  29  40 43 210 132  348 

Others  155  193 389 475 267  498 

Total   4,715  4,774 4,669 25,177 21,995  20,554 

    Fig. 2:    Total number of equine sera tested since 1997 

  

0

2,000

4,000

6,000

8,000

10,000

12,000

14,000

16,000

1,076

2,490

3,1242,835

3,5674,276

5,383

7,8098,563

9,880

9,0709,1109,859

15,67715,218

9,78710,415

12,26512,012 11,945

10,801

To

tal

no

Year

21

Fig. 3:   Percentage of equine samples tested at CVRL for Notifiable Diseases from different countries /Emirates 

Others*: Hong Kong, Syria, Egypt, etc. 

 Fig. 4: Number of samples tested for African Horse Sickness (AHS) by 

competitive ELISA  

 

Disease  Total  Positive  Negative 

AHS  4,179  78*  4,101 

* vaccinated animals  

46.0%

11.5%

10.5%

8.3%

6.2%

6.2%

6.0%

2.2%1.0%

2.1%

Dubai

Qatar

Saudi Arabia

Sharjah

Bahrain

Kuwait

Abudhabi

Oman

Jordan

Others*

0

500

1,000

1,500

2,000

2,500

3,000

3,500

4,000

4,500

5,000

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

2011

2012

2013

2014

2015

2016

2017

604

1,413

2,1312,0872,374

2,9553,1233,181

4,0064,3164,215

4,488

4,928

4,421

3,650

4,605

4,256

4,7374,460

4,825

4,179

Samples

Year

22

Fig. 5: Number of samples tested for Equine Infectious Anaemia (EIA) by Agar Gel Immunodiffusion (Coggins) 

Disease  Total  Positive  Negative 

EIA  7,800  0  7,800 

 Fig. 6:   Number of samples tested for Equine Viral Arteritis (EVA) by Virus 

Neutralisation Test (VNT)

Disease  Total  Positive  Negative 

EVA  1,575  8*  1,567 

* Qatar, Saudi Arabia, Bahrain, Egypt (vaccinated and non‐vaccinated) 

0

1,000

2,000

3,000

4,000

5,000

6,000

7,000

8,000

9,000

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

2011

2012

2013

2014

2015

2016

2017

481

1,3451,750

2,5122,838

3,3313,905

3,9854,682

5,8625,647

6,5566,875

6,587

5,731

6,9257,502

8,5258,431

7,7587,800

Samples

Year

0

200

400

600

800

1,000

1,200

1,400

1,600

1,800

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

2011

2012

2013

2014

2015

2016

2017

215 251

520582

1,3731,477

1,2271,222

1,447

1,1511,176

1,252

1,186

1,481

1,108

1,388

1,5761,553

1,7381,621 1,575

Samples

Year

23

Fig. 7:   Number of samples tested for Dourine by Complement Fixation Test (CFT)

Disease Total  Positive  Negative 

Dourine  6,393  2*  6,391 

* Cross reaction  Fig. 8:  Number of samples tested for Glanders by Complement Fixation 

Test (CFT)       

    

Disease  Total  Positive  Negative  Cross‐reaction (CFT) 

Glanders  7,310  0  7,305  5* 

* All samples were tested negative with CVRL cELISA for Glanders. 

0

1,000

2,000

3,000

4,000

5,000

6,000

7,000

8,000

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

2011

2012

2013

2014

2015

2016

2017

206

1,1001,508

2,0412,119

2,714

2,108

3,157

4,094

4,874

4,118

4,827

6,1165,581

4,802

5,631

6,242

7,0386,909

6,382 6,393

Samples

Year

0

2,000

4,000

6,000

8,000

10,000

12,000

14,000

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

*2010

*2011

2012

2013

2014

2015

2016

2017

1751,068

1,5482,0672,128

2,7113,119

3,5094,265

5,706

4,1654,841

6,458

12,53811,808

5,676

6,652

7,8997,6517,849

7,310

Samples

Year

24

Table 20:  Number of samples tested for Strangles (Antigen A and C) by ELISA 

Year Strangles ELISA 

Total  Pos.  Neg.  Dubious 

2016 Antigen A  2,951  221 (7.5%)  2,283  94 

Antigen C  2,951  79 (2.7%)  2,444  75 

2017 Antigen A  4,099  128 (3.1%)  3,926  45 

Antigen C  4,099  93 (2.3%)  3,976  30 

 

Table 21:   Results of Equine Herpes virus antibody ELISA 

Year 

Equine herpes virus ELISA (EHV 1 & EHV 4 Ab ELISA) 

EHV 1  EHV4 

Total  Pos  Neg  Dubious  Total  Pos  Neg  Dubious

2014  20  2*  17  1  19  16*  2  1 

2015  76  9*  63  4  58  56*  2  0 

2016  46  0  46  0  18  14*  4  0 

2017  41  7*  34  0  41  39*  2  0 

    * Routine samples with unknown vaccination history 

 Table 22:   Results of equine sera tested for Piroplasmosis ELISA 

Parasite  Year  Total   Pos  Neg  Dubious 

T.equi 2016  287  50 (17.4%)  237  0 

2017  212  20 (9.4%)  192  0 

B.caballi 2016  287  4 (1.4%)  283  0 

2017  212  4 (1.9%)  208  0 

Table 23:  Results of Trypanosoma evansi tests in equines 

Year Surra Ab ELISA* 

Total  Pos  Neg  Dubious 

2014  21  0  21  0 

2015  24  0  24  0 

2016  393**  0  393  0 

2017  140**  0  140  0 

*  Test requested for pre‐export samples from the UAE to Singapore, Hong Kong, Japan and Australia 

**  Mostly OIE Turkmenistan survey  

25

Table 24:  Results of Equine Protozoal Myeloencephalitis (EPM) by Western Blot method 

Year 

EPM by Western Blot method 

Sarcocystis neurona  Neospora hughesi 

Total  Pos  Neg  Dubious  Total  Pos  Neg 

2013  1  0  0  1  1  0  1 

2014  6  0  6  0  6  0  6 

2015  10  0  9  1  10  1  9 

2016  6  0  5  1  2  0  2 

2017  3  0  3  0  1  0  1 

     Test kit for detection of Glanders in Equids  The  LilliTest  Glanders  cElisa  test  kit  for  diagnosis  of  Glanders  has  been  developed  and produced at CVRL, UAE (OIE Reference Lab for Glanders) and is being globally marketed by Lillidale Diagnostics.  Glanders is a highly contagious disease of equids caused by the Gram‐negative bacterium Burkholderia mallei. The organism is obligatory aerobic, nonspore forming and nonmotile. The disease is currently confined to some areas of Asia, the Middle East, Africa and South America. The disease  is  characterized by nodules and ulcers  in  the  skin, and by conchal and lung granulomas. Both acute (especially in donkeys) and chronic (especially in horses) forms of the disease occur.   No vaccines are currently available against  this disease. Glanders  is a potential  zoonosis and a notifiable disease.  Ordering information:  LilliTest Glanders cElisa, 2 plates + reagents sufficient for 80 tests, Cat#VE‐3001 Lillidale Diagnostics is a Trading Name of Lillidale Ltd.  Badbury View, Bothenwood, Wimborne, Dorset,  BH21 4HU England  Tel +44 (0)1202 848456  Fax +44 (0)1202 848570  www.lillidlae.co.uk  Email: sales@lillidale.co.uk   

26

Fig. 9:  Results of Trypanosoma evansi antibody ELISA in camels over 22 years 

CAMEL 

            Year Trypanosoma evansi 

Total  Pos  %  Neg  Suspect

1995  1,481  207  14.0  1,274  ‐ 

1996  1,761  145  8.2  1,616  ‐ 

1997  2,474  182  7.4  2,292  ‐ 

1998  3,147  168  5.6  2,979  ‐ 

1999  2,500  64  2.5  2,436  ‐ 

2000  2,280  20  0.8  2,260  ‐ 

2001  2,521  46  1.8  2,475  ‐ 

2002  2,089  91  4.3  1,998  ‐ 

2003  1,951  76  3.8  1,875  ‐ 

2004  1,616  79  4.8  1,537  ‐ 

2005  826  69  8.4  729  28 

2006  1,970  75  3.8  1,880  15 

2007  1,447  34  2.3  1,403  10 

2008  1,156  30  2.6  1,114  12 

2009  2,720  101  3.7  2,541  78 

2010  175  4  2.3  169  2 

2011  54  0  0  53  1 

2012  138  30*  21.7  104  4 

2013  878  82*  9.3  629  131 

2014  141  7*  5.0  128  6 

2015  83  11*  13.3  70  2 

2016  124  9*  9.0  110  5 

2017  75  6*  8.0  69  ‐ * Mainly imported camels

0

5

10

15

20

25

1995

1996

1997

1998

1999

2000

2001

2002

2003

2004

2005

2006

2007

2008

2009

2010

2011

*2012

2013

2014

2015

2016

2017

% Result

Year

Pos%

27

Table 25a: Serological results of camel brucellosis (RBT)  

Year Brucellosis  

Rose Bengal Test (RBT) 

Total  Pos  Neg  Dub. 

2011  3,855  211 (5.7%)  3,644  ‐ 

2012  7,764  882 (11.4%)  6,879  3 

2013  6,532  274 (4.2%)  6,257  1 

2014  6,753  138 (2.0%)  6,614  1 

2015  9,759  55 (0.6%)  9,704  0 

2016  7,730  706 (9.1%)  7,001  23 

2017  5,887  1,220 (20.7%)  4,665  2 

 Table 25b: Serological results of camel brucellosis (CFT)  

Year Brucellosis  

 (CFT) 

Total  Pos  Neg  Dub. 

2015  1,839  9 (0.5%)  1,828  2 

2016  324  142 (43.8%)  170  12 

2017  2,153  480 (22.3%)  1,641  32 

  Table 25c:   Serological results of brucellosis in other species 

Year 

RBT (Brucellosis) 

Sheep/Goat (Bovine, Deer, Black Buck, Oryx, Ibex, 

Gazelle, Gerenuk, Human) 

Total  Pos  Neg  Total  Pos  Neg 

2011  27  0  27  273  66*  207 

2012  2,805  153  2,652  248  26  222 

2013  107  7  100  130  2  128 

2014  149  0  149  311  27*  284 

2015  533  1  532  429  0  429 

2016  480  1  479  116  28*  88 

2017  496  4  492  181  22*  159 

* Mostly Bovine and Gazelle 

   

28

 

Table 26: Serological results of  MERS‐CoV (ELISA) 

Year 

MERS‐CoV (ELISA) 

Camel  Human 

Total  Pos  Neg  Dub.  Total  Pos  Neg 

2015  404  386 (95.5%)  18  ‐  291  3  288 

2016  40  37 (92.5%)  3  ‐  ‐  ‐  ‐ 

2017  115  74 (64.3%)  38  3  ‐  ‐  ‐ 

 

 

Table 27:  Serological tests done on other species   

Year 

Q‐Fever ELISA (Coxiella burnetii) 

Johne’s Disease ELISA (Mycobacterium paratuberculosis) 

Oryx, Addax, Gazelle, Goat  Goat, Sheep, Oryx, Gazelle 

Total  Pos  Neg  Dub.  Total  Pos  Neg  Dub. 

2014  47  0  47  0  81  20  61  0 

2015  15  6  9  0  26  2  24  0 

2016  ‐  ‐  ‐  ‐  67  3  63  1 

2017  148  54  92  2  171  13  158  0 

 

Year Goat, Sheep, Oryx, Gazelle 

Test  Total  Pos  Neg 

2016 FMD NS ELISA*  929  58 (6.2%)  871 

FMD Liquid Phase ELISA**  11  8   3 

2017 FMD NS ELISA*  465  116 (24.9%)  349 

FMD Liquid Phase ELISA**  ‐  ‐  ‐ 

* detects antibodies against field virus ** detects antibodies against vaccine strain    

29

Table 28:  Serological tests done on falcons and other avian species  

Year Mycoplasma Antibody ELISA 

Total  Species  Pos  Neg  Dub. 

2014  1 M. gallisepticum  1  0  0 

M. synoviae            1  0  0 

2015  11 M. gallisepticum  0  11  0 

M. synoviae            1  10  0 

2016  20 M. gallisepticum  0  20  0 

M. synoviae            4  16  0 

2017  10 M. gallisepticum  4  5  1 

M. synoviae            10  0  0 

 

Year Newcastle Disease Antibody ELISA 

Avian Leukosis virus Antigen detection ELISA 

Total  Pos  Neg  Dubious  Total  Pos  Neg 

2012  234  163*  64  7  ‐  ‐  ‐ 

2013  120  59*  54  7  6  1  5 

2014  219  124*  87  8  ‐  ‐  ‐ 

2015  123  62*  58  3  30  28  2 

2016  49  29*  20  0  20  0  20 

2017  29  20*  5  4  10  0  10 

*Also vaccinated  

30

Virology Department 

Table  29:  Consignment and specimens as well as virus  isolation  from  different  animal  species  

Species Consignments Specimens 

2016 2017 2016  2017

Camel  184  110  552  241 

Equine  163  178  600  499 

Avian Falcon  48  103  267  656 

Others*  185  386  1,257  2,306 

Other mammals  281  456  388  582 

Human  5  4  5  5 

TOTAL  866  1,237  3,069  4,289 

*Houbara Bustard, Patridge, Owl, Quail, Pigeon etc 

 

Table 30a: List of virus isolated from different animal species 

Species  Virus  Number of isolates 

AVIAN 

Falcon  Avian Influenza Virus  7 

Newcastle Disease Virus  7 

Herpes virus  9 

Non haemagglutinating virus  1 

Pigeon  Avian Influenza Virus  7 

Newcastle Disease Virus  6 

Herpes virus  41 

Pigeonpox Virus  1 

Houbara  Newcastle Disease Virus  6 

Houbarapox Virus  19 

Quail  Avian Influenza Virus  1 

Newcastle Disease Virus  1 

Non haemagglutinating virus  1 

Chicken  Avian Influenza Virus  8 

Newcastle Disease Virus  3 

Turkey  Avian Influenza Virus  1 

Partridge  Avian Influenza Virus  1 

31

  Non haemagglutinating virus  4 

Duck  Avian Influenza Virus  4 

Owl  Newcastle Disease Virus  1 

Sandgrouse  Avian Influenza Virus  1 

Turaco  Avian Influenza Virus  1 

  Newcastle Disease Virus  1 

Other Species 

Camel  Camelpox Virus  2 

MERS CoV  3 

Orf virus  2 

Gazelle  Peste des Petits Ruminants  2 

Sheep  Sheep pox Virus  1 

Human  Influenza A Virus  1 

 

Table 30b: List of Avian Influenza Virus isolates from different avian species 

Species  Number of Birds  Strains 

Falcon  7  H5N1 

Pigeon  7  H5N8 

Quail  1  H9N2 

Chicken  8  H9N2 and H5N1 

Turkey  1  H5N1 

Partridge  1  H5N8 

Sandgrouse  1  H5N8 

Turaco  1  H9N2 

 

32

Table 31: Influenza A antigen detection by Rapid Chromatographic 

Immunoassay (Directigen) 

Table  31a:  Equine results   

 

Year 

Equine  Influenza   ELISA 

Consignments  Samples  Positive  Negative 

2009  15  32  0  32 

2010  16  40  0  40 

2011  9  18  0  18 

2012  50  407  3*  404 

2013  65  421  1  420 

2014  80  650  0  650 

2015  74  652  1**  651 

2016  64  427  0  427 

2017  56  323  0  323 

*   Horses from Uruguay kept in UAE quarantine, H3N8 Florida Clade 1 **  Identified as H3N8 

 

Table  31b:  Avian results   

Year Avian Influenza   ELISA 

Samples  Positive  Negative 

2009  79  2 (2.5%)  77 

2010  9  0  9 

2011  31  0  31 

2012  39  0  39 

2013  43  1 (2.3%)  43 

2014  194  32 (16.5%)  162 

2015  352  58 (16.5%)  294 

2016  269  85 (31.6%)  184 

2017  274  27 (9.0%)  247 

   

33

Table 32:  Results of  samples tested for Equine Piroplasmosis IFAT                    

Parasite  Year  Total   Positive  Negative  Dubious 

T.equi 

2017  138  28 (20.3%)  110  0 

2016  294  90 (30.6%)  204  0 

2015  269  53 (19.7%)  216  0 

B.caballi 

2017  138  4 (2.9%)  134  0 

2016  294  12 (4.1%)  281  1 

2015  269  21 (7.8%)  248  0 

   

Table 33:  Results of IFAT testing for exporting pet animals 

 

Year  Test  Species  Samples  Positive  Negative 

2016 

Leishmania infantum  Canine  22  0  22 

Babesia gibsoni Canine  7  0  7 

Feline  1  0  1 

Ehrlichia canis Canine  21  7 (33.3%)  14 

Feline  1  0  1 

2017 

Leishmania infantum  Canine  58  0  58 

Babesia gibsoni  Canine  38  0  38 

Ehrlichia canis  Canine  94  35 (37.2%)  59 

Brucella canis  Canine  29  0  29 

 

Table  34:  Avian Influenza  Haemagglutination Inhibition (HI) results

Year HI for Avian  Influenza   (H5, H7 and H9N2) 

Samples  Positive  Negative 

2013  30  0  30 

2014  38  4 (H9N2) (10.5%)  34 

2015  103  390 (37.9%)  64 

2016  52  11 (21.2%)  41 

2017  67  23 (34.3%)  44 

 

34

Table  35:  Newcastle disease‐ Haemagglutination Inhibition (HI) results

Year  Samples  Positive  Negative 

2015  16  15 (93.8%)  1 

2016  68  56 (82.4%)  12 

2017  26  13 (50.0%)  13 

 Table  36:  Immunocapture ELISA for Peste des petits ruminants (PPR) 

Year  Species  Samples  Positive (PPR) Negative 

2015 

Gazelle  2  1  1 

Sheep  2  1  1 

Impala  1  1  0 

Total  5  3  2 

2016 

Gazelle  3  2  1 

Deer  1  0  1 

Goat  2  0  2 

Ovine  1  0  1 

Total  7  2  5 

2017 Gazelle  3  2  1 

Total  3  2  1 

 Table  37: Immuno Fluorescence Test (IFT) results for year 2017 

Virus  Samples  Neg. Positive 

Count  Species 

Rabies  8  8  0  ‐

Equine Herpes Virus (EHV)  8  8  0  ‐ 

Bovine Viral Diarrhoea (BVD)  7  7  0  ‐ 

Canine Distemper Virus (CDV)  3  2  1  Canine 

 

35

Table  38: Results of other Virus Neutralisation  Test (VNT) 

Virus  Year  Species  Samples  Positive  Negative 

Vesicular Stomatitis 

Virus (VNT) 

2015  Equine  1  0  1 

2016  Equine  1  0  1 

2017  Equine  7  0  7 

Rhinitis A Virus (VNT) 

2015  Donkey  81  48*  33 

2016  Camel  11  6  5 

2017  Equine  1  1  0 

* The Donkey Sanctuary, Ethiopia 

 

Table  39: Results of Isothermal genome amplification (Genie II) for MERS‐CoV 

Year  Species  Samples  Positive  Negative 

2015  Camel  161  11  150 

2016  Camel  16  1  15 

2017 Camel  1  0  1 

Human  1  0  1 

 Table  40: Rabies antibody testing by Fluorescent Antibody Virus 

Neutralization (FAVN) test 

Year  Species  Total Titre value (IU/ml) 

<0.5  >=0.5* 

2016 

Canine  98  9  89 

Feline  56  5  51 

Total  154  14 (9.1%)  140 

2017 

Canine  179  11  168 

Feline  164  6  158 

Equine  8  8  0 

Hyena  4  2  2 

Total  355  27 (7.6%)  328 

*  A test titre of 0.5 lU/ml or above indicates that the animal has an acceptable rabies antibody level. 

36

Vaccines (Viral and Bacterial) 

 Over  the years, CVRL has been very  successful  in producing  vaccines  to protect  the avian 

population  against  Falconpox  and  Houbarapox,  and  the  camel  population  against 

Camelpox.These vaccines have been distributed locally within the UAE on demand. CVRL has 

also equipped a new vaccine unit for manufacturing these vaccines. 

Since  2010,  CVRL  has  been  producing      A  α‐toxin  camel 

hyperimmune immunoglobulin (Ducabulin) as an active treatment for camels suffering from 

   A enterotoxaemia. This hyperimmune immunoglobulin solution 

is  used  as  a  prophylaxis  as  well  as  therapy  against      A  α‐toxin 

enterotoxaemia, and also boosts the camel’s immunity. 

All of  these vaccines  (Falconpox, Houbarapox, Ducapox and African Horse Sickness), along 

with Ducabulin, have now been approved and  registered with  the UAE Ministry of Health 

and with the UAE Ministry of Climate Change and Environment thereby authorizing CVRL to 

distribute them across the whole of the Middle East and East Africa. 

Over  the  last 5 years, around 22,900 doses of  Falconpox, 9,872 doses of Houbarapox and 14,296  doses  of  Ducapox  vaccines  have  been  distributed  throughout  the Middle  East  on demand.  

 

Table 41: Vaccine Distribution for year 2017 

Vaccine  Quantity 

Avian paramyxovirus type 1(APMV‐1) inactivated vaccine (DuPa)   905 Doses 

Falconpox vaccine (attenuated)  4,110 Doses 

Houbarapox vaccine (attenuated)  2,472 Doses 

Camelpox vaccine (Ducapox) (attenuated)  1,860 Doses 

AHS inactivated vaccine for Kenya  800 Doses 

Papillomavirus vaccine   8 Doses 

Clostridium perfringens A α‐toxin camel hyperimmune globulin (Ducabulin) 

340 Bags 

Caseous lymphadenitis – CLA (Corynebacterium pseudotuberculosis) vaccine 

268 Doses 

Staphylococcus pseudintermedius vaccine  2 Doses 

AVIN 5 (Avian Influenza H5N1 inactivated vaccine)  344 Doses 

37

Camelid Antibody Facility Unit 

 Dromedaries  were  immunized  with  Clostridium  perfringens  A  α‐toxoid  and  camelid hyperimmune  plasma  was  collected.  Subsequent  processing  of  plasma  yielded  purified camelid  IgG. The purified  IgGs were  then  further concentrated  to 5g/L and  filled  in 100ml sterile transfer bags.  The  price  of  DUCABULIN  (Cl.  perfringens  A  α  toxin  camel  hyperimmune  globulin)  can  be found under “Services” in CVRL website www.cvrl.ae.   This product is highly purified and consists of pure immunoglobulins which also boosters the animal’s immunity. Another advantage of this product is that it is derived from bacterial strains isolated from camels in the UAE.  In 2017, 340 bags of 100ml DUCABULIN were sold.  

                           Product Label 

 Advantages of camelid antibodies 

 

They are much smaller than conventional antibodies, hence named Nanobodies (10 times smaller than conventional antibodies). They penetrate into any tissue much faster, easier and deeper due to their size. 

Nanobodies can even penetrate the brain‐blood‐barrier 

Nanobodies are heat resistant 

Nanobodies bind forcefully with their antigen 

38

Pathology Department  Since January 2017 we are using the new PM‐room with much greater capacity, which was desperately needed, due to the ever increasing numbers of necropsies:   

  After  just  1  year  of  construction we  can  now properly  handle  adult  giraffe  (because  the crane is 6 m high) as well as elephants (because the 2 cranes can lift 3 ton each). The new Post‐mortem hall is large enough to keep up to 4 large animals simultaneously and we can accommodate at  least 2  large animals  in the 2 cool‐rooms.  In September 2017 CVRL took over the new post‐mortem truck: Mercedes Actros 4040, 6x6: 

 

  We can now pick up carcasses of any large species like giraffe (because the crane can lift 1 ton at 10 m distance) as well as any heavy species like elephants (because the hook‐system can lift up to 16t) from any area. Very large and heavy animals like elephants can be pulled by a powerful winch  into the Open Top Container, which  is  fluid proof sealed! Hence, no spillage of any fluid can happen during transport.  

39

Table 42:  Number and species of animals received for necropsy  Species  2015  2016  2017 

Camel (adult)  122  104  143 

Camel fetus/calf  222 (41/181)  172 (52/120)  127 (27/100) 

Equine (adult)  66  77  68 

Canine/ Feline  48 (23/25)  43 (26/17)  59 (41/18) 

Equine fetus/foal  25 (5/20)  24 (9/15)  52 (22/30) 

Antilope/Oryx/Deer  18  32  45 

Ovine/caprine  36 (14/22)  42  40 (22/18) 

Gazelle   22  32  40 

Other mammals  4  7  36 

Large feline/Cheetah  17 (11/6)  13 (4/9)  31 (18/13) 

Rabbit / Guinea pig  5  11  17 (8/9) 

Marmoset/ other Monkey  8  4  15 (8/7) 

Bovine  10  9  11 

Mice / Rat  5  7  8 

Giraffe  4  9  3 

Fox  3  5  2 

Marine mammals  3  4  1 

Total mammals  618  594 657AVIAN:       

Chicken  133  60  252 

Quail  205  225  163 

Houbara bustard  92  164  102 

Pigeon/Dove  93  106  72 

Falcon  65  41  55 

Other Birds  10  6  41 

Parrot  9  6  29 

Waterfowl  6  55  21 

Francolin/Partridge  12  11  15 

Pheasant  10  9  14 

Ostrich/Rhea/Emu  5  3  13 

Stone Curlew  28  7  11 

Owl  4  7  8 

Cormorant  1  2  7 

Flamingo  3  1  6 

other bustards  14  27  4 

Total avian  690  730  787        Reptiles  12  11  73 

Fish  2  42  55 

       

Grand Total  1318  1377  1543 

40

Table 43 a: Main diagnosis of dissected mammals  

Species  Diagnosis  2016  2017 

Horse (adult)  Fracture/Trauma  10  31 

  Torsio coli/ Volvolus  8  29 

  Peritonitis after GIT‐rupture  10  16 

  Internal/Lung bleeding  7  12 

  Heart failure/ exert. myopathy  4  10 

  Laminitis  4  9 

  Pneumonia  5  5 

  Salmonellosis  5  3 

  Tumor  5  2 

  Sand‐colic  3  2 

  Strangles  2  ‐ 

Foal  Rhodococcus/Pneumonia  4  9 

  Cryptosporidia‐enteritis  4  3 

       

Camel (adult)  Clostridiosis  15  20 

  HD  2  18 

  Salmonellosis  10  17 

  Rumen‐Acidosis/Overload  9  17 

  Brucellosis  5  15 

  Ascites due to Liver‐dystrophy  14  14 

  Pulmonary Leucosis (SACL)  13  10 

  Coccidiosis  5  8 

  Foot‐cancer/other tumor  11  5 

  Ruptured Muscle (M. gracilis)  2  5 

  Pneumonia  2  5 

  Dystocia  4  3 

  Mastitis  3  3 

  Abscesses/CLA  2  3 

  Peritonitis  1  2 

  Encephalitis  3  2 

  Pox  1  1 

  Algae‐infection (Prototheca spp.)  ‐  1 

Camel calves  Septicaemia (E. coli)  28  24 

  White muscle disease  19  24 

  Clostridiosis  16  13 

  Colon impaction/faecolith  6  13 

  Salmonellosis  8  12 

  Pneumonia  8  10 

  Cystisospora‐colitis  5  10 

  MERS‐infection/no disease  8  2 

  Perforated stomach ulcer  7  2 

41

Table 43 b:  Main diagnosis of dissected avian   

Species  Diagnosis  2016  2017 

       

Falcon  Clostridiosis  8  12 

  Aspergillosis  8  9 

  Endoparasites  5  8 

  Influenza  10  6 

  Gout due to amyloidosis  9  6 

  Salmonellosis  2  6 

  Herpesvirus‐hepatitis  3  4 

  Trauma   3  3 

  Amyloidosis  3  2 

  Septicaemia  2  2 

  Mycobacteriosis/avian Tb  7  1 

  Newcastle Disease (ND)  3  1 

  Pox  1  1 

       

Houbara bustard  Clostridiosis  2  18 

  Pox  3  10 

  Aspergillosis  3  10 

  Airsacculitis/pneumonia  20  9 

  Trauma  8  9 

  Endoparasites   24  8 

  Newcastle Disease (ND)  1  6 

  Septicaemia  7  6 

  Gastric foreign body  4  5 

  Salmonellosis  3  4 

  Gout  3  3 

  Influenza  15  0 

       

       

Diagnosis:  Other species:     

       

Avian Influenza  Stone Curlew, Waterfowl, Quail     

  Chicken, Owl, Pigeon     

       

Newcastle Disease  

Chicken, Sand grouse, Pigeon     

       

Avian TB  Crane, Duck, Toucan, Pheasant     

       

       

42

Table 44: Samples for Histopathology/Cytology  

Species  2015  2016  2017 

Mammals   

Canine tissue  66  109  73 

Equine tissue  83  56  32 

Feline tissue  26  37  31 

Uterine biopsy  2  41  27 

Smear  15  22  23 

Camelid tissue  18  22  14 

Tracheal wash, equine  4  20  9 

Goat/Sheep/Cattle tissue  43  2  8 

Gazelle/Antelope tissue  22  6  7 

Large feline tissue  7  ‐  6 

Urine samples   30  17  5 

Skin‐biopsy  1  5  4 

Dolphin sample  13  136  3 

Synovial fluid  22  12  2 

Tissue of other mammals   9  8  2 

Pleural/Abdominal fluid  7  1  1 

       

Total mammal tissue  342  494  247 Avian 

Falcon biopsy/tissue  66  68  15 

Chicken tissue  33  2  6 

Houbara/Bustards tissue  2  6  6 

Other avian tissue  7  5  5 

Partridge tissue  2  ‐  2 

Pigeon tissue  5  ‐  2 

Parrot tissue  1  ‐  1 

Stone Curlew tissue  1  2  1 

Waterfowl tissue   1  7  ‐ 

Total avian tissue  139  90  37        Reptile tissue  6  3  4  

Fish tissue  1  1  5 

Honey for pollen analysis  106  54  29 

Plants for pollen analysis  4  4  2 

Insects for histology  4  10  10 

Total other samples  121  72  50        

Grand Total  592  656  334 

43

Table 45:  Incineration/Cremation 

Species  2014  2015  2016  2017 

Equine  108  141  137  137 

Feline (batch)  414  410  520  456 

Canine (batch)  396  474  404  779 

Pet (individual)  173  214  226  299 

Total  1,091  1,239  1,287  1,671 

 

Table 46: Histology/Cytology: number of blocks and slides  

  2014  2015  2016  2017 

Paraffin‐blocks  7,500  8,500  9,200  10,300 

Histology‐slides  9,500  10,700  11,800  13,700 

Cytology‐slides  195  225  256  187 

IFT – slides  255  225  215  236 

44  

Taxidermy department 

After our  first year  in the new facilities we are always happy to work  in  this new and spacious 

environment. There are some parts and areas that still require minor work but we are confident 

to have everything running smoothly in 2018. 

In 2017 we finished one of our biggest projects focusing on biological museum models. The last 

shipment to the Souq Waqif Falcon Hospital was send in June and the first part of the museum 

exhibition opened successfully.  

 

 

The exhibition includes a variety of showcases, mostly with morphological and anatomical models 

related to falcon and raptor medicine.  Other displays focus on their ecology, biology and use in 

traditional and modern falconry.  

 

World maps with falcon distribution areas for various species 

Gyrfalcon back, Peregrine falcon front and Saker falcon back feather 

45  

Leatherback sea turtle, Dermochelys coriacea 

 

 

Earlier,  in  January  2017  a  leatherback  sea  turtle was  spotted by  a  research  team  in waters  of 

Fujairah. Unfortunately,  the  animal was  dead  and  could  only  be  recovered with  early  signs  of 

decomposition.  

 

 

 

The female specimen, 136 cm long and weighing 115kg  is the first record of this species  in the 

region. Usually  classified  as  vulnerable,  Leatherbacks  are  a  species with  a  cosmopolitan  global 

range but are rarely seen in the Arabian Gulf.  

Respiratory system and falcon skeleton  

46  

We recorded all necessary and valuable data and will now carefully macerate the skeleton and try 

to preserve the soft, boneless carapace with its few osteoderms as good as possible.  

 

Eventually, the skeleton will go back to the Al Mayya Sanctuary in Fujairah were it will be put on 

display. 

The rest of the year we had to commit a big share of our time to macerating and articulating various 

skeletons. Many of them, mostly critically endangered species, will go back to museums to be used 

for  future  reference and  research. The biggest  and most  labor mount was a dromedary  camel 

skeleton, recently delivered to the Advanced Scientific Group in Abu Dhabi.   

 

 

 

 

Leatherback sea turtle, entangled in waste

Dromedary camel skeleton  

47  

Table 47: Animals kept in storage for taxidermy in 2017 

Species  Scientific classification  No of animals 

Mammals     

     

African lion  Panthera leo  4 

Tiger  Panthera tigris  3 

Cheetah  Acinonyx jubatus  7 

North‐ Chinese leopard  Panthera pardus orientalis   1 

Persian leopard  Panthera pardus tulliana  2 

     

Clouded leopard  Neofelis nebulosa  1 

     

Cat (Domestic)  Felis silvestris catus 3 

     

European wolf  Canis lupus  1 

Arabian wolf  Canis lupus arabs  1 

     

Dog (domestic)  Canis familiaris  1 

Blandford’s fox  Vulpes cana  1 

     

Common eland   Taurotragus oryx  1 

Mountain gazelle  Gazella gazella  6 

Sand gazelle  Gazella leptoceros  6 

Arabian oryx  Oryx leucoryx  1 

Wildebeest  Connochaetes sp.  1 

Impala  Aepyceros melampus  1 

Dik‐dik  Madoqua sp.  1 

Arabian thar  Arabitragus jayakari  1 

Himalayan thar  Hemitragus jemlahicus  6 

Mouflon  Ovis orientalis orientalis  1 

Armenian Mouflon  Ovis orientalis gmelini  2 

Laristan Mouflon  Ovis orientalis laristanica  1 

Nubian ibex  Capra nubiana  1 

     

Crested porcupine  Hystrix cristata  4 

Cape hare  Lepus capensis  1 

Desert hedgehog  Paraechinus aethiopicus  1 

Sugar glider  Petaurus breviceps  1 

     

Alpaca  Vicugna pacos  1 

Dromedary camel  Camelus dromedarius  5 

Giraffe  Giraffa camelopardalis  1 

     

Zebra  Equus sp. 1 

     

Pygmy hippopotamus  Choeropsis liberiensis   1 

48  

Common hippopotamus  Hippopotamus amphibius  1 

     

Bottlenose dolphin  Tursiops truncatus  1 

     

     

Birds     

     

Short‐ eared owl  Asio flammeus  1 

Barn owl  Tyto alba  2 

Pharaoh eagle‐ owl  Bubo ascalaphus  4 

     

Gyrfalcon  Falco rusticolus  2 

Common kestrel  Falco tinnunculus  1 

     

Blue‐ and‐ yellow macaw  Ara ararauna  2 

Red‐ bellied macaw  Orthopsittaca manilatus  1 

Rose‐ ringed parakeet  Psittacula krameri  1 

Palm cockatoo  Probosciger aterrimus  1 

Galah  Eolophus roseicapilla  1 

     

Socotra cormorant  Phalacrocorax nigrogularis  4 

African spoonbill  Platalea alba  1 

Glossy ibis  Plegadis falcinellus  1 

Great egret  Ardea alba  1 

Goliath heron  Ardea goliath  1 

Greater flamingo  Phoenicopterus roseus  1 

     

Grey crowned crane  Balearica regulorum  1 

White‐ naped crane  Antigone vipio  1 

Demoiselle crane  Grus virgo  2 

     

Southern ground hornbill  Bucorvus leadbeateri  1 

Narcondam hornbill  Rhyticeros narcondami  1 

African grey hornbill  Lophoceros nasutus  1 

Black‐ necked aracari  Pteroglossus aracari  2 

     

Temminck’s tragopan  Tragopan temminckii  1 

Blue eared pheasant  Crossoptilon auritum  1 

Golden pheasant  Chrysolophus pictus  1 

Indian peafowl  Pavo cristatus  1 

Vulturine guineafowl  Acryllium vulturinum  1 

Arabian partridge  Alectoris melanocephala  1 

Grey francolin  Francolinus pondicerianus  1 

Red‐ necked spurfowl  Pternistis afer  2 

King quail  Excalfactoria chinensis  1 

Domestic chicken  Gallus gallus domesticus  2 

Houbara bustard  Chlamydotis undulata  2 

     

49  

Ostrich  Struthio camelus  1 

     

Yellow‐ fronted canary  Crithagra mozambica  1 

Orange‐ breasted waxbill  Amandava subflava  1 

Bullfinch  Pyrrhula pyrrhula  1 

Eurasian hoopoe  Upupa epops  1 

Fire‐ tufted barbet  Psilopogon pyrolophus  1 

Long‐ billed crow  Corvus validus  1 

Star finch  Neochmia ruficauda  1 

Red fronted serin  Serinus pusillus  2 

     

     

Reptile     

Leatherback sea turtle  Dermochelys coriacea 1 

Olive ridley sea turtle  Lepidochelys olivacea 1 

Sinai agama  Pseudotrapelus sinaitus 1 

Alligator snapping turtle  Macrochelys temminckii 2 

Tortoise   Testudo sp.  1 

Veiled chameleon  Chamaeleo calyptratus 2 

Kingsnake  Lampropeltis sp.  1 

     

     

Fish     

Ocellate river stingray  Potamotrygon motoro 1 

     

     

Total    141 

 

 

 

 

 

 

50

Analytical Chemistry Department 

Table 48: Total samples processed in Analytical Chemistry 

Test Year 

2015  2016  2017 

Vit B1  4,624  2,243  2,090 

Vit A  598  145  188 

Vit E  1,164  729  1,109 

Vit C  158  50  12 

Copper  3,683  2,020  1,786 

Zinc  418  148  357 

Lead  2  1  1 

Selenium  1,876  897  1,919 

Tissue  73  29  59 

Feed for minerals  44  48  49 

Feed for heavy metals  ‐  ‐  59 

Water analysis for anions and minerals  80  105  102 

Food analysis for carbohydrates  ‐  ‐  70 

Honey for hydroxymethylfurfural (HMF)* ‐  ‐  37 

Total  12,720  6,415  7,838 

*HMF: Test for adulteration of honey 

Table 49: Result of vitamin B1 by HPLC analysis 

Year 

Vit B1 

Deficient  Normal Total No. of 

samples 

2012  1,145 (33.8%)  2,246 (66.2%)  3,391 

2013  1,283 (32.0%)  2,727 (68.0%)  4,010 

2014  1,720 (30.9%)  3,853 (69.1%)  5,573 

2015  1,158 (25.0%)  3,466 (75.0%)  4,624 

2016  530 (23.6%)  1,713 (76.4%)  2,243 

2017  258 (12.3%)  1,832 (87.7%)  2,090 

Deficient:  <0.1µmol/l (SI Units) 

51

Table 50: Trace elements with the Atomic Absorption Spectrometer (AAS) 

Species Specimen 

Type 

Tests 

Copper  Zinc  Lead  Selenium 

2016  2017  2016  2017  2016  2017  2016  2016 

Camel  Serum/ Whole blood 

1,849  1,357  41  88  ‐  ‐  724  1,356 

Horse  64  253  56  143  ‐  ‐  103  450 

Others  106  176  51  126  1  1  69  113 

Total  2,020  1,786  148  357  1  1  897  1,919 

Tissue   Copper  Zinc  Lead  Iron 

Liver  29  59  ‐  9  ‐  3  ‐  1 

Total  29  59  ‐  9  ‐  3  ‐  1 

 

 

Table 51: Reference values of different parameters  

Parameters Reference Range (SI Units) μmol/L 

Camel  Equine  Falcon 

Vit B1  0.1 – 0.2     

Vit A  0.5 – 1.5  0.4 – 1.2   

Vit E  3.0 – 7.0  2.5 – 10.0   

Vit C  17.0 – 34.0  24.0 – 36.0   

       

Cu  9.0 – 14.0  19.0 – 21.0   

Zn  6.0 – 10.0  14.0 – 29.0   

Se  1.5 – 2.6  1.5 – 2.5   

Pb      <1.9 

 

 

 

52

Table 52a: Feed samples analysed for minerals 

Minerals No. of samples 

2016  2017 

Calcium (Ca)  48  47 

Magnesium (Mg)  42  45 

Sodium (Na)  44  42 

Potassium (K)  42  39 

Iron (Fe)  42  41 

Manganese (Mn)  42  47 

Copper (Cu)  41  48 

Zinc (Zn)  42  45 

Phosphorus (P)  44  45 

Selenium (Se)  42  49 

Total  48  49 

  Table 52b: Feed samples analysed for heavy metals 

Minerals No. of samples 

2017 

Lead   59 

Chromium  59 

Cobalt  59 

Cadmium  59 

Total  59 

Table 53: Water analysis for anions and minerals 

Year  No of Samples 

2013  20 

2014  60 

2015  80 

2016  105 

2017  102 

53

Table 54: Food analysis for carbohydrates, Water content & HMF in 2017 

Samples Moisture content 

Fructose  Glucose  Sucrose  HMF* 

Chocolate  ‐  1  1  1  ‐ 

Dates  ‐  16  16  13  ‐ 

Honey  70  40  40  40  37 

Jam  ‐  1  1  1  ‐ 

Total  70  58  58  55  37 

* Hydroxymethylfurfural (HMF) – Test for adulteration of honey

54

OIE Reference Laboratory for Glanders and Camelpox  In 2009 June, OIE confirmed the designation of the CVRL as a new OIE Reference Laboratory for Glanders and Camelpox with Prof. U. Wernery as the designated OIE Reference Expert.  MOCCAE  has  approved  that  CVRL  also  becomes  an  OIE  acknowledged  laboratory  for Brucellosis.  

Publications:  1.  Adams, R., R.J. Burnley, C.R. Valenzano, O. Qureshi, C. Doyle, S. Lumb, M.D.C. 

Lopez, R. Griffin, D. McMillan, R.D. Taylor, C. Meier, P. Mori, L.M. Griffin, U. Wernery, J. Kinne, S. Rapeck, T.S. Baker, A.D.G. Lawson, M. Wright and A. Ettorre (2017) Discovery of a junctional epitope antibody that stabilizesIL‐6 and gp80 protein: protein interaction and modulates its downstream signaling. Scientific Reports [7:37716] DOI: 10.1038/srep37716 

 2.  Wernery, U., S.K.P. Lau and P.C.Y. Woo (2017) 

Middle East respiratory syndrome (MERS) coronavirus and dromedaries. The Veterinary Journal 220, 75‐79   

3.  Woo, P.C.Y., S.K.P. Lau, H. Tsoi, N.G. Patteril, H.C. Yeung, S. Joseph, E.Y.M. Wong, R. Muhammed, F.W.N. Chow, U. Wernery and K.Y. Yuen (2017) Two novel dromedary camel bocaparvoviruses from dromedaries in the Middle East with unique genomic features. Journal of General Virology 98, 1349‐1359  

 4.   Wernery, U., M. Gyuranecz, J. Kinne, R. Raghavan, G. Syriac, B. Johnson, Z. 

Kreizinger. B. Dénes, O. Felde, T. Magyar, Sh. Jose, S. Raja. J. John and R. Wernery (2017) Laboratory investigations after eye drop immunization of dromedaries with live attenuated Brucella melitensis Rev 1 vaccine. 

  Journal of Camel Practice and Research 24(1), 9‐14  5.  Khan, F., R. Khawar, Z. Ansari, G. Syriac, N. Muttathpaily, R. Raghavan, J. 

Christopher and U. Wernery (2017) Comparative performance study of four different serological tests for the diagnosis of dromedary brucellosis. 

  Journal of Camel Practice and Research 23(2), 213‐217  6.  Schuster, R.K. and V.V. Shimalov (2017) 

A comparative study of helminths of raccoon dogs (Nyctereutes procynoides) and red foxes (Vulpes vulpes) sharing the same territory. 

  Asian Pacific Journal of Tropical Disease 7(12), 705‐711  

55

7.  Poon, R.W.S., E.W.T. Tam, S.K.P. Lau, V.C.C. Cheng, K.Y. Yuen, R.K. Schuster and P.C.Y. Woo (2017) Molecular identification of cestodes and nematodes by coxI gene real‐time PCR and sequencing. 

  Diagnostic Microbiology and Infectious Disease 89, 185‐190  8.  Kinne, J., M. Joseph, U. Wernery, N. Nogradi and F. Hagen (2017) 

Disseminated Cryptococcus deuterogatti (AFLP6/VGII) infection in an Arabian horse from Dubai, United Arab Emirates. 

  Revista Iberoamericana de Micología 34(4), 229‐232  9.  Schuster, R.K., J. Kinne, S. Sivakumar, P. Nagy, J. Juhaz and A. Ismail (2017) 

Camel calf coccidiosis due to Cystoisospora orlovi. Poster  presentation  at  the  International  Conference:  The Belt  and Road:  Camel Science,  Industry  and  Culture,  September  22‐26,  West  Alxa,  Inner  Mongolia, China, 109‐110. 

 10.  Schuster, R.K. and S. Sivakumar (2017) 

Important ectoparasites of Old World camels. Oral  presentation  at  the  International  Conference:  The  Belt  and  Road:  Camel Science,  Industry  and  Culture,  September  22‐26,  West  Alxa,  Inner  Mongolia, China, 110‐111. 

 11.  Wernery, U. (2017) 

Serological  survey,  an  important  tool  for  disease  status  of  a  zone or  a  country. The camel example. Oral  presentation  at  the  International  Conference:  The  Belt  and  Road:  Camel Science,  Industry  and  Culture,  September  22‐26,  West  Alxa,  Inner  Mongolia, China. 

 12.  Wernery, U. and J. Kinne (2017) 

Diagnosis of camel diseases – a pictorial guide Oral  presentation  at  the  International  Conference:  The  Belt  and  Road:  Camel Science,  Industry  and  Culture,  September  22‐26,  West  Alxa,  Inner  Mongolia, China. 

 13.  Kinne, J., M. Joseph, S. Sivakumar, R.K. Schuster and U. Wernery (2017) 

Ignatzschineria  indica isolated  from  dromedary  camel  foot‐cancer  lesions  with dermal myiasis – cause or secondary infection? Poster  presentation  at  the  International  Conference:  The Belt  and Road:  Camel Science,  Industry  and  Culture,  September  22‐26,  West  Alxa,  Inner  Mongolia, China, 112‐113. 

 14.  Schuster, R.K. (2017) 

Preimaginal mortality of Musca domestica (Diptera: Muscisae) due to Habronema muscae (Nematoda: Habronematidae). 

  Helminthologia 54(3), 225‐230  

56

15.  Schuster, R.K. and S. Sivakumar (2017) The larval development of Habronema muscae (Nematoda: Habronematidae) affects its intermediate host, Musca domestica (Diptera: Muscidae). 

  Parasitology Research 16(2), 503‐509  16.  Wernery, U., C. Liu, J. Kinne, R. Wernery and A. Ridha (2016) 

System and method for establishing a long‐term culture of avian primordial germ cells and uses thereof. Patent: WO 2016091272 A1 

 17.  Liu, C., I.K. Chang, K.A. Khazanehdari, S. Thomas, P. Varghese, V. Baskar, R. 

Alkhatib, W. Li, J. Kinne and M.J. McGrew (2017) Uniparental  chicken  offsprings  derived  from  oogenesis  of  chicken  primordial germ cells (ZZ).  Biol. Reprod. 96(3), 686‐69  

18.  Koch, K., S. Kalusche, J.L. Torres, R.L. Stanfield, W. Danquah, K. Khazanehdari, H.V. Briesen, E.R. Geertsma, I.A. Wilson, U. Wernery, F.K. Nolte, A.B. Ward and U. Dietrich (2017) Selection of nanobodies with broad neutralizing potential against primary HIV‐1 strains using soluble subtype C gp140 envelope trimers. Scientific Reports [7:8390] DOI: 10.1038/s41598‐017‐08273‐7  

19.  Wernery, U., N.K. Soellner, S. Joseph, P. Varghese, B. Johnson and J. Kinne (2017) Passive immunization against Brucella melitensis in dromedaries. 

  Journal of Camel Practice and Research 24(2), 1‐3  20.  Schuster, R.K., S. Sivakumar, P. Nagy, J. Juhaz and A. Ismail (2017) 

Cystoisospora orlovi (Eimeriorina: Sarcocystidae) – a little known coccidian of the Old World Camelids. 

  Journal of Camel Practice and Research 24(2), 117‐112  21.  Schuster, R.K., J. Kinne, S. Sivakumar, P. Nagy, J. Juhaz, A. Ismail and M.P.O 

Baumann (2017) The epidemiology physocephalosis in camel in the United Arab Emirates. Journal of Camel Practice and Research 24(3), 1‐5 

 

Total no. of scientific papers published since the foundation of CVRL till 2017:  635  Conferences / meetings attended by CVRL staff:  Dr. U. Wernery 

September 22 – 26, 2017 1st Camel conference: “The Belt and Road: Camel Science, Industry and Culture”  Alxa League, Inner Mongolia, China 

‐ Serological survey, an important tool for disease status of a zone or a country.  The camel example. (Oral) 

‐ Diagnosis of camel disease – a pictorial guide (Oral) 

57

 Dr. Jörg Kinne 

March  3 – 5, 2017 60th  Conference  and  22nd  Histological  seminar  of  the  German  Veterinary Pathology Group. Fulda, Germany 

 Prof. R. Schuster 

April 10, 2017 Symposium 1: Control of external parasites in animals – challenges and innovations, The Veterinary services, Dubai Municipality, Dubai, UAE 

‐ The fauna of parasitic arthropods in the UAE (Oral presentation)  

April 18, 2017 Symposium 2: Control of external parasites in animals – challenges and innovations, The Veterinary services, Dubai Municipality, Dubai, UAE 

‐ Endoparasites of camels in the UAE (Oral presentation)  

September 22 – 26, 2017 1st Camel conference: “The Belt and Road: Camel Science, Industry and Culture”  Alxa League, Inner Mongolia, China 

‐ Camel calf coccidiosis due to Cystoisospora orlovi. (Poster presentation) ‐ Ignatzschirina indica isolated from Dromedary camel foot cancer lesions with 

dermal myiasis – cause or secondary infection? (Oral presentation)  

Renate Wernery 

June 13 – 14, 2017 9th Workshop for Rabies  Budapest, Hungary  

June 14 – 15, 2017 Rabies Serology meeting  Budapest, Hungary   

June 28 – 29, 2017 Workshops on Glanders and West Nile Paris, France

 Dr. Sunitha Joseph 

June 13 – 14, 2017 9th Workshop for Rabies  Budapest, Hungary  

June 14 – 15, 2017 Rabies Serology meeting  Budapest, Hungary 

58

Rekha Raghavan 

June 28 – 29, 2017 Workshops on Glanders and West Nile Paris, France

Science meetings/ Guest speaker at CVRL  

1. Prof. Darren Griffin, University of Kent, UK   Why dinosaur probably tasted like chicken: Lessons from the genomes of falcons  2.  Renate Wernery, CVRL   The Lucky orphans  3.  Dareen Almojil    Conservation of two reef shark species along the Arabian coasts: insights from 

fishermen’s knowledge and molecular tools  4.  Prof. Darren Griffin, University of Kent, UK   Human IVF embryos  5.  Dr. Ulrich Wernery, CVRL    Serological investigation of Brucellosis in dromedary 

 

 Training Courses  Training  is  an  important  aspect  of  our  responsibilities  as  an  OIE  reference  laboratory towards the scientific community; hence each year we run a number of courses for people who are associated with the health of animals. 

Medical  and  biotechnology  students  from  abroad  benefit  from  being  part  of  a  leading research  and  diagnostic  centre,  being  supervised  by  internationally  recognized  experts  in various fields and have access to excellent research facilities, training, seminars, academic journals and library. 

On‐site accommodation for females and males are available at a reasonable rent. 

Hands‐on training conducted at CVRL in 2017 

Dr. Nina Soellner from University of Leipzig, Germany was trained on various serological techniques which includes all available test in the market for Brucellosis (Agglutination tests, ELISAs, CFT, Lateral flow, etc.) 

 

 Dr. Sunitha Joseph 

Sunitha  Joseph,  Head  of  the  Virology  Department,  successfully  completed  the  degree  of DOCTOR  OF  PHILOSOPHY  in  Genetics  in  the  Faculty  of  Science,  Technology  and Medical studies  from  the  School  of  Bioscience,  University  of  Kent,  UK.  Her  PhD  entitled 

59

‘’Chromosome Evolution and Genome Reconstruction in Falcon Species’’ provide significant insight  into  genome  organization  and  evolution  in  the  Falco  genus,  revealing  previously undetected  levels of  chromosomal  synteny between  three  species  important  to  the UAE.  Also, her study made a significant contribution to the chromosome‐level genome assembly of  the  Saker  falcon,  providing  tools  for  further  study  of  avian  species  both  within  and beyond the falcon group. 

 PhD Thesis, Master and Bachelor:  Each  year  we  take  on  number  of  graduates  who  do  research  towards  higher  degree. Information about studentships can be found on our website www.cvrl.ae. 

 

1. M.G. Müller: Studies on bumble foot in hunting falcons in the United Arab Emirates, Munich 1999 

2. S.  Gierse:  The most  important  infectious  diseases  in  falcons  (Falconidae)  and  the importance of their quarry, Munich 2001 

3. E.A.  Albrecht:  Production  of  camel  milk.  First  experience  in  machine  milking  of dromedaries, Göttingen 2003 (Master) 

4. C.P.  Finke:  Substantial  quality  parameters  of  camel  meat  (Camelus  dromedarius)‐ physico‐chemical and sensory examinations, Munich 2005 

5. T. Stahl: Vitamin content and fatty acids in camel milk, Hannover 2005 

6. V. Eberlein: Hygienic status of camel milk in Dubai (United Arab Emirates) under two different milking management systems, Munich 2007 

7. F. Gerlach: Coccidiosis in dromedaries (Camelus dromedarius), Berlin 2008 

8. F. Szulzewsky: Production of quail‐chicken chimera by blastoderm cell transfer, Berlin 2009 (Master) 

9. M.R. Hampel: Increasing fatal AA amyloidosis in hunting falcons and how to identify the risk: a report from the United Arab Emirates. Inaugural‐Dissertation /Doctor Thesis, Zurich 2009   

10. Maria Daniela von Hieber: Investigation of occurrence and persistence of brucellosis in chronically infected dromedary dams (Camelus dromedarius) and their calves, Ulm 2010 (Master) 

11. M.H. Halbrock: Zytobakteriologische Untersuchungen von Milch bei maschinen‐und handgemolkenen Kamelen (Camelus dromedarius) in Dubai, Munich 2010 

12. Claudia Anke Kaiser: The role of copper and Vitamin A – Deficiencies leading to neurological signs in captive cheetahs (Acinomyx jubatus) and lions (Panthera leo) in the United Arab Emirates, Inaugural‐Dissertation /Doctor Thesis, Zurich 2014 

13. Alexandra Damerau: Development and establishment of an Aspergillus fumigatus antibody ELISA for the early diagnosis of Aspergillosis in falcon, Berlin 2015 (Master) 

14. Max Berlin: Development of a CLA vaccine for dromedaries, Berlin 2015 (Master) 

15. Sina Tönges: Test to detect Habronema muscae in horses, Berlin 2015 (Master) 

60

  Income:  

  2015 2016  2017

CVRL  12,121,734 13,192,707  13,448,434

Amount in Dhs 

 Research Projects for 2018  1. Where do Brucella melitensis hide in dromedary camels? 

2. Antibodies development in horses after vaccination against African Horse Sickness with a killed vaccine 

3. Study of the life cycle of Porrocaecum angusticolle. 

4. A  joint  research  with  the  environment  agency  in  Abu  Dhabi  on  the  role  of Artemia 

salina as intermediate hosts for avian cestodes in the Al Wathba Wetland Reserve. 

5. Further  development  of  a  monoclonal  antibody  ELISA  for  the  diagnosis  of  falcon aspergillosis. 

         

Dr. Dr. habil. U. Wernery (Scientific Director) 

  

 

61  

CVRL Service Charges (2018) 

Test  Price (Dhs) 

Haematology – Biochemistry 

Camel Package 1 (Haem+ Bio ‐ 7 parameters) Fe, CK,  LDH, SGOT, BUN, TP, Creatinine 

60 

Single haematology test (CBC & WBC)  25 

Complete biochemistry and haematology  150 

Blood smear examination  25 

3 Electrolytes (Na, K, Cl)  60 

Single parameters e.g. Calcium, Phosphorus etc. (each)  20 

Amyloid (SAA)  80 

Fibrinogen  80 

Erythrocyte sedimentation rate (ESR)  25 

DIABETIC PROFILE 

HbA1c (2ml EDTA blood required)  100 

Fructosamine  50 

HORMONES (for all species) 

Progesterone  200 

Testosterone  200 

Estradiol  200 

T3  200 

T4  200 

Cortisol  200 

Analytical Chemistry 

Lead from EDTA blood  100 

Trace elements and minerals from tissue (Cu, Zn,Fe, Pb) [each]  170 

Copper from serum  50 

Zinc from serum  50 

Selenium from serum  100 

Complete element analysis ‐ water (see CVRL water requisition form) 

1000 

Water – single element  100 

Complete element analysis ‐ feed (see CVRL feed requisition form)  1000 

Feed ‐ single element  170 

Vitamin B1 from blood  70 

Vitamin A, Vitamin E, Vitamin C (each)  100 

Carbohydrates from honey  200 

62  

Test  Price (Dhs) 

Water content in honey  50 

Water soluble vitamins and caffeine from energy drinks  1200 

Water soluble vitamins from juices and soft drinks  900 

HMF in honey  50 

Heavy metals in feed or honey (Cadmium, Chromium, Cobalt and Lead) 

400 

Bile Acid  150 

Serology 

Tests for Equines 

African Horse Sickness  ‐ Ab cELISA  200 

AHS  ‐ Serum titration/sample  450 

Dourine  ‐  Complement fixation test (CFT)  200 

Equine Infectious Anaemia (EIA) ‐ Agar Gel Immunodiffusion test (AGID/Coggins) 

200 

EIA  ‐ Ab cELISA  200 

Equine Herpes Virus 1& 4 (EHV1 &EHV4)  ‐  Ab ELISA  200 

Equine Piroplasmosis (Babesia caballi + Theileria equi) ‐  Immunofluorescence antibody test ( IFAT) 

280 

Equine Piroplasmosis (Babesia caballi + Theileria equi ) ‐ Ab cELISA 280 

Equine Protozoal Myeloencephalitis  ‐  Western blot(WB)  400 

Equine Rhinitis A  Virus ‐ Virus Neutralisation Test   (VNT)  200 

Equine Viral Arteritis (EVA)  ‐  VNT  200 

EVA  ‐  Ab ELISA  200 

Glanders  ‐  Complement fixation test (CFT)  200 

Glanders ‐  Ab cELISA  200 

Neonatal Isoerythrolysis  ‐  Agglutination test  75 

Strangles ‐  Ab ELISA (A + C antigen)  250 

Surra ‐  Ab ELISA  200 

Vesicular stomatitis ‐  VNT  200 

West Nile ‐ IgM Ab ELISA  350 

West Nile ‐ IgG Ab ELISA  200 

Sera storage (without testing)  40 

Tests for other animals 

Abortion Panel : Ab ELISA – IBR, BVDV, BHV ‐ 4  250 

Anaplasmosis – Ab ELISA  150 

Babesia gibsonii ‐ Immunofluorescence antibody test ( IFAT)  400 

Brucellosis  ‐  Rose Bengal test  (RBT)  25 

Brucellosis  ‐   Serum agglutination test (SAT)  75 

63  

Test  Price (Dhs) 

Brucellosis  ‐ Complement fixation test (CFT)  150 

Brucellosis  ‐  Ab cELISA  150 

Brucella canis ‐  Immunofluorescence antibody test ( IFAT)  400 

Blue Tongue  ‐ Ab ELISA  150 

Bovine Leukaemia Virus (BLV) ‐  Ab ELISA  150 

BVDV ‐  Ab ELISA  250 

Camel pox  ‐ Ab ELISA  150 

Camel pox  ‐ Virus Neutralisation Test (VNT)  150 

Camel Tryps  ‐ Ab ELISA  110 

Clostridium perfringens Alpha toxin – Ab cELISA  150 

Clostridium perfringens  Enterotoxin ‐ Antigen ELISA  150 

Corynebacterium pseudotuberculosis (Caseous Lymphadenitis) ‐ Ab ELISA 

150 

Dirofilaria immitis ‐ Ag ELISA  200 

Ehrlichia canis ‐  Immunofluorescence antibody test ( IFAT)  400 

FAVN (Fluorescent Antibody Virus Neutralisation) test for Rabies Antibody 

500 

Foot and Mouth Disease  (FMD) ‐ Ab cELISA (for field infection)  150 

Infectious Bovine Rhinotracheitis (IBR) ‐  Ab cELISA  150 

Mycobacterium  paratuberculosis (Johns disease) for animals including camelids ‐  Ab ELISA 

150 

Leishmania infantum ‐  Immunofluorescence antibody test  ( IFAT) 400 

MERS‐CoV  for camels ‐ Ab ELISA  250 

MERS‐CoV for humans ‐ Ab ELISA  250 

Mycoplasma capricolum (CCPP)  ‐  Ab ELISA  150 

Neosporosis ‐  Ab cELISA  150 

Peste des Petits ruminants (PPR)  ‐ Ab cELISA  150 

Q  Fever  ‐ Ab ELISA  150 

Respiratory penta :  Ab ELISA – BHV‐1, BVDV, BRSV,  PI3,  Adeno‐3  250 

Rift Valley Fever  (RVF) ‐ Ab cELISA  150 

Schmallenberg ‐  Ab ELISA  150 

Toxoplasmosis ‐  Direct Agglutination test  75 

Tuberculosis – Immunochromatographic test (Elephant, Camelids, Sealions, Cervids) 

250 

West Nile ‐  Ab cELISA  200 

SEROLOGICAL TESTS FOR AVIANS 

Avian Influenza H5,H7 and H9 ‐ Haemagglutination inhibition test (HI) 

65/sample 49/10samples 

64  

Test  Price (Dhs) 

Avian Leukosis – Ag ELISA (Media for Cloacal swabs can be collected from CVRL) 

150 

Infectious Bronchitis  disease (IB) ‐  Ab ELISA  75 

Infectious Bursal disease (Gumboro) ‐  Ab ELISA  75 

Newcastle Disease  ‐ Ab ELISA  75 

Newcastle Disease  ‐  Haemagglutination inhibition test (HI)  50/sample 42/10samples 

Mycoplasma synoviae  and Mycoplasma gallisepticum ‐  Ab ELISA  200 

Parasitology 

Faecal Sample 

Flotation  20 

Sedimentation  30 

Egg count (OPG or EPG)  50 

Normal smear (protozoans & cysts)  20 

Cryptosporidium staining (screening)  40 

Parasite identification and flotation  40 

Stomach worms (Habronema/Phsysocephalus) screening  50 

Xenodiagnostic culturing of Habronema muscae in flies  100 

Other Samples 

Skin/Skin scrapings/Hair Examination and KOH smear  40 

Parasite / Pest / Insect Identification  40 

Blood parasite direct smear  25 

Giardia / Cryptosporidium (IFT)  110 

Feed examination for parasitic stages  60 

Soil examination for parasitic stages  100 

Examination of other body fluids / cysts / muscle etc.  40 

Microfilaria microfiltration test(min. 2 ml EDTA Blood)  50 

Knott's test for Microfilaria(Heart worm) ‐ (min. 2 ml EDTA blood)  50 

Bacteriology 

Routine bacterial culture (Aerobic and Anaerobic culture with identification) 

100 

Routine bacteriology with Salmonella culture and identification  150 

Sensitivity test per isolate  70 

Gram stain with interpretation  25 

Blood culture including bottle  80+50 

Special Isolation and Identification 

Anaerobic culture  100 

65  

Test  Price (Dhs) 

Brucella culture  150 

Campylobacter  culture  150 

Clostridium botulinum culture with mouse bio‐assay  1500 

E.coli O157:H7  150 

Legionella Culture without PCR  300 

Listeria Culture  150 

MRSA culture  150 

Mycobacterium culture only (Identification by PCR‐ see PCR charges) 

200 

Mycoplasma culture  150 

Salmonella culture  100 

Taylorella equigenitalis (CEM) culture per swab  250 

Feed and Water 

Feed and water analysis [Total plate count (TPC) only]  50 

Feed and water analysis (Aerobic, Anaerobic and Salmonella culture) 

150 

Feed and water analysis with additional serial dilutions (per additional dilution) 

50 

Moisture Estimation (Thermo‐gravimetric method)  20 

Milk Analysis 

Routine Milk Analysis (TPC with pathogen identification if any and Coliform count) 

80 

Extended Milk Analysis (TPC with pathogen identification if any, Coliform count, Staphylococcus aureus count, Salmonella culture, CMT, MRT, SCC) 

160 

CMT (California Mastitis Test)  20 

Milk MRT (Milk Ring Test)  20 

Milk‐SCC (Somatic Cell Count)  25 

Others 

Leptospira Canicola Microscopic Agglutination Test (MAT)  95 

Urine strip  15 

Analysis of food intended for human consumption 

Total Plate count  50 

Coliforms ‐ detection and enumeration  100 

Staphylococcus aureus ‐ detection and enumeration  80 

Salmonella culture – detection by culture  100 

Listeria monocytogenes ‐detection by culture  150 

Campylobacter species – detection by culture  150 

Clostridium perfringens – detection by culture  100 

66  

Test  Price (Dhs) 

Vibrio parahemolyticus – detection by culture  80 

Yersinia enterocolitica – detection by culture  100 

Bacillus cereus detection by culture  80 

Lactobacillus species ‐ detection by culture  150 

Fungus/Yeasts – detection by culture  100 

Fungus 

Culture and identification of fungus  80 

Culture and identification of fungus including dermatophytes  100 

Identification  50 

Fungus culture with additional serial dilutions  (per additional dilution) 

50 

KOH mount preparation  25 

Mycotoxin analysis ‐ ELISA (Aflatoxin, Fumonisin)  250 

Air quality testing 

Site visit and sampling  2000 

Plate evaluation for bacteria  100 

Plate evaluation for fungus  80 

Miscellaneous 

Mouse bioassay, e.g. for Surra, toxin, botulism  150 

Rabbit skin test  100 

Skin allergic test (Tb, Mallein)  500 

Highly infectious bacterial identification ( BSL‐3)  500 

Isothermal genome amplification method‐ Strangles  250 

Virology 

Virus isolation‐Avian 

Adenovirus  150 

Avian paramyxovirus ‐1 (Newcastle disease virus)  150 

Herpes virus  150 

Influenza A virus (All avian Influenza strains including H9, H7 & H5) 150 

Pox virus (Houbarapox, Falconpox, Pigeonpox,)  150 

Reo virus  150 

West Nile Virus (WNV)  200 

Virus isolation‐Others 

African Horse Sickness (AHS) virus  200 

Bluetongue virus (BTV)  200 

Camelpox virus  150 

Equine Arteritis virus from semen  500 

67  

Test  Price (Dhs) 

Encephalomyocarditis virus  150 

Equine Herpes virus (EHV)  150 

Equine Influenza virus  200 

Equine Rhinitis A & B virus  150 

Foot and Mouth Disease (FMD) virus  200 

H1N1 Influenza Virus  200 

MERS Coronavirus (MERS CoV)              200 

Peste des Petits Ruminants (PPR) Virus  150 

Sheeppox virus  150 

Vesicular Stomatitis Virus (VSV)  150 

West Nile Virus (WNV)  200 

Immunofluorescence Test(IFT) 

Bovine herpesvirus ‐ 1 (Infectious Bovine Rhinotracheitis ‐IBR)  110 

Bovine respiratory syncytial virus (BRSV)  110 

Bovine Viral Diarrhoea virus (BVDV)  110 

Canine distemper virus            110 

Equine Herpes virus‐1 (EHV)                                                  110 

Feline herpesvirus (FHV)  110 

Rabies  150 

Antigen ELISA 

AHS  250 

Influenza A Rapid test  100 

PPR  250 

Rota Virus Antigen Strip test  60 

Parvo Virus Antigen Strip test  140 

 Miscellaneous 

Highly infectious pathogens identification ( BSL‐3)  500 

(MERS CoV)‐Isothermal genome amplification  250 

COMPLETE TEST PROFILE FOR PET TRAVEL 

Blood smear for Babesia gibsoni  25 

Immunofluorescence antibody test ( IFAT) for Babesia gibsoni  400 

Immunofluorescence antibody test ( IFAT) for Brucella canis  400 

Blood smear for Dirofilaria immitis  25 

Microfiltration/ KNOTT's test for Dirofilaria  50 

ELISA for Heartworm (Dirofilaria immitis)         200 

Blood smear for Ehrlichia canis                25 

68  

Test  Price (Dhs) 

Immunofluorescence antibody test ( IFAT) for Ehrlichia canis               

400 

Blood smear for Leishmania infantum  25 

Immunofluorescence antibody test ( IFAT) for Leishmania infantum 

400 

Leptospira Canicola Microscopic Agglutination Test (MAT)  100 

FAVN (Fluorescent Antibody Virus Neutralisation) test for Rabies Antibody 

500 

Blood smear for Trypanosoma evansi  25 

Haematocrit test for Trypanosoma evansi  25 

Card Agglutination Test for Trypanosoma evansi  25 

Virus isolation for Avian Influenza and Newcastle disease  250 

Pathology 

Post mortem/necropsy (without histology) 

Carcass: Pets (rabbit, cat, dog)  100 – 200 

Carcass: Small animals(camel‐calf, sheep, goat, small game)  including incineration 

200 – 350 

Carcass: Big animals (camel, horse, cow, game) including incineration 

800 

Carcass : Birds (falcon, parrot, ostrich etc.) including incineration  80 – 400 

Carcass : Poultry (chicken, quail, etc.) including  incineration  20 – 60 

Transportation / Incineration / Cremation 

Transportation of carcass  200/hour 

Incineration according to size  50 – 500 

Pet Incineration / Disposal (No ashes back) 

Small (Up to 1 kg)  50 

1 to 5 Kg  75 

5 to 10 Kg  150 

Above 10 Kg  200 

Pet Cremation – Ashes back (Urns are available at CVRL) 

Small (up to 1 kg)  100 

1 to 5 Kg  200 

5 to 10 Kg  300 

Above 10 Kg  500 

Individual Cremation: Cat/Dog/Pet  1000 

Individual Cremation: Equine  2000 

Histology – Cytology 

Histology each slide  60 

69  

Test  Price (Dhs) 

Cytology  30 

Immunohistology  220 

Miscellaneous 

Semen Analysis  110 

Courier charges for external lab services  20% of the total amount

Administration fee for re‐issuance of historical results  100/result 

Vaccines 

Bacterial Vaccines 

Autovaccine production  with adjuvants  10/ml 

Oral Vaccine  5/ml 

Clostridium perfringens A hyperimmune serum (DuCaClobulin)  600/bag 

Viral vaccines 

Papilloma viral vaccine  10/ml 

Falcon paramyxo (APMV) inactivated vaccine (DuFaPa)  30/dose 

Falconpox vaccine (attenuated)  20/dose 

Houbarapox vaccine (attenuated)  20/dose 

Camelpox vaccine (Ducapox)*(attenuated) 

African Horse Sickness Vaccine (inactivated) – 9 serotypes  170 

*Contact exclusive distributor: AL BASHAYER VET for purchase enquiries, email: albashayer.dubai@gmail.com  

Immunization in Dromedaries 

Animal/immunogen  7350 

Books 

Camel Haematology (1990)  250 

Infectious Diseases in Camelids (Arabic)  200 

Colour Atlas of Falcon Medicine (2004)  300 

Camelid Infectious Disorders (2014)  400 

Forensic Unit 

Screening ‐ Equine  350 

Confirmatory analysis and documentation ‐ Equine  1350 

Screening ‐ Camel  100 

Molecular Biology 

Please refer www.mbglab.ae for tests and service charges