ゲノム編集ツール edit-r crispr-cas9›®次 1...

ゲノム編集ツール

Edit-R™ CRISPR-Cas9

テクニカル・マニュアル

www.gelifesciences.co.jp

imagination at work

Dharmacon™ （ダーマコン）

RNAi、遺伝子発現、ゲノム編集

http://www.gelifesciences.co.jp

目次

1 CRISPR-Cas9システムによるゲノム編集の概要 ........................................................................ 3

細菌・古細菌の適応免疫防御機構、CRISPR-Cas ......................................................................................3

CRISPR-Cas9システムの改変、哺乳動物のゲノム編集への応用 ...........................................................3

2 Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール ..................................................................................... 4

Edit-R SMARTCas9 Expression Plasmid（Cas9 ヌクレアーゼ発現用プラスミド） ...........................4

Edit-R trans-activating CRISPR RNA（tracrRNA） .....................................................................................5

Edit-R CRISPR RNA（crRNA） ..............................................................................................................................5

crRNAの設計について .........................................................................................................................................6

　設計ツール Dharmacon CRISPR RNA Configuratorによる crRNAの設計 .................................6

　カスタム crRNAのご注文 ................................................................................................................................6

3 Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール各コンポーネントによるコトランスフェクション ......... 7

必要な Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール関連材料 ...........................................................................7

その他の必要な材料 ..............................................................................................................................................7

Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール各コンポーネントによるコトランスフェクションの

一般的な手順 ...........................................................................................................................................................8

　細胞の播種 ...........................................................................................................................................................8

　コトランスフェクション ....................................................................................................................................8

　ゲノム編集によって変異を導入した細胞の濃縮 ........................................................................................9

ゲノム編集結果の確認アッセイに関する推奨事項 .....................................................................................10

4 トランスフェクション条件の最適化 ..........................................................................................10

5 Appendix ..................................................................................................................................12

ブラストサイジン耐性マーカー BlastR搭載

Edit-R CRISPR-Cas9 Nuclease Expression Plasmid .............................................................................12

安定性と保存 ........................................................................................................................................................ 13

　Dharmacon Edit-R SMARTCas9 Expression Plasmid .................................................................... 13

　Dharmacon Edit-R tracrRNA、crRNA .................................................................................................. 13

　Dharmacon DharmaFECT Duo Transfection Reagent ................................................................. 13

FAQ（よくある質問） .............................................................................................................................................14

文献 ...........................................................................................................................................................................18

6 Evrogen社ライセンスについて ................................................................................................19

3

Edit-Rと SMARTCas9を用いたゲノム編集


1 CRISPR-Cas9システムによるゲノム編集の概要

細菌・古細菌の適応免疫防御機構、CRISPR-Cas

CRISPR（clustered regularly interspaced palindromic repeats）-Cas（CRISPR-associated proteins）システムは細菌や古細菌が備える適応免疫性の防御機構であり、外来の核酸を認識しその機能を阻害する働きがあります。細菌や古細菌は、バクテリオ

ファージなど外来の DNA因子に感染を受けて宿主となるとき、その外来 DNA因子から（プロト）スペーサーと呼ばれる短い配列を切り取り、自身がもつゲノムの特定領域（CRISPR遺伝子座）にパリドローム（回文配列）様リピート配列とともに組み込みます。さまざまなスペーサーとリピート配列からなる複数のユニットが CRISPR遺伝子座に集まり、クラスター化することにより、CRISPR配列と呼ばれる配列が形成されます。CRISPR配列を含む遺伝子座全体が RNAポリメラーゼにより転写されてプレ CRISPR RNA（プレ crRNA）と呼ばれる一次転写産物を生じ、このプレ crRNAがさらにCRISPR RNA（crRNA）と呼ばれる短い成熟型の RNAに分割されます。このとき得られる crRNAには、外来 DNA因子に対して相補的な配列が含まれています。crRNAは多機能性のタンパク質またはタンパク質複合体（CRISPR-associated［Cas］タンパク質）を呼び込み、外来 DNA中の短鎖 protospacer-adjacent motif（PAM）に隣接する相補的な標的配列を切断します。これにより、宿主菌は感染の進行から守られます（Bhaya, 2011）。

CRISPR-Cas9システムの改変、哺乳動物のゲノム編集への応用

細菌や古細菌の CRISPR-Casシステムとしてはこれまでに多くの種類が同定されており、そのメカニズムや Casタンパク質、サブユニットが形成する複合体にも様々な種類があることが確認されています。特にStreptococcus pyogenes（S. Pyogenes）がもつ CRISPR-Cas9システムに関してはそのプロセスや主なコンポーネントの研究が進んでおり、このシステムを改変して哺乳動物細胞のゲノム編集に応用する試みがなされています。S. pyogenesが DNAの PAMに隣接する特定配列を標的とし、これを切断するプロセスは、わずか 3つのコンポーネントにより行われます（Jinek, 2012）。（1）Cas9エンドヌクレアーゼ（2）crRNA：CRISPR遺伝子座（CRISPR配列）の転写により生じる成熟型 RNA（3）trans-activating CRISPR RNA：CRISPR遺伝子座から生じるもうひとつの RNAであり、crRNAと部分的にハイブリッドを形成

する

図 1に模式図を示しています（tracrRNA、Deltcheva, 2011）。

哺乳動物の細胞は、部位特異的な二本鎖 DNAの切断を受けた場合にそれを修復する機能を備えています。修復は非相同末端結合（NHEJ）か相同組み換え（HR）かのいずれかの過程により行われますが、NHEJによる修復は短鎖の挿入や欠失を伴う不完全なものであることが多く、これらの挿入や欠失がナンセンス変異を生じてその遺伝子の破壊、ノックアウトに至る場合があります

（Mali, 2014; Sampson, 2014）。細胞自体が行うこの DNA切断修復過程と、S. pyogenes の CRISPR-Cas9システムという非常に扱いやすい系とを組み合わせることで、シンプルなプラットフォームによる遺伝子機能の恒常的な破壊が可能になります。

ゲノムDNA PAM

tracrRNA

crRNA 5’3’

5’

3’

図 1 Cas9ヌクレアーゼの模式図（水色）。tracrRNA（青）と crRNA（緑）との複合体を形成し、crRNAのもつガイド配列と相補的なゲノム DNAの両鎖を PAM（赤）の 5'側で切断します。

4



2 Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール

Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツールは哺乳動物細胞のゲノム編集に必要な 3つのコンポーネントから構成されています。（1）Cas9ヌクレアーゼを発現する遺伝子配列を含むプラスミド（哺乳動物での発現用にコドン最適化済み）（2）74塩基長の tracrRNA（3）ご希望の標的配列に合わせて設計した crRNAいずれも天然の S.pyogenesがもつ CRISPR-Cas9システムをベースとしたコンポーネントで、トランスフェクション試薬

DharmaFECT ™ Duo Transfection Reagentを使ってこれら 3つのコンポーネントすべてを同時に、目的の哺乳動物細胞に導入することにより、遺伝子の破壊を行います。実験の全体的なワークフローは図 2のとおりです。以下、個々のコンポーネントについて詳しく説明します。

ゲノムが編集された細胞を

FACS法で濃縮ゲノムが編集された細胞を

抗生物質選択で濃縮

SMARTCas9 Expression Plasmid（mKate2）使用時

SMARTCas9 Expression Plasmid（PuroR）使用時

納品後

培養2～3日間

ターゲットcrRNAの設計

crRNAの配列を1遺伝子あたり3～5種類、カスタム設計します

Cas9ヌクレアーゼ発現用プラスミド

tracrRNA:crRNA1. カスタム設計したcrRNA2. tracrRNA3. Cas9ヌクレアーゼを発現用プラスミド4. DharmaFECT Duo トランスフェクション試薬

Webで注文トランスフェクション

培養

3～4日間図 2 Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツールを用いた

遺伝子ノックアウトのワークフロー

Edit-R SMARTCas9 Expression Plasmid（Cas9 ヌクレアーゼ発現用プラスミド）

S. pyogenesの Cas9（Csn1）遺伝子をヒトでの発現用に最適化した配列、蛍光レポーター（mKate2、Evrogen社、モスクワ）かピューロマイシン耐性マーカー（PuroR）かのいずれか一方、そしてこれらの上流に位置する単一のプロモーターを含む、Cas9ヌクレアーゼ発現用プラスミドです（図 3A）。Cas9コード領域の 3'末端ではなく5'末端にmKate2または PuroRを配置することにより、C末端に余分なアミノ酸が結合することによる Cas9の活性低下を防いでいます。

プロモーターは複数のオプションのなかから、使用する細胞に合わせてもっとも活性が高いものをお選びいただくことが可能です

（図 3B）。SMARTCas9 Expression Plasmidは全製品とも、エンドトキシンを含まない乾燥状態のプラスミドDNAとなっており、そのままトランスフェクションにお使いいただけます。

dharmacon.gelifesciences.co.jp> ゲノム編集

ご注文はこちら

5



このほか、プロモーター hCMVとブラストサイジン耐性マーカーを備えた Cas9発現用プラスミドもご用意しています（ベクターマップ、プラスミドの使用に際しての推奨事項に関しては 12ページ「Appendix」をご覧ください）。

Edit-R trans-activating CRISPR RNA（tracrRNA）

公表されている S. pyogenes の tracrRNA配列（Jinek, 2012）をベースに化学的に合成し、HPLC法で精製した長鎖 RNAです。複数の哺乳動物細胞で効率的なゲノム編集を行えることが試験で確認されています。

Edit-R CRISPR RNA（crRNA）

切断するゲノム DNAの標的配列（プロトスペーサー）と同じ配列の 20塩基、そして tracrRNAと相互作用をもつ特定の S. pyogenes 由来リピート配列からなる合成 RNAです。プロトスペーサーとするゲノムDNA中の標的配列としては、そのゲノム DNAがもつ PAMの上流側近傍の配列をお選びいただく必要があります。S. pyogenes の主要な PAM塩基配列は NGGです（図 4）。

図 3B Edit-R SMARTCas9 Expression Plasmidに

使用できるプロモーター一覧

SMARTCas9 (mKate2) Expression Plasmid

hCMVmCMVhEF1αmEF1αPGKCAG

mKate2

AmpR

SMAR

Tcho

iceプロモーター

Cas9

SMARTCas9 (PuroR) Expression Plasmid


PuroR

AmpR

SMAR

Tcho


pAT2A

Cas9 pAT2A

SMARTCas9 (mKate2) Expression Plasmid


mKate2

AmpR

SMAR

Tcho


Cas9

SMARTCas9 (PuroR) Expression Plasmid


PuroR

AmpR

SMAR

Tcho


pAT2A

Cas9 pAT2A

ベクター要素

働き

Cas9ヒトでの発現用にコドンが最適化された S. pyogenesの Cas9 ヌクレアーゼ。tracrRNA・crRNAと複合体を形成し、標的配列を切断する

mKate2赤色蛍光性単量体タンパク質。トランスフェクションと細胞選別を視覚的に追跡することを可能にする（励起極大 588 nm、発光極大 653 nm）

T2A自己切断ペプチド。単一の転写物からmKate2と Cas9を同時に発現させる

AmpR アンピシリン耐性遺伝子。大腸菌培養でのベクター増幅に用いる

pA ウシ成長ホルモン（BGH）のポリアデニル化シグナル

図 3A Edit-R SMARTCas9 Expression Plasmidのベクター要素

ベクター要素

働き

Cas9ヒトでの発現用にコドンが最適化された S. pyogenes の Cas9 ヌクレアーゼ。tracrRNA・crRNAと複合体を形成し、標的配列を切断する

PuroR ピューロマイシン耐性マーカー。哺乳動物細胞に抗生物質耐性を与え、トランスフェクションを受けた細胞の選別を可能にする

T2A自己切断ペプチド。単一の転写物から PuroRと Cas9とを同時に発現させる


pA ウシ成長ホルモン（BGH）のポリアデニル化シグナル

プロモーター説明

hCMV ヒトサイトメガロウイルス前初期プロモーター

mCMV マウスサイトメガロウイルス前初期プロモーター

hEF1α ヒト伸長因子1αプロモーター

mEF1α マウス伸長因子1αプロモーター

PGK マウスホスホグリセリン酸キナーゼプロモーター

CAG トリβアクチンハイブリッドプロモーター

6



crRNAの設計について

crRNAは目的の標的配列に合わせて設計することが可能です。次の手順に従ってください。

• 切断したいゲノム DNA配列のなかから、PAM（S. pyogenes の場合は NGG）の 5'側（上流側）近傍に位置する塩基 20個を選択します。

• 先頭の塩基の種類は、切断したいゲノムDNA配列に含まれているものであればどれでもかまいません。RNAの転写開始にU6プロモーターを用いる系とは異なり、5'末端の塩基が Gである必要はありません。

• 標的配列は切断したいゲノムDNA配列のどちらの鎖にも設定することが可能です（図 4）。

• 選択した標的配列と同一の配列や酷似する配列が PAMの 5'側近傍、特に同じゲノムDNA配列内の他のコード領域に存在することがないよう、配列の照合を行います（Fu, 2013; Hsu, 2013; Wang, 2013）。

PAMから 3塩基分上流側の位置で、DNAの両鎖が Cas9ヌクレアーゼにより切断されます。

　設計ツール Dharmacon CRISPR RNA Configuratorによる crRNAの設計

• crRNAを設計するためのツールとして Dharmacon CRISPR RNA Configuratorをご利用いただけます（dharmacon.gelifesciences.com/gene-editing/edit-r/custom-crrna/をクリックし、"I want to design a crRNA"［crRNAを設計する］と書かれたタブを開いて遺伝子のデータを入力してください）。ツールが次の手順により遺伝子ノックアウト実験用の crRNAを設計します。

• 目的の遺伝子のなかから、その遺伝子の機能を喪失させる可能性のある標的配列を特定します。標的配列の検索は遺伝情報を含む転写物の全バリアントを対象に、その遺伝子を構成する最上流のエクソンから順次行われます。検索対象を特定の

バリアントのみに絞り込むことも可能です。

• 特異性向上のため、配列の照合を行います。選択した標的配列が PAMの 5'側（上流側）近傍の配列と照合され、同一の配列や酷似する配列があればそれが検出されます。同じ遺伝子内の他の領域と完全に一致している、あるいは一致率が非常に

高い crRNA配列は排除されます。

　カスタム crRNAのご注文

• 標的配列に設定する 20塩基をすでにお決めになっている場合は、カスタム crRNAの合成をご注文いただけます。

dharmacon.gelifesciences.com/gene-editing/edit-r/custom-crrna/にアクセスし、"Use my own crRNA sequence"（自分の crRNA配列を使う）と書かれたタブを開いて配列を入力してください。

• 個々の標的配列について 20塩基の情報を入力してください。Dharmacon CRISPR RNA Configuratorによって所定の S. pyogenes 由来リピート配列が 3'末端に付加され、42塩基のカスタム crRNAが完成します（図 4）。

図 4 ヒト遺伝子 PPIB（chr15：64448014～ 64455354）のノックアウトを行

うための標的配列 20塩基を選択する場合の例。PAM（下線、赤）の 5'末端に

隣接する標的配列を選択してcrRNAに組み込みます。選択した 20塩基の配列

（下線、緑、太字）を Dharmacon CRISPR RNA Configuratorに入力すると、

DNA配列が自動的に RNA配列へと変換されるとともに、22塩基の長さをも

つ所定のS. pyogenes 由来リピート配列（緑）が 3'末端に付加され、目的の

遺伝子に特異的な 42塩基の crRNAが完成します。完成した crRNAをカート

に入れてご注文ください。弊社にて合成を行います。

http://dharmacon.gelifesciences.com/gene-editing/edit-r/custom-crrna/



7



3 Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール各コンポーネントによるコトランスフェクション

Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツールを構成する 3つのコンポーネント（Cas9 Expression Plasmid DNA、tracrRNA、crRNA）によるコトランスフェクション、そしてそれに続く遺伝子ノックアウトを成功させるためには、トランスフェクション試薬 DharmaFECT Duo Transfection Reagentを使って入念な最適化を行い、処理する細胞の種類に合ったトランスフェクション条件を得ることが必要となります。トランスフェクション条件の最適化に関する一般的な推奨事項については 10～12ページをご覧ください。以下の手順は、これらの推奨事項に従って最適なトランスフェクション条件がすでに得られていることを前提としたものです。

必要な Edit-R CRISPR-Cas9ゲノム編集ツール関連材料

Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール関連材料は弊社Webサイト dharmacon.gelifesciences.comにてお買い求めいただけます。

• Edit-R SMARTCas9 Expression Plasmid（プロモーターとレポーター、またはプロモーターとマーカー搭載の組合せから選択）

120 µg乾燥品

• SMARTCas9 Expression Plasmid、蛍光レポーターmKate2搭載

• Edit-R hCMV_mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-004100-120)

• Edit-R mCMV_mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-004200-120)

• Edit-R hEf1α_mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-004300-120)

• Edit-R mEf1α_mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-004400-120)

• Edit-R PGK_mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-004500-120)

• Edit-R CAG_mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-004600-120)

• SMARTCas9 Expression Plasmid、哺乳動物細胞の抗生物質選択用マーカー PuroR搭載

• Edit-R hCMV_PuroR-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-005100-120)

• Edit-R mCMV_PuroR-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-005200-120)

• Edit-R hEf1α_PuroR-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-005300-120)

• Edit-R mEf1α_PuroR-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-005400-120)

• Edit-R PGK_PuroR-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-005500-120)

• Edit-R CAG_PuroR-Cas9 Expression Plasmid DNA (cat #U-005600-120)

• Edit-R CRISPR Cas9 Nuclease Expression Plasmid、哺乳動物細胞の抗生物質選択用マーカー BlastR搭載、120 µg乾燥品（Dharmaconカタログ番号：U-001000-120）　ベクターマップ、プラスミドの使用に際しての推奨事項に関しては「Appendix」をご覧ください。

• （オプション）トランスフェクション最適化用プラスミドmKate2 Transfection Optimization Plasmid、120 g乾燥品（Dharmaconカタログ番号：U-003000-120）　ベクターマップ、プラスミドの使用に際しての推奨事項に関しては「Appendix」をご覧ください。

• tracrRNA、5 nmol（120 µg）乾燥品（Dharmaconカタログ番号：U-002000-120）

• crRNA、20 nmol乾燥品（Dharmaconカタログ番号：CTM-XXXXXX-XXX、dharmacon.gelifesciences.com/gene-editing/edit-r/custom-crrna/で目的の遺伝子に合わせて設計、ご注文いただいたもの）

• トランスフェクション試薬 DharmaFECT Duo Transfection Reagent（Dharmaconカタログ番号：T-2010-01［0.2 ml］、

T-2010-02［0.75 ml］、T-2010-03［1.5 ml］、T-2010-04［1.5 ml × 5本］）

その他の必要な材料

細胞培養で標準的に用いられる試薬および細胞の維持に適した装置が必要になります。以下の材料、器具類を別途ご用意ください。

• 組織培養用マルチウェルプレートまたは組織培養用ディッシュ

http://dharmacon.gelifesciences.com



8



• 抗生物質を含まない完全培地。処理する細胞の維持および継代培養に適した細胞培養培地（血清かサプリメント、または両方を含む）で、抗生物質が添加されていないもの

• CellTiter-Blue Cell Viability Assay（Promega社カタログ番号：G8081）など、細胞生存率を評価するためのアッセイ

• 細胞集団でゲノム編集イベントを検出するためのアッセイ（複数可）

• （オプション）抗生物質ピューロマイシン（Fisher Scientific社カタログ番号：BP2956-100）

• （オプション）抗生物質ブラストサイジン S（Fisher Scientific社カタログ番号：BP2647-25）

• 10 mM Trisヌクレアーゼフリーバッファー（pH 7.4）

Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール各コンポーネントによるコトランスフェクションの一般的な手順

哺乳動物の培養細胞にトランスフェクション試薬 DharmaFECT Duo Transfection Reagentを使って Cas9 Expression Plasmid DNA、tracrRNAおよび crRNAを導入する一般的な手順を以下に示します。処理する細胞の種類に合わせて条件の入念な最適化を行い（10ページ「トランスフェクション条件の最適化」を参照）、試薬の正確な量と添加条件を決めたうえで実験を開始してください。なお以下の手順は、24ウェルプレートで HEK293T細胞のトランスフェクションを行う場合の条件を、あくまで一例として示したものです。

すべての工程は細胞培養用層流フード内にて無菌法で行ってください。

　細胞の播種

播種に最適な細胞数は細胞の増殖特性によって異なります。したがって、実験を行って決める必要があります。

1. 細胞をトリプシン処理し、細胞数をカウントします。

2. 抗生物質を含まない完全培地を加え、適切な培養開始密度まで希釈します。例えば 24ウェルプレートで 1ウェルあたり

100,000個の HEK293T細胞を播種する場合、細胞 100,000個に対して培地 0.5 mlの割合で希釈を行います。

3. 24ウェルプレートの各ウェルに細胞懸濁液 0.5 mlを添加します。

4. 37℃、5% CO2の条件で終夜インキュベートします。

　コトランスフェクション

表 1 ゲノム編集を目的としたコトランスフェクション実験に用いるサンプルの例

サンプル名目的

Cas9 Expression Plasmid DNAのみネガティブコントロール：標的を決める RNAがない状態で Cas9 ヌクレアーゼを発現させる

Cas9 Expression Plasmid DNA、tracrRNA、目的の遺伝子に特異的なcrRNA

ゲノム編集サンプル：目的の遺伝子の二本鎖を意図した位置で切断するよう RNAによってプログラムされた Cas9 ヌクレアーゼを発現させる

未処理未処理コントロールサンプル：細胞生存率を確認する

注：試薬を添加した後にはピペッティングを行い、チューブの内容物を穏やかに撹拌してください。

5. ゲノム編集実験用として 3種類の異なるサンプルを使用します（表 1）。

6. pH 7.4の 10 mM Trisバッファー（ヌクレアーゼフリー）1.2 mlを Cas9 Expression Plasmid DNA 120 µgに加え、100 ng/µlの Cas9プラスミド希釈溶液とします。波長 260 nmでの紫外分光法によりDNA濃度を確認し、必要であれば量を調節して濃度を 100 ng/µlとしてください。

7. pH 7.4の 10 mM Trisバッファー（ヌクレアーゼフリー）500 µlを tracrRNA 5 nmolに加え、10 µMの tracrRNA希釈溶液とします。波長260 nmでの紫外分光法によりRNA濃度を確認し、必要であれば量を調節して濃度を10 µMとしてください。

9



8. pH 7.4の 10 mM Trisバッファー（ヌクレアーゼフリー）2 mlを crRNA 20 nmolに加え、10 µMの crRNA希釈溶液とします。波長 260 nmでの紫外分光法により RNA濃度を確認し、必要であれば量を調節して濃度を 10 µMとしてください。

9. 1.7 ml容のチューブを使い、表 2（2～ 5列目）に従ってトランスフェクション用サンプルを調製してください。tracrRNA・

crRNA複合体の最終濃度は 50 nM、Cas9 Expression Plasmid DNAの濃度は 1ウェルあたり1 µgとなります。

10. 1 mg/mlの DharmaFECT Duo Transfection Reagent原液 120 µlを無血清培地 2 mlで希釈し、穏やかに混合することにより 60 µg/mlの DharmaFECT Duo希釈溶液とします。常温で、チューブを 5分間放置してください。

11. 表 2（6列目）に従って各サンプルのチューブにDharmaFECT Duo希釈溶液 50 µlを加えます。これにより、DharmaFECT Duoの最終濃度は 1ウェルあたり 3 µgとなります。トランスフェクションを行わないコントロール用サンプルは

DharmaFECT Duo希釈溶液を加えず、無血清培地のみとしてください。各チューブとも、総液量は 100 µlとなります。ピペッティングにより穏やかに撹拌した後、常温で 20分間放置してください。

12. 抗生物質を含まない完全培地 400 µlを各サンプルに加えて総液量を 500 µlとします（7、8列目）。得られた液がトランスフェクション用の培地となります。

13. 細胞が入った 24ウェルプレートの各ウェルから培地を抜き、代わりに適切な種類のトランスフェクション用培地 500 µlを各ウェルに加えます。

14. 37℃、5% CO2の条件で細胞を 48～72時間にわたりインキュベートした後、ゲノム編集結果の確認に進みます。

　ゲノム編集によって変異を導入した細胞の濃縮

Cas9によるゲノム編集の頻度が高い細胞集団を得るには 2種類の方法があります。どちらの方法を用いるかは、SMARTCas9 Expression Plasmidのうちどちらの種類を実験に使ったかによって異なります。

a. mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNAを用いた場合：FACS法で濃縮 mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNAのトランスフェクションから 48～72時間が経過した細胞を使用します。一般的な FACS法を行える十分な数の細胞を回収できるよう、トランスフェクションには組織培養用の大型ディッシュをお使いください。また、細胞はmKate2の発現量が少ないもの、中程度のもの、そして多いものという 3つの画分に分けることをおすすめします。下流のアプリケーションや試験のため必要な画分の細胞の増殖を簡単に行えるよ

う、それぞれの画分には十分な数の細胞を割り当ててください。

表 2 24ウェルプレートでのゲノム編集実験に用いるトランスフェクション用サンプルの調製

サンプル名無血清培地

tracrRNA 希釈溶液

（10 µM）

crRNA 希釈溶液

（10 µM）

Cas9 プラスミド希釈溶液

（100 ng/µl）

DharmaFECT Duo

希釈溶液（60 µg/ml）成長培地

1ウェルあたりの総液量

Cas9 Expression Plasmid DNAのみ 40 0 0 10 50 400 500

Cas9 Expression Plasmid DNA、tracrRNA、目的の遺伝子に特異的なcrRNA 35 2.5 2.5 10 50 400 500

未処理 100 0 0 0 0 400 500

24ウェルのHEK293T細胞各サンプルに用いる量（µl）。複数のウェルを1組として処理を行う場合はウェルの数に応じ、またピペッティングのミスも考慮して、十分な量を調製してください。他の種類の細胞でトランスフェクションを行う場合は、条件の入念な最適化を行い（10ページ「トランスフェクションの最適化」を参照）、試薬の正確な量を決めたうえで実験を開始してください。

注：ゲノム編集結果の確認には細胞の一部をお使いください（次ページ「ゲノム編集結果の確認アッセイに関する推奨事項」を参照）。編集結果の確認後、クローン細胞の生成を行える十分な数の細胞が残っている必要があります。

注：ゲノムの編集が検出できない、アッセイで測定した編集頻度が低いといった場合は細胞集団の濃縮をご検討ください。濃縮の手順は次の項に記載しています。

10



mKate2は励起極大 588 nm、発光極大 633 nmの遠赤外蛍光性単量体タンパク質です。推奨されるフィルターは

Omega Optical社 QMAX-Redと XF102-2のセット、またはその同等品ですが、Texas Redやそれに類するフィルターセットでの検出も可能です。

b. PuroR-Cas9 Expression Plasmid DNAを用いた場合：ピューロマイシンで選択ピューロマイシンでの選択による濃縮には PuroR-Cas9 Expression Plasmid DNAを導入した細胞を使用します。適するピューロマイシン濃度は細胞の種類によって異なりますので、選択を始める前に死滅曲線を使って実験的に決定する

必要があります。トランスフェクションから 48～72時間が経過した細胞を、選択の開始前に分割してお使いください。選択培地中で細胞をさらに 2～ 4日間、インキュベートします。

抗生物質は、活発に分裂している細胞に対して最大の効果を発揮します。そのため、コンフルエンスが 25%を超えないよう細胞を分割することが望ましいといえます。

ゲノム編集結果の確認アッセイに関する推奨事項

細胞集団での挿入・欠失の検出方法としてもっともよく使われているのは、SURVEYOR® Mutation Detection Kit（Integrated DNA Technologies社）や T7 Endonuclease（Guschin, 2010; Reyon, 2012; Cong, 2013）といったミスマッチ検出アッセイです。これらのアッセイはいずれも、精製ゲノムDNAと細胞溶解液の両方に対応しています。

ゲノムが編集された細胞の増殖によりクローン細胞集団を得る場合の編集結果の確認方法としてはサンガー法がもっともよく使わ

れています（Reyon, 2012）。

4 トランスフェクション条件の最適化

処理する細胞の種類に合わせてトランスフェクション条件を入念に最適化することで、Edit-R CRISPR-Cas9 ゲノム編集ツール各コンポーネントのトランスフェクション効率を最大限に高め、かつ細胞生存率への影響を最小限に抑えることが可能になります。

トランスフェクション条件の最適化では、処理する細胞に対してもっとも強い活性を示すプロモーターを Edit-R mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNAに搭載したプラスミドを使って、蛍光強度（励起極大 588 nm、発光極大 633 nm）が最大となりかつ細胞生存率が未処理細胞との比較で 70%を超える条件を特定します。96ウェルプレートで簡単な方法により行えますので、少量のプラスミドで複数のトランスフェクション条件を同時にご検討いただけます。特定した条件は表面積に基づいてスケールアップし、

より規模の大きい組織培養用ディッシュでのトランスフェクションに適用することが可能です。

注：トランスフェクション試薬 DharmaFECT Duo Transfection Reagentは RNAとプラスミドの両方を細胞に導入する用途に最適化されています。他のトランスフェクション試薬をお使いになる場合は、その試薬で RNA、プラスミドの両方を目的の細胞に効率的に導入できるかどうかをあらかじめご確認ください。

最適化実験には少なくとも 2種類の細胞密度（コンフルエンス 60～ 80%）、そして互いに濃度の異なる複数の DharmaFECT Duo Transfection Reagentが必要になります。推奨される各コンポーネントの濃度範囲は以下のとおりです。

• DharmaFECT Duo Transfection Reagent、20～ 80 µg/ml（96ウェルプレートの 1ウェルあたり 0.2～ 0.8 µlに相当）

• プラスミド、96ウェルプレートの 1ウェルあたり100～200 ng

以下、96ウェルプレートで 3ウェル1組の実験を行うことによりトランスフェクション条件を最適化する場合の手順を説明します（表

3に実験レイアウトの例）。

11



1. トランスフェクションを行う日のコンフルエンスが 60～ 80%となるよう、前日に組織培養用の 96ウェルプレートに細胞を播種します。少なくとも 2種類の細胞密度を検討するようにしてください。

2. pH 7.4の 10 mM Trisバッファー（ヌクレアーゼフリー）1.2 mlをプラスミド 120 µgに加え、100 ng/µlの Cas9プラスミド希釈溶液とします。波長 260 nmでの紫外分光法によりDNA濃度を確認し、必要であれば量を調節して濃度を 100 ng/µlとしてください。

3. 7種類の DharmaFECT Duo希釈溶液（20～ 80 µg/ml）をそれぞれ異なるチューブに調製します。1 mg/mlの DharmaFECT Duo Transfection Reagent原液 10 µl、15 µl、20 µl、25µl、30 µl、35 µlおよび 40 µlを無血清培地 500 µlで希釈し、穏やかに混合してください。DharmaFECT Duoの最終濃度は96ウェルプレートの1ウェルあたり0.2～0.8 µgとなります。チューブを常温で 5分間放置してください。

4. 深型のプレートの各ウェルに無血清培地と Cas9プラスミド希釈溶液を総液量が 10 µlとなるように添加します（表 4）。次に

DharmaFECT Duo希釈溶液 10 µlを加え、各ウェルに総液量 20 µlのトランスフェクション用混合培地を形成します。それぞれの DharmaFECT Duo希釈溶液でこの操作を繰り返します。ピペッティングにより穏やかに撹拌した後、常温で 20分間放置してください。トランスフェクションを行わないコントロール用ウェルはプラスミドや DharmaFECT Duo希釈溶液を加えず、無血清培地のみとしてください。

表 4 96ウェルプレートでのトランスフェクションの最適化に用いるサンプルの調製

サンプル名無血清培地

Cas9プラスミド希釈溶液

（100 ng/lµl）

DharmaFECT Duo

希釈溶液（20～80 µg/

ml）成長培地1ウェルあたりの総液量

Edit-R mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNA 100 ng 9 1 10 80 100

Edit-R mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNA 200 ng 8 2 10 80 100

未処理 20 0 0 80 100

96ウェルの各サンプルに用いる量（µl）。96ウェルプレートの1ウェルあたりの量を示しています。3ウェルを1組として実験を行う場合は3つのウェルに十分な量を添加できるよう、またピペッティングのミスも考慮して、すべての分量を3.5倍してください。

5. 工程 4で得られた各サンプルに抗生物質を含まない完全培地 80 µlを加えて総液量を 100 µlとします。得られた液がトランスフェクション用の培地となります。

6. 細胞が入った 96ウェルプレートの各ウェルから培地を抜き、代わりに適切な種類のトランスフェクション用培地（工程 5で調製したもの）100 µlを各ウェルに加えます。

トランスフェクション試薬（10 µg/well）細胞密度1 細胞密度2

1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12

0.2 A 100 ng 200 ng 100 ng 200 ng

0.3 B 100 ng 200 ng 100 ng 200 ng

0.4 C 100 ng 200 ng 100 ng 200 ng

0.5 D 100 ng 200 ng 100 ng 200 ng

0.6 E 100 ng 200 ng 100 ng 200 ng

0.7 F 100 ng 200 ng 100 ng 200 ng

0.8 G 100 ng 200 ng 100 ng 200 ng

トランスフェクションなし H

太字のアルファベットはプレートの各行に、太字の数字は各列にそれぞれ対応しています。段階希釈したDharmaFECT Duo Transfection Reagentの各濃度をA～Gの各行で検討し、2種類の細胞密度をプレートの左半分と右半分で検討します。プラスミドの濃度は1ウェルあたり100 ngおよび200 ngの2種類とし、100 ngを1～3列と7～9列、200 ngを4～6列と10～12列で検討します。H行の細胞はトランスフェクションを行いません。

表 3 96ウェルプレートでトランスフェクション条件の最適化を行う場合のレイアウト

12



7. トランスフェクション実施後、mKate2発現量と細胞生存率を評価し、mKate2の発現量が最大でかつ細胞毒性の低い条件を特定します。

a. トランスフェクションから 24～ 48時間後、細胞を顕微鏡で観察し、蛍光強度が最大となる条件を特定します。

b. トランスフェクションから 48～72時間後、細胞生存率アッセイを実施し、細胞毒性が最小限（細胞生存率が 70%を超えることが好ましい）に抑えられる DharmaFECT Duo濃度のうち最高の濃度を決定します。

注：細胞生存率は 70%以上であることが理想ですが、これよりも細胞生存率が低いトランスフェクション条件で良好な編集効率が得られる場合もあります。

注：最適化を行っても目的の細胞でのゲノム編集効率が低い場合は、続くゲノム編集工程での濃縮をご検討ください。濃縮の手順は 9ページ「ゲノム編集によって変異を導入した細胞の濃縮」に記載しています。

8. 特定した至適条件で SMARTCas9 Nuclease Expression Plasmidおよび tracrRNA・crRNA複合体のコトランスフェクションを行います。tracrRNA・crRNA複合体の濃度は 25～100 nMとしてください（通常は 25 nMで編集効率が最大となります）。最適化したトランスフェクション条件は組織培養の表面積に基づいてスケールアップすることが可能です。

注： mKate2が発する蛍光は、Edit-R mKate2-Cas9 Expression Plasmid DNAと同時に導入する tracrRNA・crRNA複合体の濃度が高ければ高いほど弱くなります。

5 Appendix

ブラストサイジン耐性マーカー BlastR搭載 Edit-R CRISPR-Cas9 Nuclease Expression Plasmid

ヒトでの発現用にコドンが最適化されたS. pyogenes の Cas9（Csn1）遺伝子をヒトサイトメガロウイルス（hCMV）プロモーターから発現し、サルウイルス40（SV40）プロモーターの制御下でブラストサイジン耐性（BlastR）を発現する、ヌクレアーゼ Cas9発現用プラスミドです（図 5）。エンドトキシンを含まないプラスミドDNAとして、そのままトランスフェクションにお使いいただける量をお届けします。

ベクター要素働き

hCMV ヒトサイトメガロウイルスプロモーター。哺乳動物細胞でトランスジーンを恒常的に強発現させる

Cas9 ヒトでの発現用にコドンが最適化されたS. pyogenesのCas9 ヌクレアーゼ。

tracrRNA・crRNAハイブリッドによりプログラムされると標的配列を切断する

SV40 サルウイルス40プロモーター。ブラストサイジン耐性（BlastR）遺伝子を恒常的に発現させる

BlastRブラストサイジン耐性マーカー。哺乳動物細胞に抗生物質耐性を与え、

トランスフェクションを受けた細胞の濃縮を可能にする


図 5 Edit-R BlastR-Cas9 Nuclease Expression Plasmidのベクター要素

pHCSVBlast-mKate

hCMV

mKate2

BlastR SV40AmpR

hCMV

Cas9

BlastRAmpR SV40

pHCSVBlast-Cas9

Vector elements of the Edit-R Cas9 Nuclease Expression plasmid

13



ブラストサイジン耐性マーカーを搭載した Edit-R CRISPR-Cas9 Nuclease Expression Plasmidはブラストサイジン耐性を必要とするゲノム編集実験にお使いいただけます。このほか互換性のあるプラスミドとして、ヌクレアーゼ Cas9を蛍光マーカーmKate2で置き換えたトランスフェクション最適化用プラスミドmKate2 Transfection Optimization Plasmidもご用意しています（図 6のベクターマップを参照）。mKate2 Transfection Optimization Plasmidは 10～12ページ「トランスフェクション条件の最適化」と同様の手順でトランスフェクション条件の最適化にお使いいただけます。

pHCSVBlast-mKate

hCMV

mKate2

BlastR SV40AmpR

hCMV

Cas9

BlastRAmpR SV40

pHCSVBlast-Cas9

Vector elements of the Edit-R Cas9 Nuclease Expression plasmid

ベクター要素働き

hCMV ヒトサイトメガロウイルスプロモーター。哺乳動物細胞でトランスジーンを恒常的に強発現させる

mKate2赤色蛍光性単量体タンパク質。トランスフェクションの視覚的な追跡を可能にする

（励起極大588 nm、発光極大653 nm）

SV40 サルウイルス40プロモーター。ブラストサイジン耐性（BlastR）遺伝子を恒常的に発現させる

BlastRブラストサイジン耐性マーカー。哺乳動物細胞に抗生物質耐性を与え、

トランスフェクションを受けた細胞の濃縮を可能にする


図 6 Edit-R mKate2 Transfection Optimization Plasmidのベクター要素

安定性と保存

Dharmacon Edit-R SMARTCas9 Expression Plasmid

乾燥ペレットとして常温でお送りします。常温での使用期限は4週間です。お受け取り後すぐに-20～ -80℃で保管してください。この保存条件で 1年間は安定です。

保存の際には必ず、pH 7.4の 10 mM Trisバッファー（ヌクレアーゼフリー）など、ヌクレアーゼを含まない溶液に溶解させた状態としてください。

Dharmacon Edit-R tracrRNA、crRNA

乾燥ペレットとして常温でお送りします。常温での使用期限は 4週間です。

お受け取り後すぐに-20～ -80℃で保管してください。この保存条件で 1年間は安定です。

保存の際には必ず、pH 7.4の 10 mM Trisバッファー（ヌクレアーゼフリー）など、ヌクレアーゼを含まない溶液に再懸濁させた状態としてください。溶液を小分けにして-20℃で保存した場合 2年間は安定です。

Dharmacon DharmaFECT Duo Transfection Reagent

保冷してお届けします。配送中に保冷剤が溶ける場合がございますが、製品への影響はございません。温暖な環境に長期間

置いても劣化しないことが安定性試験により確認されています（詳しくは弊社Webサイト dharmacon.gelifesciences.comの「Service & Support」→「Documents & Downloads」→「Technical Resources」→「RNAi & カスタム RNA合成」より“Accell Stability Product Bulletin”をダウンロードしてご覧ください）。

お受け取り後すぐに 4℃で保管してください。冷凍保存はできません。推奨される保管条件下では、製品に表示された製造年月日から 24ヵ月間は安定です。

http://dharmacon.gelifesciences.com/uploadedFiles/Resources/accell-stability-product-bulletin.pdf


14



FAQ（よくある質問）

合成された tracrRNAおよび crRNAの品質管理はどのような試験で確かめられていますか。

Edit-R tracrRNAは、高速液体クロマトグラフィーを使って精製された後、MALDI-TOF質量分析とHPLCとを使って検証され、配列長および純度が確認されています。また、crRNAも質量分析で検証されています。合成された RNAの定量は、分光光度計を用いて波長 260 nmの吸光度を測定しています。

Dharmacon ™ 2’-ACE法を用いて合成された crRNAは、ゲノム編集実験前に、高速液体クロマトグラフィーを使って精製する必要がありますか。

Dharmacon ™ 2’-ACE法は、カップリング反応が極めて早く、高収量かつ高純度の RNAオリゴが得られます。脱塩処理を施され保護基が除去された crRNAをご提供しますので、ゲノム編集実験前に、新たに精製する必要はありません。弊社の検証試験では、

2位にある水酸基の脱保護処理を施された crRNAを使って良好なゲノム編集ができました。

バッファーを使って crRNAを再懸濁したところ、やや黄色味を帯びてしまいましたが、大丈夫でしょうか。

問題ありません。RNAオリゴの作製では、塩基の脱保護剤にはジチオレート系錯体を用います。少量の脱保護剤がサンプル中に残存する場合があり黄色味を帯びていますが、ゲノム編集や細胞生存率に有害な作用を及ぼすことはありません。

合成された tracrRNAおよび crRNAの安定性を教えてください。

乾燥したペレット状の RNAオリゴは、常温で、2～ 4週間は安定ですが、長期の保存は、-20℃～ -80℃で冷凍します。この保存条件では 1年は安定です。無菌条件下で、リボヌクレアーゼやデオキシリボヌクレアーゼの無い環境で保存してください。

Edit-R Plasmid、tracrRNAおよび crRNAは凍結・解凍を何回繰り返して利用できますか。

4～ 5回までは、凍結と解凍を繰り返しても、品質は保たれます。

tracrRNAおよび crRNAは、どのように保存すれば良いでしょうか。

乾燥した RNAオリゴは、-20℃～ -80℃に設定された冷凍庫で保存しますが、霜がつかないようにします。pH 7.4のヌクレアーゼフリーのバッファーを使って再懸濁すれば、凍結させたり解凍させたりしても安定です。RNAオリゴは再懸濁後に、小分けにしてチューブに保存してください。4～ 5回以上の凍結と解凍は繰り返してはなりません。分解が気になる場合は、ポリアクリルアミドゲル電気泳動にて品質を確かめることができます。

製品の配達が遅れたため、Edit-R Cas9 Nuclease Expression Plasmid、mKate Transfection Optimization Plasmid、tracrRNAや crRNAが、一週間の間、常温下にありました。使用しても大丈夫でしょうか。

乾燥ペレットとして出荷されますので、常温下では、2～ 4週間は安定です。RNAオリゴもプラスミドDNAも受け取ったら、直ちに、-20℃～ -80℃の冷凍庫で保管してください。

Edit-R Gene Engineering Systemの各コンポーネントは、どのようにして出荷されるのですか。

Edit-R Cas9 Expression plasmid DNA、mKate2 Transfection Optimization plasmid DNA、tracrRNA、crRNAは、すべてが乾燥ペレットとして、常温下で出荷されます。

RNAは、分光光度計を使って定量しますが、その計算式を教えてください。

RNAの定量は、ベール法を用います：吸光度（260 nm）=ε×モル濃度×光路長（cm）。ここでεは、モル吸光係数を表します（crRNAのモル吸光係数は同梱された製品添付書に記載されております。また、tracrRNAのモル吸光係数は 757400です）。計算式は、モル濃度＝（吸光度、照射度 260 nm）／ε･光路長（cm）です。標準型の 10 mmキュベットを使った場合、計算式において光路長は 1とします。それ以外のキュベットを使う場合、例えば 2 mmのマイクロキュベットを使った場合は、光路長は 0.2とします。

15



Edit-R Cas9 Expression Plasmidの保存方法を教えてください。

乾燥プラスミド DNAとバッファーで再懸濁した DNAは、-20℃～ -80℃の場所で凍結保存します。凍結・解凍は繰り返さずに、核酸の分解を防ぐために、リボヌクレアーゼやデオキシリボヌクレアーゼの無い環境で保存してください。

注文した DharmaFECT Duo Transfection Reagentが配達されてきたのですが、常温で放置してしまいました。試薬は使っても大丈夫でしょうか。

DharmaFECT製品は、トランスフェクション試薬も含めて、多くの安定性試験および機能性試験を行った結果、たとえ保存条件が悪くても、効率よくトランスフェクションができました。試験結果は、弊社Webサイトに掲載されておりますので、ダウンロードしてご利用ください（dharmacon.gelifesciences.com）。

トランスフェクション後、細胞死が目立ちました。どのように対処すれば良いのでしょうか。

その場合は、導入条件を最適化する必要があります。考慮すべき条件は、トランスフェクション試薬に関しては、試薬の分量・試

薬のロット／バッチ、導入期間、また細胞に関しては、細胞培養継代数、細胞密度といった点があります。トランスフェクション

試薬濃度の低減や導入期間の短縮は、細胞への毒性作用を減らします。トランスフェクション試薬の作用は、ロット毎に異なるの

で、そのために実験上のばらつきが起きることもあります。この問題が続く場合、トランスフェクション試薬を替えるか、テクニカ

ルサポートにお問合せください（本書裏表紙を参照）。

Edit-R Cas9 Gene Engineeringシステムは、どのような細胞に用いることができますか。

本製品は、哺乳動物の細胞であれば導入が可能で、Cas9発現のためのプロモーターが作動するいかなる種類の細胞にもご利用いただけます。

Edit-R Cas9 Expression Plasmidにはいろいろな種類がありますがどれを使えば良いのでしょうか。

次の点を考慮してください。

1) ブラストサイジンを使った Cas9発現細胞の選択を希望し、使用する細胞内でヒト CMVプロモーターが作用する場合、哺乳動物細胞の抗生物質選択用マーカー BlastR搭載の Cas9ヌクレアーゼ発現プラスミドを使用できます。（コード番号：

U-0010000-120）

2) FACS装置を使って、蛍光マーカーを発現する細胞だけを選択する場合、SMARTCas9-mKate2 Expression Plasmidを使用できます。このプラスミドは、6種の異なるプロモーターを選択できるので、使用する細胞でプロモーターの活性が強いものを選ぶことができます。

3) FACS装置を使わない場合、またはピューロマイシンを使う場合、SMARTCas9-PuroR Expression Plasmidを使用できます。このプラスミドは 6種の異なるプロモーターを選択できるので、使用する細胞内でプロモーターの活性が強いものを選ぶことができます。

Cas9発現プラスミドと組合せる適切なプロモーターをどのように選べば良いのでしょうか。

弊社が提供する Cas9プラスミドは、複数のプロモーターから選択することができます。これにより、Cas9ヌクレアーゼ遺伝子と

mKate2レポーター遺伝子、あるいは、Cas9ヌクレアーゼ遺伝子とピューロマイシン耐性遺伝子を、効率よく発現できます。重要なのは、実験観察に基づいてあるいは論文を参照したうえで、使用する細胞内で作用するプロモーターを搭載した Edit-R Cas9 Expression Plasmidを使用することです。そのような情報が入手できない場合は、SMARTCas9-mKate2 Expression Plasmidをいくつか選んで、それぞれのmKate2の蛍光強度を見比べて、実験に使うプラスミドを選んでください。


16



Edit-R mKate2 Transfection Optimization Plasmidの用途は？

トランスフェクション条件の最適化に使用します。ブラストサイジン耐性マーカーを組込んだ Edit-R Cas9 Nuclease Expression Plasmidと構造が似ていますが、Cas9ヌクレアーゼ遺伝子がmKate2蛍光遺伝子配列に置き換わっています。Edit-R mKate2 Trasfection Optimization Plasmidを使ったトランスフェクション条件の最適化は、本書の「トランスフェクション条件の最適化」の項に記述した手順に従ってください。ただし、SMARTCas9 Expression Plasmidを使用する場合、トランスフェクション条件の最適化は、処理する細胞に対して活性を示すプロモーターを搭載した SMARTCas9-mKate2 Expression Plasmidを使います。

Edit-R tracrRNAおよび crRNAは、他の Cas9ヌクレアーゼ発現プラスミドと組合せて使用できますか。

tracrRNAおよび crRNAを使って検証した結果、哺乳動物細胞において Edit-R Cas9 Expression Plasmidを使ったゲノム編集は効率よく行えました。しかし、その他の Cas9ヌクレアーゼ発現ベクターを使って実験した場合、編集効率は予測することができませんし、また問題が生じたときの解決方法を見出すこともできません。ただし、crRNAに含まれる繰り返し配列および

tracrRNAの全配列は、化膿連鎖球菌 (Streptococcus pyogenes)の CRISPR-Cas9システムに由来するものなので、おそらく、他の Cas9ヌクレアーゼ発現プラスミドにも適用できると思いますが、そのためには、Cas9配列が正しく発現できるようコドンが最適化されており、Cas9配列の発現は、使用する細胞で作用するプロモーターが制御する必要があります。しかも、プラスミド

DNAは、tracrRNAと crRNAと共にコトランスフェクションを効率よく行う必要があります。

1つのベクターから発現した単鎖ガイド RNA（sgRNA）よりも、２種類の合成された RNA（tracrRNAおよび crRNA）を使う利点はどこにあるのでしょうか。

Edit-Rシステムはの利点は、複数の crRNAを容易に入手し、使用できることです。Edit-Rシステムでは単一遺伝子の複数の標的配列または複数遺伝子を容易にノックアウトできます。他方、sgRNAを一つのベクターより発現させる場合は、各標的配列を発現ベクターにクローニングしなければならず、配列を確認しながらクローンを増殖・選別して、トランスフェクション用に DNAを分離・精製します。この工程は、単一遺伝子の複数の標的または複数の遺伝子をノックアウトする場合、とても面倒です。

DharmaFECT Duoとは異なるトランスフェクション試薬を使って、目的の細胞へ Edit-Rのコンポーネントを導入してもよいでしょうか。

DharmaFECT Duoは、プラスミド DNAおよび RNAオリゴを同時にトランスフェクションするために最適化されています。

DharmaFECT Duoを用いてゲノム編集実験を行ったところ、Edit-Rコンポーネントの導入は効率良く行えることが分かりました。その他のトランスフェクション試薬を使った場合のゲノム編集効率は予測することができませんし、また問題が生じたときの解決

方法を見出すこともできません。ただし、使用する細胞についてのコトランスフェクション条件が入念に最適化されている試薬で

あれば、利用しても構いません。

DNAミスマッチ定量法では、ゲノム編集効率が低いのですが、なぜでしょうか。

Surveyor(IDT)や T7EI(NEB)など、ミスマッチを認識する DNAエンドヌクレアーゼを使った変異定量解析は、ゲノムDNAの対象とする配列を PCRで増幅した後、通常、ゲル電気泳動法を使って変異を検出します。CRISPR-Cas9を使って行ったゲノム編集における塩基の挿入・欠失を正確に検出する方法は、使用するエンドヌクレアーゼによってその感度が異なり、以下の理由から、編集

効率が下がるように見えてしまいます。

1. 標的配列は、Cas9によって切断された後、非相同末端結合（NHEJ）によって DNAが修復された結果、さまざまなサイズの欠失・挿入・変異が生じます。そのため、エンドヌクレアーゼによる切断後の電気泳動の結果では、ゲル泳動像が不鮮明でバ

ンドがなかなか確認できなかったり、定量できなかったりします。

2. ミスマッチを認識する DNAエンドヌクレアーゼは、とりわけ反応時間を長くした場合、非特異的に作用して PCR産物を分解することがあり、その場合、目的のバンドのシグナル強度が低下することがあります。

3. CRISPR-Cas9ゲノム編集によって大きな挿入や欠失が生じた場合、プライマー結合部位も影響を受けてしまい、変異を検出できなくなることがあります。

17



ピューロマイシン処理またはブラストサイジン処理を施すことで、ゲノム編集の効率は上がりますか。

ピューロマイシンやブラストサイジンは、編集された細胞だけを濃縮して、編集効率を上げますが、どのぐらい上がるかは導入条

件がどのぐらい最適化されているかによって異なります。Edit-Rコンポーネントのトランスフェクション効率が高いと、選択剤は編集効率を若干向上させます。逆にトランスフェクション効率が低いと、選択剤は編集効率を大幅に向上させます。

Edit-Rシステムは、哺乳動物以外の例えば細菌や線虫といった下等生物の細胞での遺伝子ノックアウトに使用できますか。

Edit-R Cas9プラスミドは、哺乳動物の細胞で発現できるよう設計され、検証されています。哺乳動物以外の細胞を使った場合、

Edit-R RNAコンポーネントに関する編集効率は予測することができませんし、また問題が生じたときの解決方法を見出すこともできません。ただし、crRNAに含まれる繰り返し配列および tracrRNAの全配列は、化膿連鎖球菌（Streptococcus pyogenes）の CRISPR-Cas9システムに由来するものなので、おそらく、他の Cas9ヌクレアーゼ発現プラスミドにも適用できると思いますが、そのためには、Cas9配列が正しく発現できるようコドンが最適化されており、Cas9配列の発現は、使用する細胞で作用するプロモーターが制御する必要があります。しかも、プラスミドDNAは、tracrRNAと crRNAと共にコトランスフェクションを効率よく行う必要があります。

Edit-R RNAコンポーネントは、自分の使っている Cas9ヌクレアーゼmRNAと組合せて使っても問題はありませんか。また、変異 Cas9ヌクレアーゼ発現プラスミドも使えますか。

tracrRNAおよび crRNAを使って検証実験を行った結果、哺乳動物細胞において Edit-R Cas9 Expression Plasmidを使ったゲノム編集は効率よく行えましたが、変異 Cas9ヌクレアーゼ発現ベクターや Cas9 ヌクレアーゼmRNAを使って実験した場合、編集効率は予測することができませんし、また問題が生じたときの解決方法を見出すこともできません。ただし、crRNAに含まれる繰り返し配列および tracrRNAの全配列は、化膿連鎖球菌（Streptococcus pyogenes）の CRISPR-Cas9システムに由来するものなので、おそらく、他の Cas9コンポーネントにも適用できると思いますが、そのためには、Cas9配列が発現できるようにコドンが正しく最適化されており、しかも、酵素活性のある Cas9タンパク質が強く発現する必要があります。そのうえ、Cas9 mRNAまたはプラスミドDNAは、tracrRNAと crRNAと共にコトランスフェクションを効率よく行う必要があります。

使用する細胞の倍数性は、CRISPR-Cas9によるゲノム編集結果に影響を与えますか。

CRISPR-Cas9システムを遺伝子の機能破壊に使う場合、対象とする遺伝子および細胞について十分な知識を持っていなければなりません。特に注意すべきことは、使用する細胞の倍数性、遺伝子のコピー数がいくつあるか、および一塩基変異多型（SNP）が存在するかどうかです。野生型の二倍体細胞では、完全に遺伝子をノックアウトし表現型を観察するには対立遺伝子座の両方の

変異が必要です。がん細胞株と多くの不死化 B細胞株は、染色体の異数性が見られるので、複数の遺伝子座が同時に変異する必要があります。crRNAを設計する際に考慮すべきことは、SNPの有無とともに遺伝子座が複数あるかどうかということであり、それによって完全なノックアウトが実現できるかどうかが決まります。単一細胞に由来するクローン細胞を増殖させ、全ての遺伝子座

で必要な変異が得られているかの配列確認をすることが、完全なノックアウトを得るための間違いのない確認方法となります。

18



文献

D. Bhaya, M. Davison, et al. CRISPR-Cas systems in bacteria and archaea: versatile small RNAs for adaptive defense and regulation. Annu. Rev. Genet. 45, 273-297 (2011).

L. Cong, F. A. Ran, et al. Multiplex Genome Engineering Using CRISPR/Cas Systems. Science. 339(6121), 819-823 (2013).

E. Deltcheva, K. Chylinski, et al. CRISPR RNA maturation by trans-encoded small RNA and host factor Nuclease III. Nature. 471(7340), 602-607 (2011).

Y. Fu, J. D. Sander, et al. Improving CRISPR-Cas nuclease specificity using truncated guide RNAs. Nat. Biotechnol. (2014).

D.Y. Guschin, A. J. Waite, et al. A rapid and general assay for monitoring endogenous gene modification. Methods Mol. Biol. 649, 247-256 (2010).

F. Heigwer, G. Kerr, et al. E-CRISP: fast CRISPR target site identification. Nat . Methods. 11(2), 122-123 (2014).

P.D. Hsu, D. A. Scott, et al. DNA targeting specificity of RNA-guided Cas9 nucleases. Nat. Biotechnol. 31(9), 827-832 (2013).

M. Jinek, K. Chylinski, et al. A Programmable Dual-RNA-Guided DNA Endonuclease in Adaptive Bacterial Immunity. Science. 337(6096), 816-821 (2012).

P. Mali, L. Yang, et al. RNA-guided human genome engineering via Cas9. Science. 339(6121), 823-826 (2013).

N. K. Pyzocha, F. A. Ran, et al. RNA-Guided Genome Editing of Mammalian Cells. Methods Mol. Biol. 1114, 269-277 (2014)

D. Reyon, C. Khayter, et al. Engineering designer transcription activator-like effector nucleases (TALENs) by REAL or REAL-Fast assembly. Curr. Protoc. Mol. Biol. 100, 12.15.1‐12.15.14 (2012).

T. R. Sampson, D. S. Weiss. Exploiting CRISPR/Cas systems for biotechnology. Bioessays. 36(1), 34-38 (2014).

T. Wang, J. J. Wei, et al. Genetic screens in human cells using the CRISPR-Cas9 system. Science. 343(6166), 80-84 (2014).

6 Evrogen社ライセンスについて

Evrogen社の蛍光タンパク

本製品に含まれる、特許で保護された核酸配列は、蛍光タンパクをコードするものであり、特許の対象は、この蛍光タンパクの派

生物または改変物を含みます。米国および海外で特許出願中のもの、また Evrogen JSCが有する特許も対象となります（これらをまとめて、「Evrogen蛍光タンパク」と呼びます）。

本製品の購入により、買い手に譲渡不能ライセンスが移行し、① 1買い手が学術団体または営利団体であるかに拘らず、非営利目

的での研究を行う場合（ここでいう研究とは、非商業的利用または活動を指し、その結果も含め、利益が生じないものとします。）、

および② 2治療薬、診断用試薬、ワクチン、予防薬の開発に関わる検証を目的とした Evrogen蛍光タンパクによる評価を行う場合に（ただし、これらの製品の製造または開発に Evrogen蛍光タンパクを使用しない場合に限ります。）、利用することができます。

いかなる目的であっても Evrogen蛍光タンパクの再販、配布、移譲、または第三者への利用権の提供、もしくは研究以外の目的でかかる製品を利用することは、固く禁じられています。

買い手は、第三者に対し、かかる製品を使って作製した物質を販売、移譲、または商業目的で利用することはできません。買い手は、

商業目的としてではなく研究目的である場合に限り、本製品の利用によって得た情報を譲渡することができます。ここでいう商業

目的とは、① 1製造における本製品の使用、② 2本製品の使用によるサービス・情報・データーの提供、③ 3治療・診断・予防を目的

とした本製品の利用を含み、かつ対象となる団体のあらゆる活動を指します。

本製品の購入によって、Evrogen社のいかなる権利も化学分子の検証や検出を目的として移譲されることはなく、前述の特許または特許出願におけるいかなる主張の下においてもライセンスが移譲されることはありません。

前述の特許、特許出願に関わる情報および上記で容認された以外の目的で本製品を利用するためにライセンスを購入する場合の

情報については、以下までお問合せください。

お問合せ先：Licensing Department, Evrogen JSC （住所：Miklukho-Maklaya street 16/10, Moscow,117997, Russian Federation、E-mai：[email protected]）



71-3736-31

8

www.gelifesciences.co.jp

■製品技術情報に関して

■機器アフターサービス

■納期／在庫お問合せ

注）お問合せに際してお客さまよりいただいた情報は、お客さまへの回答、弊社サービスの向上、弊社からのご連絡のために利用させていただく場合があります。

注）アナログ回線等で番号選択ができない場合はそのままお待ちください。オペレーターにつながります。

弊社 Web サイト　 ▲サポート ▲FAQ （製品 Q&A）または、

研究者向けコミュニティ Life Sciences Academy＊

▲▲ lifesciences-ac.com

FAQ （製品 Q&A）

製品マニュアル

基礎学習などに

バイオダイレクトライン

弊社 Web サイト　 ▲サポート ▲製品マニュアル

応答メッセージが聞こえましたら、下記の番号を押してください。

クロマトグラフィー関連製品：ビアコア関連製品：

電気泳動関連製品：ワットマン製品、その他製品：1 2

3 4

（営業日の 9:00 ～ 17:30）

（常時受付）

（常時受付）

FAQ 検索

©2015 GE ヘルスケア・ジャパン株式会社本書の全部または一部を無断で複写複製することは、著作権法上の例外を除き、禁じられています。

掲載されている製品は試験研究用以外には使用しないでください。

掲載されている内容は予告なく変更される場合がありますのであらかじめご了承ください。

掲載されている社名や製品名は、各社の商標または登録商標です。お問合せに際してお客さまより

いただいた情報は、お客さまへの回答、弊社サービスの向上、弊社からのご連絡のために利用させ

ていただく場合があります。

＊　Life Sciences Academyはゼネラル・エレクトリック・カンパニイまたはその関連会社の商標です。

http://www.gelifesciences.co.jp