podstawy genetyki ii

112
Podstawy genetyki II Metody badawcze genetyki i organizmy modelowe

Upload: ngonguyet

Post on 11-Jan-2017

226 views

Category:

Documents


6 download

TRANSCRIPT

Page 1: Podstawy genetyki II

Podstawy genetyki II

Metody badawcze genetyki i organizmy modelowe

Page 2: Podstawy genetyki II

Podstawowe techniki genetyki molekularnej

2

Page 3: Podstawy genetyki II

Czym jest inżynieria genetyczna? Ang. recombinant DNA – manipulacje DNA in vitro

}  izolacja i amplifikacja DNA i cDNA }  mapowanie i sekwencjonowanie DNA }  tworzenie nowych cząsteczek DNA

}  przez rekombinację cząsteczek naturalnych }  przez syntezę de novo

}  wprowadzanie konstruktów DNA do komórek i organizmów }  modyfikacje syntezy białek

}  ekspresja heterologiczna

}  bioinformatyka

3

Page 4: Podstawy genetyki II

A co nie jest inżynierią genetyczną? }  Inżynieria embrionalna (np. klonowanie)

}  Tworzenie nowych form organizmów przez selekcję

4

Page 5: Podstawy genetyki II

Zastosowania }  Badania podstawowe }  Biotechnologia

Granica między badaniami podstawowymi a stosowanymi jest płynna, stosowane techniki są podobne, różnice dotyczą głównie skali.

5

Page 6: Podstawy genetyki II

Podstawowe techniki }  Izolacja DNA ze źródeł naturalnych

}  komórki i tkanki }  mikroorganizmy hodowane w laboratorium i występujące

naturalnie }  antyczny DNA

}  cDNA – izolacja RNA i przepisanie na DNA }  Chemiczna synteza DNA de novo

6

Page 7: Podstawy genetyki II

PCR

© 2005 Prentice Hall Inc. / A Pearson Education Company / Upper Saddle River, New Jersey 07458

7

Page 8: Podstawy genetyki II

Elektroforeza DNA i RNA

© 2005 Prentice Hall Inc. / A Pearson Education Company / Upper Saddle River, New Jersey 07458

8

Page 9: Podstawy genetyki II

Hybrydyzacja }  Wykorzystanie komplementarności kwasów

nukleinowych do wykrywania określonej sekwencji DNA (Southern) lub RNA (Northern)

© 2005 Prentice Hall Inc. / A Pearson Education Company / Upper Saddle River, New Jersey 07458

9

Page 10: Podstawy genetyki II

Hybrydyzacja Northern

}  Podstawowa metoda badania poziomu ekspresji genu

10

Page 11: Podstawy genetyki II

Podstawowe techniki

}  Enzymy restrykcyjne }  analiza fragmentów DNA

(mapowanie) }  klonowanie

11

Page 12: Podstawy genetyki II

Wektory }  Umożliwiają utrzymanie DNA wprowadzonego do

komórek (transformacja, transfekcja) }  wektory autonomiczne – zdolne do replikacji (np.. plazmidy,

wirusy) }  wektory integracyjne }  wektory ekspresyjne – umożliwiają ekspresję wprowadzonego

genu (autonomiczne lub integracyjne) }  wektory kierujące rekombinacją (ang. targeting) – integracyjne }  wektory bifunkcjonalne

12

Page 13: Podstawy genetyki II

Typowy wektor }  Sekwencje zapewniające replikację (w. autonomiczne) }  Sekwencje umożliwiające odróżnienie komórek z wprowadzonym

wektorem – markery selekcyjne }  Miejsce do wstawienia klonowanego DNA – linker }  Opcjonalnie – sekwencje umożliwiające odróżnienie wektora ze

wstawką od wektora „pustego” – marker rekombinacji

13

Page 14: Podstawy genetyki II

Klonowanie molekularne }  Włączenie danego fragmentu DNA (wstawki) do wektora

autonomicznego

14

Page 15: Podstawy genetyki II

Przykłady zastosowań }  Poznawanie sekwencji DNA (genów, genomów,

mutantów) }  Diagnostyka molekularna }  Ekologia i filogenetyka molekularna }  Heterologiczna ekspresja białek (dla celów poznawczych i

biotechnologicznych) }  „Odwrotna genetyka” – inaktywacja wybranych genów u

organizmów modelowych }  Terapia genowa

15

Page 16: Podstawy genetyki II

Sekwencjonowanie – metody klasyczne

}  Dideoksynukleotydy zatrzymują syntezę na określonych nukleotydach

!3’ ATCGGTGCATAGCTTGT 5’! !5’ TAGCCACGTATCGAACA* 3’!5’ TAGCCACGTATCGAA* 3’!5’ TAGCCACGTATCGA* 3’!5’ TAGCCACGTA* 3’!5’ TAGCCA* 3’!5’ TA* 3’!

Produkty reakcji A

Matryca

16

Page 17: Podstawy genetyki II

Tradycyjny odczyt sekwencji }  Znakowanie radioaktywne,

osobne reakcje A T C G

+

17

Page 18: Podstawy genetyki II

CGTAA CGTAAC CGTAACC CGTAACCC CGTAACCCT CGTAACCCTT CGTAACCCTTG CGTAACCCTTGG

• Obecnie stosuje się dideoksynukleotydy wyznakowane fluorescencyjnie – każdy innym kolorem

Sekwencjonowanie automatyczne

18

Page 19: Podstawy genetyki II

Sekwencjonowanie automatyczne

19

Page 20: Podstawy genetyki II

Postęp techniczny }  Koszt sekwencjonowania między 1999 a 2009 obniżył sie 14 000

razy }  Prędkość odczytu sekwencji między 2000 a 2010 r. wzrosła 50 000

razy }  Cel: sekwencja genomu jednej osoby za 1000$ osiągalny w ciągu

kilku lat }  Im więcej znamy sekwencji, tym łatwiej poznajemy kolejne

20

Page 21: Podstawy genetyki II

Sekwencjonowanie wysokoprzepustowe }  Tzw. deep sequencing }  Generowanie w jednym przebiegu milionów niezależnych

odczytów }  Pojedyncze odczyty krótkie (25-400 bp) }  Zastosowania

}  sekwencjonowanie nowych genomów }  resekwencjonowanie

}  np. analiza zmienności

}  badanie ekspresji przez sekwencjonowanie cDNA

21

Page 22: Podstawy genetyki II

Solexa

= 350

Solexa® Ultra-high-throughput DNA Sequencing Platform

22

Page 23: Podstawy genetyki II

Pirosekwencjonowanie (454)

The development and impact of 454 sequencing Jonathan M Rothberg & John H Leamon Nature Biotechnology 26, 1117 - 1124 (2008)

•  Fragmenty DNA przyłączone do kulek (1 fragment na kulkę), następnie namnożone

•  Kulki z DNA umieszczone w studzienkach

•  Sekwencjonowanie przez syntezę: dodaje się kolejno 4 nukleotydy, gdy dodany nukleotyd komplementarny, to uwoniony pirofosforan daje reakcję z luminescencją

•  Wynik: ~800,000 odczytów po 250-500 bp (~400 megabases)

23

Page 24: Podstawy genetyki II

Slides from http://www.illumina.com

Solexa (Illumina)

24

Page 25: Podstawy genetyki II

Slides from http://www.illumina.com

Solexa (Illumina)

25

Page 26: Podstawy genetyki II

Slides from http://www.illumina.com

Solexa (Illumina)

26

Page 27: Podstawy genetyki II

Slides from http://www.illumina.com •  Wynik: 80-100 milionów odczytów po

~50 bp (~4Gb)!

Solexa (Illumina)

27

Page 28: Podstawy genetyki II

Sekwencjonowanie }  Głównym wyzwaniem w sekwencjonowaniu nie jest sam

odczyt sekwencji }  Odczytywane fragmenty są krótkie

}  do ~700-800 nt (sekw. tradycyjne Sangera) }  200-400 nt (454) }  50-150 nt (Solexa)

}  Wyzwaniem jest złożenie długiej sekwencji z tych krótkich fragmentów

28

Page 29: Podstawy genetyki II

Genomika

}  Genomika jest dziedziną zajmującą się badaniem całych genomów (kompletu informacji genetycznej) różnych organizmów

}  Techniki biologii molekularnej + robotyka + informatyka

}  Sekwencjonowanie i charakteryzowanie genomów }  Badanie funkcji zawartych w nich genów

29

Page 30: Podstawy genetyki II

Metagenomika }  Izolacja DNA ze środowiska i sekwencjonowanie }  Jedyny sposób badania mikroorganizmów, które nie dają

się hodować

30

Page 31: Podstawy genetyki II

Metagenomika

}  Analiza sekwencji całości DNA wyizolowanego ze zbiorowiska organizmów

31

Page 32: Podstawy genetyki II

Odkrycia dzięki sekwencjonowaniu

}  Tajemnicza UCYN-A }  Sinica (cyjanobakteria) }  Niewielki genom (1,4mln par zasad, 1200 genów) }  Brak zdolności fotosyntezy, cyklu Krebsa, syntezy niektórych aminokwasów }  Zdolność asymilacji azotu }  Symbioza? – tajemnicza ekologia

32

Page 33: Podstawy genetyki II

RNA-seq

33

Page 34: Podstawy genetyki II

Sekwencjonowanie nowej generacji – wyzwanie dla bioinformatyki

}  Krótkie odczyty (50-150 nt) }  pojedyncze }  “paired-end”

}  Problem identyfikacji i składania sekwencji }  Indeksowanie i multipleks

34

Page 35: Podstawy genetyki II

Genom człowieka

35

Page 36: Podstawy genetyki II

Craig Venter Francis Collins (NIH) 36

Page 37: Podstawy genetyki II

37

Page 38: Podstawy genetyki II

Czym jest znajomość genomu }  Nie jest “odczytaniem księgi życia” }  Sama sekwencja nie daje jeszcze zrozumienia, jak

funkcjonują komórki }  Ale jest niezwykle cennym narzędziem w badaniach

}  Sekwencja nie jest lekarstwem }  Ale bardzo pomaga w zrozumieniu mechanizmów chorób i

wynajdywaniu nowych terapii

38

Page 39: Podstawy genetyki II

Co genom już dał nauce }  Dużo ciekawych i zaskakujących odkryć

}  Dlaczego mamy tak mało genów }  Jak ewoluował człowiek

}  Narzędzie do badania funkcji genów

39

Page 40: Podstawy genetyki II

Czy warto badać genomy

40

}  Nowoczesne techniki generują bardzo dużo danych }  Dwa podejścia

}  “hypothesis driven” – dane zbierane dla zweryfikowania jakiejś hipotezy

}  “data driven” – dane zbierane bez wstępnych założeń, potem wyszukiwane w nich prawidłowości

Page 41: Podstawy genetyki II

Zbieranie danych

41

}  Podejście zakładające poszukiwanie prawidłowości w dużych zbiorach danych, zbieranych bez wstępnych założeń, może być produktywne

}  Ale niesie też (dobrze znane w literaturze) ryzyko }  Lem, S. Cyberiada, Wyprawa szósta: czyli jak Trurl i Klapaucjusz

demona drugiego rodzaju stworzyli, aby zbójcę Gębona pokonać., 1965.

}  http://www.portalwiedzy.pan.pl/images/stories/academia_2012/academia_2013/022013/004-008_golik.pdf

Page 42: Podstawy genetyki II

TCACAATTTAGACATCTAGTCTTCCACTTAAGCATATTTAGATTGTTTCCAGTTTTCAGCTTTTATGACTAAATCTTCTAAAATTGTTTTTCCCTAAATGTATATTTTAATTTGTCTCAGGAGTAGAATTTCTGAGTCATAAAGCGGTCATATGTATAAATTTTAGGTGCCTCATAGCTCTTCAAATAGTCATCCCATTTTATACATCCAGGCAATATATGAGAGTTCTTGGTGCTCCACATCTTAGCTAGGATTTGATGTCAACCAGTCTCTTTAATTTAGATATTCTAGTACATACAAAATAATACCTCAGTGTAACCTCTGTTTGTATTTCCCTTGATTAACTGATGCTGAGCACATCTTCATGTGCTTATTGACCATTAATTAGTCTTATTTGTTAAATGTCTCAAATATTTTATACAGTTTTACATTGTGTTATTCATTTTTTAAAAAATTCATTTTAGGTTATATGTATGTGTGTGTCAAAGTGTGTGTACATCTATTTGATATATGTATGTCTATATATTCTGGATACCATCTCTGTTTCATGCATTGCATATATATTTGCCTATTTAGTGGTTTATCTTTTCATTTTCTTTTGGTATCTTTTCATTAGAAATGTTATTTATTTTGAGTAAGTAACATTTAATATATTCTGTAACATTTAATGAATCATTTTATGTTATGTTTAGTATTAAATTTCTGAAAACATTCTATGTATTCTACTAGAATTGTCATAATTTTATCTTTTATATACATTGATATTTTTATGTCAAATATGTAGGTATGTGATATTATGCACATGGTTTTAATTCAGTTAATTGTTCTTCCAGATGTTTGTACCATTCCAACATCATTTAAATCATTAAATGAAAAGCCTTTCCTTACTAGCTAGCCAGCTTTGAAAATCCATTCATAGGGTTTGTGTTAATATATTTTTGTTCTTTTTTTTCCTTTCTACTGATCTCTTTATATTAATACCTACTGTGGCTTTATATGAAGTCATGGAATAATACGTAGTAAGCCCTCTAACACTGTTCTGTTACTGTTGTTATTGTTTTCTCAGGGTACTTTGAAATATTCGAGATTTTATTATTTTTTAGTAGCCTAGATTTCAAGATTGTTTTGACGATCAATTTTTGAATCAATTGTCAATATTTTTAGTAATAAAATGATGATTTTTGATTGGAAATACATTAAATCTATAAGCCAAATTGGAGATTATTGATATATTAACAAAAATGAGTTTTCCAGTCCATGAATGTATGCACATTATAAAATTCATTCTTAAGTATGTCATTTTTTAAGTTTTAGTTTCAGCAGTATATGTTTGTTACATAGGTAAACTCCTGTCATGGGGGTTAGTTGTACAGGTTATTTTATCATCCAGGCATAAAGCCCAGTACCCAGTAGTTATCTTTTCTGCTCCTCTCCCTCCTGTCACCCTCCACTCTCAAGTAGACCCCAGTTTCTGTTGTTCTCTTCTTTGCATTAATGACTTCTCATCATTTAGATTGCACTTGTAAGTGAGAACAGGACGTATGTGGTTTTCTACTCCTGTGTTAGTTTGCTAAGGATAACCACCTCCATCTCCATCCATGTTCCCACAAAAGACATGATCTCCTTTTTTATGGCTGCATATTATTCCATGGTATATATGTACCACATTTTCTTTATCCAATCTGTCATTGATGGACATTTAGGTTGTTTCCACATCATTGCCGTTGTAAATACTGCTGCAGTGAATATTCGTGTGTATGTCTTTATGGTAGAATGATTTATATTCCTCTGGGTATATTTCCAAGTAATGGGATGGTTGGGTCAAATGGTAATTCTGCTTTTAGCTTTTTGAGGAATTGCCATATTGCCTTTCACAACGGTTGAACTAATTTATACTCCCAAGAGTGTATAAGTTGTTCCTTTTTCTCTGCAACCTCGACATCACCTGTTATTTATGACTTTTATATAATAGCCATTCTGCTGGTCTGAGATGGTATCTCATTATGATTTTGATTTGCATTTCTCTAATGCTCAGTGATATTGAGCTTGGCTGCATATATGTCTTCTTTTAAAAATATCTGTTCATGTCCTTTGCCTAATTTATAACGGGGTTGTTTGTTTTTCTCTTGTAAATTTGTTTAAGTTCCTTATAGATTCTAGGTATTAAACCTTTTTTCAGAGGCGTGGCTTGCAAATATTTTCTCCCATTCTATAGGTTGTCTGTTTATTCTGTTGATAGTTTCCCTTGCTGTGCAGAAGCTCTTAACTTTAATTAGATCCGACTTGTCAATTTTTGCTTTGGTCGCAATTGCTTTTGATGTTATTGTCGTGAAATCTTTGCTAGTTCTTAGGTCCAGGATGATATTGCCCAAGTTGTCTTCCAGGGCTTTTATAATTTTGGATTTTACATTTAAGTCTTAATATATTTATTAAATTTGTTAGGGTTTCAGGATACAAGGACAATATAGCAGCAAACAATGTAAAAGTAAAATCTGAAAAATAATAGAAAACAGTTTAATTGAACACTTTACCATTATGTAATGCCCTTCTTTGTCTTTCCTGATCTTTGTTGGTTTGAAGTTCAAAAAAGACAAACTTAATGGTACAATAGGTATTGTAGATTTCAGGACTTTCTGTATAAAATATTTTGTATATATGAATAGATCATTTTTTATTTCCAGTCTTTAAACATTTTCTTAACATTTTCTTCTATTGCTTCACTTCACTCGCTAGGACCATCAGGACAGTGTTGAACAGAAATTGTCAGACTGATCATCACAACTTTTTCTAGATTTTAGAAGGAAATTTTTCTTTATTTCAACATAAAGCAGCATGTTAATGCCAAGTTTTAATATGTGTTATCAGATTGAAATTTTTTTGTATATTTCTACATTACCAAGAATTTTTAGCAAGAGTTTTTGTTGAGTTTTAATTTAAAAATCATTTGTTAATTTCATCTGATTTTTTTATTTCTCTTTTTACCTTAAGAGATTAAACTGACTACAGATTGAATATAAACAAACAAACAAACAAACAAAAACTCTAAAATGCTGTGGATCAACACCACTTAGTAATTTGTATACTTGGATTCAATTTGCTGAAATTTTGTTAGACATTTTTGCGTCGATATTTATGAGGGATGTTGATCTGTAAAAGTATTAAAATGCCTTTGACAGATAGTGTCACCATATAAAAAACTTTGAACAAAATCAGATTATATCACTGTGGATATTTCTATTTTGAACTAACTTAGATGATAATTTTAATCTATATCCTAGATGAACT

Co to znaczy?

Mały fragment chromosomu 21 42

Page 43: Podstawy genetyki II

Co to znaczy? }  Bez teorii ewolucji nie mielibyśmy możliwości poznania

odpowiedzi na to pytanie }  Odszukujemy geny podobne do genów już zbadanych }  Możemy badać geny przez “odwrotną genetykę” –

tworzenie mutantów u organizmów modelowych }  Porównując genomy możemy wnioskować o biologii

organizmu

43

Page 44: Podstawy genetyki II

Odwrotna genetyka – od genu do funkcji

Genetyka tradycyjna

Funkcja (mutacja, fenotyp)

Klonowanie genu

Analiza sklonowanego genu

Genetyka „odwrotna”

Gen (z sekwencji całego genomu)

Inaktywacja genu

Analiza uzyskanego fenotypu

44

Page 45: Podstawy genetyki II

Odwrotna genetyka – inaktywacja przez rekombinację

45

Page 46: Podstawy genetyki II

Inaktywacja warunkowa

46

Page 47: Podstawy genetyki II

Odwrotna genetyka – interferencja RNA

Odkrycie roku 2002 – regulacyjna rola małych RNA Nagroda Nobla w dziedzinie medycyny 2006, za odkrycie mechanizmu interferencji RNA A. Fire i C. Mello 47

Page 48: Podstawy genetyki II

siRNA - jak to działa?

Hannon G.J.: ‘RNA interference’, Nature 418, July 11, 2002

Efekt – degradacja mRNA 48

Page 49: Podstawy genetyki II

Zastosowania siRNA

}  Badanie funkcji genów (“odwrotna genetyka”) - szczególnie skuteczne u nicienia Caenorhabditis, ale działa też w komórkach owadów, ssaków i roślin

}  Hamowanie wybranych genów jako metoda leczenia (np. zwalczania wirusów czy

nowotworów) – przykład: obniżenie poziomu receptora LDL („zły cholesterol”) u myszy

49

Page 50: Podstawy genetyki II

Ekspresja heterologiczna

Wektor ekspresyjny Oczyszczanie białka

50

Page 51: Podstawy genetyki II

Fuzje białkowe

}  Do sekwencji kodującej białko dołącza się inną domenę, np. ułatwiającą wykrycie i/lub oczyszczanie }  znaczniki epitopowe }  GFP (zielone białko fluorescencyjne)

51

Page 52: Podstawy genetyki II

Green Fluorescent Protein- Aequorea victoria

52

Page 53: Podstawy genetyki II

GFP

53

Page 54: Podstawy genetyki II

wt hPNPaza

-52 hPNPaza

MitoTracker anti-c-myc Nałożenie

Lokalizacja mitochondrialna nadejsprymowanej hPNPazy-myc w komórkach HeLa.

54

Page 55: Podstawy genetyki II

Ekspresja heterologiczna w biotechnologii

55

Page 56: Podstawy genetyki II

Inżynieria przeciwciał – leki przyszłości }  W łańcuchach immunoglobulin obszary zmienne

odpowiadają za rozpoznawanie różnych antygenów, obszary stałe nadają specyficzność gatunkową

}  W klasycznych metodach wytwarzania przeciwciał monoklonalnych uzyskiwano przeciwciała zwierzęce

}  Klonowanie i ekspresja genów kodujących przeciwciała jest alternatywnym sposobem ich uzyskiwania

}  Możliwe jest uzyskiwanie przeciwciał humanizowanych – obszary zmienne z genu przeciwciała zwierzęcego wstawione między obszary stałe przeciwciała ludzkiego

}  Humanizowane i rekombinowane ludzkie przeciwciała są stosowane w terapii np. nowotworów

56

Page 57: Podstawy genetyki II

Terapia genowa }  Zastępująca – wprowadzenie genu, którego defekt powoduje

chorobę }  Trudności z opracowaniem wektorów i zapewnieniem ekspresji,

zwłaszcza dla komórek nie dzielących się }  Stosowana dla chorób związanych z ekspresją genów w komórkach krwi

(np. SCID – gen ADA) i innych, które łatwo wprowadzić do organizmu (np. makrofagi – choroba Gauchera)

}  Inaktywująca – zmniejszenie ekspresji genu, którego ekspresja powoduje chorobę (np. nowotworową) }  Technicznie łatwiejsze i bezpieczniejsze (siRNA, modyfikowane

oligonukleotydy) }  Ograniczone zastosowania, pacjent musi ciągle przyjmować kosztowne

leki

57

Page 58: Podstawy genetyki II

Organizmy modelowe

Ogólne zasady i przykłady

58

Page 59: Podstawy genetyki II

Co to jest model?

? ?

«konstrukcja, schemat lub opis ukazujący działanie, budowę, cechy, zależności jakiegoś zjawiska lub obiektu» Słownik Języka Polskiego PWN

59

Page 60: Podstawy genetyki II

Organizmy modelowe

“Les éléments vitaux étant de nature semblable dans tous les êtres vivants, ils sont soumis aux mêmes lois organiques...”

“Podstawowe jednostki życia, mając u wszystkich żyjących istot podobną naturę, rządzone są tymi samymi prawami organicznymi...”

Claude BERNARD (1813-1878)

60

Page 61: Podstawy genetyki II

Modele w naukach przyrodniczych }  Modele analogii przyczynowej CAM

}  Przyczyny i skutki w układzie modelowym i docelowym są takie same. }  Nie mogą zaistnieć „jakiekolwiek istotne przyczynowo braki analogii

między modelem a modelowanym zjawiskiem“.*

}  Modele analogii hipotetycznej (HAM) }  Doprowadzenie do sformułowania hipotez, które mogą mieć ogólne

znaczenie tak dla układu modelowego, jak i docelowego. }  Nie dostarczają danych mających bezpośrednie znaczenie dla medycyny

człowieka, jednak polepszając nasze rozumienie zjawisk biologicznych mogą one sugerować możliwe mechanizmy fizjologiczne u człowieka.

61

Page 62: Podstawy genetyki II

Mikroorganizmy }  Bakterie i bakteriofagi

}  Escherichia coli, fag T4, fag λ

}  Mikroorganizmy eukariotyczne }  drożdże Saccharomyces cerevisiae, Schizosaccharomyces pombe }  grzyby nitkowate (Neurospora, Aspergillus) }  Chlamydomonas

62

Page 63: Podstawy genetyki II

Fenotypy mutacji }  Mutanty pokarmowe (auksotrofie)

}  prototrof – zdolny do syntezy niezbędnych składników organicznych, wymaga źródła węgla i energii (np. glukoza) i soli nieorganicznych (źródło azotu i mikroelementów)

}  auksotrof – niezdolny do syntezy określonego związku, wymaga jego obecności w podłożu }  np. mutanty leu, trp, ura, thi,

}  Mutanty kataboliczne }  niezdolne do wykorzystywania źródła węgla, wykorzystywanego przez

typ dziki }  np. mutanty gal, xyl, lac }  glukoza zawsze będzie wykorzystywana

63

Page 64: Podstawy genetyki II

Fenotypy mutacji }  Oporność na antybiotyki i inhibitory

}  enzymy rozkładające antybiotyk (np. beta-laktamaza) }  pompy usuwające antybiotyk z komórki }  mutacje w białkach, na które działa antybiotyk

64

Page 65: Podstawy genetyki II

Podłoża hodowlane }  Pełne

}  zawierają wszystkie składniki nieorganiczne i organiczne }  często na bazie ekstraktów biologicznych (ekstrakt drożdżowy, pepton

itp.) }  mogą być uzupełniane źródłem węgla (np. glukoza)

}  Minimalne }  źródło węgla, źrodło azotu (nieorganiczne), sole i mikroelementy }  umożliwia wzrost prototrofa, auksotrofy nie rosną o ile nie doda się

odpowiedniego uzupełnienia }  np. mutant leu wyrośnie na podłożu minimalnym + leucyna

}  Syntetyczne pełne }  źródła węgla i azotu, sole + kontrolowany zestaw uzupełnień

(aminokwasy itp.) }  umożliwia wzrost wszystkim auksotrofom }  warianty typu “drop-out”, np. SC –leu (bez leucyny): wyrosną wszystkie

szczepy, z wyjątkiem auksotrofa leu

65

Page 66: Podstawy genetyki II

Selekcja mutantów - repliki

66

Page 67: Podstawy genetyki II

Nowoczesny wariant – roboty laboratoryjne

©Singer Instruments, UK

67

Page 68: Podstawy genetyki II

Selekcja }  Pozytywna (bezpośrednia)

}  Na podłożu selekcyjnym wyrastają wyłącznie pożądane mutanty }  Np. selekcja mutantów opornych na antybiotyk na podłożu z

antybiotykiem

}  Negatywna }  Mutanty nie rosną na podłożu selekcyjnym }  Np. selekcja mutantów leu na podłożu bez leucyny }  Konieczne zastosowanie metody replik

68

Page 69: Podstawy genetyki II

“Jeden gen – jeden enzym” }  Badania na Neurospora, Beadle & Tatum, 1942

69

Page 70: Podstawy genetyki II

Modyfikacje genetyczne }  Transformacja

}  wprowadzenie DNA do komórki }  niektóre bakterie pobierają DNA naturalnie }  większość bakterii, a także np. drożdże, a nawet komórki

ssaków w hodowli można “zmusić” do pobrania DNA }  metody chemiczne }  elektroporacja }  metody mechaniczne (“działo genowe”)

}  DNA integruje się w genom lub utrzymuje niezależnie (plazmidy)

}  Infekcja wirusowa (fagi, wirusy eukariotyczne)

70

Page 71: Podstawy genetyki II

Saccharomyces cerevisiae

71

Page 72: Podstawy genetyki II

Drożdże jako organizm modelowy }  Łatwa hodowla i testy fenotypowe }  Fizjologia typowa dla mikroorganizmów }  Bezpieczne i nieszkodliwe dla środowiska }  Dobrze poznana genetyka klasyczna (analiza tetrad, mapy) }  Łatwe manipulacje genetyczne (“odwrotna genetyka”,

plazmidy) }  Znana od 1996 sekwencja genomu (12,5 Mb)

72

Page 73: Podstawy genetyki II

Fenotypy }  pokarmowe }  oporności na inhibitory i antybiotyki }  defekty cyklu komórkowego }  biochemia komórki }  ekspresja genów i jej regulacja }  oddychanie komórkowe – genetyka mitochondrialna

73

Page 74: Podstawy genetyki II

Skąd wzięły się mitochondria? }  Teoria endosymbiozy

74

Page 75: Podstawy genetyki II

Jak mitochondria traciły swój genom

Wolno żyjące bakterie - 1800-4500 genów

Endosymbiontyczne bakterie (Rickettsia) - 850 genów

Pierwotne mitochondria (Reclinomonas) - 100 genów

Mitochondria „współczesne” - 30-40 genów

75

Page 76: Podstawy genetyki II

I jak się to odbywało }  Ucieczka DNA do jądra }  Przeniesienie genów do jądra za pośrednictwem RNA }  Zastąpienie funkcji przez gen pochodzący z genomu

gospodarza }  Zastąpienie funkcji przez gen pochodzący z innej linii

}  polimeraza RNA, polimeraza DNA – pochodzenie fagowe

76

Page 77: Podstawy genetyki II

Genom mitochondrialny S. cerevisiae

• kolisty (?-mapa), wysoce polimorficzny, ~80kb

• mała gęstość genów

• bardzo bogaty w AT (17% GC)

• 8-9 genów kodujących białka; ~10 ORF intronowych, 24 tRNA, 2 rRNA, 1 RNaseP RNA

• 7-8 elementów ori, złożone mechanizmy replikacji

77

Page 78: Podstawy genetyki II

Badanie ekspresji mtDNA u drożdży? }  Dziedziczenie mitochondrialne odkryto u drożdży (1966) }  Istnieje skuteczny system genetyczny pozwalający na

analizę mutantów o zaburzonej funkcji oddychania mitochondrialnego

}  Wciąż wiele niewiadomych

glukoza glicerol

Fot. Kamil Lipiński 78

Page 79: Podstawy genetyki II

Drożdże jako model dla badania chorób człowieka?

79

Page 80: Podstawy genetyki II

Genomy

S. cerevisiae H. sapiens

~1,2 x 107 bp ~3 x 109 bp

~6500 genów ~25 000 genów

~1800 genów wykazuje homologie z genami H. sapiens (30%)

~ 4000 genów wykazuje homologie z genami S. cerevisiae (13%)

Wiele podstawowych funkcji komórki jest zachowanych. Niekiedy możliwa wymienność białek drożdżowych i ludzkich (np. Ras, Oxa1)

80

Page 81: Podstawy genetyki II

Przykładowe drożdżowe modele chorób

}  Progerie Wernera i Blooma }  Choroby związane z defektami naprawy DNA

(HNPCC, ataksja-telangiektazja) }  Ataksja Friedreicha }  Zaburzenia komunikacji jądrowo - mitochondrialnej

(PEO) }  Choroby wywołane mutacjami w mtDNA (NARP) }  Poszukiwanie leków za pomocą drożdży

81

Page 82: Podstawy genetyki II

Zespół Wernera

}  Normalny rozwój w dzieciństwie.

}  Przedwczesne starzenie rozpoczyna się wraz z wiekiem dojrzewania.

}  Niski wzrost, owrzodzenia, zwapnienia.

}  Pacjenci dożywają średnio 47 lat. }  Przyczyną śmierci z reguły

choroba nowotworowa, albo schorzenia sercowo-naczyniowe.

Przyczyna: mutacje genu WRN kodującego

helikazę DNA z rodziny RecQ

82

Page 83: Podstawy genetyki II

Zespół Blooma

}  Opóźniony wzrost, karłowatość.

}  Zaburzenia pigmentacji skóry. }  Predyspozycje do wczesnego

(ok. 25 r. ż.) występowania wielu różnych nowotworów.

}  Z reguły nie dożywają 40-50 lat (1/3 nie dożywa 25 lat).

Przyczyna: mutacje genu BLM kodującego

kolejną helikazę DNA z rodziny RecQ

83

Page 84: Podstawy genetyki II

Zaburzenia w zespołach Wernera i Blooma }  Utrata stabilności genomu

}  Zaburzenia w okolicach telomerów (WRN) }  Zwiększona częstość wymiany chromatyd siostrzanych

(BLM) }  Zwiększona częstość zaburzeń kariotypowych }  Zwiększona częstość mutacji genów

84

Page 85: Podstawy genetyki II

SGS1 – model drożdżowy }  Gen SGS1 jest drożdżowym homologiem genów WRN i BLM. }  Fenotyp delecji SGS1:

}  zwiększona rekombinacja mitotyczna (zwłaszcza subtelomerowa) }  zaburzenia segregacji chromosomów }  zaburzenia mejozy

}  Białko Sgs1p jest zaangażowane w hamowanie nieuprawnionej rekombinacji i utrzymywanie stabilności genomu.

}  Ludzkie geny BLM i WRN częściowo komplementują fenotyp delecji SGS1

85

Page 86: Podstawy genetyki II

HNPCC (zespół Lyncha)

}  HNPCC - dziedziczny rak jelita grubego niezwiązany z polipowatością

}  Około 5% wszystkich raków jelita grubego }  Mutacje w genach kodujących białka zaangażowane w

naprawę niedopasowanych nukleotydów (mismatch repair)

}  Podwyższona częstość mutacji, zwłaszcza niestabilność traktów z powtórzeniami

}  Najczęściej mutacje genów hMSH2 i hMLH1

86

Page 87: Podstawy genetyki II

Drożdżowy model HNPCC

W mutantach drożdżowych wzrost spontanicznej mutagenezy

Alfred & Borts (2007) Biochem Soc Trans, 35:1525-28

Dla dokładniejszego zbadania efektu konkretnych mutacji ludzkich stworzono hybrydowe geny, w których fragmenty genu S. cerevisiae zastępuje się pochodzącymi z genów człowieka tak, by zachować funkcję w drożdżach (tzw. humanizowanie drożdży).

87

Page 88: Podstawy genetyki II

Ataksja Friedreicha }  Choroba układu nerwowego i mięśni

}  zaburzenia czucia }  obniżone napięcie mięśniowe }  kardiomiopatia, deformacje kręgosłupa i stóp

}  Autosomalna recesywna; 1/50 000 }  Mutacja dynamiczna w genie frataksyny }  Akumulacja żelaza w mitochondriach:

}  Zaburzenia systemów naprawczych mtDNA }  Zaburzenia w oddychaniu }  Stres oksydacyjny

Bramwell: Atlas of Clinical Medicine 88

Page 89: Podstawy genetyki II

YFH1 – drożdżowy homolog frataksyny }  Białko wiążące żelazo }  Mitochondrialny magazyn żelaza }  Detoksykacja nadmiaru żelaza }  Włączanie żelaza do centrów Fe-S

89

Page 90: Podstawy genetyki II

YFH1 – drożdżowy homolog frataksyny

}  Fenotyp delecji: }  defekt oddychania mitochondrialnego }  zwiększona wrażliwość na stres oksydacyjny }  akumulacja żelaza w mitochondriach: 10-krotnie większe

stężenie od szczepu dzikiego }  zależna od żelaza oksydacyjna degradacja centrów Fe-S

}  Ludzki gen kompensuje delecję genu drożdżowego

Cavadini i wsp., (2000), Hum Mol Genet, 9:2523-30 90

Page 91: Podstawy genetyki II

Drożdże w poszukiwaniu nowych leków

}  Systemy homologiczne }  Interaktory białek drożdżowych homologicznych do

białek ludzkich }  Białka docelowe dla znanych związków

drobnocząsteczkowych

}  Systemy heterologiczne }  Interaktory białkowe – system dwuhybrydowy }  Ekspresja w drożdżach białka (np. ludzkiego) i

poszukiwanie ligandów }  np. choroby degeneracyjne związane z agregacją białek:

choroba Alzheimera, Huntingtona itp. }  poszukiwanie ligandów toksyn bakteryjnych

91

Page 92: Podstawy genetyki II

Wielokomórkowe organizmy modelowe }  Arabidopsis thaliana }  Drosophila melanogaster }  Caenorhabditis elegans }  Danio rerio }  Gryzonie (mysz, szczur)

92

Page 93: Podstawy genetyki II

A. thaliana }  Modelowa roślina z rodziny krzyżowych }  Czas generacji ~ 6 tygodni

93

Page 94: Podstawy genetyki II

Fenotypy }  Wzrostowe }  Rozwojowe }  Fizjologiczne i biochemiczne }  Mechanizmy genetyczne }  Epigenetyka

94

Page 95: Podstawy genetyki II

Genom }  Stosunkowo niewielki (~150

Mb), znana sekwencja }  Techniki transformacji

genetycznej, wyciszania ekspresji genów itp.

}  Łatwa analiza mikroskopowa (przezroczyste siewki)

95

Page 96: Podstawy genetyki II

Transformacja Arabidopsis }  Transformacja komórek, regeneracja rośliny }  Infekcja Agrobacterium

96

Page 97: Podstawy genetyki II

Drosophila melanogaster }  Jeden z pierwszych organizmów modelowych genetyki,

wciąż używany

97

Page 98: Podstawy genetyki II

Drosophila melanogaster }  Genom (165 Mb)

98

Page 99: Podstawy genetyki II

Drosophila melanogaster }  Krótki cykl życiowy (~ 10 dni) }  Łatwa i tania hodowla }  Liczne potomstwo }  Znacząca homologia z

człowiekiem }  ok. 50% genów D. melanogaster

ma odpowiedniki u ssaków }  ok. 75% ludzkich genów

związanych z chorobami genetycznymi ma odpowiedniki u D. melanogaster

99

Page 100: Podstawy genetyki II

Drosophila i biologia rozwoju }  Modelowy organizm do badania genów kontrolujących rozwój }  Np. geny homeotyczne – genetyczna kontrola i ewolucja planów budowy

100

Page 101: Podstawy genetyki II

Geny HOX – regulatory rozwoju

101

Page 102: Podstawy genetyki II

Ewolucja genów HOX

Dzięki duplikacjom genów HOX wyewoluowały bardziej złożone plany ciała 102

Page 103: Podstawy genetyki II

Caenorhabditis elegans }  Nicień, długość ok 1,5 mm, ~1000 komórek }  Genom ~100 Mb }  Łatwa hodowla, przewidywalne zachowanie }  Modyfikacje genetyczne przez wyciszanie RNAi

103

Page 104: Podstawy genetyki II

Rozwój C. elegans Znane losy każdej komórki w rozwoju

104

Page 105: Podstawy genetyki II

Fenotypy i zastosowania }  Rozwój }  Apoptoza }  Układ nerwowy, behawior

Zaburzenia lokomocji

105

Page 106: Podstawy genetyki II

Danio rerio }  Model do badania biologii rozwoju kręgowców (łatwa obserwacja

mikroskopowa, przezroczyste jaja) }  Znany genom (~1,7�109 bp)

106

Page 107: Podstawy genetyki II

Mysz }  Modelowy ssak }  Genom (~3�109 bp) bardzo podobny do ludzkiego }  Możliwe manipulacje genetyczne, w tym ukierunkowane

uszkadzanie genów (“knock-out”) }  Szczury preferowane w badaniach neurobiologicznych,

trudniejsze manipulacje genetyczne

107

Page 108: Podstawy genetyki II

Myszy transgeniczne }  Wprowadzanie nowych sekwencji do genomu

}  np. geny reporterowe

}  Delecje genów (knock-out) }  Wprowadzanie mutacji punktowych

108

Page 109: Podstawy genetyki II

Myszy knock-out }  Izolacja komórek ES (zarodkowe macierzyste) z blastocysty }  Dawcą jest mysz szczepu białego

}  Modyfikacja i selekcja komórek ES z knock-out }  Wprowadzenie zmodyfikowanych komórek do blastocysty myszy

szczepu szaregu

109

Page 110: Podstawy genetyki II

Myszy knock-out }  Blastocysty zawierające zmodyfikowane komórki ES

wszczepia się myszy – matce zastępczej

110

Page 111: Podstawy genetyki II

Myszy knock-out }  Selekcja chimer z transgenem w linii płciowej

111

Page 112: Podstawy genetyki II

Nagroda Nobla 2007 }  Mario R. Capecchi, Martin J. Evans, Oliver Smithies }  Za opracowanie zasad wprowadzania specyficznych

modyfikacji genowych u myszy za pomocą zarodkowych komórek macierzystych

112