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© 2002 OEPP/EPPO,

Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

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, 241–243

Blackwell Science, LtdOxford, UKEPPBulletin OEPP/EPPO Bulletin1356-1294OEPP/EPPO, 200232Original ArticleDiagnostic protocols for regulated pestsEPPO Standards

European and Mediterranean Plant Protection OrganizationOrganisation Européenne et Méditerranéenne pour la Protection des Plantes

Normes OEPPEPPO Standards

Diagnostic protocols for regulated pestsProtocoles de diagnostic pour les organismes réglementés

PM 7/13(1)

European and Mediterranean Plant Protection Organization 1, rue Le Nôtre, 75016 Paris, France

EPP_585.fm Page 241 Thursday, August 1, 2002 11:09 PM

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Approval

EPPO Standards are approved by EPPO Council. The date of approvalappears in each individual standard. In the terms of Article II of theIPPC, EPPO Standards are Regional Standards for the members ofEPPO.

Review

EPPO Standards are subject to periodic review and amendment. Thenext review date for this EPPO Standard is decided by the EPPOWorking Party on Phytosanitary Regulations.

Amendment record

Amendments will be issued as necessary, numbered and dated.The dates of amendment appear in each individual standard (asappropriate).

Distribution

EPPO Standards are distributed by the EPPO Secretariat to all EPPOmember governments. Copies are available to any interested personunder particular conditions upon request to the EPPO Secretariat.

Scope

EPPO Diagnostic Protocols for Regulated Pests are intended to be usedby National Plant Protection Organizations, in their capacity as bodiesresponsible for the application of phytosanitary measures to detect andidentify the regulated pests of the EPPO and/or European Union lists.

In 1998, EPPO started a new programme to prepare diagnostic pro-tocols for the regulated pests of the EPPO region (including the EU).The work is conducted by the EPPO Panel on Diagnostics and otherspecialist Panels. The objective of the programme is to develop aninternationally agreed diagnostic protocol for each regulated pest. Theprotocols are based on the many years of experience of EPPO experts.The first drafts are prepared by an assigned expert author(s). They arewritten according to a ‘common format and content of a diagnosticprotocol’ agreed by the Panel on Diagnostics, modified as necessaryto fit individual pests. As a general rule, the protocol recommends aparticular means of detection or identification which is consideredto have advantages (of reliability, ease of use, etc.) over other methods.Other methods may also be mentioned, giving their advantages/disadvantages. If a method not mentioned in the protocol is used, itshould be justified.

References

EPPO/CABI (1996)

Quarantine Pests for Europe

, 2nd edn. CAB Interna-tional, Wallingford (GB).

EU (2000) Council Directive 2000/29/EC of 8 May 2000 on protectivemeasures against the introduction into the Community of organismsharmful to plants or plant products and against their spread withinthe Community.

Official Journal of the European Communities

L169,1–112.

Approbation

Les Normes OEPP sont approuvées par le Conseil de l’OEPP. La dated’approbation figure dans chaque norme. Selon les termes de l’ArticleII de la CIPV, il s’agit de Normes régionales pour les membres del’OEPP.

Révision

Les Normes OEPP sont sujettes à des révisions et des amendementspériodiques. La prochaine date de révision de cette Norme OEPP estdécidée par le Groupe de travail pour l’étude de la réglementationphytosanitaire.

Enregistrement des amendements

Des amendements seront préparés si nécessaire, numérotés et datés.Les dates de révision figurent (si nécessaire) dans chaque normeindividuelle.

Distribution

Les Normes OEPP sont distribuées par le Secrétariat de l’OEPP à tousles Etats membres de l’OEPP. Des copies sont disponibles, souscertaines conditions, auprès du Secrétariat de l’OEPP pour toutepersonne intéressée.

Champ d’application

Les protocoles de diagnostic de l’OEPP pour les organismes réglementéssont destinés aux Organisations Nationales de Protection des Végétaux,en leur qualité d’autorités responsables de l’application de mesuresphytosanitaires pour la détection et l’identification des organismes nuisiblesréglementés des listes de l’OEPP et /ou de l’Union européenne.

L’OEPP a initié en 1998 un nouveau programme de préparation deprotocoles de diagnostic pour les organismes réglementés de la régionOEPP (y compris l’UE). Le travail est réalisé par le Groupe d’expertsOEPP sur le diagnostic et d’autres Groupes d’experts spécialisés.L’objectif du programme est de développer, pour chaque organismenuisible réglementé, un protocole de diagnostic approuvé internation-alement. Les protocoles reposent sur les nombreuses années d’expéri-ence des experts de l’OEPP. La première version d’un protocole estpréparée par un expert. Elle est rédigée suivant le ‘format et contenucommuns d’un protocole de diagnostic’ approuvé par le Grouped’experts sur le diagnostic, modifié, le cas échéant, dans les cas indiv-iduels. En règle générale, un protocole recommande un moyen dedétection ou d’identification particulier considéré avoir des avantagessur les autres (du point de vue de la fiabilité, la facilité d’utilisation,etc.). D’autres méthodes sont parfois mentionnées, en précisant leursavantages/inconvénients. Des justifications doivent être fournies si onutilise une méthode qui n’est pas mentionnée dans le protocole.

Références

EPPO/CABI (1996)

Organismes de quarantaine pour l’Europe

, 2ème edn.CAB International, Wallingford (GB).

FAO (1997)

Convention internationale pour la protection des végétaux

(nouveau texte révisé). FAO, Rome (IT).OEPP/EPPO (1999) Normes OEPP PM 1/2(8) Listes A1 et A2 d’organismes

de quarantaine de l’OEPP. In:

Normes OEPP PM1 Mesures phytosani-taires générales

, pp. 5–17. OEPP/EPPO, Paris (FR).

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Diagnostic protocols for regulated pests 243

© 2002 OEPP/EPPO,


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FAO (1997)

International Plant Protection Convention

(new revised text).FAO, Rome (IT).

OEPP/EPPO (1999) EPPO Standards PM 1/2 (8): EPPO A1 and A2 lists ofquarantine pests. In

EPPO Standards PM1 General phytosanitary meas-ures

, 5–17. OEPP/EPPO, Paris (FR).

Definitions

Regulated pest

: a quarantine pest or regulated non-quarantine pest.

Quarantine pest

: a pest of potential economic importance to the areaendangered thereby and not yet present there, or present but not widelydistributed and being officially controlled.

Outline of requirements

EPPO Diagnostic Protocols for Regulated Pests provide all theinformation necessary for a named pest to be detected and positivelyidentified by a general expert (i.e. an entomologist, mycologist,virologist, bacteriologist, etc.) but not necessarily a specialist on theorganism or its taxonomic group. Each protocol begins with some shortgeneral information on the pest (its appearance, relationship with otherorganisms, host range, effects on host, geographical distribution andits identity) and then gives details on the detection, identification,comparison with similar species, requirements for a positive diagnosis,list of institutes or individuals where further information on thatorganism can be obtained, references (on the diagnosis, detection/extraction method, test methods).

Many protocols include laboratory tests involving the use of chem-icals or apparatus which may present a certain hazard. In all cases, localsafety procedures should be strictly followed.

Named trade products have been shown to work in these protocols.Other similar products may be equally effective.

Existing EPPO Standards in this series

Five EPPO diagnostic protocols have already been approved andpublished. Each standard is numbered in the style PM 7/4 (1), meaningan EPPO Standard on Phytosanitary Measures (PM), in series no. 7(Diagnostic Protocols), in this case standard no. 4, first version. Theexisting standards are:PP 7/1 (1)

Ceratocystis fagacearum. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 41–44.PP 7/2 (1)

Tobacco ringspot nepovirus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 45–51.PP 7/3 (1)

Thrips palmi. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 53–60.PP 7/4 (1)

Bursaphelenchus xylophilus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 61–69.PP 7/5 (1)

Nacobbus aberrans. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

,71–77.

UE (2000) Directive du Conseil 2000/29/EC du 8 mai 2000 concernant lesmesures de protection contre l’introduction dans la Communautéd’organismes nuisibles aux végétaux ou aux produits végétaux et contreleur propagation à l’intérieur de la Communauté.

Journal Officiel desCommunautés Européennes

L169, 1–112.

Définitions

Organisme nuisible réglementé

: organisme de quarantaine ou organismeréglementé non de quarantaine.

Organisme de quarantaine

: organisme nuisible qui a une importancepotentielle pour l’économie de la zone menacée et qui n’est pas encoreprésent dans cette zone ou bien qui y est présent mais n’y est paslargement disséminé et fait l’objet d’une lutte officielle.

Vue d’ensemble

Les protocoles de diagnostic de l’OEPP pour les organismesréglementés donnent toutes les informations nécessaires à la détectionet l’identification d’un organisme nuisible donné par un expertgénéraliste (c’est à dire un entomologiste, mycologue, virologue,bactériologiste, etc.), et pas nécessairement par un spécialiste del’organisme ou du groupe taxonomique. Chaque protocole débute avecde brèves informations générales sur l’organisme nuisible (aspect,relations avec d’autres organismes, gamme d’hôte, effets sur l’hôte,répartition géographique et identité), puis donne des détails sur ladétection, l’identification la comparaison avec des espèces similaires,les exigences pour un diagnostic positif, une liste d’instituts oud’individus susceptibles de fournir des informations supplémentairessur cet organisme, des références (sur le diagnostic, la méthode dedétection/extraction, les méthodes de test).

Ces protocoles font souvent appel à des analyses de laboratoirebasées sur l’utilisation de produits chimiques ou d’appareis qui peuventprésenter un certain danger. Il est important, dans tous les cas, de suivrerigoureusement les procédures locales de sécurité.

L’efficacité des produits commerciaux qui sont mentionnés dans lesprotocoles est reconnue. D’autres produits similaires peuvent aussi êtreefficaces.

Normes OEPP déjà existantes dans cette série

Cinq protocoles de diagnostic OEPP ont déjà été approuvées et publiées.Chaque norme est individuellement numérotée: par exemple la normePM 7/4(1) est une Norme OEPP sur les mesures phytosanitaires (PM),appartenant à la série 7 (protocoles de diagnostic); il s’agit dans ce casde la Norme 4, 1ère version. Les normes existantes sont:

PP 7/1 (1)

Ceratocystis fagacearum. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 41–44.PP 7/2 (1)

Tobacco ringspot nepovirus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 45–51.PP 7/3 (1)

Thrips palmi. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 53–60.PP 7/4 (1)

Bursaphelenchus xylophilus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 61–69.

PP 7/5 (1)

Nacobbus aberrans. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

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,71–77.


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Blackwell Science, LtdOxford, UKEPPBulletin OEPP/EPPO Bulletin1356-1294OEPP/EPPO, 200232Original Article

Trogoderma granarium

Diagnostic protocols for regulated pests

European and Mediterranean Plant Protection Organization PM 7/13(1)Organisation Européenne et Méditerranéenne pour la Protection des Plantes

Diagnostic protocols for regulated pestProtocoles de diagnostic pour les organismes réglementés


Champ d’application spécifique

Cette norme décrit un protocole de diagnostic pour

Trogodermagranarium.

Approbation et amendement spécifiques

Approbation initiale en 2001-09.

Introduction

Le trogoderme ou dermeste du grain,


, estoriginaire d’Inde. Il est actuellement établi dans une zone délimitée aunord par le 35

°

parallèle, au sud par l’équateur, à l’ouest par l’Afriqueoccidentale et à l’est par le Myanmar, c’est-à-dire dans les zoneschaudes et sèches le long de la route de Suez entre le sous-continentindien et l’Europe. On le trouve également dans quelques pays hors decette zone (par ex. République de Corée, Zambie, Zimbabwe) et il estsouvent détecté ailleurs dans des envois importés. Dans les zonestempérées, les larves deviennent inactives à des températuresinférieures à 5

°

C, de sorte que le ravageur peut survivre seulementdans des environnements protégés, où son élimination est relativementfacile.

T. granarium

apparaît ainsi sporadiquement dans certains paysde l’OEPP dans lesquels il n’est pas établi. Le ravageur n’est présentdans aucun pays de l’Amérique, ni en Océanie.

T. granarium

est nuisible à diverses denrées stockées, en particulierle grain et produits dérivés des céréales. Pour plus d’informationsgénérales sur

T. granarium

, voir EPPO/CABI (1997).

Identité

Nom:


Everts, 1898

Synonymes:

Trogoderma khapra

Arrow, 1917

Trogoderma affrum

Priesner, 1951

Trogoderma quinquefasciata

Leesberg, 1906

Classement taxonomique:

Insecta: Coleoptera:

Dermestidae

Code informatique Bayer:

TROGGA

Catégorisation phytosanitaire:

Liste A2 de l’OEPP no. 121

Détection


est un ravageur des denrées stockées. Il attaqueen particulier les céréales et leurs dérivés (y compris le malt et les pâtes),les semences et tourteaux oléagineux (principalement arachide, lin), lessemences de tomate, le sorgho, le coprah, les légumes à gousse et leurs dérivés,

Specific scope

This standard describes a diagnostic protocol for

Trogodermagranarium

.

Specific approval and amendment

First approved in 2001-09.

Introduction

The khapra beetle (


) originates in India.Currently it has become established within the area broadly limited tothe north by the 35

°

parallel, to the south by the Equator, to the west byWest Africa and to the east by Myanmar, i.e. the warm dry regionsalong the Suez route from the Indian subcontinent to Europe. This areaincludes the southern part of the EPPO region.

T. granarium

is alsoestablished in a few countries outside this zone (e.g. Korea Republic,Zambia, Zimbabwe) and is often detected in imported consignmentselsewhere. In temperate zones, the larvae become inactive at tempe-ratures below 5

°

C, so the pest survives only in protected environments,from which it can readily be eliminated. In this way,

T. granarium

occurs sporadically in a number of EPPO countries where it is notestablished. It does not occur in any part of America or Oceania.

T. granarium

is a pest of various stored products, especially cerealgrain and cereal products. For more general information on

T. grana-rium

, see EPPO/CABI (1997).

Identity

Name:


Everts, 1898

Synonyms:

Trogoderma khapra

Arrow, 1917

Trogoderma affrum

Priesner, 1951

Trogoderma quinquefasciata

Leesberg, 1906

Taxonomic position:

Insecta: Coleoptera:

Dermestidae

Bayer computer code:

TROGGA

Phytosanitary categorization:

EPPO A2 list no. 121

Detection


is a pest of stored products. It occurs especiallyon cereals and cereal products (including malt and noodles), oilseedsand oilcakes (especially groundnuts, linseed), seeds of tomato,sorghum, copra, pulses and pulse products, various nut meals, dried


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fruits and compound animal feeding stuffs. This pest may also bepresent on empty sacks and other packing material.

A

T. granarium

infestation can be recognized by the presence of thepest (especially feeding larvae) on stored products and the signs ofinfestation. Early instar larvae feed on broken or damaged kernels,whereas the older larvae feed on whole kernels. Larvae can occasion-ally be found as deep as 3–6 m inside bulk grain. The larva usuallyfeeds first on the germ portion of a cereal seed and then on theendosperm. The seed coat is eaten in an irregular manner. Near the top30 cm of the infested mass of stored products, numerous cast skins oflarvae covered with long hairs are present. Infested material is alsopolluted with frass.

During inspection of stored products, especially from areas where

T. granarium

is indigenous, attention should be paid to the presence ofvarious developmental stages of the pest, cast larval skins and productsdamaged by larvae. Samples of products suspected to be infested andother randomly taken samples should be sieved through sieves, whoseaperture sizes depend on the size of the particles of the given products.Usually, sets of sieves of aperture sizes 1.0, 2.0 and 3.0 mm are used.The sifted substance collected on particular sieves should be placed onPetri dishes and examined under a stereoscopic microscope to find thepest. The sieving technique allows the detection of various develop-mental stages of the pest but larvae feeding within cereal grain mayremain undetected. Therefore, it is sometimes necessary to use othertechniques allowing for detection of the pest, such as inspection ofsamples with hand lens or under stereoscopic microscope or heatingof samples to 40

°

C.During inspection of warehouses, it is necessary to examine cracks

and crevices and look behind any panelling against walls. In ships,attention should be also paid to places under rust scales, under timbercoverings of tanks, on dry ledges, etc. In dry cargo containers, placesbetween floor boards and behind linings should be examined. Insectsfound during inspection of warehouses, ships and cargo containers canbe carefully picked up with small forceps or sucked by using an aspi-rator (‘pooter’). They should then be placed, with a little of the storedproduct on which their larvae may feed, in a leak-proof container, suchas glass or plastic specimen tubes with plastic or cork stoppers (Haines,1991).

In warehouses it is possible to monitor the presence of

T. granarium

using various traps. Traps with maize or wheat (Saplina, 1984) or feed-ing attractant for larvae and a pheromone for adult males (Barak, 1989;Barak, Burkholder & Faustini, 1990) may be used.

Adults are usually identified under the stereoscopic microscope.However, in cases where certain morphological features are not visible,male genitalia should be examined. Genitalia should be removed andplaced in Hoyer solution for identification under the microscope. Toidentify larvae, attention should be paid to the number of papillae in thedistal group on the epipharynx. To observe this character, it is best toremove the labrum, to which the epipharynx is attached, and to mountit ventral side up on a microscope slide. The preferred mounting fluidis Hoyer solution (Beal, 1960). The identification should be performedunder the microscope.

T. granarium

has the following developmental stages: egg on thesurface of grain and other stored products; larvae (5-11 instars) instored products; larvae in diapause may be found on packing material;pupa in stored products, at the last larval ecdysis; adult in storedproducts.

différentes farines de noix, les fruits s et les aliments composés pour animaux.Il est également parfois présent sur des sacs vides et autres emballages.

Une infestation par

T. granarium

se reconnaît à la présence duravageur (en particulier des larves actives) sur les denrées stockées et auxsignes d’infestation. Les larves de premier stade s’alimentent sur lesgrains endommagés ou cassés tandis que les larves plus âgées s’alimen-tent sur les grains entiers. Les larves sont parfois présentes jusqu’à3–6 m dans la masse de grain. Sur les semences de céréales, les larvess’alimentent généralement sur le germe, puis sur l’endosperme.L’enveloppe est entamée de manière irrégulière. De nombreuses muesde larves couvertes de longs poils sont présentes dans la partiesupérieure des 30 premiers cm de la masse de denrées stockéesinfestées. Le matériel infesté est également pollué par des excréments.

Pendant l’inspection des denrées stockées, en particulier en provenancede régions où

T. granarium

est indigène, il faut porter une attentionparticulière à la présence des différents stades de développement du rav-ageur, de mues et de produits endommagés par des larves. Des échantillonsde denrées soupçonnés d’être contaminés et d’autres échantillons prélevésau hasard doivent être passés par des tamis dont la maille dépend de lataille des particules du produit étudié. En général, des séries de tamis demaille 1, 2 et 3 mm sont utilisées. La substance tamisée collectée sur lestamis doit être placée dans des boîtes de Petri et examinée à la loupebinoculaire pour détecter le ravageur. Le tamisage permet la détection desdivers stades de développement du ravageur, mais les larves qui s’alimen-tent à l’intérieur des grains de céréales ne sont pas toujours détectées. Ilest donc parfois nécessaire d’utiliser d’autres techniques permettant dedétecter le ravageur, par exemple l’inspection des échantillons avec uneloupe manuelle ou binoculaire, ou le chauffage des échantillons à 40

°

C.Pendant l’inspection des entrepôts, il faut examiner les fissures et

crevasses et regarder derrière les panneaux recouvrant les murs. Dansles bateaux, il faut également inspecter les endroits se trouvant sous desécailles de rouille, sous le coffrage des tanks, sur les rebords s, etc. Dansles conteneurs, les endroits entre les panneaux du sol et derrière les dou-blages doivent être examinées. Les insectes trouvés pendant l’inspec-tion des entrepôts, des bateaux ou des conteneurs peuvent êtresoigneusement collectés à l’aide de petites pinces ou aspirés à l’aided’un aspirateur spécial (‘pooter’). Ils doivent ensuite être placés, avecune petite quantité de denrée stockée sur laquelle les larves peuvents’alimenter, dans un récipient étanche, par ex. tubes en plastique ou enverre avec des bouchons de plastique ou de liège (Haines, 1991).

Dans les entrepôts, il est possible de surveiller la présence de

T. gra-narium

à l’aide de différents pièges. Des pièges avec du maïs ou du blé(Saplina, 1984) ou des attractifs alimentaires pour les larves et unephéromone pour les mâles adultes (Barak, 1989; Barak, Burkholder &Faustini, 1990) peuvent être utilisés.

Les adultes peuvent généralement être identifiés à la loupe binocu-laire. Cependant, dans les cas où des caractères morphologiques ne sontpas visibles, il est nécessaire d’examiner les génitalia des mâles. Lesgénitalia doivent être prélevés et placés dans une solution de Hoyerpour identification au microscope. Pour identifier les larves, il fautexaminer le nombre de papilles du groupe distal de l’épipharynx. Pourobserver ce caractère, il est préférable d’enlever le labre, auquell’épipharynx est lié, et de le monter sur une lame de microscope, faceventrale vers le haut. Le fluide de montage préféré est la solution deHoyer (Beal, 1960). L’identification doit être faite au microscope.

T. granarium

possède les stades de développement suivants: oeuf àla surface du grain et autres denrées stockées; larves (5-11 stades) dansles denrées stockées; des larves en diapause sont parfois trouvées surles emballages; nymphe dans les denrées stockées, à la dernière muelarvaire; adulte dans les denrées stockées.



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Identification

Pupae are impossible to identify, and larvae usually difficult.Identification of adults is usually easier. Keys may be used for larvaeand adults but, unfortunately, no key for all known

Trogoderma

specieshas so far been published. Banks (1994) published a key to adults of thegenus

Trogoderma

associated with stored products, as well as keys tolarvae and adults of some species found in warehouses. Mordkovich &Sokolov (1999) published a key for identification of adults of somedermestid beetles, including

Trogoderma

, found during phytosanitaryinspection of plant and animal products and packing material. Keyshave also been published for identification of

Trogoderma

speciesoccurring in certain areas: USA (California) (Okumura & Blanc, 1955),UK (Green, 1979; Peacock, 1993) and Poland (Mroczkowski, 1975).

Detailed descriptions of

T. granarium

are given by Hinton (1945),Booth

et al

. (1990), Haines (1991) and EPPO/CABI (1997). Green(1979) described male and female genitalia and Beal (1960) describedthe larva.

Identification of larvae

The first-instar larva is 1.6–1.8 mm in length and 0.25–0.3 mm inwidth. Its colour is uniformly yellowish-white, except for the head andbody hairs which are brown. The mature larva (Fig. 1A) is 4.5–6 mmin length and 1.5 mm in breath and reddish-brown in colour. The headbears a short antenna of three segments. The larval body is covered withtwo kind of hairs: simple hairs, of which the shaft bears many small,stiff, upwardly directed processes, and barbed hairs (hastiseta), ofwhich the shaft is constricted at regular intervals and the apex consistsof a barbed head. Simple hairs are scattered over the dorsal surface ofthe head and body segments. Two groups of long simple hairs on the 9thabdominal segment form the tail. Barbed hairs are found in pairs oftufts, borne on certain abdominal segments (Beal, 1960; EPPO/CABI,1997). During identification of larvae of

T. granarium

, the followingcharacters of larvae belonging to the family

Dermestidae

, the genus

Trogoderma

and the species

T. granarium

should be observed.

Identification

S’il est impossible d’identifier les nymphes et généralement difficiled’identifier les larves, l’identification des adultes est plus facile. Desclés peuvent être utilisées pour les larves et les adultes, mais il n’existepas de clé publiée pour toutes les espèces de

Trogoderma

connues.Banks (1954) a publié une clé des adultes du genre

Trogoderma

associésaux denrées stockées, ainsi que des clés pour les larves et adultes decertaines espèces des entrepôts. Mordkovich & Sokolov (1999) ontpublié une clé d’identification des adultes de certains dermestes, dont

Trogoderma

, trouvés pendant les inspections phytosanitaires de produitsanimaux, végétaux et d’emballages. Des clés d’identification des espècesde

Trogoderma

présentes dans certaines zones ont également étépubliées: Etats-Unis (California) (Okumura & Blanc, 1955), Royaume-Uni (Green, 1979; Peacock, 1993) et Pologne (Mroczkowski, 1975).

Des descriptions détaillées de

T. granarium

sont données par Hinton(1945), Booth

et al

. Cox & Madge (1990), Haines (1991) et EPPO/CABI (1997). Green (1979) décrit les génitalia mâle et femelle, et Beal(1960) décrit les larves.

Identification des larves

La larve de premier stade mesure 1,6–1,8 mm de long et 0,25–0,3 mmde large. Elle est de couleur blanc-jaunâtre uniforme, à l’exception despoils de la tête et du corps qui sont bruns. La larve mature (Fig. 1A)mesure 4,5–6 mm de long et 1,5 mm de large et est de couleur brun-rougeâtre. La tête porte une antenne courte à trois articles. Le corps deslarves est recouvert de deux types de soies, des soies simples, dont lefouet porte de nombreux petits appendices raides et dirigés vers le haut,et des soies hastées (hastiseta), dont le fouet est resserré à intervallesréguliers et dont l’extrémité consiste en une tête hastée. Les soiessimples sont dispersées à la face dorsale de la tête et des segments ducorps. Deux groupes de longues soies simples sur le 9ème segmentabdominal forment la queue. Les poils hastés se trouvent par paires detouffes sur certains segments abdominaux (Beal, 1960; EPPO/CABI,1997). Lors de l’identification des larves de

T. granarium

, les caractèressuivants des larves de la famille

Dermestidae

, du genre

Trogoderma

etde l’espèce

T. granarium

doivent être observés.

Fig. 1 Trogoderma granarium: adults and larva/adultes et larve. (A) larva/ larve; (B) female/femelle; (C) male/mâle. Scale/échelle = 2 mm.



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Family Dermestidae

•

six-legged;

•

head well developed;

•

characteristically very hairy, being covered with simple and barbedhairs (see above) and sometimes also with smooth setae known asnudisetae which may be defensive or sensory;

•

hastisetal tufts inverted on tergal Plate(V) or VI-VIII (emerging dis-tinctly on the sclerotized postero-lateral part of these tergites).

Genus Trogoderma

•

9th abdominal segment without any processes;

•

body flattened and bullet-shaped;

•

hairs (setae) on body smooth and straight;

•

posterior margin of 5th abdominal tergite straight on both sides.

Species Trogoderma granarium

•

epipharynx with four papillae in distal sensory cup, usually in asingle unit;

•

setae of basal segment of antenna leaving less than one third of thesegment bare and 2–2.5 times as long as second segment of antenna;

•

second segment of antenna approximately equal in length to apicalsegment;

•

second segment of antenna with one seta;

•

7th abdominal tergite with suture faint or interrupted;

•

antecostal suture of 8th abdominal tergite absent or (rarely) weak andinterrupted at several points;

•

no greyish pigmentation on sides of thoracic and other segments;

•

segment IX with median brush of setae about as long as 2 or 3abdominal segments.

Identification of adults

Adults of

T. granarium

are oblong-oval beetles, 1.6–3.0 mm long and0.9–1.7 mm wide. The head, which is usually deflexed, and the thoraxand tip of the abdomen are brownish black. The elytra are brown.Females (Fig. 1B) are slightly larger than males (Fig. 1C) and lighter incolour.

To identify the adult stages of

T. granarium

correctly

,

specimensshould correspond to the characters used to identify the family Derm-estidae, the genus

Trogoderma

and the species

granarium.

These char-acters are as follows.

Family Dermestidae

•

body generally oval in shape;

•

body covered with setae;

•

antennae rather short, with clubs;

•

tarsi of all legs 5-segmented.

Genus Trogoderma

•

setae on dorsal surface not strongly scale-like, although light-coloured hairs may be flattened and ensiform;

•

head with median ocellus between the two compound eyes;

•

antennae 9–11 segmented; club of antenna composed of at least threesegments, terminal segment never greatly enlarged, subequal inlength to the preceding two or three segments;

•

posterior oblique margin of antennal cavity elevated and more or lesscarinate, at least as far as the middle of the cavity; hence, antennalcavity at least partly enclosed behind;

Famille Dermestidae

•

six pattes;

•

tête bien développée;

•

typiquement très poilues, c’est-à-dire couvertes de soies simples ethastées (voir ci-dessus) et parfois également de soies lisses (nudise-tae) ayant une fonction défensive ou sensorielle;

•

touffes de soies barbelées inversées sur les tergites V ou VI-VIII(émergeant distinctement sur la partie postéro-latérale sclérotisée deces tergites).

Genre Trogoderma

•

9ème segment abdominal sans processus;

•

corps aplati et en forme de balle;

•

soies du corps lisses et droites;

•

bord postérieur du 5ème tergite abdominal droit des deux côtés.


•

épipharynx à quatre papilles dans la cavité sensorielle distale,généralement en une seule unité;

•

soies de l’article basal de l’antenne mesurant moins d’un tiers de l’articlenu et 2–2,5 fois plus longues que le deuxième article de l’antenne;

•

deuxième article de l’antenne environ de la même taille que l’articleapical;

•

deuxième article de l’antenne portant une soie suture du 7ème tergiteabdominal peu visible ou interrompue;

•

suture antécostale du 8ème tergite abdominal absente ou (rarement)peu prononcée et interrompue en plusieurs endroits;

•

absence de pigmentation grisâtre sur les côtés des segmentsthoraciques ou autres;

•

segment IX portant une brosse médiane de soies aussi longue que 2ou 3 segments abdominaux.

Identification des adultes

Les adultes de

T. granarium

sont des coléoptères oblongs à ovales,mesurant 1,6–3,0 mm de long et 0,9–1,7 mm de large. La tête estgénéralement orthognathe, le thorax et l’extrémité de l’abdomen sontnoir-brunâtres et les élytres sont bruns. Les femelles (Fig. 1B) sontlégèrement plus larges que les mâles (Fig. 1C) et de couleur plus claire.

Pour identifier correctement les stades adultes de

T. granarium

, lesspécimens doivent correspondre aux caractères utilisés pour identifierla famille

Dermestidae

, le genre

Trogoderma

et l’espèce

granarium.

Ces caractères sont les suivants:

Famille Dermestidae

•

corps généralement de forme ovale;

•

corps couvert de soies;

•

antennes relativement courtes et terminées en massues;

•

tarses de toutes les pattes à 5 articles.

Genre Trogoderma

•

soies de la surface dorsale ne ressemblant pas fortement à desécailles, même si les soies de couleur claire sont parfois aplaties etensiformes;

•

tête portant un ocelle médian entre les deux yeux composés;

•

antennes à 9–11 articles; massue antennaire d’au moins 3 articles etarticle terminal jamais fortement élargi, mais de longueur à peu prèségale aux 2 ou 3 articles précédents;

•

bordure postérieure oblique de la cavité antennaire surélevée et plusou moins carénée au moins jusqu’au milieu de la cavité; cavité anten-naire ainsi partiellement fermée sur l’arrière;



303

© 2002 OEPP/EPPO,


32

, 299–310

•

basal segment of each hind tarsus as long or longer than second seg-ment, never shorter.

Species Trogoderma granarium

•

elytral cuticle unicoloured, usually light brown or reddish brown, orvaguely mottled without a clearly defined pattern;

•

elytral setae predominantly brown; yellowish or white hairs formingno clearly defined banded pattern may also be present; these hairs aregradually rubbed of as the beetle moves around and the adult developsa shiny appearance;

•

antennae with 9–11 segments; male antennal club with 4–5 seg-ments; female antennal club with 3–4 segments (Fig. 2A);

•

inner eye margin straight or sinuate;

•

anteromedial metasternal process rounded (rarely rudimentarynipple present) (Fig. 2D);

•

male abdominal tergite 8 more or less evenly sclerotized, with setaealong its margin sometimes tending to be grouped medially; tergite9 with proximal margin of broader section almost U-shaped; tergite10 with many long setae;

•

article basal de chaque tarse postérieur aussi long ou plus long quele second article, jamais plus court.

Espèce Trogoderma granarium

•

cuticule des élytres de couleur unie, généralement brun clair ou brun-rougeâtre, ou vaguement marbrée sans motif clairement défini;

•

soies des élytres principalement brunes; éventuellement aussi soiesjaunâtres ou blanches ne formant pas de bandes clairement définies;ces soies s’arrachent progressivement lors des déplacements etl’adulte prend un aspect brillant;

•

antennes à 9–11 articles; massue antennaire du mâle à 4–5 articles,celle de la femelle à 3–4 articles (Fig. 2A);

•

bordure interne de l’oeil droite ou sinueuse;

•

partie médiane antérieure du métasternum arrondie (rarement enforme de téton rudimentaire) (Fig. 2D);

•

tergite abdominal 8 plus ou moins régulièrement sclérotisé; lessoies le long du bord parfois groupées au milieu; tergite 9 à bordureproximale dont la section la plus large en forme à peu près d’un U;tergite 10 portant de nombreuses longues soies;

Fig. 2 Trogoderma granarium: comparison with other species/comparaison avec d’autres espèces. (A) Antennae of/antennes de T. granarium. (a) male antenna with normal number of segments/mâle, antenne avec nombre normal d’articles; (b) female antenna with reduced number of segments/femelle, antenne avec nombre réduit d’articles; (c) female antenna with normal number of segments/femelle, antenne avec nombre normal d’articles (Beal, 1956). (B) Male genitalia/Génitalia mâles: (a) T. granarium (b) T. inclusum (c) T. variabile (Green, 1979). (C) Antennal fossa/Cavité antennaire (male and female/mâle et femelle) = : (a) (b) T. variabile (c) (d) T. teukton; (e) (f ) T. granarium (Mordkovich & Sokolov, 1999). (D) Ventral view of female Trogoderma granarium (left) and shape of anteromedial metasternal process of various Trogoderma species/Vue ventrale d’une femelle de Trogoderma granarium (à gauche) et forme du processus antéromédian du métasternum de diverses espèces de Trogoderma (a) rounded in/arrondie chez T. granarium (A) (rarely with rudimentary nipple/rarement avec téton rudimentaire) (b) with nipple/en forme de téton (c) pyramidal, in other species/chez d’autres espèces (Okumura, 1954).



© 2002 OEPP/EPPO, Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 32, 299–310

Fig. 3 Trogoderma spp. elytral patterns/motif des élytres (Beal, 1954).

Fig. 4 Adults of/Adultes de: (A) Thorictodes heydeni; (B) Dermestes lardarius; (C) Antrenus verbasci; (D) Attagenus sp. (Haines, 1991; copyright Natural Resources Institute, Chatham Maritime, UK).



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© 2002 O

EP

P/E

PP

O, B

ulletin OE

PP

/EP

PO

Bulletin 32, 299

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Fig. 5 Pictorial key for larvae of various dermestid beetles occurring in stored products. Clé picturale des larves de divers dermestes des denrées stockées.

EPP_588.fm

Page 305 Thursday, A

ugust 1, 2002 11:20 PM



• serrate sclerites of bursa copulatrix of female small, not longer thancorrugated part of spermatheca or with few teeth;

• male genitalia (Fig. 2B) with bridge arcuate and of even thickness formost of its length; transverse section of bridge joining the parameresbroader.

• sclérites serratulés de la bourse copulatrice de la femelle petits, pas pluslongs que la partie plissée de la spermathèque ou avec quelques dents;

• génitalia mâles (Fig. 2B) à pont arqué d’épaisseur égale sur presquetoute sa longueur; section transversale du pont joignant lesparamères à l’endroit le plus large.

Fig. 6 Pictorial key for distinguishing Trogoderma granarium larvae from larvae of other Trogoderma spp. Clé picturale pour distinguer les larves de Trogoderma granarium de celles des autres Trogoderma spp.


Trogoderma granarium 307


Comparison with similar species

Other genera of the family Dermestidae

Besides Trogoderma spp., dermestid beetles of other genera may alsobe found in stored products (especially Anthrenus, Attagenus andDermestes). Larvae of various genera of dermestid beetles may bedistinguished using Fig. 5, and adults of various genera of these beetlesmay be identified using the key of Haines (1991) (Table 1).

Table 1 Key to adults of the genera Thorictodes, Anthrenus, Attagenus, Dermestes and Trogoderma of the family Dermestidae found in stored commodities (adapted from Haines, 1991)

1 Prothorax with base constricted slightly (forming a short wide ‘neck’) and with anterior three-quarters almost round in shape; eyes extremely small and inconspicuous (embedded in a small depression at the side of the head); antennal club three-segmented, very compact and almost round in shape; head small and concealed from above by the large prothorax; body light brown and shining with a few short setae. (Minor pest of various commodities; not often very common.)

Thorictodes heydeni Reitter (Fig. 4A)

Prothorax widest across base; eyes normal; antennal club three-segmented, very compact or round; head normal and usually at least partly visible from above; upper surface of body either distinctly hairy or covered with coloured scales

2

2 Head with a small ocellus positioned centrally between the compound eye. Length 2–5.9 mm

3

Head never with a median ocellus. Length 6.5–10 mm

Dermestes spp. (Fig. 4B)

3 Body covered with coloured scales. Antennae fit into sockets at front of prothorax. (Several species which feed on material of animal origin; occasionally found in unhygienic food stores)

Anthrenus spp. (Fig. 4C)

Body covered with hairs 44 Elytra evenly coloured or with a transverse pale

band in the basal third or with two small central white spots, but if evenly coloured or transversely banded then body length is usually 3–6 mm. First segment of hind tarsus only half (or less than half) as long as second segment; antennal club composed of three segments. (Several species that infest animal products and scavenge in stores of plant commodities.)

Attagenus spp. (Fig. 4D)

Elytra either evenly coloured or with a complex (sometimes delicate) pattern of coloration (never with two central white spots), but if evenly coloured then body length is less than 3 mm. First segment of hind tarsus as long as, or longer than, second segment; antennal club commonly with four or more segments. (Several species, including one major and serious pest, that infest various commodities, especially cereals, cereal products, oilseeds and oilseed cake.)

Trogoderma spp.

Comparaison avec des espèces similaires

Autres genres de la famille Dermestidae

Des dermestes d’autres genres que Trogoderma peuvent se trouver dansles denrées stockées (notamment Anthrenus, Attagenus et Dermestes).Les larves de divers genres de dermestes peuvent être distinguées àl’aide de la Fig. 5, et les adultes de divers genres peuvent être identifiésà l’aide de la clé de Haines (1991) (Tableau 1).

Tableau 1 Clé pour les adultes des genres Thorictodes, Anthrenus, Attagenus, Dermestes et Trogoderma de la famille Dermestidae trouvés dans les denrées stockées (adaptée de Haines, 1991)

1 Prothorax à base légèrement resserrée (formant une sorte de ‘cou’ large et court) et avec les trois-quarts antérieurs presque rond; yeux extrêmement petits et peu visibles (enfoncés dans une petite dépression sur le côté de la tête); massue antennaire à 3 articles, très compacte et presque ronde; tête petite et invisible du dessus, car dissimulée par le prothorax; corps beige et luisant portant quelques soies courtes. (Ravageur mineur de diverses marchandises; assez rare.)

Thorictodes heydeni Reitter (Fig. 4A)

Prothorax le plus large à sa base; yeux normaux; massue antennaire à 3 articles, très compacte ou ronde; tête normale et généralement au moins partiellement visible du dessus; surface supérieriuredu corps nettement poilue ou couverte d’écailles de colorées

2

2 Tête portant un petit ocelle placé au centre entre les yeux composés. Longueur 2–5,9 mm

3

Tête ne portant jamais d’ocelle médian. Longueur 6,5–10 mm

Dermestes spp. (Fig. 4B)

3 Corps couvert d’écailles colorées. Antennes fixées dans des cavités à l’avant du prothorax. (Plusieurs espèces s’alimentant sur des produits d’origine animale; trouvées occasionnellement dans des magasins d’alimentation mal entretenus

Anthrenus spp. (Fig. 4C)

Court couvert de poils 44 Elytres de couleur uniforme ou avec une bande

transversale pâle dans le tiers inférieur ou avec deux petites taches blanches centrales. Si couleur uniforme ou bande transversale, corps mesurant généralement 3–6 mm. Premier article du tarse postérieur mesurant seulement la moitié (ou moins de la moitié) du second article; massue antennaire composée de 3 articles. (Plusieurs espèces infestant des produits d’origine animale et occasionnellement dans des entrepôts de produits d’origine végétale.)

Attagenus spp. (Fig. 4D)

Elytres de couleur uniforme ou à motif coloré complexe (parfois délicat) ( jamais avec deux taches blanches centrales). Si couleur uniforme, corps mesurant moins de 3 mm de long. Premier article du tarse postérieur aussi long, ou plus long, que le second article; massue antennaire couramment à 4 articles ou plus. (Plusieurs espèces, dont un ravageur majeur et sérieux, infestant divers produits, en particulier les céréales et produits dérivés, les semences et tourteaux oléagineux.)

Trogoderma spp.




Other species of the genus Trogoderma

The genus Trogoderma includes about 115 species (Beal, 1982). Allknown species, except T. cavum Beal, were catalogued byMroczkowski (1968). Species other than T. granarium may also befound in stored products, but T. granarium is the only species havingeconomic importance. The other species are, in general, predatorswhich attack other stored products insects. During a 12-year surveyconducted in California, eight species of Trogoderma were found instored seeds, animal feed and grocery commodities (Strong &Okumura, 1966). Some closely resemble T. granarium.

LarvaeThe larvae of T. granarium may be separated from other Trogodermaspp. using the short key in Table 2 (see also Fig. 6). If necessary, larvaeof other species of Trogoderma may be identified with the keys of Beal(1956, 1960) and Peacock (1993).

AdultsThe short key in Table 3 may be used to distinguish adult T. granariumfrom some other Trogoderma spp. If necessary, other species can beidentified with the keys of Beal (1956), Banks (1994) and Mordkovich& Sokolov (1999). These keys include species occurring in storedproducts and therefore may be used during an identification ofTrogoderma adults detected in imported consignments.

A supplemental character allowing for separating adults of Trogo-derma granarium from other nearctic Trogoderma species is the shapeof anteromedian metasternal process (Fig. 2D). This process is rounded(Fig. 2D/a) in T. granarium, instead of nipple shaped (Fig. 2D/b) oroccasionally pyramidal (Fig. 2D/c) in other species (Okumura, 1954).

Mordkovich & Sokolov (1999) mention other Trogoderma specieswhich may be found in stored products. Among them T. longisetosumChao et Lee has been noticed as a stored products pest in China. Itis very similar to T. glabrum. Some tropical Trogoderma species maybe present on stored products, such as Trogoderma cavum Bealdescribed by Beal (1982) after examination of specimens infestingstored rice in Bolivia. Delobel & Tran (1993) provide an account oftropical species.

Table 2 Key to larvae of Trogoderma spp. found in stored products

1 Epipharynx with six papillae in distal sensory cup. Trogoderma spp. (non-granarium)

Epipharynx with four papillae in distal sensory cup 22 Terga uniformly creamy yellow to medium brown;

antecostal suture of eighth abdominal tergite absent or (rarely) weak and interrupted at several points; second segment of antenna with one seta

T. granarium

Terga dark grey; antecostal suture of eighth abdominal tergite present; no setae present on second segment of antenna

T. glabrum (Herbst)

Autres espèces du genre Trogoderma

Le genre Trogoderma comprend environ 115 espèces (Beal, 1982).Toutes les espèces connues, à l’exception de T. cavum Beal, ont étécataloguées par Mroczkowski (1968). Si d’autres espèces sont parfoistrouvées dans les denrées stockées, T. granarium est la seuled’importance économique. Les autres espèces sont en général desprédateurs qui attaquent d’autres insectes des denrées stockées. Aucours d’une prospection de 12 ans en Californie, huit espèces deTrogoderma ont été trouvées dans des semences stockées, des alimentspour animaux et des denrées alimentaires (Strong & Okumura, 1966).Certaines ressemblent beaucoup à T. granarium.

LarvesLes larves de T. granarium peuvent être séparées des autresTrogoderma spp. à l’aide de la clé du Tableau 2 (voir également Fig. 6).Si nécessaire, l’identification des larves d’autres espèces deTrogoderma peut être réalisée à l’aide des clés de Beal (1956, 1960) etPeacock (1993).

AdultesLa clé du Tableau 3 peut être utilisée pour distinguer T. granarium decertains autres Trogoderma spp. Si nécessaire, l’identification auniveau de l’espèce peut être réalisée à l’aide des clés de Beal (1956),Banks (1994) et Mordkovich & Sokolov (1999). Ces clés couvrent lesespèces présentes dans des denrées stockées et elles peuvent donc êtreutilisées pour identifier les adultes de Trogoderma détectés dans desenvois importés.

Un caractère supplémentaire permettant de distinguer les adultes deTrogoderma granarium des autres espèces néarctiques de Trogodermaest la forme du processus métasternal antéromédian (Fig. 2D). Il estarrondi chez T. granarium (Fig. 2D/a), et en forme de téton (Fig. 2D/b)ou occasionnellement pyramidal (Fig. 2D/c) chez les espèces nongra-narium (Okumura, 1954).

Mordkovich & Sokolov (1999) mentionnent également d’autresespèces de Trogoderma qui peuvent être trouvées dans les denréesstockées. Parmi elles, T. longisetosum Chao & Lee a été signalé commeravageur des denrées stockées en Chine. Il est très proche de T. gla-brum. Parmi les espèces de Trogoderma présentes dans les pays tropi-caux, certaines attaquent les denrées stockées, comme Trogodermacavum Beal. décrit par Beal (1982) après examen de spécimensinfestant du riz stocké en Bolivie. Pour les espèces tropicales, voirDelobel & Tran (1993).

Tableau 2 Clé des larves de Trogoderma trouvées dans les denrées stockées

1 Epipharynx avec six papilles dans la cavité sensorielle distale

Trogoderma spp. (non-granarium)

Epipharynx avec quatre papilles dans la cavité sensorielle distale

2

2 Tergum de couleur uniforme jaune crème à brun moyen; suture antécostale du huitième tergite abdominal absente ou (rarement) peu prononcée et interrompue en plusieurs endroits; deuxième article de l’antenne portant une soie

T. granarium

Tergum gris foncé; suture antécostale du huitième tergite abdominal présente; absence de soie sur le deuxième article de l’antenne

T. glabrum (Herbst)


Trogoderma granarium 309


Table 3 Key to adults of Trogoderma spp.

1 Dorsal pubescence unicoloured (rare species not known to occur in stored products)

Some Trogoderma spp. (non-granarium)

Hairs of dorsum of two or three colours. (The dorsal pubescence of T. granarium and a few other species is easily rubbed off. Any completely abraded specimen probably falls in this half of the couplet)

2

2 Elytra with a single antemedian band of light maculation, base of elytra rarely tending to be light as well

Some rare species not known to occur in stored products

Elytra with more than one band of light maculation, or with no bands of light maculation, or with pattern of three light bands insicated by areas of light pubescence

3

3 Form long and narrow, ratio of width (across base of elytra) to length (of pronotum and elytra) greater than 1 : 2.1; antennal fossa (Fig. 2C) with low and subacute carina on median two-thirds of posterior diagonal margin, open behind on lateral third; light coloured hairs of elytral fasciae almost entirely white; less than three percent light golden brown; elytral pattern as on Fig. 3 (present in Chile and USA; introduced to Germany and Sweden).

T. angustum (Solier)

Form relatively shorter, ratio of width to length 1: 2.0 or wider; antennal fossa more or less completely behind by acute posterior diagonal carina; light coloured hairs of elytral fasciae only rarely predominately white

4

4 Antennal cavity coarsely and confluently punctuate on all surfaces except for small smooth area near prosternal suture, punctures two or three times as large as facets of eye; female antennal club 5- or 6-segmented (present in the western states of USA).

T. simplex Jayne

Antennal cavity finely punctuate with punctures about as fine as facets of eye, or shining and minutely striate; female antennal club 3- or 4-segmented with seventh segment of antenna somewhat enlarged or not

5

5 Elytral cuticule unicolorous or vaguely mottled without a clearly defined pattern (at least in the nearctic forms); number of antennal segments varying from nine to 11; male antennal club with four or five segments (Fig. 2A/a); female antennal club with three or four segments (Fig. 2A/b, c); antennal fossa are not completely margined (Fig. 2C/e, f ).

T. granarium

Elytra with a definite pattern (although in some species, as ornatum, this pattern may be fine and intricate), the pattern visible either in the maculation or in the pubescence or both; antenna always of 11 segments; male antennal club of at least five segments; female antennal club of at least four segments

Other Trogoderma spp. (non-granarium)

Tableau 3 Clé des adultes de Trogoderma

1 Pubescence dorsale unie (espèces rares ne se trouvant pas dans les denrées stockées)

Certains Trogoderma spp. (non-granarium)

Soies dorsales de deux ou trois couleurs. (La pubescence dorsale de T. granarium et de quelques autres espèces s’arrache facilement. Tout spécimen complètement pelé appartient probablement à cette catégorie)

2

2 Elytres avec une seule bande antémédiane de couleur claire, base des élytres rarement également claire

Certaines rares espèces ne se trouvant pas dans les denrées stockées

Elytres avec plus d’une bande de couleur claire, ou aucune bande de couleur claire, ou avec des motifs de trois bandes claires et des zones de pubescence claire

3

3 Forme longue et étroite, rapport de la largeur (à la base des élytres) sur la longueur (pronotum et élytres) supérieur à 1 : 2,1; cavité antennaire (Fig. 2C) avec carènes (basses et presque pointues) sur les deux-tiers moyens de la bordure postérieure diagonale, ouverte vers l’arrière dans le tiers latéral; poils de couleur claire sur les fascies des élytres presque entièrement blancs; moins de 3% de couleur brun clair doré; motif de l’élytre comme à la Fig. 3 (présent au Chili et aux Etats-Unis; introduit en Allemagne et en Suède)

T. angustum (Solier)

Forme relativement plus courte, rapport de la largeur sur la longueur 1 : 2,0 ou plus; cavités antennaires plus ou moins complètement derrière les carènes postérieures diagonales; poils des fascies des élytres de couleur claire rarement majoritairement blancs

4

4 avités antennaires à grosses ponctuations sur toute leur surface, à l’exception de petites zones lisses près de la suture prosternale; ponctuations deux ou trois fois plus larges que les facettes de l’oeil; massue antennaire des femelles à 5 ou 6 articles (présent dans les états de l’ouest des Etats-Unis)

T. simplex Jayne

Cavités antennaires à ponctuations aussi fines que les facettes de l’oeil, ou brillantes et finement striées; massue antennaire de la femelle à 3 ou 4 articles, avec le septième article de l’antenne élargi ou non

5

5 uticule de l’élytre de couleur uniforme ou vaguement marbrée sans motif clairement défini (au moins dans les formes néarctiques); nombre d’articles de l’antenne variant de 9 à 11; massue antennaire du mâle à 4 ou 5 articles (Fig. 2A/a), de la femelle à 3 ou 4 articles (Fig. 2A/b, c); les cavités antennaire ne sont pas complètement marginées (Fig. 2C/e, f )

T. granarium Everts

Elytres avec un motif défini (chez certaines espèces, comme ornatum, ce motif peut être fin et intriqué); motif visible dans la coloration, dans la pubescence ou les deux; antenne toujours à 11 articles; massue antennaire du mâle à au moins 5 articles, de la femelle à au moins 4 articles

Autres Trogoderma spp. (non-granarium)




Requirements for a positive diagnosisThe procedures for detection and identification described in thisprotocol should have been followed. The characters that distinguishT. granarium from similar species listed in the section Identificationshould have been determined to be present.

Report on the diagnosisA report on the execution of the protocol should include:• information on the origin of the infested material; • an indication of the magnitude of the infestation (population density,

level of damage);• an indication of the number of specimens available for examination;• as far as possible, drawings or photographs (as relevant) of morpho-

logical features listed in the section Identification;• comments on the certainty or uncertainty of the identification.

Preserved specimens and microscope slides of the pest shouldbe kept.

Exigences pour un diagnostic positifLes procédures de détection et d’identification décrites dans ceprotocole doivent avoir été suivies. Les caractères qui distinguentT. granarium des espèces similaires listées à la section ‘Identification’doivent être présents.

Rapport sur le diagnosticLe rapport sur la mise en oeuvre du protocole doit comporter:• des informations sur l’origine du matériel infesté; • une indication de l’intensité de l’attaque (densité de population,

niveau des dégâts);• une indication du nombre de spécimens disponibles pour examen;• des dessins ou photographies (le cas échéant) des caractères mor-

phologiques listés dans la section Identification (recommandé);• une appréciation de la certitude ou non de l’identification.

Des spécimens préservés et lames microscopiques du ravageur doiv-ent être conservées.

Further information/Renseignements supplémentairesFurther information on this organism can be obtained from:/Desrenseignements supplémentaires sur cet organisme peuvent êtreobtenus auprès de:Main Inspectorate of Plant Protection, Central Laboratory, Zwirki i

Wigury 73, 87-100 Torun (Poland)

Acknowledgements/RemerciementsThis protocol was originally drafted by:/Ce protocole a été initialementpréparé par:W. Karnkowski, Main Inspectorate of Plant Protection, CentralLaboratory, Zwirki i Wigury 73, 87-100 Torun (Poland)

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