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STRONGILOIDIASIS

ESTUDIO t::OMPARATIVOENTRE EL EXAMEN DIREt::TO DE HEt::ES

y EL DE t::ONt::ENTRAt::IONDE BAERMANN MODIFIt::ADO (*)

Hernando Rocha Posada **,

Por

Jaime Saravia Gómez ***

e

Isabel Pérez Velásquez ****

INTRODUCCION

Los nemátodos de la familia Stron:gyloide«, superfamilia Rbabditoidea, es-tán caracterizados por tener parásitosrabditoides de vida libre y formas fila-riformes infectan tes. Aunque el Stron-gyloides stercoralis es la única especiepatógena reconocida para el hombre,el Strongyloides fulleborni, parásito delos monos, ha sido informado ocasional-mente como parásito en soldados ame-ricanos en el Suroeste del Pacífico.Otras larvas rabditoideas se comportancomo pseudoparásitos o parásitos delhombre. La Heterodera radicícola, dela familia Anguillulinidae, es una espe-cie propia de los vegetales que se deno-mina Oxyurus incógnito, cuando sus

* Trabajo realizado en la Unidad de Ble-patología. Departamento de MedicinaInterna. Universidad Nacional.*. Instructor de Medicina. Director de laUnidad de Biopatología.

*** Instructor de Medicina. Director de laUnidad de Biopatología.*.*. Licenciada en Bacteriología. PontificiaUniversidad Javeriana. Bogotá.

huevos son demostrados en las hecesfecales. Cuatro especies más de la fa-milia Rbabditidae se han hallado en elhombre y son probablemente contami-nantes accidentales: Rhabditis pellio enla vagina, Rhabditis niellyi en la piel,Rhabditis hominis en las heces y Tur-batix aceti en la vagina,

El Strongyloides stercoralis fue ob-servado por primera vez en 1876 porN ormand en las heces diarreicas desoldados franceses provenientes de laCochinchina. Posteriormente (1900-1914) se describió la penetración de lahembra en la pared intestinal y la in-vasión larvaria. En 1932 Kreis demos-tró el parásito en perros y probó queel huevo no era patógeno. Finalmente,Fullerborn en 1926 comprueba la au-toinfección a través de la piel.

La infección producida por elStrongyloides stercoralis, conocida co-mo estrongiloidiasis, es uno de los pa-rasitismos intestinales de importanciaen nuestro medio, 'pero al cual no se

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le ha prestado la suficiente atención,ya que afecta, en algunos lugares, unalto porcentaje de la población colom-biana. Es bien sabido que las larvaspenetran muy fácilmente al organismohumano, y una vez en él desarrollanlas formas adultas del parásito, cuyapersistencia en el individuo puede sermuy prolongada debido a los mecanis-mos de autoinfección; se han vistocasos de actividad parasitaria por másde veinte años (7). El hombre es elprincipal huésped del parásito, aunquese haya parasitado permanentemente aperros y temporalmente a gatos. Des-pués de vivir en el huésped, la larvarabditoide de vida libre se transformaen larva filarioide infectante medianteciclo directo o indirecto. En la formadirecta simplemente la larva rabditoidese transforma en filarioide infectan te ..En la forma indirecta, las larvas rab-ditoides se diferencian en machos yhembras de vida libre que, luégo de lafertilización, producen 60 o más hue-vos que desarrollan larvas rabditoides,las que a su vez se transforman enunos días en filariformes o strongyloi-des infectantes, penetrando en el hués-ped a través de la piel, particularmenteen las extremidades inferiores, aunquepueden hacerlo por las superiores. En24 horas, por lo general, pasan altorrente sanguíneo, llegan al corazónderecho y de allí a los pulmones, don-de penetran en los alvéolos (ocasional-mente atraviesan la barrera pulmonary por la circulación arterial llegan aotros territorios orgánicos). De lospulmones los parásitos adolescentes as-cienden por la' tráquea hasta la glotis,luégo son deglutidos, llegando así alintestino delgado, especialmente partealta del yeyuno) y el duodeno, en dondepenetran en la mucosa para hacerseadultos. La hembra llega a la madureze inicia la ovoposición, luégo de aproxi-madamente 28 días de la infeccióninicial; los huevos depositados en lamucosa, con larvas rabditoideas en suinterior, se abren paso hacia la luz in-

testinal, en donde dan salida a la larvaque reiniciará el ciclo.

La Estrongiloidiasis, Anguiluliasis odiarrea de la Cochinchina, prevaleceen países tropicales y subtropicales,superponiéndose su distribución, por logeneral, a la de la Uncinariasis, por serlas condiciones evolutivas del parásitoanálogas a las del Ancylostoma doude:nale y Necator americanus,

La estrongiloidiasis intestinal se pue-de sospechar clínicamente por la dia-rrea persistente, frecuentemente congran cantidad de moco, acompañadade epigastralgia intensa y eosinofiliaacentuada. La acción patógena delStrongyloides stercoralis se manifiestaa través de alteraciones de naturalezamecánica, traumática, irritativa y pro-bablemente de orden tóxico y alérgico,que de acuerdo COn la evolución delciclo del parásito pueden ser tegumen-tarias, broncopulmonares, intestinalesy eventualmente de otros órganos, co-mo consecuencia de localizaciones atí-picas (5).

Clínica y patológicamente la Es-trongiloidiasis reconoce tres estadios:a) Invasión de la piel con dermatitisde corta duración, a veces acompañadade intenso vómito, fiebre transitoria,cefalea, malestar y ocasionalmente ur-ticaria; b) Migración de la larva, lacual produce trastornos fundamental-mente pulmonares, y c) Invasión dela mucosa intestinal con trastornosdiarreicos, náuseas, vómito, dolor ab-dominal y profunda laxitud. Su pro-nóstico es favorable, excepto en loscasos de autoinfección (externa o in-terna) y parasitación masiva, condi-ciones éstas conducentes a variadossíndromes clínicos e inclusive a lamuerte.

Técnicas empleadas para el diagnós-tico de la estrongiloidasis. - Algunasveces las larvas se encuentran al exa-men directo en fresco, pero esto nosuele dar un dato muy exacto, pues enocasiones pueden presentarse falsos ne-

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gativos; se requiere para obtener re-sultados positivos, que el parasitismosea muy abundante o que el examense repita varias veces; por esto en lamayoría de los casos es necesario re-currir a los exámenes por concentra-ción, centrifugación, intubación duo-denal, gastroacidogramas, estudios ra-diológicos, rectosigmoidoscopia, testcutáneo y cultivo.

Dentro de éstos, los más utilizadoshan sido: la intubación duodenal, quees un método muy seguro, pero quetiene el grave inconveniente de la mo-lestia que se ocasiona al paciente conel paso de la sonda, y fuera de esto serequiere de un tiempo prolongado parapracticarlo.

El cultivo: también un método se-guro y exacto, pero sumamente dispen-dioso y además de costo muy elevado ..

El gastroacidograma, según algunosautores como Pereira Lima (8), puedemostrar una hipercloridia, dato que nopuede considerarse como específico.

Desde el siglo pasado, Lutz y Leich-tenstern propusieron sus métodos cuan-titativos de dilución. Posteriormente,Loos en 1911, reunió estos métodostratando de encontrar mejores resulta-dos. Stoll, en 1923, propuso su méto-do cuantitativo, también de dilución.En 1908, Teleman utilizó por primeravez la centrifugación para realizarexámenes parasitológicos, y Bass, fun-dado en esto, empleó CaCh para pro-vocar la flotación de los elementos porobservar. Faust y col. utilizaronS04Zn al 33% para aumentar la den-sidad del líquido, y Ferreira y Abreu,basados en el método de Faust, intro-dujeron innovaciones de esta técnicaque resultaron de positivo interés en larecolección de quistes y huevos,

Debido a estas contribuciones, se hallegado al conocimiento actual de losdiversos métodos parasitológicos, loscuales pueden ser cuantitativos y cua-litativos. Los cuantitativos pueden ser:por concentración o por dilución; los

de concentración, a su vez, se dividenen métodos por flotación y por sedi-mentación. Los métodos cualitativosse subdividen en la misma forma quelos an teriores y sus técnicas sirven debase a los métodos cuantitativos, conla salvedad de que en ellos la cantidadde materia fecal no se toma en cuenta.

La concentración se puede llevar acabo por:

a) Técnicas que utilizan el contactodirecto de las heces Con el agua. Con-siste fundamentalmente en colocar lasheces en contacto directo con el aguay encontrar las larvas que migran, de-bido a su hidrotropismo positivo.

b) Técnicas que emplean un embu-do. Consiste en que las heces son colo-cadas sobre un pedazo de tela metálicay ésta adaptada sobre un embudo, co-nectado a un tubo de plástico o decaucho, el cual va cerrado por unapinza de Mohr; en este embudo se co-loca agua hasta una altura en que lasheces queden parcialmente cubiertas.

c) Técnicas que emplean copa có-nica: esta técnica fue descrita comonueva por Rugai, Matos y Brisola; estavariante ya había sido utilizada porBrug. Este autor aconsejaba colocar 10gms. de las heces sobre un pedazo depaño, hacer un amarrado y suspender-lo en agua contenida en una copa có-nica. Después de un período de extrac-ción de 60 a 90 minutos, las larvasson recogidas del fondo de la copa conel auxilio de una pipeta, y examinadasentre lámina y laminilla. Esta técnicafue ignorada por la generalidad de losinvestigadores y laboratoristas; sin em-bargo, Bijlmer (cit. 2), la había uti-lizado extensamente en Holanda parael diagnóstico de estrongiloidiasis. Esteautor la recomienda como muy eficaz.Chandler también aconseja el métodode Brug para extracción de larvas enlas heces.

La centrifugación puede ser de va-rias clases:

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a) Una centrifugación simple.b) Utilizando la diferencia de den-

sidad. Consiste en una doble centrifu-gación de las materias fecales, previa-mente diluídas en agua, y sin tritu-rarlas; luégo se retira el sobrenadantey el sedimento se diluye de nuevo enuna solución de Cl2Ca de densidad1:200. Los huevos se encuentran en lasuperficie del l iquido,

c) Centrifugación y flotación consolución de sulfato de zinc, siguiendola técnica de Faust y col.

Con frecuencia el médico desconocelos métodos cuantitativos que le per-miten tener un índice, en la valoraciónde la sintomatología y el tratamientode las enfermedades parasitarias; esteconocimiento es de vital interés, yaque los diversos cuadros clínicos quepresentan los pacientes parasitados es-tarán en función directa de la canti-dad y especie de parásitos que albergan.

Historia de la técnica. - Loos, en1911, presenta un método para el ais-lamiento de larvas y de anquilostomas(ancilostomídeos) que tiene por baseel hidrotropismo positivo de los mis-mos, y que viene a complementar elmétodo propuesto por Leichtensternen 1890; este autor hacía coproculti-vos con carbón animal y procedía lué-go a la extracción de las larvas.

En 1917, Baermann emplea un em-budo adaptado a un tubo plástico ode caucho, cerrado con una pinza deMohr y al que se le agrega agua hastauna altura en que las heces quedenparcialmente cubiertas. Sanground fueel que utilizó aparentemente por pri-mera vez este método para la extrac-ción de larvas de Strongyloides sterco-rciis, Este autor aconsejaba mezclar he-ces con carbón y dejarlas durante 27a 30 horas a temperatura ambiente,luégo de lo cual hacía la extracción delas larvas colocando el cultivo sobreun trozo de algodón en rama, cogidoen los bordes de un embudo de Baer-

mann lleno de agua, a una temperatu-ra de 40-42°C. (cit. 1).

Posteriormente han sido introduci-das nuevas modificaciones a la técnicacomo son las de Lee, Moraes, Cou-tinho, Call1POSY Amato y la de Ferrio-lli Filho.

A pesar de las ventajas que puedenproporcionar las otras técnicas, se uti-lizó para el presente trabajo la deBaermann, modificada por Coutinho-Campos y Amato Neto, por su facili-dad de ejecución (9).

Objetivos de trabajo.

1. Buscar la incidencia de la infec-ción por Strongyloides stercoralis enun grupo de población no seleccionado,como es el que corresponde a pacienteshospitalizados en el Servicio de Medi-cina Interna del Hospital de San Juande Dios de Bogotá.

2. Conocer la incidencia del parasi-tismo, tanto en el sexo masculino co-mo en el femenino.

3. Establecer los resultados compa-rativos entre la positividad del examendirecto en fresco y la técnica de laconcen tración.

4. Observar en forma comparativala distribución del número de larvasencontradas al examen directo y lashalladas por la técnica de concentra-ción.

Material y métodos. - Fueron estu-diadas parasitológicamente las hecesfecales de 1.000 pacientes adultos,hospitalizados en el Servicio de Medi-cina Interna del Hospital de San Juande Dios de Bogotá, con el fin de eva-luar los resultados obtenidos medianteel empleo de dos técnicas parasitológi-cas diferentes.

La materia fecal obtenida en las ho-ras de la mañana, sin uso de laxantes,fue recogida en cajas de cartón y pro-cesada de inmediato. A cada muestrase le practicó un estudio parasitoscópi-

STRONGILOIDIASIS ISI

co directo en solución salina y Lugol,simultáneamente con e! método deconcentración de Baermann. N o juz-gamos prudente guardar especimenesen la nevera, ya que las experienciasde Ferriolli, Kreis, Gaillard y Cordi,demuestran pérdida de la vitalidad yfranca disminución del número de lar-vas a temperaturas menores de 8oC.

Estudio parasitoscópico directo. Conun palillo se tomó una pequeña mues-tra de materia fecal, de! tamaño de ungrano de arroz, y se disolvió conve-nientemente en una gota de soluciónsalina colocada sobre una lámina biendesengrasada. La preparación se cubriócon una laminilla de 22 X 22 Y seobservó inicialmente con objetivo secodébil y luégo objetivo seco fuerte,examinando la totalidad de la misma.Procedimiento similar se siguió, utili-zando una gota de solución de Lugol.Cuando las preparaciones se mostraron

positivas para larvas, se procedió acontar el total en la preparación y asu identificación.

Método de concentración de Baer-mann (modificado por Coutinho ycol., 1951) .-Sobre un soporte ade-cuado se coloca un embudo de vidrioo plástico transparente que tenga undiámetro de 10-12 cms., al cual se leune un tubo de caucho que terminaráen una punta de pipeta. Este sistemase mantiene cerrado mediante e! usode una pinza de Hoffman o un equi-valente. Sobre el embudo se acopla de-bidamente una malla metálica, y enci-ma de ésta se colocan 8-10 grs. deheces fecales, recientemente emitidas,protegidas por debajo con una gasadoblada en cuatro, (Figura 1). Sevierte luégo agua a una temperaturade 40-42 oc., de modo que las hecesqueden parcialmente sumergidas; alcabo de 60 minutos, las larvas exis-

Figura No. 1


tentes en el material pasan al agua,estimuladas por un termo e hidrotro-pismo positivo, acumulándose en laparte inferior del tubo de caucho. Seabre la pinza sobre un vidrio de reloj,dejando escapar 3-5 c.c. del agua co-lectada, la cual se deja en reposo unosminutos con el fin de que las larvasse acumulen en la parte central del re-cipiente. Luégo al microscopio ento-mológico, o bien con la lupa u obierivoseco débil del microscopio común, sehace el estudio y recuento de las lar-vas. Si las heces son pastosas o muyblandas, la gasa podrá ser doblada enmayor número de veces, y cuando sonlíquidas, en general son poco adecua-das para estudio por este procedi-miento.

N o deben ser examinadas heces fe-cales que permanezcan a la temperatu-ra ambiente por un período de tiemposuperior a 24 horas y aun menos, asícomo el material de individuos que su-fren de constipación intestinal perti-naz, por la posibilidad de que las larvasencontradas sean rabditoides o filarioi-

des de Ancylostomideo y no de Stron-gyloides stercoralis, En virtud de talhecho, hemos confirmado siempre mi-croscópicamente todos los casos posi-tivos colorándolos con solución deLugol.

Identificación de las larvas. (Esque-mas 1-2 y 3). El primer estadio lar-vario se denomina rabditoide, debidoa la morfolog ia de su esófago, el cualocupa el tercio anterior de la larva yestá dividido en tres porciones: unaanterior fusiforme, una intermedia afi-lada, y finalmente un bulbo esofágicoglobuloso. Cuando se examina la larvasin coloración, las estructuras internasson poco visibles, pero con el agregadode solución de Lugol es posible recono-cer: a) El vestíbulo bucal corto (pe-queño canal que va desde la extremi-dad anterior hacia la iniciación del esó-fago); b) El esófago rabditoide des-crito; c ) El "prirnordio genital", re-presentado por una agrupación celularde forma ovoide, situado en la unióndel tercio medio con el posterior, biencercano a una de las paredes laterales.

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Las larvas rabditoides evolucionanen 24 horas (aun en menos tiempo enlos países cálidos) a larvas filarioides,transformación que puede ocurrir tan-to dentro del intestino como en el me-dio exterior. Estas larvas son más finasque las rabditoides y su esófago esfino, largo y sin divisiones, manrenien-

do el mismo aspecto en toda su ex ten-sión, La extremidad posterior tiene elaspecto de un cono truncado y un pe-queño entalle visible. Sus movimientosson muy activos.

Identificada la larva en rabditoideo filarioide, es necesario saber si corres-ponde a Strongyloides stercoralis o a


un Ancylostomídeo. Las larvas rabdi-toides del primero poseen un vestíbulobucal corto y un primordio genitalbien visible, en tanto que las larvas deAncylostomídeo tienen el vestíbulolargo y el primordio genital poco apa-rente.

Las larvas filarioides de Strongyloi-des poseen la extremidad caudal sep-tada por un entalle, mientras que lasde Ancylostomídeo terminan en unapunta nítida y muy afilada.

Resultados.

Los resultados que transcribimos sebasan en el estudio de 1.000 pacientesno seleccionados y que por lo tanto nopresentaban trastornos que hicieranpensar en la enfermedad. De los casosestudiados, 614 (61.4%) correspon-dieron al sexo femenino y 386 (38.6%)al masculino. En 91 casos (9.1 %) sedemostró la presencia de larvas deStrongyloides stercoralis en proporcio-nes más o menos semejantes, tanto pa-ra el hombre como para la mujer: 43(47.3 %) y 48 (52.7%) respectiva-mente. (Cuadro 1).

Los resultados comparativos de losdos métodos, así como el recuento delarvas halladas en cada uno, son muysignificativos. No se halló ningún ca-so en el cual al examen directo fuerapositivo y a la concentración negativa.En 22 casos (24.1 %) los dos exáme-nes fueron positivos y' en 69 (75.9%)el examen directo fue negativo y laconcentración positiva. (Cuadro 11).El recuento de larvas sobre el total decasos positivos mostró de 1 a 5 larvasen 47.2%, de 6 a 10 en 34% y supe-rior a los elementos en el 18.6%. Enaquellos casos en los cuales el examendirecto y la concentración fueron po-sitivos, pudimos apreciar que en la ma-yoría de ellos (95.4 %) el examen pa-rasitoscópico directo demostró muyescaso número de larvas (1- 5) en lapreparación, 4.5 % tenían entre 6 y

10, no habiéndose hallado ningún casocon larvas incontables. Por el con-trario, al examen por concentración,el mayor número de preparaciones,(68.1 %) demostró tan abundantecantidad de larvas que fue imposiblecontarlas; en el 22.7% estaban pre-sentes más de 6 larvas y sólo en el9.9% el número no sobrepasó los 5 ele-mentos. (Cuadro III).

Finalmente, en los 69 casos en loscuales el examen directo fue negativoy la concentración positiva, el mayornúmero de casos (56.5 %) demostróescasas larvas ( 1- 5 ) , descendiendoprogresivamente este porcentaje paralos casos con 6 a 10 (37.6%) Y 11 a20 elementos (4.3 %), habiéndose ha-llado sólo 1.4% con larvas inconta-bles. (Cuadro IV). Es decir, que auncon el método de concentración, el nú-mero de elementos, en algunos casos,es tan pequeño, que ningún examenparasitoscópico directo, por minuciosoque sea, ofrece posibilidades de demos-trar la parasitosis.

DISCUSION

Como lo anotábamos al comienzo,en la realización de este trabajo nosmovió el interés de hacer una nuevacontribución al estudio en nuestro me-dio de una parasitosis de tanto interéscomo es la Estrongiloidiasis, ya quedebido a la modalidad de parasitismoque ella produce, ocasiona alteracionesque se manifiestan clínicamente porsíntomas muy variados y que puedenir desde alteraciones de la piel hastacuadros similares a úlceras pépticas,síndrome de mala absorción, etc.

Los resultados anotados en el Cua-dro NQ I permiten observar que laincidencia del parasitismo es aparente-mente mayor en el sexo femenino quren el masculino; sin embargo, conside-ramos esta diferencia no significativadesde el punto de vista estadístico,puesto que el número de mujeres es


mucho mayor que el de hombres estu-diados. Sobre la incidencia total deparasitismo la encontramos un pocomás baja que la cifra dada por Gómezde Morais (cit. 6), quien refiere unaincidencia del 16% en nuestro medio.De todas maneras, la consideramos co-mo una cifra no despreciable, dadoslos múltiples problemas que este para-sitismo origina.

Comparados los resultados positivosobtenidos por los dos métodos, utili-zando la misma muestra, observamosuna diferencia realmente significativa,ya que el 75.9% fueron negativos alexamen directo, existiendo una con-centración positiva, lo cual nos de-muestra claramente la poca utilidaddel examen directo para el diagnósticode esta entidad, al menos cuando seestudia sólo una muestra. Este dato loconsideramos de grande importancia yhace evidente la necesidad de empleartécnicas de concentración para el diag-nóstico de los parasitismos intestinales,de tanta importancia en los países tro-picales }" subtropicales como el nues-tro. Es de relevante interés el haberhallado un gran número de larvas porpreparación utilizando la técnica deconcen tración.

Analizados los resultados globales denuestra observación, comentaremos enseguida las ventajas y los eventuales in-convenientes que pueden presentar lastécnicas de concentración. Considera-mos, de acuerdo con Ferriolli Filho(1) Y Coutinho y col. (cit. 1) quelos resultados del examen de las ma-terias fecales es superior a los sumi-nistrados por la convencional técnicade la intubación duodenal, siempre quese empleen técnicas adecuadas.

Según la experiencia de Morais(cit. 1), la técnica de concentraciónes 3.3 veces superior a la técnica decentrifugo-flotación con el sulfato dezinc. La misma opinión la compartenCoutinho y col. y el personal del De-partamento de Parasitología de la Fa-cultad de Medicina de Riberao Preto,

quienes la consideran igualmente supe-rior a las técnicas de sedimentación.

Ferriolli Filho (1), quien introdujouna modificación a la técnica en 1959,considera que ésta presenta algunosinconvenientes derivados del uso deuna gasa sobre la tela metálica, comoson los siguientes:

a) El uso de una gasa aún muy do-blada no retiene pequeñas partículasde heces, que se van a acumular en elfondo del embudo, ocurriendo esto in-cluso con las heces formadas.

b) La gasa se empapa en el agua yse contamina con las heces, necesitan-do ser retirada con pinza para evitarla infección del operador.

c) La gasa moj ada, debido al espe-sor de los hilos, ofrece mayor obstácu-lo al paso de las larvas, las cualeseventualmente quedan retenidas sincaer al fondo del embudo.

d ) El uso de la gasa en sí repre-senta una complicación que encarecela técnica.

e) Finalmente, es un inconvenienteestético dejar las heces expuestas alaire.

Estos hechos llevaron al autor a in-troducirle una modificación, la cualconsistió en reemplazar la gasa por pa-ñuelos de papel (de la firma Johnsony Johnson). Además, emplea una telametálica de mallas finas para las hecesdiarreicas o líquidas. Sin embargo, losresultados obtenidos por este procedi-miento fueron inferiores en aproxima-damente un 18% al método originalde Baermann, empleando la gasa.

En 1961 el mismo autor (2) intro-dujo una nueva modificación a la téc-nica de Loos-Baerrnann, que denominó"técnica do pires", la cual consiste encolocar la muestra sobre una malla decobre con 1.225 mallas metálicas porcentímetro cuadrado, montadas sobreun anillo metálico de 7 cms. de diá-metro y 1 cm. de alto, adaptado a unsoporte para facilitar la manipulación.La malla es puesta en contacto con elagua caliente, contenida en una caja de


Petri de 9 cms. de diámetro. Para evi-tar la exposición al aire de las mues-tras fecales, ésta se cubre con unatapa metálica provista de 3 agujeros.Después de una hora la malla es reti-rada y las larvas investigadas en lacaja con microscopio estereoscópico.Cuando pasan al líquido pequeñas par-tículas fecales que lo enturbian, difi-cultando la observación, se retira ellíquido después de centrifugación a1.500 r.p.m por dos minutos, y el se-dimento se estudia entre lámina y la-minilla.

El autor considera esta técnica co-mo simple, higiénica, económica y debuenos resultados. Con ella examinó53 casos positivos empleando simultá-neamente el Baermann modificado, ha-biendo obtenido respectivamente el94.34% Y 92.5 % de positividad. Noexistieron, pues, diferencias significa-tivas en los resultados dados por losdos procedimientos.

De las experiencias anteriores y deles resultados obtenidos en nuestro tra-bajo, podemos deducir que las técnicasde concentración basadas en el hidro-tropismo de las larvas del Strongyloi:des stercoralis, constituyen en la actua-lidad el método más seguro para eldiagnóstico de esta parasitosis. Consi-siderando su alta sensibilidad, creemosque fácilmente puede reemplazar a laintubación duodenal, la cual, a más deser dispendiosa, no deja de causar mo-lestias e incomodidades a los pacientes.Finalmente, carece de valor prácticopara el estudio de grupos grandes depoblación. También se ensayan en laactualidad otras técnicas para el diag-nóstico de la Estrongiloidiasis. Una deellas es la centrifugo-sedimentación dematerias fecales conservadas en formol-éter, utilizada por Ferriolli Filho y col.(3) Y en la cual se hace una combi-nación de las técnicas de Ritchie yFaust. Sin embargo, los resultados noson concluyentes para estrongiloidiasis,siendo de utilidad para la investigaciónde huevos y quistes de otros parásitos

intestinales. Pellegrino y col. (4) hanempleado la reacción intradérmica uti-lizando un antígeno preparado conlarvas de Strongyloides ratti. Su expe-riencia es reducida; sin embargo, lahan encontrado positiva en casos com-probados parasitológicamente. Puededar un cierto número de falsos positi-vos y tiene tendencia a permanecer po-sitiva aun después de desaparecido elparasitismo (cit. 4).

Con el presente trabajo hemos que-rido hacer una contribución al estudioen nuestro medio de esta parasitosis,la cual incide con relativa frecuencia,ocasionando generalmente serios tras-tornos a los individuos que la padecen.Si bien las técnicas han sufrido recien-temente algunas modificaciones, ellasno varían significativamente su efec-tividad. Consideramos satisfactorios losresultados obtenidos en nuestro traba-jo con la técnica empleada, la cual es-tá al alcance de cualquier laboratoris-ta, dada su simplicidad y su costo mí-nimo.

Los inconvenientes señalados por al-gunos autores, tales como la posibili-dad de contaminación del operador,etc., serán siempre obviados con lamanipulación adecuada del material.

Creemos necesaria la realización ennuestro medio de nuevos estudios sobreel tema, especialmente encaminados aconocer los resultados comparativosentre la técnica de concentración ylos otros procedimientos empleados pa-ra el diagnóstico de este parasitismo,tales como la intubación duodenal.

Finalmente, si tenemos en cuenta laimportancia de esta parasitosis y elpeligro que ella entraña por la notablepersistencia en el huésped, así comopor la existencia de síntomas severosy la posibilidad de conducir a la muer-te, debernos admitir que cualquiermétodo que lleve a su mayor certezadiagnóstica debe emplearse, especial-mente, en aq.uellas zonas en donde laparasitosis es in aparente. Si bien exis-ten otros métodos diagnósticos como


son la prueba cutánea con la cual sedemuestra infección pasada o presenteen un número muy elevado de casos,o el sondeo duodenal, que sobrepasaen certeza diagnóstica a los exámenesseriados de heces, la extracción de lar-vas, por uno cualquiera de los méto-dos expuestos, es de elección para eldiagnóstico y control de tratamientode la enfermedad.

CONCLUSIONES

l. La incidencia de esta parasitosises elevada en nuestra población.

2. Se presenta por igual en ambossexos, con ligero predominio en el sexofemenino.

3. El examen parasitoscópico direc-to es inadecuado para su diagnóstico.Deja pasar desapercibidos aproximada-mente el 75.9% de los casos.

4. La técnica de concentración em-pleada se mostró muy superior al exa-men directo. El método es sencillo,práctico y económico.

5. Dada la incidencia relativamentealta de la parasitosis, se aconseja em-plear siempre un método de concen-tración para larvas como medio paradescubrir la enfermedad.

6.. El método de concentración esparticularmente útil en los casos asin-temáticos.

7. La técnica de concentración esindispensable para un correcto diag-nóstico y control de tratamiento.

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4. Pellegrino J., Chaia G., Pomp.u Memoria,J. M.: "Obserya~aes sobre a rea~ao i"tra-dermica con antig.no de Strongyloidesratti em pacientes com estrongiloidiase".

Rey. Inst. Med. Trop. Sao Paulo. 3 (4):181-185, Julho-Agosto 1961.

5. Veron.si, R.: "Doen~as infecciosas e para-sitarias", 29 edi~ao. Pago 745. EditoraGuanabara Koogan S. A. 1962.

6. P.ssoa, S.: "Parasitologia medica". 69edi~ao. Pago 500. Editoría GuanabaraKoogan S. A. 1963.

7. Graig y Faust: "Parasitología dínica", 29edición en español. Pág. 338. EditorialUteha.

8. Pereira Lima, J., Roithman, N.: "Estron-giloidiase. Consid••ra~oes c~in¡co-Iab"rato-riais e radiologicas". O-Hospital (Rio) 56(3): 416-485, Setembro 1959.

9. Amato, N. V., Campos, R., Ferreira, S. C.:"Diagnóstico das parasitoses intestinaispelo exame das fezes". Fundo EditorialProcienx. Sao Paulo. Brasil.


CUADRO N'1 I

CASOS ESTUDIADOS - RESULTADOS

N'1 casosMujeresN'1, %

HombresN'1 %

Casos estudiadosPósitivos .. , ...

1.00091

(9.1%)

61448

61.452.7

38643

38.647.3

CUADRO N'1 11

RESULTADO COMPARATIVO DE LOS 2 METODOS

Estudio N'1 %

Examen directoConcentración

Positivo '"Negativo

o o


Positivo ...Negativo

22 24.1


NegativoPositivo

69 75.9

CUADRO 111

NUMERO DE LARVAS - EXAMEN DIRECTO Y CONCENTRACION POSITIVOS (22 CASOS)

NI? larvas Examen directo % Concentración %

1 - 56 - 10

211

95.44.5

25

9.922.7

Incontables ... '" .,. o o 15 68.1

CUADRO N'1 IV

NUMERO DE LARVAS- EXAMEN: DIRECTO NEGATIVO Y CONCENTRACIONPOSITIVA (69 CASOS)

N'? larvas

1 56 10

N'? casos %

39 56.526 37.6

3 4.31 1.4

11 - 20Incontables ... ... '" ... ... ... ... '"

strongiloidiasis - repositorio.unal.edu.co

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