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Mesa-redonda - O impacto do controle biológico aplicado de pragas agrícolas, nos programas MIP: utopia ou realidade?
Dr. Bruno Zachrisson, (IDIAP, Panamá)
Dra. Regiane Bueno, (UNESP, Botucatu, Brasil)
Dr. Dirceu Pratissoli (UFES, Alegre, Brasil)
Dr. José Roberto Postali Parra (ESALQ-USP), Piracicaba,, Brasil)
Actualidad y Perspectiva do Controle Biológico de Insectos Plagas, em América Latina
Dr. Bruno Zachrisson, Instituto de Investigación Agropecuaria de Panamá, IDIAP, Panamá
Impacto Ecológico:
• Reducción de la biodiversidad nativa
• Dispersión de la especie
• Desequilibrio en el agroecosistema
Establecimiento de las Plagas:
• Escape de los enemigos naturales
• Capacidad de competir con especies nativas
• Adaptación a los agro-ecosistemas alterados
Halyomorpha halys (Heteroptera: Pentatomidae)
Distribución Geográfica: Halyomorpha halys
(chinche marrón marmoleada) es un insecto
originario de Asia. Actualmente está distribuida
en Asia (China, Japón, ambas Coreas y Taiwán),
en América (Estados Unidos y Canadá), en
Europa (Francia, Alemania, Italia, Liechtenstein
y Suiza) y en Oceanía (Guam y Nueva Zelanda)
(CABI, 2014). Esta plaga ha sido introducida
accidentalmente a distintos países. En Estados
Unidos fue detectada en 2001 y rápidamente
se dispersó del este al oeste de la Unión
Americana.
UF; 2010
Halyomorpha halys (Heteroptera: Pentatomidae) - Daños
Daños
H. halys es altamente polífaga ataca más de 100 especies de plantas
principalmente árboles frutales, maderables, ornamentales y
cultivos agrícolas. Para alimentarse extrae los jugos de la planta,
los adultos generalmente se alimentan de frutos y las ninfas de
hojas, tallos y frutos. El daño más importante es causado
cuando el insecto se alimenta de los frutos o semillas. Aunado a
esto H. Halys es considerado vector del fitoplasma Paulownia
sp, aunque solo ha sido detectado en Asia. La diseminación es
mediante el movimiento de mercancías y en vehículos
automotores.
Aphis glycines (Aphididae)
Huésped : Soja.
Huespedes alternativos: Más de 100,
incluyendo especies del género Rhamus.
Transmisión de virus: Soybean stunt virus,
Bean yellow mosaic virus y Peanut mosaic
virus, entre otros.
INVASIVE PENTATOMOIDEA Bagrada hilaris (Burmeister) C. Scott Bundy, Thomas M. Perring, Darcy A. Reed, John C. Palumbo, Tessa R. Grasswitz, and Walker A. Jones Halyomorpha halys (Stål) George C. Hamilton, Jeong Joon Ahn, Wenjun Bu, Tracy C. Leskey, Anne L. Nielsen, Yong- Lak Park, Wolfgang Rabitsch, and Kim A. Hoelmer Megacopta cribraria (F.) J. E. Eger, W. A. Gardner, J. K. Greene, T. M. Jenkins, P. M. Roberts, and D. R. Suiter Murgantia histrionica (Hahn) J. E. McPherson, C. Scott Bundy, and Thomas P. Kuhar Nezara viridula (L.) Jesus F. Esquivel, Dmitry L. Musolin, Walker A. Jones, Wolfgang Rabitsch, Jeremy K. Greene, Michael D. Toews, Cristiano F. Schwertner, Jocélia Grazia, and Robert M. McPherson Piezodorus guildinii (Westwood) C. Scott Bundy, Jesus F. Esquivel, Antônio R. Panizzi, J. E. Eger, Jeffrey A. Davis, and Walker A. Jones POTENTIALLY INVASIVE PENTATOMOIDEA Oebalus spp. and Arvelius albopunctatus (De Geer) J. E. McPherson and C. Scott Bundy
Regresión linear ajustada (R2 ) de la relación dependiente de la temperature en
función del diferentes biotipos de Telemomus podisi desarrollados en huevos de
Oebalus insularis
Biotipo a (SE) b (SE) T0 K adjR2
Señora -0.10131 (0.019906) 0.007807 (0.000822) 12.98 128.09 0.9469
Naranjal -0.10509 (0.022998) 0.007974 (0.000950) 13.18 125.41 0.9328
Calesa -0.10500 (0.025249) 0.008024 (0.001043) 13.09 124.63 0.9209
J. Hombron -0.10171 (0.020851) 0.007892 (0.000861) 12.89 126.72 0.9431
Chichebre -0.09996 (0.019631) 0.007767 (0.000811) 12.87 128.75 0.9478
General -0.10275 (0.021521) 0.007896 (0.000889) 13.01 126.65 0.9397
Tasa de desarrrollo de biotipos de Telenomus podisi en huevos de Oebalus insularis, a
diferentes temperaturas
• Adaptación a un
rango elevado de
plantas hospedantes
• Capacidad de
dispersion
• Elevado potencial
reproductivo
Número total de huevos y tasa de parasitismo de especies de Pentatomidae
(Heteroptera), recolectadas en el agro-ecosistema arroz (Oryza sativa) en las localidades
de Juan Hombrón, Coclé y Chichebre, Panamá.
Especie / Pentatomidae Número total de
masas
(posturas) de
huevos
Número total de
huevos
recolectados
(%)
Número de
huevos
parasitados
Tasa de
Parasitismo (%)
Oebalus insularis 84 1,512 (43.2%)1 1,298 85.8
Oebalus ornatus 32 480 (13.7%) 192 40.0
Oebalus pugnax 25 425 (12.4%) 94 22.1
Oebalus poecilus 7 98 (2.8%) 18 18.4
Mormidea pictiventris 35 420 (12.0%) 67 15.9
Mormidea ypsilon 12 120 (3.4%) 24 20.0
Euschistus nicaraguensis 19 228 (6.5%) 26 11.4
Proxis punctulatus 9 126 (3.6%) 11 8.7
Nezara viridula 5 90 (2.6%) 39 43.3 1Porcentaje de huevos recolectados, entre la floración y la fase de grano lechoso.
Tasa de parasitismo y especie de parasitoides de huevos de Oebalus insularis, en plantas
hospedantes asociadas al cultivo de arroz, en Panamá.
Especies Familia Tasa de parasitismo
(%)
Tasa de parasitismo /
Telenomus podisi
(%)
Tasa de parasitismo /
Trissolcus basalis
(%)
Cyperus iria Cyperaceae 14.2 e1 89.4 b 10.6 c
Cyperus rotundus Cyperaceae 9.8 f 81.2 c 18.8 b
Echinochloa colona Poaceae 92.6 a 96.4 a 3.6 e
Echinoclhoa crus-pavonis Poaceae 78.3 b 82.4 c 17.6 b
Eleusine indica Poaceae 23.1 d 78.3 d 21.7 a
Ischaemun rugosum Poaceae 21.9 d 82.6 c 17.4 b
Paspalum virgatum Poaceae 38.9 c 86.1 b 13.9 d
1Médias seguidas de la mesma letra, en cada columna no presentan diferencia estadística significativa, por medio de la prueba de Duncan (P<0.05).
“Innovación tecnológica para el desarrollo sostenible del agro y la soberanía alimentaria”
Tabla 4. Tasa de parasitismo y especie de parasitoides de huevos de Oebalus insularis, en plantas
hospedantes asociadas al cultivo de arroz, en Panamá.
Especies Familia Tasa de parasitismo
(%)
Tasa de parasitismo /
Telenomus podisi
(%)
Tasa de parasitismo /
Trissolcus basalis
(%)
Cyperus iria Cyperaceae 14.2 e1 89.4 b 10.6 c
Cyperus rotundus Cyperaceae 9.8 f 81.2 c 18.8 b
Echinochloa colona Poaceae 92.6 a 96.4 a 3.6 e
Echinoclhoa crus-pavonis Poaceae 78.3 b 82.4 c 17.6 b
Eleusine indica Poaceae 23.1 d 78.3 d 21.7 a
Ischaemun rugosum Poaceae 21.9 d 82.6 c 17.4 b
Paspalum virgatum Poaceae 38.9 c 86.1 b 13.9 d
1Médias seguidas de la mesma letra, en cada columna no presentan diferencia estadística significativa, por medio de la prueba de Duncan (P<0.05).
“Innovación tecnológica para el desarrollo sostenible del agro y la soberanía alimentaria”
Ninfas de O. insularis
alimentándose con arroz Ninfas de O. insularis
alimentándose con E.
colona
Postura de O. insularis
en E. alba
Evaluación de parámetros biológicos y reproductivos de Oebalus insularis Stal
(Heteroptera: Pentatomidae), en diferentes huéspedes (Oryza sativa, Eclipta
alba, Echinocloa colona).
TÍTULO e SUB TÍTULO do SLIDE
(a) (b)
Ninfa (a) y Adulto (b) de Oebalus insularis alimentándose de
Echinochloa colona, en parcelas de malezas colindantes al cultivo
del arroz.
Control Biológico Clásico de Plagas, en América Central (Antes – 1970)
Andrews et al., 1988
Plaga Enemigo Natural
E. Natural País Año Resultado
Aleurocanthus woglumi
Encarsia opulenta
Parasitoide Panamá, Costa Rica, El Salvador
1931 No establecido
Cosmopolites sordidus
Plaeius javanius Depredador Honduras 1942 No establecido
Ceratitis capitata Pachicrepoides vindemia
Parasitoide Costa Rica, Nicaragua
1955 Resultados no reportados
Diatraea saccharalis
Lixophaga diatraea Cotesia flavipes
Parasitoide Parasitoide
Panamá Panamá
1963 1963- 1978
Se estableció Se estableció (Supresión)
Control Biológico Clásico de Plagas, en América Central (Posterior - 1970)
Andrews et al., 1988
Plaga Enemigo Natural
E. Natural País Año Resultado
Hypothenemus hampei
Prorops nasuta Cephalonomia stephanoderes
Parasitoide El Salvador, Guatemala, Honduras
1974 Resultados no reportados
Planococcus citri Cryptolemus monstrozieri
Depredador Costa Rica 1975 Resultados no reportados
Diatraea saccharalis
Lixophaga diatraea Cotesia flavipes
Parasitoide Parasitoide
Panamá Panamá, Honduras, El Salvador Costa Rica
1963 1984 – 1985 1994
Se estableció Se estableció en Panamá; en Honduras y El Salvador no se estableció Se estableció
Control Biológico de Plagas, en América Central (1970 - 2005)
Zachrisson & Barba, 2017 (IOBC-SRNT)
Plaga Enemigo Natural E. Natural País Año
Spodoptera frugiperda
Telenomus remus Parasitoide Honduras, Nicaragua, El salvador
1987
Plutella xylostella Diadegma semiclausum
Paraitoide Honduras, Guatemala, Panamá
1984 1990
Diaphania hyalinata Diaphania Nitidalis
Trichogramma sp. Trichogramma sp.
Parasitoide Parasitoide
Panamá Panamá
2004 2004
Control Biológico de Plagas, en América Central (2005-2016)
Zachrisson & Barba, 2017 (IOBC-SRNT)
Plaga Enemigo Natural E. Natural País Año
Steneotarsonemus spinky (Ácaro)
Neoseiulus baraki N. barabensis
Depredador Panamá 2010
Diaphania hyalinata
Diaphania Nitidalis Rupela albinella
Trichogramma sp. Trichogramma sp. Telenomus rowani (Control natural)
Parasitoide Parasitoide Parasitoide
Panamá Panamá Panamá
2004 2004 2012
Control Biológico de Plagas, en América Central (2005-2016)
Zachrisson & Barba, 2017 (IOBC-SRNT)
Plaga Enemigo Natural E. Natural País Año
Steneotarsonemus spinky (Ácaro)
Neoseiulus baraki N. barabensis
Depredador Panamá 2010
Diaphania hyalinata
Diaphania Nitidalis Rupela albinella
Trichogramma sp. Trichogramma sp. Telenomus rowani (Control natural)
Parasitoide Parasitoide Parasitoide
Panamá Panamá Panamá
2004 2004 2012
Distribución de Biotipos A y B de Bemisia tabaci, en Cucurbitáceas y Solanáceas, de las provincias de Coclé y
Panamá. 2004
0
10
20
30
40
50
60
70
1 2
Serie1
Serie2
Serie3
Parcelas Infectadas (%)
A
A + B
B
A
A + B
B
Cucurbitáceas Solanáceas
BIOTIPOS
Mediante la investigación e innovación en manejo integrado de plagas (MIP), se manejo el complejo ¨ácaro-bacteria¨, Steneotarsonemus spinki en las zonas arroceras del país, logrando un incremento en el rendimiento de 68qq a 100qq/ha.
MANEJO INTEGRADO DE
Steneotarsonemus spinki
Distribución geográfica de la plaga
Steneotarsonemus spinki
• Daños reportados en: Bocas del Toro, Coclé, Panamá
(Chepo), Los Santos (Tonosí) y Chiriquí (Chiriquí)
• Disminución de los rendimientos 40-60%
País Año
EU (Louisiana)
China
Taiwán
Asia Tropical
Cuba
Haití y Republica
Dominicana
Panamá
1967
1970
1976
1985
1997
1998
2003
Distribución geográfica de la plaga
Steneotarsonemus spinki
• Daños reportados en: Bocas del Toro, Coclé, Panamá
(Chepo), Los Santos (Tonosí) y Chiriquí (Chiriquí)
• Disminución de los rendimientos 40-60%
País Año
EU (Louisiana)
China
Taiwán
Asia Tropical
Cuba
Haití y Republica
Dominicana
Panamá
1967
1970
1976
1985
1997
1998
2003
Reporte de Brachyplatys vahlii (Plataspidae),
en Panamá
BioInvasions Records (2016) Volume 5 in press © 2016 The Author(s). Journal compilation © 2016 REABIC
Open Access
Brachyplatys vahlii (Fabricius, 1787), an introduced
bug from Asia: first report
in the Western Hemisphere (Hemiptera: Plataspidae:
Brachyplatidinae)
Annette Aiello1*, Kristin Saltonstall1 and Victor Young2
1Smithsonian Tropical Research Institute, Apartado 0843-03092 Balboa,
Ancón, Panamá, Rep. de Panamá
2PO Box 0843-01466, Balboa, Ancón, Panamá, Rep. de Panamá
E-mail: [email protected] (AA), [email protected] (KS), victor-
[email protected] (VY)
*Corresponding author
Received: 22 August 2015 / Accepted: 22 October 2015 / Published online:
20 November 2015
Abstract
Brachyplatys vahlii (Fabricius, 1787) (Hemiptera: Plataspidae) was
first detected in Panama in 2012. It represents the second
introduction of the Plataspidae into the New World, its first report
from the Neotropics, and the first introduction of the genus
Brachyplatys into the New World. The bug was identified using
morphological characters and confirmed using molecular
techniques. This bug poses a potentially serious threat to several
important crops in Panama, including the popular Cajanus cajan,
known locally as guandú, and peach palm/pixbae palm (Bactris
gasipaes), widely cultivated throughout the Neotropics.
Key words: Bactris, Cajanus, Heteroptera, Panama, Plataspididae
A) Adultos de Brachyplatys vahlii,
alimentándose de Cajanus cajan
B. Vista dorso-lateral de adultos B.
vahlii.
C. Vista ventral de adultos de B.
valhii.
D. Masas de huevos de B. vahlii.
Paratelenomus saccharalis (Dr. Jones Walker – USDA – Stoneville – MS )
“Innovación tecnológica para el desarrollo sostenible del agro y la soberanía alimentaria”
Fig. 1. Muestreo del complejo de especies de Cicadellidae,
asociadas a la vegetación circundante a las palmas en estudio,
utilizando la red entomológica
• La identificación taxonómica de las especies de Cicadellidae recolectadas en el
área circundante a las palmas muestreadas, se realizó con apoyo de las claves
específicas (Ball, 1927; Young, 1952; 1968; Young y Davidson, 1959; Mead,
1965; Kramer, 1971; Linnavuori y DeLong, 1979; Cwikla, 1988; Marucci et al.,
2002; Dietrich, 2005; Lu et al., 2013). Las estructuras morfológicas características
de las especies de Cicadellidae, fueron observadas posterior al proceso de
clarificación de los ejemplares utilizando Hidróxido de Potasio al 10% (KOH
10%).
Muestreo del complejo de especies de Cicadellidae, asociadas
a la vegetación circundante a las palmas en estudio, utilizando
la red entomológica
0
50
100
150
200
250
300
350
400
450
500
MB-Sanas MB-SCAF G-Sanas G-SCAF RI-Sanas RI-SCAF
Nú
mer
o t
ota
l d
e in
div
idu
os
Agallinae Cicadellinae Deltocephalinae Gyponidae Typhlocybinae
Número total de individuos agrupados por las sub-familias de Cicadellidae, asociadas a la
vegetación circundante de palmas de coco sanas y las que presentan síntomas con
características aparentes de fitoplasma (SCAF), en las localidades de Miguel de la Borda
(MB), Gobea (G) y Río Indio (RI), provincia de Colón, Panamá.
“Innovación tecnológica para el desarrollo sostenible del agro y la soberanía alimentaria”
Análisis de correspondencia simple al 95% de confianza, aplicado a las sub- familias de
Cicadellidae, presentes en la vegetación circundante a las plantas sanas y con
síntomas con características aparentes de fitoplasma (SCAF), en las localidades
muestreadas en la provincia de Colón, Panamá.
Palmas Sanas Palmas SCAF
Agallinae Cicadellinae Deltocephalinae Gyponinae Typhlocybinae
-0,2
-0,1
0
0,1
-0,2 -0,1 0 0,1 0,2 0,3
F2 (
0.0
0 %
)
F1 (100.00 %)
Symmetric plot (axes F1 and F2: 100.00 %)
Columns Rows
0
100
200
300
400
500
600
Nú
mer
o d
e es
pec
ies
Palmas sanas Palmas con SCAF
Número total de individuos distribuidos por especies de Cicadellidae, asociadas a la
vegetación circundante a las palmas de coco sanas y con síntomas con características
aparentes de fitoplasma (SCAF), provincia de Colón, Panamá.
“Innovación tecnológica para el desarrollo sostenible del agro y la soberanía alimentaria”
Fig. 8. Redes tróficas de conectancia de Agallia panamensis en vegetación circundante a palmas sanas y con
sintomatología característica de fitoplasma. MB-Miguel de la Borda, G-Gobea, RI-Río Indio ---- conectancia
de Palmas sanas, ____ conectancia de Palmas enfermas. (Los valores representan la proporción de la relación
del número de la especie colectada en el complejo de malezas entre el número total de las especies).
0.73
Agallia Panamensis
(Cicadellidae)
P17 Sana y P35 SCAF (RI)
Sphagneticola trilobata (Asteraceae)
Hydrocotyle bonariensis (Araliaceae)
Panicum sp. (Poaceae)
0.28
Cochinilla rosada Maconellicoccus hirsutus (Hemiptera:
Pseudococcidae)
• 1994 Caribe 1997 (Colombia, Guyana Francesa y Venezuela) 2013 - Brasil
• Ataca: Más de 200 especies de plantas: cacao,
algodón, café, cítricos, camote, higo, varios legumbres, hibisco, pepino, papaya, uva y plantas ornamentales.
• Durante la alimentación, al alimentarse de las plantas, los insectos inyectan una toxina que atrofia el crecimiento de las hojas, inflorescencias y de los frutos jóvenes.
Anagyrus kamali
Cryptolaemus montrouzieri
Cryptolaemus montrouzieri
Agentes de Control Biológico de Maconellicoccus hirsutus (Hemiptera: Pseudococcidae)
Psilido asiáticos de los cítricos Diaphorina citri (Hemiptera: Psyllidae)
Adulto
Ninfa
• Enero 2003 Caribe –Actualmente Brasil e Florida.
• Transmite la enfermedad “Citrus greening”
• Áreas tropicales y subtropicales : Asia, Arabia Saudita, Honduras, Guadalupe, Brasil y Florida.
• Alta tasa de reproducción (las hembras pueden depositar hasta 800 huevos).
Helicoverpa armigera (Lepidoptera: Noctuidae)
/ Brasil-Panamá
Huésped: Adaptada a
los principales
rubros agrícola de
Brasil.
Distribución
geográfica: Europa,
Asia, Australia y
Oceanía.
EMBRAPA; 2014
•Comportamiento y la bioecología, del insecto-plaga.
• La correcta identificación, tanto del insecto-plaga como del enemigo natural (falta de taxonomistas).
•Infraestructura adecuada (laboratorios y equipos), necesarios para la investigación básica y aplicada, para programas de control biológico.
• El desarrollo de dietas artificiales, para la multiplicación de insectos-plagas, como plataforma de los porgramas de control biológico.
•El cambio de mentalidad del productor, dirigido al uso uni lateral del control químico. (Implementación de proyectos de plaguicidas selectivos a los enemigos naturales).
Desafíos del Control Biológico, en América
Latina
• La falta de apoyo en la inversión de ciencia y tecnología, dirigida a líneas de investigación innovadoras, como el control biológico.
• La falta de divulgación de resultados en revistas especializadas, debidamente indexadas, en la región.
• Formación de recurso humano especializado y permanente, que fortalezcan los programas de control biológico.
• La vinculación con centros de excelencia, líderes en control biológico, formación de grupos de trabajo con instituciones internacionales (Colaboración Internacional).
• La aparición y adaptación de plagas invasoras, producto de alteración de los
ecosistemas agrícolas y cambio climático, analizado integralmente
(plasticidad plantas hospedantes).
•Fortaleza de las instituciones de docencia superior e investigación y de
programas de control biológico.
• Replantear las estrategias de manejo de plagas, frente a los desafíos
actuales.
Sustentabilidad de los Ecosistemas
Agrícolas
• Solidez de Conocimiento
• Flujo de información (Sector Público – Privado)
• Credibilidad en los técnicos y productores
• Innovación Tecnológica
• Cambio de mentalidad del productor
La integración del Control
Biológico de Plagas em
los programas MIP, es una
Utopía o realidad?
MIP
CONTROL BIOLÓGICO
Feromonas
Par
asit
oid
es
Dep
red
ado
res
Pat
óg
eno
s
Parra, 2000