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Dr. Wilner Martínez - López Epigenetics and Genomic Instability Laboratory Instituto de Investigaciones Biológicas Clemente Estable (IIBCE) Montevideo - Uruguay Targeting histone deacetylases for cancer therapy

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Dr. Wilner Martínez-López

Epigenetics and Genomic Instability Laboratory

Instituto de Investigaciones Biológicas Clemente Estable (IIBCE)

Montevideo - Uruguay

Targeting histone deacetylases for

cancer therapy

Respuesta celular al daño inducido sobre el ADN

Detención del ciclo celular

Reparación del ADN

Apoptosis

Completo

Incompleto

Mutación

Aberraciones Cromosómicas

cáncer y enfermedades hereditarias

ADN

El ADN es empaquetado

por proteínas histónicas

y no histónicas en

cromatina.

La cromatina es un

material altamente

dinámico, que posee

información epigenética.

ESTRUCTURA Y FUNCIÓN DE

LA CROMATINA

Cromatina nucleosoma

estructura superior de la cromatina

regulación de la estructura de la cromatina

Código de histonas – mecanismos epigenéticos

Nucleosoma – el ADN eucariota se enrolla 1.7 veces,

empaquetándose en el nucleosoma

Histonas – proteínas positivamente cargadas

(20% de Lys o Arg)

Núcleo de histonas: H2A, H2B, H3 y H4

Histona eslabón: H1

48 nm de ADN

(145 pb) son

empaquetados

en un disco de

6 x 11nm

nucleosoma

Dominios de plegamiento – 3

α-hélices separadas por lazos

sin estructura.

Ensamblado del

nucleosoma nucleosoma

ESTRUCTURA SUPERIOR DE LA

CROMATINA

La histona H1 estabiliza la estructura de

orden superior de la cromatina. Contacta

al ADN espaciador y la región central del

ADN en el nucleosoma

Fibra de cromatina de 30 nm

Seis nucleosomas por

cada vuelta: Solenoide

Una vuelta completa:

1.2 Kb de ADN

H1

Condensinas

Topoisomerasas

Fibra de cromatina de 30 nm

se une formando lazos a un armazón proteico

Organización de la cromatina en interfase y en

cromosomas mitóticos

Cromosomas mitóticos

Scaffold

Interfase

Matriz nuclear

A- Información genética

Existen por lo menos dos formas de

información en el núcleo de la célula:

B- Información epigenética

EPIGENETICA

La epigenética es el estudio de los mecanismos

heredables que afectan el estado transcripcional de

un gene el cual no puede ser explicado por la

secuencia de ADN y que puede persistir por una o

más generaciones.

EPIGENETICA• Sistemas de metilación de ADN

• Remodelación de la cromatina mediante

modificaciones de las histonas:

metilación, fosforilación,

acetilación, ubiquitinación,

ADP ribosilación• Mecanismos de remodelación de la cromatina

dependientes de ATP:

ISWI, SWI/SNF2

• ARN no codificante

Metilación de ADN dirigida por ARN

Silenciamiento génico postranscripcional

ARN de interferencia

REGULACIÓN DE LA ESTRUCTURA DE LA

CROMATINA

La interacción ADN-octámero de histonas es

dinámica, permitiendo el acceso a regiones

particulares del ADN

Complejos remodeladores del

nucleosoma

Modificaciones covalentes de las

histonas

REMODELADORES DE LA CROMATINA

DEPENDIENTES DE ATP

switching (SWI)

and sucrose

non-fermenting

(SNF)

Imitation SWI

Clasificación según la identidad de la subunidad ATPasa:

SWI2/SNF2 (“switch sucrose non fermenting”)

ISWI (“imitation SWI”)

Regulación

Variations in Human SWI/SNF Complexes

Actina

BRG1/BAF

BRG1

BAF155

BAF170BAF57

BAF53a

BAF250a

BAF60

a

BAF47

Actin

PBAF

BRG1

BAF155

BAF170BAF57

BAF53a BAF180

a & b

BAF60

a

BAF47

Actin

BRM/BAF

BRM

BAF155

BAF170BAF57

BAF53a

BAF250a

BAF60

a

BAF47

Actin

BRG1

BAF155

BAF170BAF57

BAF53a

BAF250b

BAF60

a & b

BAF47

EBAF70

EBAF140EBAF100

Actin

ENL

EBAFb

BRG1

BAF155

BAF170BAF57

BAF53a

BAF250a

BAF60

a & b

BAF47

EBAF70

EBAF140EBAF100

Actin

ENL

EBAFa

Regulación

Los remodeladores ATP

dependientes y las

modificaciones covalentes de

histonas trabajan juntas para

incrementar la accesibilidad al

ADN

Modificaciones covalentes – las

modificaciones en las colas N-

terminal de las histonas alteran

el acceso a la cromatina

Regulación

Acetilación

Deacetilación

Metilación

Fosforilación

Ubiquitinación

ADP-ribosilaciónLas colas de histonas están involucradas

en la formación de la fibra de 30nm

sus modificaciones afectan la estructura

de 30nm

Modificaciones

post-traduccionales

En general, el código genético incluye 4

nucleótidos, A G T y C, y el nivel de

complejidad está basado en la

combinación potencial de estas 4 bases.

Existe tambien un “código de histonas”

epigenético, el cual es mucho más

complejo y es parcialmente responsable

de la regulación funcional del código

genético en una célula en particular y

dentro de un ambiente determinado.

El código de histonas incluye:

Acetilación (mono-, di, and tri-)

Metilación (mono-, di-, and tri-)

Fosforilación

Ubiquitinación

La hipótesis del Código de Histonas

Hipótesis Código de Histonas

• Modificaciones de las histonas

• Variantes de histonas

• Enzimas responsables de las modificaciones de histonas

• Coordinación de la modificación de histonas

• Dominios de proteínas que se unen con las histonas modificadas

• Different combinations of histone modifications, especially located near or within a

gene’s promoter, may be VERY SPECIFIC to the transcriptional state of the gene

Peterson CL et al, Current Biology, 2004

Modificaciones de histonas

Hipótesis Código de Histonas

Modificaciones post-traduccionales de

las histonas

Methylated histones first described in 1964, Murray 1964 Biochemistry 3, 10-15

Hipótesis Código de HistonasEnzimas que proveen la metilación de las histonas

Metzger et al. (2005)

Shi et al., (2004).

Histona demetilasa LSD-1

Hipótesis Código de Histonas

H1

H2B

H2A

H3

H4

hélice

variable

conservada

La acetilación de histonas

es una modificación reversible

de los extremos N-terminal

del octámero de histonas.

Resultado:

• reducción de la unión al ADN

• desestabilización de la cromatinaN

Histona Peso molecular Numero de aminoácidos Contenido de aminoácidos básicos

LAS HISTONAS

son

proteínas básicas

altamente conservadas

Wolfe and Pruss Cell 84, 817-819 (1996)

ACETILACIÓN DE HISTONAS

Fibras de

cromatina

+ extremos N-terminales

cargados

(unión al ADN sobre

nucleosomas vecinos)

Histonas altamente

acetiladas

(especialmente H3 y H4)

Fibra de

cromatina

de 30 nm

Fibra

nucleosómica

de 11 nm

• ALTO nivel de histonas H1 • Nivel reducido de histona H1

• NO transcripción génica •Posible transcripción génica

solenoide

nucleosoma

ADN

Variantes de histonas

K. Sharma 2005,NATURE REVIEWS

Hipótesis Código de Histonas

“Interplay” entre diferentes

mecanismos epigenéticos

Margueron ,Current Opinion in Genetics & Development (2005)

Histone Code Hypothesis

• As proposed by Allis and Strahl: “that multiple histone

modifications, acting in a combinatorial or sequential

fashion on one or multiple histone tails, specify unique

downstream functions”

Strahl, B.D. and Allis, C.D., Nature. 2000

35

Combinatorial histone modifications

Something is writing this code….

and

Something is reading this code…

Hipótesis Código de Histonas

Las modificaciones generan sitios de unión a

proteínas

Bromodominios – reconocen histonas acetiladas

Cromodominios – reconocen histonas metiladas

Regulación

Proteins “read” histone code

bromodomain +

acetylated lysine

chromodomain +

methylated lysine

Khorasanizadeh, 2004

The combination of phosphorylation of

serine residue 10 and acetylation of a

lysine residue 14 on histone H3

correlate with active transcription.

Methylated lysine 9 and lysine 27 on

histone H3 are associated with

repressed genes.

Interdependencia entre modificaciones de histonas

Phosphorylation of serine residues 10 and 28 on histone H3

is a marker for chromosomal condensation.

Methylated lysine 4, 36 and 79 of H3 are associated with

“active” chromatin

Modificaciones de la superficie lateral

La energía de hidrólisis del ATP de los remodeladores de

histonas puede usarse para separar el ADN del octámero de

histonas y exponer sus aminoácidos laterales para su

modificación.

H3 Thr 118 se une por puente de

hidrógeno al esqueleto de ADN y

a H4 Arg45 . La fosforilación de

Thr 118 altera la interacción de H4

Arg45 con el surco menor,

permitiendo el deslizamiento del

octámero sobre el ADN

epigenesis

Protein code readers bind to specific sets of modifications leading to downstream effects such as gene transcription, DNA synthesis and repair.

Code Readers

Cellular Decisions

Modified Histones

Nuestro Epigenoma

• If epigenetic markers are dynamic and respond to environmental

influences, do they change over time?

– Evidence suggests the answer is yes.

• Twin studies have been highly informative for this question.

Author Statement

• “We found that, although twins are epigenetically indistinguishable

during the early years of life, older monozygous twins exhibited

remarkable differences in their overall content and genomic

distribution of 5-methylcytosine DNA and histone acetylation,

affecting their gene-expression portrait.”

Chromosomal Level

• Comparative genomic

hybridization for methylated

DNA

– Yellow = similar chromosome

methylation pattern between

twins.

– Red = regions of

hypomethylation in one twin

compared to the other.

– Green = regions of

hypermethylation in one twin

compared to the other.

Evidencias epidemiológicas sugieren que la exposición ambiental

temprana durante el desarrollo posee un rol en la susceptibilidad a

enfermedades a lo largo de nuestra vida. Algunos de estos efectos

podrían pasar a sucesivas generaciones

Las modificaciones epigenéticas constituirían un “link” entre el medio

ambiente y las alteraciones en la expresión génica que podrían

conducir a las enfermedades

Epigenetica y Medio Ambiente

Epigenética y CancerLos diferentes estados de la cromatina son esenciales para el

control génico

Es importante no solo encender los genes correctos sino tambienapagar aquellos que no deben ser expresados

Los componentes de la cromatina poseen un papel fundamentalen la decisión de estos procesos

El silenciamiento epigenético de genes constituye una nuevaherramienta para la terapia anti-neoplásica

Example: Replication errors

GENETIC

Altered DNA/mRNA/proteins

Altered DNA sequence

Historicamente se consideraba que el

cancer derivaba de cambios genéticos

XX

Oncogenesis

Tumor

Example: Replication errors

GENETIC EPIGENETIC

Example: Chromatin modification errors

Altered DNA/mRNA/proteins

Altered DNA sequence

Altered levels ofmRNA/proteins

Alteredchromatin structure

En las últimas décadas se ha demostrado que

los cambios epigenéticos son tambien

importantes en el desarrollo del cáncer

XX

Oncogenesis

Tumor

Epigenetics is:

• Reversible changes in gene

expression

– Without changes in DNA

sequence

– Can be inherited from

precursor cells

• Epigenetic information is

included in the epigenome

Genome

DNA

Gene Expression

Epigenome

Chromatin

Phenotype

Epigenética

Los mecanismos epigenéticos juegan un

importante papel en el desarrollo de una célula

normal como en una cancerosa

Epigenetic mechanisms can regulate genes involved in differentiation, cell cycle, and

cell survival

Deregulation of epigenetic mechanisms results in aberrant gene expression, which

can lead to cancer

Reversal of deregulated epigenetic changes is a rational strategy for targeting cancer

EPIGENETICS

Normal differentiated cells, e.g. embryonic

cells, hematopoetic cells

Malignant

progenitor cell Tumor

Normal epigenetic

mechanisms

Deregulated epigenetic

mechanisms

En el cáncer, cambios en la estructura de la

cromatina pueden silenciar Genes

Supresores de Tumores

Silencing of tumor suppressor genes, a major process in tumorigenesis, may result from epigenetic changes that condense chromatin structure

Cancer

cells

Tumor suppressor

gene expression

Tumor suppressor gene

expression

Normal

cellsAc

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Increased HDAC activity or decreased HAT activity may result in

aberrant gene expression, contributing to cancer

HISTONE ACETYLATION

HISTONE DEACETYLATION

Acetylated Histones

Open chromatin Transcription factors can access DNA

Deacetylated Histones

Closed chromatin Transcription factors cannot access DNA

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

HDAC

HAT

TF

TF

El balance en el proceso de acetilación de

histonas es fundamental para la regulación

transcripcional de una célula

La metilación del ADN impide la expresión génica

DNA methylation involves the transfer of methyl groups to cytosine

residues in DNA by DNA methyltransferases (DNMTs)

May prevent transcription factors from binding to DNA

May serve as binding site for methylated DNA-binding proteins,

such as MECP2, which then recruit HDACs

MeMeMe Me

MeMe

Me

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

Ac

DNMT DNMT

DNMT DNMT

Geneexpression

Geneexpression

TF

TF

• Inhibition of HDAC activity

can restore the balance of

histone acetylation

• Targeting HDAC activity

may therefore allow

re-expression of silenced

genes to reverse

oncogenesis

La inhibición de HDACs puede revertir la

expresión génica alterada

Gene

expression

Ac Ac Ac

Differentiation

Growth control

Cell-cycle arrest

Apoptosis

Adhesion

Cell nucleus

HDACTF

DAC

Inhibitor

Since DNA methylation and

histone deacetylation can

co-operate to silence tumor

suppressors, inhibition of

both DNMT and HDAC

activities can synergize to

restore expression of

silenced genes

Una terapia combinada puede ser más eficiente

DAC

Inhibitor

Gene

expression

Ac

Ac Ac

Ac

Ac

Ac

Cell nucleus

HDAC

DNMT

DNMT

Inhibitor

TF

Differentiation

Growth control

Cell-cycle arrest

Apoptosis

Adhesion

Resumen

Los procesos epigenéticos regulan la expresión génica y conductacelular

Los cambios epigenéticos que conducen al silenciamiento de geneses central en la patogénesis de la enfermedades malignas, tantoen tumores sólidos como hematológicos

La deacetilación de histonas y la metilación del ADN representan dosmodificaciones epigenéticas con relevancia clínica en oncogénesis

Los blancos terapéuticos de la terapia epigenética pueden restaurarla expresión de genes que son críticos en el control del normalcrecimiento de la célula

Los inhibidores de HDACs muestran sinergismo con los agentesdemetilantes del ADN para inhibir el crecimiento tumoral

EPIGENETICA Y FARMACOLOGIA

• A diferencia de las patologías con base genética, lasrelacionadas con cambios epigenéticos sonreversibles.

• Las drogas epigenéticas pueden ser empleadas yasea para activar o silenciar genes relacionados conpatologías.

• Diferentes estados epigenéticos pueden condicionar larespuesta a drogas

• La farmacoepigenómica constituye un campoemergente.

Peedicayil 2006

Ensayo de terapias para incrementar la

sensibilidad al tratamiento quimioterápico en

líneas celulares derivadas de cáncer de vejiga

IIBCE-FMED

Tratamiento estándar: resección transuretral del tumor seguido de la

instilación intravesical de agentes de quimioterapia.

Recidiva: 70% con un 30% de neoplasias invasoras y mortalidad del

80% a 5 años (Swana et al., 1999).

Sobre-expresión de SURVIVINA, hecho asociado con el elevado

porcentaje de recidiva y su mal pronóstico en términos de sobrevida.

CARACTERISTICAS MAS SALIENTES

ESTRATAEGIA DE LA INVESTIGACION1. Estudiar el efecto de la inhibición de expresión de survivina

(mediante ARN de interferencia) en relación al tratamiento

quimioterápico que habitualmente se emplea en la terapia

anti-neoplásica en el cáncer de vejiga.

2. Analizar el efecto de la remodelación de la cromatina

(mediante cambios en el patrón de acetilación de histonas)

en la respuesta al tratamiento quimioterápico de líneas

celulares derivadas de cáncer de vejiga que expresan

diferentes niveles de survivina.

3. Asociación de ambas terapias con el fin de incrementar la

sensibilidad al tratamiento quimioterápico en las líneas

celulares derivadas de cáncer de vejiga.

Terapia con ARN de interferencia (ARNi)

anti-survivinaDiseño y sintesis de oligodeoxinucleótidos

a partir de 5 secuencias del mensajero de

survivina. Generación de un “shRNA”

(“short hairpin RNA”) clonado en el

plásmido pSilencer 1.0 para ser empleado

como ARN de interferencia.

Generación de un anticuerpo policlonal

específico contra todas las variantes de

“splicing” de survivina con el fin de poder

cuantificar su expresión en células

tumorales mediante la realización de

“western blots”.

Recuento de aberraciones cromosómicas y

porcentaje de células apoptóticas

Anticuerpo

comercial

Control

()

Anti-survivina

1/4000

Anti-survivina

1/8000

Anti-survivina

1/16000

ARNm de survivina

1619 bp

Exon I

Exon II

Exon III

Exon IV

shRNA_5 (100.0%)

shRNA_4 (100.0%)

shRNA_3 (100.0%)

shRNA_2 (100.0%)

shRNA_1 (100.0%)

Co-transfección con lipofectamina de los plásmidos con un vector

que produce la proteína fluorescente verde (pcEGFP, utilizada para

determinar el porcentaje de células transfectadas)

El tratamiento con tricostatina A, previo a la exposición a etopósido,

ellipticina, camptotecina, doxorubicina, cisplatino, 5-fluorouracilo o

ciclofosfamida, incrementa la muerte celular producida por estas

drogas (Kim et al. 2003).

Terapia cromatínica empleando

inhibidores de deacetilasas de histonas

(HDAC)

Datos preliminares obtenidos en nuestro laboratorio mostraron una

disminución en la sobrevida de células 253J (línea celular derivada

de un cáncer transicional de vejiga) expuestas a etopósido (5, 10 y 20

mM) en presencia de butirato de sodio (un inhibidor de deacetilasas

de histonas).

Recuento de aberraciones cromosómicas y porcentaje de células

apoptóticas

COULD THE INCREASE IN GENETIC DAMAGE OR

DECREASE IN DNA REPAIR BE RESPONSIBLE FOR

HDACi SENSITIZATION?

We studied the induction/removal of DNA damage

induced by anti-neoplasic agents, as well as cell cycle

progression in the presence or absence of HDACi.

Human and Chinese hamster cells were exposed to theHDACis sodium butyrate (NaB) or valproic acid (VA) beforeetoposide treatment or gamma rays exposure.

METHODOLOGY

DNA damage induction/removalComet assay – alkaline version

Cell survival

Clonogenic assay

Bladder cancer (253J) cell line

Chinese hamster (CHOK1) cell line

Sodium butyrate (NaB)(1 and 5 mM)

24 hours

Etoposide

( 20 mM, 1 hour)

Cell cycle progression

DNA content analysisby flow cytometry

G0-G1

S

G2-M

of

even

ts

Fluorescence

intensity

RESULTS and DISCUSSION

NaB (1 mM and 5 mM) + etoposide (20 µM) in CHOK1 and the 253J cell lines

Cell cycle arrest induced by the higher dose of NaB could explain the unevensensitivities to etoposide in terms of cell survival?

Cell survival

Figure 1 – Relative plate efficiency in 253J (a) and CHOK1 (b) cell lines after etoposide treatment, either with or without NaB pre-treatment

(1 and 5 mM). Pool data from at least two independent experiments are shown. Bars represent 95% confidence intervals.

CHOK1

0%

20%

40%

60%

80%

100%

120%

0 10 20 30 40 50

Etoposide (uM)

Rela

tive p

late

eff

icie

ncy

Eto

NaB 1 mM + Eto

NaB 5 mM +Eto

253J

0%

20%

40%

60%

80%

100%

0 10 20 30 40 50 60

Etoposide (uM)

Rela

tive p

late

eff

icie

ncy

NaB 5mM + Eto

Eto

NaB 1mM + Eto

253J CHOK1

a b

Cell cycle progression

Since cell cycle arrest produced by the higher dose of NaB could be involved inthe decrease of the sensitization effect to etoposide, we analysed its effect onDNA damage induction/removal.

Figure 2 – DNA content analysis evaluated by flow cytometry in 253J (a) and CHOK1 (b) cells treated with

etoposide with and without NaB (N) (1 or 5 mM) pre-treatment.

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

Control Eto NaB 1 NaB 5 N 1 + Eto N 5 + Eto

% p

hases o

f cell

cyc

le

253J% G2

%S

% G1

0%

10%

20%

30%

40%

50%

60%

70%

80%

90%

100%

Control Eto NaB 1 NaB 5 N 1 + Eto N 5 + Eto

% p

ha

ses

of c

ell

cycl

e

CHO K1% G2

%S

% G1

a

253J CHOK1

b

G0-G1

S

G2-

M

of

even

ts

Fluorescence

intensity

DNA damage induction

Therefore, in CHOK1 the higher dose of NaB applied in combination with etoposideproduced less DNA damage which was correlated with the higher cell survivalobserved.

Figure 3 – DNA damage induced by etoposide

(20 µM) with or without NaB (1 or 5 mM) pre-

treatment measured by comet assay (Tail

moment) in two bladder cancer cell lines: a)

253J, b) T24 and c) in hamster cell line CHOK1.

Pool data +/- SEM from at least two independent

experiments are shown.

253J

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

20

Control NaB 1 mM NaB 5 mM Etoposide NaB 1 mM +

Eto

NaB 5 mM +

Eto

Treatment

Tai

l Mom

ent

CHOK1

0

2

4

6

8

10

12

Control NaB 1 mM NaB 5 mM Etoposide NaB 1

mM+Eto

NaB 5

mM+EtoTreatment

Tai

l Mom

ent

T24

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

20

Control NaB 1 mM NaB 5 mM Etoposide NaB 1 mM +

Eto

NaB 5 mM +

Eto

Treatment

Tai

l Mom

ent

b

c

a

253J T24

CHOK1

*

*

*

DNA damage removal in human peripheral bloodlymphocytes H2AX foci inmunodetection

DNA damage induction/removal

(H2AX foci)

Valproic acid (VA) (0,7 mM)

24 hours

rays(0,5 Gy)

0

2

4

6

8

10

12

0 30 60 90 120 150 180 210Time (minutes)

Mean n

um

ber

of

H2A

X f

oci per

cell

0,5 Gy

VA+0,5 Gy

0,5 Gy + VA

Figure 5 – Mean number of -H2AX foci per cell with or without

valproic acid (0,7 mM) pre- (VA+0,5 Gy) or post-treatment (0,5 Gy

+ VA) at 30 minutes and 3 hours after 0,5 Gy irradiation. Pool

data from two independent experiments are shown. Bars represent

SD.

• Depending on the dose of HDACi applied, HDAC inhibition could leadto a higher sensitivity to anti-cancer agents.

CONCLUSIONS

• The sensitizing effect of NaB to anti-neoplasic agents could beexplained by an increase in genetic damage, which seems to beinversely related to cell cycle arrest induced by high doses ofHDACis.

•Depending on the cell type, the dose of HDACi should be carefullyadjusted when they are used as sensitizers to anticancer therapy inorder to increase treatment efficacy.

Desarrollo de terapias antineoplásicas sensibilizadoras

para células tumorales hipóxicas

Hipoxia tumoral

Los tumores sólidos se encuentran formados por una masa celular que

como resultado de la insuficiente neovascularización y las alteraciones de

la vasculatura tumoral resultan en un flujo sanguíneo muy irregular y

caótico, que lleva a la hipoxia tumoral reversible o aguda.

La hipoxia está confinada en el tumor sólido y por lo tanto representa un

blanco único que puede ser explotado para eliminar selectivamente las

células tumorales en los tumores sólidos.

Linker

Agrupamiento hidrofóbico

Grupo quelante de Zn+2

iHDACs

Estos compuestos tienen en común la

presencia de tres agrupamientos

esenciales para la interacción de los

mismos con las HDACs, que son un

grupo quelante de Zn+2 (i.e. ácido

carboxílico o ácido hidroxámico) una

cadena alifática como linker y un

agrupamiento hidrofóbico apolar (i.e.

agrupamiento fenilo).

El pre-tratamiento de algunas líneas celulares tumorales con inhibidores de

deacetilasas de histonas (iHDAC) produce un aumento en la sensibilidad a

agentes quimioterápicos

1) Determinación de la afinidad de los

compuestos por HDAC7 por estudio teórico

de docking para diseñar la síntesis de los

compuestos.

2) Síntesis de los compuestos.

3) Determinación de la LD50 de los compuestos

en las líneas celulares de cáncer en

condiciones de normoxia e hipoxia.

4) Determinación de la capacidad de actuar como

iHDACs de los compuestos a estudiar en

condiciones de normoxia e hipoxia. Efecto de

los iHDACs en la expresión de HDAC7 y HIF-1

en condiciones de hipoxia.

N

N

O

O

NH

N

NH

NHNH2

Agrupamiento quelante de Zinc

Agrupamientos quelantes de Zinc

NOH

NOH

R

LINKER

NH

C

O

LINKERSNH

S

OO

En condiciones de hipoxia, HIF-1 activa la transcripción de genes relacionados

con la supervivencia celular. Las HDACs del grupo II, 4, 6 y 7, modulan la

actividad de HIF-1 regulando la acetilación del mismo, de forma que su

inhibición generaría una disminución en la transcripción de estos genes.

De esta forma las HDACs 4, 6 y 7 constituyen un nuevo factor de regulación de

la transcripción de genes relacionados con la supervivencia del fenotipo

hipóxico. De esta manera el desarrollo de inhibidores de HDACs es un atractivo

blanco terapéutico para el tratamiento de células tumorales hipóxicas.

Objetivos del proyecto

PEDECIBA (Program for BasicSciences Development)

National Agency for Research andInnovation (ANII)

National Commission AgainstCancer (CHLCC – Uruguay)

ACKNOWLEDGEMENTS

IILA Fellowship - University ofTuscia (Italy) in Prof. Palitti’s lab.

Marie-Curie Program – EuropeanCommunity

IAEA Fellowship – Institute forRadioprotection and NuclearSecurity (IRSN), Fontenay AuxRoses (France) in Dr. Voisin’s lab.

Mag. Leticia Méndez Acuña

Dr. María Laura Lavaggi

Muchas gracias !!!

INSTITUTO DE INVESTIGACIONES

BIOLOGICAS CLEMENTE ESTABLE

MONTEVIDEO - URUGUAY