presentación de powerpoint - gtavicola.com.ar aviar 14112014.pdf · gallinas ponedoras infectadas...
TRANSCRIPT
Dr. Pablo A. Chacana
Instituto de Patobiología
CICVyA - INTA
Tifosis aviar
un viejo problema y nuevos
enfoques
Salud publica: Intoxicación alimentaria
Salud veterinaria: tifosis aviar
Comercio internacional: restricciones en la
exportación
Salmonellas aviares
Familia Enterobacteriaceae
Salmonella enterica - Salmonella bongori
la especie no es suficiente…
Serovariedades
Salmonella enterica subespecie enterica
la subespecie no es suficiente…
Casi 2.500
Serovariedades
Esquema de Kauffmann – White
O Somáticos
H Flagelares
K Capsulares (Vi)
Salmonella enterica subsp. enterica (Somaticos O: Flagelares H)
Salmonella enterica subsp. enterica (9, 12: g,m:-)
Salmonella enterica subsp. enterica ser. Enteritidis
Salmonella Enteritidis
Ej:
Salmonella enterica subsp. enterica (4, 5, 12: i: 1,2)
Salmonella enterica subsp. enterica ser. Typhimurium
Salmonella Typhimurium
Formula
antigénica Nombre
completo Nombre
abreviado
Formula
antigénica Nombre
completo Nombre
abreviado
Especificidad de las Salmonellas
Grupo 1: Específicas de especie (“tifoideas”)
Salmonella Typhi
Paratyphi A Salmonella Abortus-ovis
Salmonella Typhi-suis
Salmonella Abortus-equi
Salmonella Gallinarum
Muy adaptadas a determinados huéspedes.
Producen una infección sistémica en un número limitado de especies
animales filogenéticamente relacionadas.
No causan Zoonosis No producen
Intoxicación Alimentaria
Problema de salud veterinaria
Especificidad de las Salmonellas
Grupo II: No específicas
Salmonella Enteritidis
Salmonella Typhimurium
Resto de las Salmonella enterica subsp. enterica
No adaptadas a ningún huésped específico.
Muy difundidas, colonizan animales, vegetales y medio ambiente.
Usualmente causan gastroenteritis en un amplio número de
especies animales.
Causan Zoonosis Producen Intoxicación
Alimentaria
Problema de salud Pública
Especificidad de las Salmonellas
Grupo III: Especificas de especie + Zoonóticas
Salmonella Cholerasuis
Restingidas a determinados huéspedes a los que producen una infección
sistémica aunque que también pueden infectar a otras especies animales.
Causan Zoonosis Producen Intoxicación
Alimentaria
Problema de salud Pública y Veterinaria
Salmonella Dublin
Diferentes enfermedades en las aves
Enfermedad tifoidea
S. Gallinarum
Distribución sistémica
por células del SRE
Hígado
Bazo
Ovario
Médula ósea
Alta mortalidad
Enfermedad paratifoidea
Otras salmonellas
Invasión por Placas de Peyer
Tonsilas cecales Pollitos menores
de 3 días
Colonización intestinal
Íleo – Ciego
Hígado
Bazo
Ovario
Muchas
salmonelas Pocas
salmonelas
Baja o nula mortalidad
Salmonella Gallinarum
Tifosis & Pullorosis
Biotipos
Tifosis
Pullorosis
Salmonella enterica subsp. enterica ser. Gallinarum biovar. gallinarum
Salmonella gallinarum
Salmonella pullorum
Salmonella enterica subsp. enterica ser. Gallinarum biovar. pullorum
Ingreso de Salmonella
Lesiones
Hígado congestivo,
friable
Bazo agrandado,
nodulos Folículos ováricos
agrandados y
deformados
Miocarditis
Ciclo de infección de Salmonella gallinarum
Vacunación Bioseguridad
Aditivos Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Bioseguridad
Aditivos
Portadores de Salmonella Gallinarum
Activo
Excretan alta carga
bacteriana
Elimina en forma
intermitente
Latente
Agua, cama
de aves,
ambiente
Contaminación
del ambiente
Vida intracelular en
macrófagos
Transporte
Hacinamiento
Introducción de
nuevas aves
Alteraciones climáticas
Restricción alimenticia
Muda forzada
Cambios de
temperatura
Reproducción
Postura
Estrés
Brote de tifosis
Diagnóstico
Bacteriológico clásico
Identificación:
Pruebas bioquímicas
Salmonella Gallinarum es la única serovariedad inmóvil, no es
imprescindible la serotipificación
Muestras ideal: Hígado
Aislamiento:
Preenriquecimiento no es necesario
Caldo selectivo no recomendable, SG crece menos
que otras salmonellas
Ideal: directo sobre Agar MacConkey, Verde
Brillante
Días post
infección Aves muertas
Dosis de SG (UFC)
103 104 105 106 107 108
1
2
3
4
5 1 2
6 1
7 1 1 3 1 2
8 1 1 1
9 1 1
10 1 1 1
11
12 Muertas/Infectadas
(%) 2/5
(40%)
2/5
(40%)
3/5
(60%)
4/5
(80%)
5/5
(100%
)
5/5
(100%)
Modelo de infección
experimental Gallinas ponedoras marrones de 16 semanas de vida
Vacunas
Tifosis: Infección principalmente
sistémica
S. gallinarum: bacteria
intracelular
Vacunas vivas más efectivas: estimulan mejor la inmunidad
celular
Cepa Salmonella gallinarum 9R
William Smith, 1956.
Rugosa por LPS que tiene cadenas laterales repetitivas (antígeno “O”) defectuosas.
Mutación “sin sentido” en el cluster-gen raf.
Mantiene las SPI-1 y SPI-2 intactas: permite la invasión y colonización, simulando la infección natural
Vacuna
s
Produce muy buena respuesta inmune.
Se puede administrar por vía oral o inyectable.
Se recomienda vacunar desde las 6-8 semanas (algunos autores desde la 4° semana de vida).
Repetir vacunación cada 10-12 semanas.
Protege contra S. Enteritidis.
No interfieren con el antígeno Pullorum.
Mediante Análisis de Restricción Enzimática (REA) del gen raf J se diferencia la cepa 9R de las cepas de campo.
Podría haber reversión al fenotipo salvaje (de rugosa a lisa)
M 1 2 3 4 5 6 7 8 M 10 11 12 13 14 15 16 17 C- M
1-Amplificación por PCR de rfaJ de las distintas cepas de Salmonella
-100pb
-200pb
-300pb
-400pb -500pb
M 1 2 3 4 5 6 7 8 M 10 11 12 13 14 15 16 17 M
2-Restricción de los productos de PCR con la enzima VspI
-100pb
-200pb
-300pb
-400pb
-500pb
1: Amplificación por PCR de
rfaJ de las distintas cepas de
Salmonella
9R Salvaj
e
Zumárraga et al, CICVyA, INTA
2: Digestión con enzima VspI
S 6 S 16
Desafío
Semana 52
S 30
Desafíos con S. gallinarum
Vía
s/c
3-O
2-O + 1S
4-O
Día 1 Semana 6 Semana 16
Semana 30 Día 1 Semana 6 Semana 16
Día 1 Semana 6 Semana 16
Desafio
Semana 28 Desafio
Semana 52
Vacuna viva Salmonella Enteritidis
CHACANA, P.A.; TERZOLO H.R. Avian Diseases 50 (2): 280-283, 2006
Mortalidad por tifosis aviar
5,9 0
94,1
0
50
100
1 3 Control
Grupos desafiados
% d
e g
allin
as
mu
ert
as
a a
b
Desafío Semana 28
La vacunación protegió eficientemente contra la
mortalidad causada por la tifosis aviar
3-O 2-O + 1S
Gallinas ponedoras infectadas a las 16 semanas de vida con SG
Grupo A: 5 ppm de taninos hidrolizables 24 hs previo a la infección experimental con
SG y hasta el fin del ensayo.
Grupo B: 5 ppm de taninos hidrolizables el mismo día que se realizó la infección
experimental con SG y hasta el fin del ensayo. N= 14
Grupo C: Sin agregado de aditivo (grupo Control)
Aditivos alimentarios: extractos vegetales
Lee et. al . J. Vet. Sci. 4:161 – 166. 2003
Desarrollo de Resistencia a Antibióticos para S. gallinarum
Hacia una gestión racional de la salmonelosis en granjas
Grupo Sanidad Avícola del Instituto de Patobiología
http://inta.gob.ar/unidades/233000
Patógenos y enfermedades
Salmonella
Clostridium perfringens
Escherichia coli
Coccidiosis
Micotoxinas
Patología aviar
Servicio especializado de diagnóstico de enfermedades
bacterianas entéricas y suscepibilidad a antibioticos y
promotores
Desarrollo y prueba de productos alternativos:
Aditivos alimentarios (extractos vegetales, anticuerpos)
Vacunas
Otros
Modelos de infección experimental: tifosis, paratifosis, enteritis
necrótica, coccidiosis, micotoxicosis
Instalaciones
Laboratorios de microbiología,
histopatología
toxicología, parasitología
Bioterio NSB 2:
En Jaula: 80 pollos parrilleros hasta los 50
dias de vida / 100 gallinas ponedoras
En corrales: 60 pollos parrilleros hasta los
50 días de vida
Grupo Sanidad Avícola del Instituto de Patobiología http://inta.gob.ar/unidades/233000
Muchas gracias