univerzitet u niŠu - pmf.ni.ac.rs · nakon toga su pacovi žrtvovani i uzeta je krv za...
TRANSCRIPT
UNIVERZITET U NIŠU
PRIRODNO-MATEMATIČKI FAKULTET
DEPARTMAN ZA BIOLOGIJU I EKOLOGIJU
DRAGANA D. MITROVIĆ
MASTER RAD
Niš, oktobar 2018.
UNIVERZITET U NIŠU
PRIRODNO-MATEMATIČKI FAKULTET
DEPARTMAN ZA BIOLOGIJU I EKOLOGIJU
DRAGANA D. MITROVIĆ
UTICAJ PANKLAVA NA BROJ LEUKOCITA U PERIFERNOJ
KRVI PACOVA SOJA WISTAR
MASTER RAD
Kandidat: Mentor:
Dragana Mitrović 193 Dr Perica Vasiljević
Niš, oktobar 2018.
3
Sažetak
Cilj ovog rada bio je ispitivanje uticaja različitih koncentracija panklava na broj
leukocita i morfometrijske karakteristike leukocita u krvi pacova soja Wistar. Lek Panklav je
antibiotik koji deluje tako što ubija bakterije koje su uzročnici infekcija. Lek Panklav se sastoji
iz dva različita leka: amoksicilin i klavulanska kiselina.
Amoksicilin je beta-laktamski antibiotik srednje-širokog spektra dejstva koji se koristi u lečenju
infekcija izazvanih mikroorganizmima. Spada u peniciline (proširenog spektra), i u toj grupi je
najčešći izbor kada je reč o oralnoj primeni, jer je stabilan u kiseloj sredini, dobro se apsorbuje
u poređenju sa drugim sličnim antibioticima, i generalno dobro podnosi. Osetljiv je na dejstvo
beta-laktamaza pa se u preparatima često kombinuje sa inhibitorom istih, najčešće
klavulanskom kiselinom. Životinje su tretirane Panklavom koncentracijama od 25%, 50%, 75%
i 100%. Nakon toga su pacovi žrtvovani i uzeta je krv za određivanje broja leukocita a na
osnovu toga je određena leukocitarna formula i kako bi se izmerio uticaj Panklava na parametre
ćelija leukocita kao što su površina ćelije i prečnik ćelije. Rezultati su pokazali da uticaj
različitih koncentracija panklava ne utiče značajno na promenu brojnosti ćelija neutrofila i
eozinofila. Broj bazofila je smanjen u poredjenju sa kontrolnom jedinkom ali bez statističke
značajnosti. Broj limfocita je viši kod tretiranih jedinki u odnosu na kontrolnu jedinku, nema
statističke značajnosti. Kod svih tretiranih jedinki zapaža se opadanje broja monocita. Ovo je
jedina grupa leukocita gde postoji statistička značajnost dobijena analizom varijansi različitih
koncentracija panklava.
Ključne reči: panklav, leukociti, Wistar pacovi
Sadržaj
1. Uvod..........................................................................................................................5
1.1.Panklav................................................................................................................5
1.1.2. Mehanizam dejstva....................................................................................5
1.1.3 Dostupni oblici........................................................................................6
1.1.4 Primena...................................................................................................7
1.1.5 Neželjena dejstva....................................................................................7
1.2.Krv.......................................................................................................................8
1.2.1. Stvaranje krvnih ćelija.......................................................................8
1.2.2. Sastav krvi.........................................................................................11
1.2.3. Uobličeni krvni elementi...................................................................11
2. Cilj rada.....................................................................................................................20
3. Materijali i metode....................................................................................................21
3.1. Materijal.............................................................................................................21
3.2. Metode................................................................................................................21
3.2.1. Pripreme štok rastvora i radnih rastvora..........................................................21
3.2.2. Tretiranje životinja u konsantnim eksperimentalnim uslovima.......................22
3.2.3 Postupak za dobijanje krvnih elemenata...........................................................22
3.2.4.Izrada krvnog razmaza i određivanje leukocitarne formule..............................22
3.2.5 Merenje morfometrijskih karakteristika keukocita
4. Rezultati i diskusija....................................................................................................24
4.1. Ispitivanje uticaja različitih koncentracija panklava na broj krvnih ćelija kod
pacova.........................................................................................................................24
4.2. Ispitivanje uticaja različitih koncentracija panklava na morfometrijske
karakteristike leukocita..........................................................................................................33
5. Zaključak ...................................................................................................................37
6. Literatura....................................................................................................................38
5
1. Uvod
Antibiotici su jedinjenja koja proizvode neki mikroorganizmi a koja deluju na druge
mikroorganizme tako što sprečavaju njihovo razmnožavanje ili ih uništavaju. Proces stvaranja
antibiotika naziva se antibioza. Prvi otkriveni antibiotik bio je penicilin. Antibiotici se razlikuju
po hemijskom sastavu i načinu delovanja na patogene bakterije.
Obzirom na kratko vreme potrebno za izmenu generacije, bakterije su u velikoj evolucijskoj
prednosti nad čovekom. Prednost koju je čovek stekao uvođenjem antibiotika u kliničku praksu
1940-ih godina polako nestaje zbog prilagodjavanja bakterija. Stručnjaci su relativno rano, već
na početku antibiotske ere, bili svesni da će razvoj rezistencije ugroziti delotvornost ovih
dragocenih lekova. Procena Europske Unije (EU) je da u zemljama EU multiplorezistentne
bakterije godišnje uzrokuju smrt u oko 25 000 bolesnika te da uzrokuju 1,5 milijarde eura
dodatnih troškova u zdravstvu. Zbog toga su se u suzbijanje širenja otpornosti bakterija na
antibiotike uključila mnoga nacionalna i internacionalna stručna društva kao i vladine
organizacije propagirajći edukaciju o racionalnoj upotrebi antibiotika i među zdravstvenim
radnicima i medju pacijentima. Racionalnom upotrebom antibiotika možemo kupiti vreme za
razvoj novih antibiotika i alternativnih pristupa lečenju infektivnih bolesti. (Andrašević, 2009.).
1.1.Panklav
Lek Panklav je antibiotik koji deluje tako što ubija bakterije koje su uzročnici infekcija. Lek
Panklav se sastoji iz dva različita leka: amoksicilin i klavulanska kiselina.
Amoksicilin je beta-laktamski antibiotik srednje-širokog spektra dejstva koji se koristi u lečenju
infekcija izazvanih mikroorganizmima. Spada u peniciline (proširenog spektra), i u toj grupi je
najčešći izbor kada je reč o oralnoj primeni, jer je stabilan u kiseloj sredini, dobro se apsorbuje
u poređenju sa drugim sličnim antibioticima, i generalno dobro podnosi. Osetljiv je na dejstvo
beta-laktamaza pa se u preparatima često kombinuje sa inhibitorom istih, najčešće
klavulanskom kiselinom.
1.1.2. Mehanizam dejstva
Amoksicilin, kao i svi penicilini, inhibira sintezu ćelijskog zida bakterija. Vezuje se za
enzime transpeptidaze, uz otvaranje laktamskog prstena, i time sprečava formiranje postojanih
peptidnih veza između lanaca peptidoglikana. Ovo smanjuje integritet i modifikuje
permeabilnost ćelijskog zida, pa se smatra da amoksicilin deluje baktericidno.
Amoksicilin je derivat benzilpenicilina, odnosno α-aminobenzilpenicilin. Uvođenjem amino
grupe u bočnu reziduu, povećava se polarnost molekula pa i u izvesnoj meri proširuje spektar
dejstva na Gram-negativne bakterije. Amino grupa uslovljava i relativnu stabinost u kiseloj
sredini; uvođenjem dodatnog baznog centra u molekulu konkurentno se štiti beta-laktam od
otvaranja u kiseloj sredini. Podložan je degradaciji u prisustvu nukleofila i beta-laktamaza.
Amoksicilin je strukturno sličan ampicilinu, sa jedinom razlikom u vidu fenolne grupe. Oralno
primenjen, amoksicilin se značajno bolje apsorbuje od ampicilina.
Slika 1. Hemijska formula amoksicilina
1.1.3. Dostupni oblici
Amoksicilin je primarno prilagođen oralnoj primeni, i dostupan je u vidu tableta,
kapsula i sirupa najčešće u obliku amoksicilin-trihidrata (Amoksicilin®, Sinacilin®...). 95%
unete količine se apsorbuje iz digestivnog trakta i oko 30% metaboliše u jetri. Metaboliti i lek
u neizmenjenom obliku izlučuju se gotovo isključivo putem urina. Osim oralne, natrijumova so
amoksicilina primenjuje se i intravenski. Terapijske doze kod odraslih variraju između 750 i
1500 mg dnevno.
Dostupan je prolek amoksicilina — pivampicilin (pivaloiloksimetilestar amoskicilina) — koji
ima bolju bioraspoloživost kod per os primene.
7
1.1.4. Primena
Upotreba amoksicilina indikovana je kod infekcija gornjih respiratornih organa i uha
izazvanih podložnim vrstama pneumokoka, stafilokoka i hemofilusa, zatim, kod infekcija
urinarnog trakta, streptokoknih infekcija donjeg respiratornog trakta i gonoreje. Efikasan je
primarno kod gram-pozitivnih bakterija.
Preparat sa dodatkom klavulanske kiseline (Amoksiklav®, Panklav®...) može se primenjivati
kod sojeva koji luče beta-laktamazu, ali je neophodno prethodno uraditi antibiogram.
1.1.5. Neželjena dejstva
Osim reakcija preosetljivosti koje se mogu javiti kod primene penicilina u kom slučaju
je upotreba kontraindikovana, amoksicilin se dobro podnosi. Mogu se javiti lakše alergijske
reakcije u vidu promena na koži. Pojava osipa uglavnom zahteva prekid terapije. Drugi
neželjeni efekti su ograničeni na lakše stomačne tegobe. Kod primene preparata sa
klavulanskom kiselinom mogu se javiti i drugi neželjeni efekti, uglavnom holestatična žutica
ili hepatitis samoograničavajućeg karaktera.
https://www.alims.gov.rs/wp-content/blogs.dir/2/files/lekovi/pil/1153-2008-12.pdf
Slika 2. Hemijska formula klavulanske kiseline
1.2.Krv
Krv je tečno vezivno tkivo koje cirkuliše u zatvorenom sistemu za krvotok i na taj način
održava vezu između svih organa u organizmu. Zahvaljujući cirkulaciji kroz sistem sudova, krv
snabdeva ćelije kiseonikom i hranljivim materijama a prima od njih ugljen dioksid i druge
produkte metabolizma (Štajn, 1990).
Boja krvi potiče od hemoglobina koji se nalazi u eritrocitima. Oksigenisana krv bogata
kiseonikom ima svetliju boju dok dezoksigenisana krv sadrži manji procenat kiseonika vezanog
za hemoglobin pa ima tamniju crvenu boju. Specifična težina krvi je 1,050 - 1,060.
Elektrohemijska reakcija krvi čoveka i domaćih životinja je slabo bazna (pH 7,3-7,5) (Štajn,
1990).
Krv ima četiri osnovne fukcije u organizmu: transportna funkcija, humoralna funkcija, uloga u
termoregulaciji i odbrambena uloga (Štajn, 1990)
1.2.1. Stvaranje krvnih ćelija
Krvne ćelije se stvaraju u koštanoj srži a proces nastajanja krvi naziva se hematopoeza.
Broj krvnih ćelija održava se u uskim granicama a ako je to potrebno njihov broj se može
znaćajno povećati. Uz krvne ćelije hematopoezni sistem čine potporne strukture i tkiva koji su
nužni za razvoj ćelija. Organi koji potpuno ili delimično učestvuju u stvaranju i sazrevanju
krvnih ćelija su: koštana srž, slezina, timus i limfni čvorovi. Između njih ne postoji anatomska
veza ali oni su kvrlju fukncionano povezani (Labar, 2007). Mogu se podeliti na primarne i
sekundarne hematopoezne organe. U primarne spadaju koštana srž i i timus a u sekundarne
slezina i limfni čvorovi (Petrović, 2009). Tokom čovekovog života različiti organi služe kao
mesta hematopoeze. Tokom embrionalnog života krvne ćelije nastaju iz aortalno-mazonefros-
gonadalne regije u žumancetnoj kesici. U fetalnom periodu glavni hematopoezni organi su
slezina i jetra a kasnije tu ulogu delimično preuzima kosna srž da bi nakon rođena ona u
potpunosti preuzela ulogu stvaranja krvnih ćelija (Labar, 2007).
Koštana srž se pri rođenju sastoji isključivo od hamatopoeznog tkiva (crvena srž) dok se kasnije
tokom života ono postupno zamenjuje masnim tkivom (žuta srž). Ovo se najipre dešava u
dijafizama dugih kostiju koje ostaju ispunjene do kraja života žutom srži. Crvena srž se kod
odraslog čoveka zadržava u kratkim kostima (pršljenovima), u pljosnatim kostima (kosti
lobanje, grudna kost, sakrum i kosti karlice) i epifizama dugih kostiju. Pored hematopoeznog
tkiva u kosnoj srži nalaze se i ćelije strome koje čine mikrookolinu hematopoeznog tkiva. Uz
9
venske sinuse, mikrookolinu čine sledeće ćelije: fibroblastoidne ćelije, endotelne ćelije,
makrofagi i masne ćelije. Ove ćelije posreduju u samom procesu hematopoeze tako sto šalju
odgovarajuće faktore rasta na matične ćelije hematopoeznog tkiva (Labar, 2007). Krvne ćelije
se stalno troše i obnavljaju. Proces regeneracije krvnih ćelija naziva se hematopoeza (Slika 4) i
obavlja se u tri koraka : proliferacija, diferencijacija i sazrevanje. Sve krvne ćelije potiču od
jedne ishodne matične ćelije hematopoeze u koštanoj srži. To je pluripotentna matična ćelija
koja je još uvek morfološki neprepoznatljiva i koja pod dejstvom faktora svoje mikrookoline
započinje proliferaciju, rast i deobu. Od nje diferencijacijom nastaju matične ćelije
predodređene za pojedine krvne loze, multipotentne mijeloidne i limfoidne matične ćelije. Iz
njih nastaju opredeljene matične ćelije pojedinačnih krvnih loza i to su unipotentne matične
ćelije koje daju prve morfološke preoznatljive ćelijske oblike : proeritroblaste, mijeloblaste,
monoblaste, megakarioblaste i nulte ćelije limfoidne loze. Od proeritroblasta nastaju erirtocit,
od mijeloblasta nastaju granulociti, od monoblasta monociti, od megakarioblasta trombocti a
od ćelija limfoidne loze T i B limfociti (Petrović, 2009).
Slika 3. Šematski prikaz hematopoeze
Hematopoeza ne bi bila moguća bez faktora rasta koj regulišu procese proliferacije i
diferencijacije u kosnoj srži. Svi faktori rasta osim eritropoetina, koji nastaje u bubregu,
sintetišu ćelije strome kosne srži, limfociti T, monociti, endotelne i fibroblastoidne ćelije.
Hematopoezni faktori rasta su: interleukini IL-1,IL-3,IL-5,IL-6, TNF, koloni-stimulišući
faktori SCF, eritropoetin, trombopoetin (Labar, 2007). U koliko koštana srž ne može da
odgovori na zahteve za povećanim stvaranjem krvnih ćelija, masna srž može da se pretvori u
hematopoeza
11
aktivnu a isto tako u hematopoezu se uključuju embrionalni hematopoezni organi slezina, jetra
i limfne žlezde. Ova pojava se naziva ekstramedulska hematopoeza (Petrović, 2009).
1.2.2.Sastav krvi
Krv kičmenjaka sastoji se iz krvne plazme i uobličenih krvnih elemenata koji lebde u
njoj - eritrociti, leukociti i trombociti (Štajn, 1990). Odnos plazme i uobličenih krvnih
elemenata izražavaju se preko hematokritske vrednosti. Hematokrit (Ht) je deo ukupne
zpremine krvi koji otpada na masu eritrocita. U normalnim stanjima to iznosi 0,45 l/l sto znači
da u 1 litru krvi eritrociti zauzimaju 0,45 litra dok 0,55 litra zauzima plazma (Štajn, 1990).
Krvna plazma je bledožuta viskozna tečnost koja sadrži veliki broj rastvorenih elektrolita i
neelektrolita. Od 90-92% sadrži vodu dok ostali deo otpada na suvu materiju. Suva materija se
u osnovi sastoji od nebelačevinastih supstanci male molekulse mase i belančevina plazme. Od
nebelančevinastih supstanca dominira elektrolit plazme NaCl koji ima ulogu pufera tj. u
održavanju acido-bazne ravnoteže. Koncentracija soli takođe obezbeđuje stalni osmotski
pritisak plazme koji omogućava razmenu materija sa tkivima. Od ostalih nebelančevinastih
supstanci u plazmi se nalaze mokraćna kiselina, kreatinini, glukoza, holesterol i bilirubin. Od
belančevina plazme najvažniji je fibrinogen koji se u procesu koagulacije taloži u nerastvorljivi
fibrin. Ono što ostaje izdvajanjem fibrina naziva se serum a 20 u njemu su serumske
belančevine. Ove belančevine imaju ulogu u transportu, zaštiti, matabolizmu i regulaciji acido-
bazne ravnoteže (Štajn, 1990). Najzastupljenija belančevina je albumin koji ima transportnu
ulogu i za koji se vezuje njaveći broj produkata metabolizma. On takođe održava volumen
plazme konstantnim i obezbeđuje proteinsku rezervu krvi(Despopulus & Silbernagal, 2011).
1.2.3. Uobličeni krvni elemneti
Eritrociti (crvena krvna zrnca) su bezjedarne, bikonkavne ćelije diskoidnog oblika,
prečnika 7-8 μ. Nastaju procesom eritrocitopoeze koji se posle rođenja odigrava samo u
koštanoj srži. Sastoje se iz membrane i citoplazme. Membrana eritrocita je sačinjena od
proteina, lipida i steroida (lecitin, holesterol). Citoplazmu sačinjava mrežasta struktura u čijim
se okcima nalazi “krvni pigment disanja”, hemoglobin, koji joj daje crvenu boju i čini 95 %
suve supstance eritrocita (Slika 6). Ove ćelije krvi služe za transport gasova. Kiseonik prenose
iz pluća do perifernih tkiva i na taj način eritrocit snabdeva organizam kiseonikom koji je
neophodan za stvaranje energije, a takođe učestvuje i u eliminaciji ugljen dioksida iz tkiva
(Petrović, 2009). Energiju za obavljanje svoje fiziološke funkcije eritrocit stvara procesom
glikolize. Prosečan životni vek eritrocita kod čoveka je 120 dana. U normalnim uslovima,
dnevno se stvara oko 3 milijarde eritrocita na kg telesne mase, a približno toliko u jednom danu
i završi svoj životni vek (Anđelković i sar. , 2002).
Slika 4. Prikaz eritrocita i hemoglobina
Normalna vrednost broja eritrocita kod pacova je 7,8 x 1012
/L, a referentne vrednosti se kreću
od 4,7 do 8,5 x 1012
/L. Stanja kod kojih postoji smanjenje mase eritrocita u krvi, tj. smanjen je
njihov broj ispod normalnih vrednosti, nazivaju se anemije. Povećan broj eritrocita u krvi se
naziva policitemija, eritrocitoza ili poliglobulija (Rusov, 1984).
Leukociti (bela krvna zrnca) su ćelije koje za razliku od eritrocita imaju jedro, ćelijske
organele i granule. Pri bojenju krvnog razmaza njihove granule ispoljavaju različita
tinktorijalna svojstva, usled čega se leukociti tradicionalno dele na granulocite i agranulocite
(Slika 8). Leukociti su ćelije krvi koje su uključene u humoralnu i celularnu odbranu organizma.
Odbrambena uloga se zasniva na njihovoj sposobnosti fagocitoze i ameboidnog kretanja. 15
Granulociti imaju segmentovano jedro i u njihovoj citoplazmi su prisutne granule. Ove granule
mogu biti prijemčive za kisele ili bazne boje, ili i za jedne i za druge, na osnovu čega je
granulocite moguće razvrstati na eozinofilne, bazofilne i neutrofilne. Neutrofilni granulociti su
najbrojniji i čine 50-70% ukupnog broja leukocita. Jedro neutrofila ima najčešće tri segmenata
13
i njihove granule se boje ljubičasto jer imaju podjednaki afinitet prema bazama i kiselinama.
Neutrofili čine prvu liniju odbrane organizma od bakterijskih infekcija i u aktivnom stanju
označavaju se mikrofagima. Eozinofilni granulociti imaju isti oblik i neznatno veći dijametar
od neutrofila, jedro ima dva režnja povezana hromatinskim mostom. U njihovoj citoplazmi
dominiraju granule koje pokazuju visok afinitet za kisele boje (eozin). Kod alergijskih i
parazitarnih bolesti značajno se povećava broj eozinofila u krvi (eozinofilija). Bazofilni
granulociti su najsitniji i najmanje brojni granulociti. Njihovo jedro je potkovičasto a granule
ispoljavaju bazofiliju.
Agranulociti imaju nesegmentovano jedro i azurofilne granule koje se boje isključivo
ljubičasto. U agranulocite spadaju limfociti i monociti. Monociti su najkrupnije ćelije krvi,
ovalnog oblika sa ovalnim jedrom. Predstavljaju pokretnu rezervu tkivnih makrofaga koji
učestvuju u čišćenju tkiva od raspadnih produkata i u odbrani od mikroorganizama (Anđelković
i sar. , 2002).
Slika 5. Sazrevanje leukocita
Neutrofili (Slika 6.) su granulociti prečnika od 9-15 mikrona sa više segmentisanim
jedrom (3-5 režnjeva). U ctoplazmi se mogu uočiti specifične bezbojne granule koje sadrže
lizozim i kolagenazu (Labar, 2007). Njihova glavna uloga je u odbrani organizma od bakterija
i ostalih stranih čestica koje fagocitiraju (Štajn, 1990).
Slika 6. Izgled neutrofila
Eozinofili (Slika 7.) su granulocti koji za razliku od neutrofila sadže specifične tamno
crvene granule i jedro sa manje režnjeva (manje od 3). Eozinofilne granule sadrže lizozim i
peroksidazu. Ove ćelija imaju važnu ulogu u alergijskih reakcija, gde fagocitiraju kompleks
antigen-antitelo (Štajn, 1990). Eozinofili imaju sklonost da se nagomilavaju u tkiva u kojima
se događa alergijska reakcija i dovode do pojavu edema (Gauyton & Hall, 2003).
15
Slika 7. Izgled eozinofila
Bazofili (Slika 8.) su granulociti koji imaju više manje bubrežasto jedro sa većim
brojem useka i specifične tamno plave ganule. Ove granule sadrže histamin i heparin (Labar,
2007). Bazofili u krv ispuštaju heparin, prirodni antikoagulans i sprečavaju koagulaciju krvi.
Takođe imaju ulogu u alergijama gde vrše hemotaksiju eozinofila na mestu upale. Oni tokom
alergijske reakcije ispuštaju histamin i niz drugih supstanci koje dovode do lokalnih promena i
alarm rekacije (Gauyton & Hall, 2003).
Slika 8. Izgled bazofila
Monocit (Slika 9.) je najveća ćelija periferne krvi čija se veličina kreće od 14 do 21
mikrona. Jedro ćelije je uglavnom bubrežastog oblika a u citoplazmi mogu se videti sitne, u
obliku prašine nespecifične granule (Petrović, 2009). Mnociti funkcionisu kao čistači i oni su
prva linija odbrane u tkivima protiv infekcija. Po izlasku iz krvotoka u vezivno tkivo pretvaraju
se u makrofage i fagocitiraju strane materije (Štajn, 1990).
Slika 9. Izgled monocita
Limfociti su najmanji leukociti i njihova veličina iznosi oko 10 mikrona. Jedro ćelije
je ovalno i citoplazma je bez specifičnih granula. T i B limfociti morfološki ne mogu da se
razlikuju. Oni se razlikuju na osnovu ćelijskih markera, posebnih struktura koje se nalaze na
njihovim membranama koji se otkrivaju raznim imunološkim metodama (Petrović, 2009). Po
svojoj funkciji limfociti su imunobiološke kompetentene ćelije koje na delovanje antigena
počinju svoji diferencijaciju i ostvaruju odbranu posredno ili neposredno. B limfociti deluju
posredno preko svojih glavnih produkata antitela, i obezbeđuju humoralni imuni odgovor. T
limfociti deluju neposredno i obezbeđuju celularni imuni odgovor kada antigen ne dospeva u
kvotok i limfotok (Štajn, 1990).
17
Slika 10. Uporedni prikaz leukocita
Procentulani odnos pojedinih vrsta leukocita u krvi predstavlja leukocitarnu formulu.
Određivanje leukocitarne formule ima veliki značaj u kliničkoj praksi jer se zahvaljujući
promenama unutar leukocitarne formule mogu dijagnostikovati pojedine bolesti. Procentulana
zastupljenost leukocita u perifernoj krvi čoveka je sledeći: Neutrofili 67-70%, Eozinofili 2-4%,
Bazofili 0,5%, Limfociti 25-40%, Monociti 2-6% (Štajn, 1990).
Kod pacova normalna leukocitarna formula izgleda ovako: Neutrofili 9-47%, Eozinofili 0-3%,
Bazofili retko, Limfociti 51-90%, Monociti 0-3% (Rusov, 1984).
Normalan broj leukocita kod odraslog čoveka iznosi 5-8 x 109 /l krvi (Gauyton & Hall, 2003).
Kod pacova ova brojka iznosi 6-10,5 x 109 /l (Rusov, 1984). Privremeno povećanje broja
leukocita iznad normale naziva se leukocitoza i zapaža se posle uzimanja hrane, napornog rada
ili zapaljivih procesa. Bolest praćena velikim i stalnim povećanjem broja leukocita u krvi naziva
se leukemija. Ukoliko dođe do smanjenog broj leukocita od normalnog tada govorimo o
leukopeniji (Štajn, 1990).
Do promene broja pojedinačnih vrsta leukocita takođe može doći usled različitih fizioloških ili
patoloških činioca. Možemo razlikovati sledeće "penije" ili smanjenje broja leukocita:
neutropenije - usled lekova, bakterija; eozinopenije - usled akutnih bakterijskih infekcija, stresa;
bazocitopenije - retke idu sa neutrofilijom; monocitopenije - retke i limfocitopenije - usled
stresnih reakcija, akutnih infekcija, povreda. Ukoliko dolazi do povećanja tada imamo "filije" i
one su sledeće: neutrofilija - infekcije, intoksikacije, metabolicki poremećaji; eozinofilija -
infekcije, alergijske reakcije; bazocitofilija - obično udružena sa eozinofilijom; monocitoza -
parazitarne infekcije i limfocitoza - virusne infekcije, zajedno sa neutropenijom (Rusov, 1984
; Petrović 2009).
Trombociti (krvne pločice) su bezjedarni fragmenti dzinovskih poliploidnih ćelija
megakariocita koji nastaju tokom trombocitopoeze u koštanoj srži. Imaju oblik bikonveksnog
diska prečnika 2-4 μm. Njihova izrazita sklonost ka aglutinaciji omogućava im da učestvuju u
procesu stvaranja krvnog ugruška na mestu oštećenog krvnog suda. Njihov životni vek je od 8
do 14 dana, posle čega se razgrađuju u slezini (Anđelković i sar. , 2002).
Broj trombocita kod normalnih osoba iznosi 150-350 x 109 /l krvi (Gauyton & Hall, 2003).
Kod pacova ova vrednost iznosi 460-1050 x 109 /l (Rusov, 1984). Do povećanog broja
trombocita može doći usled različitih povreda i većeg gubitka krvi i tada govorimo o
trombocitozi. U koliko dolazi do smanjenja broja u odnosu na normalni tada imamo
trombocitopeniju i ona se javlja u raznim patološkim stanjima koja se manifestuju krvarenjem.
Dosadašnja istraživanja
Dosadašnja istraživanja o amoskicilinu i klavulanskoj kiselini uglavnom su se odnosila
na trombocitopeniju. Rezultati su pokazali vezu između trombocitopenije i delovanja
amoksicilina i klavulanske kiseline (Mansour, 2014.).
Takođe, rezultati istraživanja sa eugenolom su pokazali da eugenol primenjivan tokom dve i
četiri nedelje u dozama od 10, 50, 200 i 400 mg/kg tm/dan ne ispoljava hematotoksično,
hepatotoksično niti nefrotoksično dejstvo. Eugenol davan tokom četiri nedelje ne utiče značajno
na broj eritrocita, koncentraciju hemoglobina, hematokrit, zapreminu eritrocita, broja leukocita
i leukocitnu formulu. Primenjivan tokom dve nedelje, prouzrokuje značajno povećanje mase
hemoglobina po eritrocitu. Ovaj efekat je nespecifičan i ne zavisi niti doze, niti od dužine
19
tretmana. Doze eugenola od 10 i 200 mg/kg/dan primenjivane tokom četiri nedelje prouzrokuju
značajno smanjenje broja trombocita, dok najviša ispitivana doza (400 mg/kg/dan) prouzrokuje
značajno povećanje, u poređenju sa brojem trombocita kod pacova tretiranih dozom od 10 i 200
mg/kg/dan. Promene broja trombocita izazvane eugenolom kvalitativno su različite i ne zavise
od doze, niti od dužine tretmana (Jezdimirović, 2013.).
2. Cilj rada
Cilj ovog rada bio je:
1. Određivanje leukocitarne formule
2. Ispitivanje uticaja različitih koncentracija panklava na broj leukocita
3. Ispitivanje uticaja različitih koncentracija panklava na morfometrijske karakteristike
leukocita
21
3. Materijali i metode
3.1 Materijal
U toku eksperimenta je korišćen sledeći materijal:
• Eksperimentane životinje, pacovi soja Wistar
• Krvno tkivo
• Panklav
3.2 Metode
• Pripreme štok rastvora i radnih rastvora
• Tretiranje životinja u konstantnim eksperimentalnim uslovima
• Postupak za dobijanje krvnih elemenata
• Izrada krvnog razmaza i određivanje leukocitarne formule
• Bojenje preparata
• Merenje morfometrijskih karakteristika leukocita
3.2.1.Pripreme štok rastvora i radnih rastvora
Štok rastvor je koncentrovani rastvor od koga se razblaženjem dobijaju radni rastvori manje
koncentracije za izvodjenje eksperimenta. U eksperimentu so koišćeni sledeći štok rastvori:
• Koncentracija 1: 20mg amoksicilina i 2.85mg klavulanske kiseline,
• Koncentracija 2: 40mg amoksicilina i 5.7mg klavulanske kiseline,
• Koncentracija 3: 60mg amoksicilina i 8.55mg klavulanske kiseline,
• Koncentracija 4: 80mg amoksicilina i 11.4mg klavulanske kiseline.
3.2.2. Tretiranje životinja u konstantnim eksperimentalnim uslovima
Eksperimentalne životinje, pacovi soja Wistar, tretirani su 5 dana panklavom u prethodno
navedenim koncentracijama /kg telesne tezine. Ukupno je bilo 5 životinja od kojih su 4 tretirane
i jedna netretirana praćena kao kontrola. Lek je apliciran oralno. Životinje su dozirane sa po 1
ml rastvora određene koncentracije svakog dana u 9h, u trajanju od 7 dana.
Eksperimentalne životinje čuvane su na temperaturi od 22-23 C, sa slobodnim režimom ishrane
i režimom dana od 12:12h svetlost/tama.
3.2.3 Postupak za dobijanje krvnih elemenata
Pribor za uzimanje uzorka krvi mora biti hemijski čist, sterlan i suv. Takođe mora se
pripremiti dovoljna količina injekcionih igli i špriceva. Injekicione igle moraju biti od čelika i
odgovarajuće dužine i promera. U cilju sprečavanja koagulacije igle i špricevi se heparinizuju.
Ukoliko se krv vadi iz vene potrebno je mesto uboda sterilizirati, izvršiti kompresiju vene i
punktirati ogovarajćom sterilnom iglom. Kada se dobije uzorak krvi kompresija vena se prekida
tako sto se komadić čiste vate natopljene alkoholom stavi preko igle i mesta uboda i igla izvuče
naglim pokretom. Korišćena igla se adekvatno odlaze i baca. (Rusov, 1984).
Petog dana od početka tretiranja životinjama je za izračunavanje krvnih elemenata uzeta puna
krv iz srca nakon žrtvovanja i to na sledeći način. Životinja je anestezirana sa 0,4 ml 10%
ketamidorom. Zatim se heparinizovanom iglom i špricem izvrši punktacija leve komore srca.
Tokom vađenja krvi vodi se računa de se ne ošteti komora i da se povremeno zaustavi kako bi
se ona napunila krvlju. Nakon dobijenog uzorka igla se adekvatno odlaže i baca a i iz šprica se
laganim pokretom istisne kap krvi na sahatno staklo za dalju analizu.
3.2.4.Izrada krvnog razmaza i određivanje leukocitarne formule
Potreban pribor: dva predmetna stakla, pipeta, May-Grunwald-ov rastvor, Giemsa
rastvor, stalak za bojenje i sušenje, mikroskop, imerziono ulje.
Način rada:
23
Pipetom nanesemo kap krvi (prečnika 1-2 mm) na početak predmetnog stakla. Drugo brušeno
staklo prislonimo pod uglom od 35 do 45º uz kap kako bi se krv razlila duž ivice prislonjenog
stakla. Zatim se pod određenim pritiskom to staklo bez zadržavanja prevuče preko predmetnog
stakla (Rusov, 1984).
Razmaz se osuši na vazduhu a zatim se boji po Pappenheim-u. Fiksiranje razmaza se dobija
rastvorom May-Grunvald 3-5 min, ispere se mlazom destilovane vode, pa se prelije razblaženim
rastvorom Giemsa i ostavi da stoji 15-30 minuta. Na kraju se boja ispire destilovanom vodom
dok razmaz ne dobije crvenkastu boju.
Uz upotrebu imerzionog ulja i objektiva razmaz se pregleda i na njemu se broje 100 do 200
leukocita pri čemu se beleži svaka vrsta ponaosob. Na osnovu toga izračunava se procentualna
zastupljenost svake vrste leukocita - diferencijalni odnos (Petrović, 2009).
3.2.5 Merenje morfometrijskih karakteristika keukocita
Za merenje morfometrijskih karakteristika koristi se slobodno dostupan softver za
analizu slika ImageJ. Autor softvera ImageJ je Vejn Resband (Wayne Rasband) sa Nacionalnog
Instituta zdravlja Sjedinjenih Američkih Država iz Betesde, država Merilend (Bethesda,
Maryland). ImageJ je dostupan online i kao download aplikacija za sve racunare koji imaju
instaliranu Javu 1.4 ili noviju verziju. U ImagJ-u se radi sa sledećim formatima slika: TIFF,
GIF, JPEG, BMP i DICOM. Omogućena je analiza 8, 16 i 32-bitnih slika uz odgovarajuću
kalibraciju.
Slika 11. Izgled glavnog prozora ImageJ programa
4. Rezultati i diskusija
4.1. Ispitivanje uticaja različitih koncentracija panklava na broj krvnih ćelija kod pacova
Nakon završenog tretiranja životinja različitim koncentracijama panklava, i uzimanja
krvi na ranije opisan način, izbrojane su ćelije leukocita i dobijene su sledeće vrednosti
prikazane u Tabeli 1.:
Tabela 1. Broj leukocita u perifernoj krvi životinja tretiranih različitim koncentracijama panklava
Koncentarcina panklava Limfociti SV±SD
Bazofili SV±SD
Eozinofili SV±SD
Neutrofili SV±SD
Monociti SV±SD
Kontrola 74±28.284 22.5±27.577 4.5±2.121 65±42.426 10±0
25% 76±24.042 7±2.828 6±1.414 86±57.983 7.5±2.121
50% 141±8.485 1.5±0.707 2.5±0.707 75.5±37.477 3±1.414
75% 67.5±4.962 3±1.414 1.5±0.707 60.5±28.991 7±1.414
100% 116±22.627 3.50±2.121 1±1.414 89±43.841 5±2.828
* Broj ćelija po krvnom razmazu
Broj limfocita kreće se od 74±28.284 kod kontrolne grupe. Najveći broj limfocita zapaža se
kod jedinki tretiranih koncentracijom panklava 50% i kreće se od 141±8.485 i kod jedinki
tretiranih koncentracijom 100% gde se brojnost kreće 116±22.627 (Tabela 1.). I kod ostalih
koncentracija se zapaža povećanje broja limfocita, osim kod grupe tretirane sa 75% gde se
zapaža manji broj limfocita u poređenju sa kontrolom I ostalim tretiranim jedinkama. Limfociti
u krvi pacova cine 51-90% od ukupnog broja leukocita. Povećanje broja limfocita, tj.
limfocitoza, prisutna je prilikom tretmana lekovima.
Broj bazofila je najviši kod kontolne jedinke I kreće se od 22.5±27.577. Kod svih ostalih
životinja tretiranih različitim koncentracijama panklava je smanjen broj bazofila. Zaključuje se
da različite koncentracije panklava utiču na smanjenje broja bazofila. Pošto su bazofilni
granulociti uključeni u trenutne alegrijske reakcije, može se pretpostvaiti da aktivne supstance
panklava tokom tretmana od nekoliko dana utiču na smanjenje alegrijskog potencijala.
Broj eozinofila kod kontrolne grupe kreće se od 4,5±2.121. Kod svih ostalih koncentracija je
manji broj eozinofila, jedino je veći kod koncentracije 25% i kreće se od 6±1.414. Eozinopenija
25
je pojava smanjenog broja eozinofila u odnosu na normalne vrednosti. Povećanjem doze
panklava uočeno je postepeno smanjivanje broja eozinofila. Eozinofili učestvuju u ukupnu
brojnost leukocita pacova sa 0-3% (kod čoveka 2-4%), međutim, iako je mala brojnost, zapaža
se dodatno smanjenje brojnosti sa većom dozom panklava.
Broj neutrofila kod kontrolne grupe kreće se od 65±42.426. Kod svih tretiranih grupa je veći
broj neutrofila, jedino je neznatno manji broj kod koncentracije od 75% I kreće se 60.5±28.991.
Neutrofili su najbrojniji od svih vrsta leukocita i predstavljaju prvi odgovor organizma na
infekciju kada dolazi do povećanja njihovog broja. Neutrofilija (povećan broj neutrofila u
odnosu na normalne vrednosti) se javlja usled različitih bolesti, kao odgovor imunog sistema,
ali, takođe i usled primene raznih lekova, u ovom slučaju različitih koncentracija panklava.
Broj monocita kod kontrole kreće se od 10±0. Kod svih tretiranih jedinki zapaža se opadanje
broja monocita. Monocitopenija (smanjen broj monocita u odnosu na normalne vrednosti) se
može javiti kao posledica delovanja lekova i toksičnih materija. Monociti predstavljaju prvu
liniju odbrane u tkivima protiv infekcija. Kod svih životinja tretiranih različitim
koncentracijama panklava se zapaža smanjen broj što je verovatno posledica primene paklava.
Grafikon 1. Analiza varijanse uticaja panklava različitih koncentracija na broj limfocita
Least Squares Means
Kon
trola
25%
50%
75%
100%
Koncentracija
4
54
104
154
204
Lim
fociti
Tabela 2. Uticaj različitih koncentracija panklava na broj limfocita u perifernoj krvi.
Statistička značajnost između različitih koncentracija
* Jednofaktorska analiza varijansi; p≤0,05
Analizom varijanse (ANOVA) uticaja panklava različitih koncentracija na broj limfocita
dobijeno je da nema statističke značajnosti u uticaju različitih koncentracija panklava na broj
limfocita (Tabela 2.).
Grafikon 2. Analiza varijanse uticaja različitih koncentracija panklava na broj bazofila
Source Type III SS df Mean Squares F-Ratio p-Value
Koncentracija 8,230.400 4 2,057.600 2.525 0.169
Error 4,074.500 5 814.900
Analysis of Variance
Least Squares Means
Kon
trola
25%
50%
75%
100%
Koncentracija
-24.0
-9.8
4.4
18.6
32.8
47.0
Ba
zo
fili
27
Tabela 3. Uticaj različitih koncentracija panklava na broj bazofila u perifernoj krvi. Statistička
značajnost između različitih koncentracija
Analysis of Variance
Source Type III SS df Mean Squares F-Ratio p-Value
Koncentracija 595.000 4 148.750 0.959 0.502
Error 775.500 5 155.100
Analizom varijanse (ANOVA) uticaja panklava na broj bazofila dobijeno je da nema statističke
značajnosti u uticaju različitih koncentracija panklava na broj bazofila (Tabela 3.).
Grafikon 3. Analiza varijanse uticaja različitih koncentracija panklava na broj eozinofila
Least Squares Means
Kon
trola
25%
50%
75%
100%
Koncentracija
-3
1
5
9
Eo
zin
ofil
i
Tabela 4. Uticaj različitih koncentracija panklava na broj eozinofila u perifernoj krvi. Statistička
značajnost između različitih koncentracija
df Mean Squares F-Ratio p-Value
4 8.850 4.658 0.061
5 1.900
Analiza varijanse pokazuje da panklav nema statistički značajne efekte na broj eozinofila u
perifernoj krvi kod tretiranih životinja. (Tabela 4.).
Grafikon 4. Analiza varijanse uticaja različitih koncentracija panklava na broj neutrofila
Least Squares Means
Kon
trola
25%
50%
75%
100%
Koncentracija
-27.0
23.5
74.0
124.5
175.0
Ne
utr
ofil
i
29
Tabela 5. Uticaj različitih koncentracija panklava na broj neutrofila u perifernoj krvi.
Statistička značajnost između različitih koncentracija
df Mean Squares F-Ratio p-Value
4 313.650 0.168 0.946
5 1,865.800
Analizom varijanse uticaja panklava na broj neutrofila dobijeno je da nema statističke
značajnosti u uticaju različitih koncentracija panklava na broj neutrofila (Tabela 5.).
Grafikon 5. Analiza varijanse uticaja različitih koncentracija panklava na broj monocita
Least Squares Means
Kon
trola
25%
50%
75%
100%
Koncentracija
-2
2
6
10
14
Mo
no
citi
Tabela 6. Uticaj različitih koncentracija panklava na broj monocita u perifernoj krvi.
Statistička značajnost između različitih koncentracija
df Mean Squares F-Ratio p-Value
4 14.000 4.242 0.072
5 3.300
Analizom varijanse uticaja različitih koncentracija panklava na broj monocita dobijeno je da
postoji statistička značajnost u uticaju različitih koncentracija panklava na broj monocita jer se
broj monocita smanjuje kod svih tretiranih životinja (Tabela 6.).
Slika 12. Krvni razmaz leukocita (x400, May-Greenwald- Giemsa)
Slika 13. Krvni razmaz leukocita sa prikazom neutrofila (x400, May-Greenwald-Giemsa)
31
Slika 14. Krvni razmaz leukocita kontrolne jedinke (x400, May-Greenwald, Giemsa)
4.2. Ispitivanje uticaja različitih koncentracija panklava na morfometrijske karakteristike
leukocita
Kako bi se utvrdio uticaj panklava na morfologiju ćelija leukocita, izmeren je prečnik
ćelija i površina ćelija leukocita kod životinja tretiranih različitim koncentracijama panklava
kao i kod kontrolne jedinke.
Program ImageJ podržava standardne funkcije obrade slike, ali obezbeđuje i određivanje raznih
morfometrijskih pokazatelja objekta, kao što su površina (area), obim, faktor oblika, i slično.
Može meriti udaljenosti i uglove, dakle daje topološke odnose između označenih objekata, pa
smo ovaj program i upotrebili za određivanje dijametra jedara hepatocita. Programom ImageJ
mogu se obavljati transformacije slika kao što su rotacije i skaliranja. Slika se može povećati
do 32:1, a smanjiti do 1:32. Sve analize i funkcije obrade su dostupne na bilo kojem faktoru
uvećanja (Vasiljević, 2012).
Nakon podešene kalibracije, parametara i jedinice za meru dobijene su sledeće vrednosti
traženih parametara:
Tabela 7. Prečnik ćelija bele loze u perifernoj krvi
Koncentracija Kontrola 25% 50% 75% 100%
Prečnik ćelija
(µm) 6.102±0.864 5.404±0.684 5.540±0.478 5.842±0.824 5.270±0.577
Prečnik ćelija leukocita je najveći kod jedinke kontrola i kreće se 6.102±0.864. Najveći prečnik
je kod kontrole i on iznosi 6.102±0.864 µm, a najmanji prečnik imaju leukociti kod životinja
koje su tretirane koncentracijom od 100% panklava i on iznosi 5.270±0.577 µm. Kod svih
ostalih tretiranih životinja je neznatno manji. Dakle, uticaj panklava dovodi do malih promena
u prečniku ćelija leukocita. Ova promena se može objasniti promenom osmolarnosti i tonicitetu
kako u krvnoj plazmi tako i u samim ćelijama.
33
Grafikon 6. Uticaj razlicitih koncentracija panklava na prečnik ćelija leukocita
Tabela 8. Uticaj različitih koncentracija panklava na prečnik leukocita u perifernoj krvi.
Statistička značajnost između različitih koncentracija
Analysis of Variance
Source Type III SS df Mean Squares F-Ratio p-Value
Koncentracija 1.825 4 0.456 0.929 0.473
Error 7.367 15 0.491
Analizom varijanse uticaja različitih koncentracija panklava na prečnik ćelija leukocita došlo
se do zaključka da nema statističke značajnosti.
Least Squares Means
Kon
trola
25%
50%
75%
100%
Koncentracija
2
4
6
8
Pre
cn
ik c
elij
a
Tabela 9. Uticaj različitih koncentracija panklava na površinu leukocita u perifernoj krvi. Statistička
značajnost između različitih koncentracija
Površina ćelija leukocita kod kontrolne jedinke iznosi 29.665±8.228. Kod svih ostalih
koncentracija je manja površina u odnosu na kontrolu, najmanje zabeležena površina je kod
jedinke tretirane sa 100% štok rastvorom i iznosi 21.998±4.788.
Grafikon 7. Uticaj različitih koncentracija panklava na površinu ćelija leukocita
Koncentracija Kontrola 25% 50% 75% 100%
Površina ćelija 29.665±8.228 23.195±5.601 24.225±4.057 27.183±7.58921.998±4.788
Least Squares Means
Kon
trola
25%
50%
75%
100%
Koncentracija
11
18
25
32
39
Po
vrš
ina
ce
lija
35
Tabela 10. Uticaj različitih koncentracija panklava na površinu leukocita u perifernoj krvi.
Statistička značajnost između različitih koncentracija
Analysis of Variance
Source Type III SS df Mean Squares F-Ratio p-Value
Koncentracija 156.317 4 39.079 0.997 0.440
Error 588.144 15 39.210
Analizom varijanse uticaja različitih koncentracija panklava na površinu leukocita došlo se do
zaključka da nema statističke značajnosti.
5. Zaključak:
U toku ovog istraživanja, na osnovu dobijenih rezultata, došlo se do sledećih zaključaka:
• Broj limfocita kreće se od 74±28.284 kod kontrolne grupe. Najveći broj limfocita
zapaža se kod jedinke tretirane koncentracijom panklava 50% i kreće se od 141±8.485.
I kod ostalih koncentracija se zapaža povećanje broja limfocita. Analiza varijanse
pokazuje da nema statističke značajnosti.
• Broj bazofila je najviši kod kontolne jedinke I kreće se od 22.5±27.577. Kod svih ostalih
životinja tretiranih različitim koncentracijama panklava je smanjen broj bazofila.
Zaključuje se da različite koncentracije panklava utiču na smanjenje broja bazofila.
Analiza varijanse pokazuje da nema statističke značajnosti.
• Broj eozinofila kod kontrolne grupe kreće se od 4.5±2.121. Kod svih ostalih
koncentracija je manji broj eozinofila, jedino je veći kod koncentracije 25% i kreće se
od 6±1.414. Analiza varijanse pokazuje da nema statističke značajnosti.
• Broj neutrofila kod kontrolne grupe kreće se od 65±42.426. Kod svih tretiranih grupa je
veći broj neutrofila, jedino je neznatno manji broj kod koncentracije od 75% i kreće se
60.5±28.991. Analiza varijanse pokazuje da nema statističke značajnosti.
• Broj monocita kod kontrole kreće se od 10±0. Kod svih tretiranih jedinki zapaža se
opadanje broja monocita. Ovo je jedina grupa leukocita gde postoji statistička
značajnost dobijena analizom varijansi različitih koncentracija panklava.
• Uticaj panklava neznatno utiče na prečnik ćelija leukocita, pokazan je smanjen prečnik
leukocita u odnosu na kontrolnu jedinku.
• Površina ćelija leukocita kod kontrolne jedinke iznosi 29.665±8.228. Uticaj panklava
neznatno utiče na površinu ćelija leukocita, pokazana je smanjena površina leukocita u
odnosu na kontrolnu jedinku.
37
6. Literatura
Andrašević, S,. Vranić-Ladavac, M., Tambić-Andrašević, A., 2009: Osjetljivost
enterobakterija na antibiotike, Zagreb.
Anđelković, Z., et al., 2002: Ćelija i tkiva – Bonafides.
Gauyton, AC., Hall, E.J., 2003: Medicinska fiziologija - Savremena administracija, Beograd.
Grozdanović-Radovanović, J.,2000: Citologija, ZUNS, Beograd.
http://www.biology.iastate.edu/Courses/Leon/212L%20Docs/Using%20ImageJ.pdf
https://www.alims.gov.rs/wp-content/blogs.dir/2/files/lekovi/pil/1153-2008-12.pdf
Jezdimirović, M., Aleksić, N., Milovanović, M., Stojanović, D., Jezdimirović, N., 2013:Uticaj
produžene peroralne primene eugenola na hematološke i neke biohemijske parametre krvi kod
pacova-Veterinarski žurnal Republike Srpske, broj 2, Banja Luka.
Katzung, B., 2004: Basic and clinical pharmacology. - Lange medical book, Ninth edition,
United States.
Labar, B., Hauptman, E. i dr., 2007: Hematologija. - Školska knjiga, poglavlje 24, Zagreb.
Mansour, H., Saad, A., Azar, M., Khouery, P., 2014: Case report, Amoxicilin/Clavulanic Acid
Induced trombocitopenia.
Petrovic, M., Dopsaj, V., & Rajic, M., 2009: Laboratorijska hematologija. – Farmaceutski
fakultet, Drugo dopunjeno izdanje, Beograd.
Rusov, C., 1984: Osnovi hematologije životinja. - Naucna knjiga, Beograd.
Štajn, A., Tikić, R.,1990: Vežbe iz fiziologije životinja - Prirodnomatematićki, Kragujevac
Ten Berg M, Huisman A, Souverein P, et al. Drug-induced thrombocytopenia. Drug Saf.
2006;29:713-721.
Varagić, V., Milošević, M., 2005: Farmakologija - Elita Medica, Beograd
ПРИРОДНO - MАТЕМАТИЧКИ ФАКУЛТЕТ
НИШ
КЉУЧНА ДОКУМЕНТАЦИЈСКА ИНФОРМАЦИЈА
Редни број, РБР:
Идентификациони број, ИБР:
Тип документације, ТД: монографска
Тип записа, ТЗ: текстуални / графички
Врста рада, ВР: мастер рад
Аутор, АУ: Драгана Митровић
Ментор, МН: Перица Васиљевић
Наслов рада, НР: Утицај панклава на број леукоцита у периферној крви
пацова соја Вистар
Језик публикације, ЈП: српски
Језик извода, ЈИ: енглески
Земља публиковања, ЗП: Р. Србија
Уже географско подручје, УГП: Р. Србија
Година, ГО: 2018
Издавач, ИЗ: ауторски репринт
Место и адреса, МА: Ниш, Вишеградска 33.
Физички опис рада, ФО: (поглавља/страна/цитата/табела/слика/графика/прилога)
38 стр.
Научна област, НО: биологија
Научна дисциплина, НД:
Предметна одредница/Кључне речи, ПО:
УДК
Чува се, ЧУ: библиотека
Важна напомена, ВН:
Извод, ИЗ:
Датум прихватања теме, ДП:
Датум одбране, ДО:
Чланови комисије,
КО:
Председник:
Члан: Члан, ментор:
39
ПРИРОДНО - МАТЕМАТИЧКИ ФАКУЛТЕТ
НИШ
KEY WORDS DOCUMENTATION
Accession number, ANO:
Identification number, INO:
Document type, DT: monograph
Type of record, TR: textual / graphic
Contents code, CC: master thesis
Author, AU: Dragana Mitrović
Mentor, MN: Perica Vasiljević
Title, TI:
Language of text, LT: serbian
Language of abstract, LA: english
Country of publication, CP: Republic of Serbia
Locality of publication, LP: Serbia
Publication year, PY: 2018
Publisher, PB: author’s reprint
Publication place, PP: Niš, Višegradska 33.
Physical description, PD:
(chapters/pages/ref./tables/pictures/graphs/appendixes)
38 p.
Scientific field, SF: biology
Scientific discipline, SD:
Subject/Key words, S/KW: tortoise
UC
Holding data, HD: library
Note, N:
Abstract, AB:
Accepted by the Scientific Board on, ASB:
Defended on, DE:
Defended Board, DB: President:
Member:
Member, Mentor: