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MANUAL DE NORMAS DE PREVENCIÓN Y CONTROL

DE INFECCIONES INTRAHOSPITALARIAS HOSPITAL DR. HERNAN HENRÍQUEZ A.

ACTUALIZACIÓN AGOSTO 2008

Salve vidas lávese las manos

UNIDAD DE INFECCIONES INTRAHOSPITALARIAS

SERVICIO DE SALUD ARAUCANIA SUR HOSPITAL DR. HERNAN HENRIQUEZ A UNIDAD DE I.I.H.

UNIDAD DE INFECCIONES INTRAHOSPITALARIAS 2

INDICE: 2 Introducción 4 A. Estrategias básicas en prevención y control de Infecciones Intrahospitalarias: 5 Norma de Técnica Aséptica. 5 Normas de Lavado de Manos. 6 Normas de uso de guantes estériles. 8 Normas de uso de mascarilla. 9 Normas de uso delantal estéril. 11 Norma para la presentación del material estéril. 12 Norma de preparación de la piel para procedimientos invasores. 13 Normas de uso de antisépticos y desinfectantes. 14 Listado de antisépticos y desinfectantes disponibles 15 Norma de saneamiento básico del ambiente. 16 Manejo Aire y agua 17 Limpieza, desinfección, aseo 18

Manejo de desechos hospitalarios 19 Áreas de trabajo para clínicas de enfermería 22

Normas de manejo de la ropa de uso clínico. 23 B. Precauciones estándar y aislamientos hospitalarios: 24 Precauciones estándar 25 Precauciones según vía de transmisión y aislamientos hospitalarios 26 Precauciones de vía aérea 26

Precauciones de gotitas 27 Precauciones de contacto 28

Precauciones específicas 29 Precauciones para pacientes infectados o colonizados con microorganismos multiresistentes 29 Precauciones para pacientes con diarrea por Clostridium difficile 29 Precauciones en el manejo de pacientes con sarna noruega. 30 Tipo de precauciones y duración según patología infecciosa 31

Manejo de Pacientes con Enterococo resistente a vancomicina 34 C. Manejo de Brotes Intrahospitalarios: Normas de manejo de brotes 40 D. Normas de prevención de infecciones asociadas a procedimientos invasores: 1. Normas para la prevención de neumonía asociada a ventilación mecánica. 41 2. Normas para la prevención de neumonía nosocomial en pacientes no ventilados 45 3. Normas para la prevención de infecciones del tracto urinario asociada a

Catéter Urinario Permanentes (CUP) 47 4. Norma para la prevención de infecciones del torrente sanguíneo asociadas a

dispositivos intravasculares (CVC y periférico) 51 5. Normas de manejo de Sitio Operatorio 61 6. Normas de prevención de endometritis puerperal 67



E. Toma de Muestras para cultivo 69 1 Procedimientos de toma de muestras respiratorias 70 1.1 Lavado Bronquioalveolar (LBA) 70 1.2 Minilavado Bronquioalveolar (MiniLBA) 71 1.3 Aspirado Endotraqueal (AET) 72 1.4 Aspirado Nasofaríngeo (ANF) 72 1.5 Muestra Expectoración 73 1.6 Muestra Secreción Faríngea 73 2 Procedimientos de toma de muestras para hemocultivos y catéters venosos centrales (CVC) 74 2.1 Toma de muestra de hemocultivos 74 2.2 Muestras para cultivos de CVC 77 3 Procedimientos de toma de muestras de orina para cultivo 78 3.1 Orina de segundo chorro 78 3.2 Orina obtenida mediante recolector pediátrico 78 3.3 Orina obtenida a través de catéter vesical permanente: 79 3.4 Toma de muestra en pacientes con sonda vesical instalada hace 24 horas 79 3.5 Toma de muestra en pacientes con sonda vesical instalada hace 24 más de horas 79 3.6 Punción vesical 79 3.7 Cateterización vesical transitoria 79 4 Procedimiento para Toma de Muestras de Líquido Cefalorraquídeo 79 5 Procedimientos para Toma de Muestras de Cavidades Serosas 80 6 Procedimientos de Toma de Muestras de Tracto Genital 81 7 Procedimientos de Toma de Muestras de Tracto Gastrointestinal 83 8 Procedimientos de Toma de Muestras Oculares 84 9 Procedimientos de Toma de Muestras Oticas 84 10 Procedimientos de Toma de Muestras de Piel y Tejidos Blandos 85 11 Procedimientos de Toma de Muestras para Infección Articular, Ósea y de Médula Ósea 87 12 Procedimientos de Toma de Muestras de Aguas de Diálisis 88 F. Uso racional de antimicrobianos y guías de profilaxis y tratamientos 89 Antimicrobianos de uso restringido o supervisado 89 Profilaxis antibiótica en procedimientos quirúrgicos. 91 Uso Antibióticos profilácticos y terapéuticos en Cirugía, Ortopedia y Traumatología infantil 96 Norma de uso de antibióticos en pediatría 98 Uso racional de antibióticos en el manejo de pacientes pediátricos oncológicos 106 Esquemas profilácticos de endocarditis infecciosa (E.I). 108 Tratamiento antibiótico de endocarditis infecciosa. 112 Profilaxis antibiótica en adultos 118 Uso racional de antimicrobianos en neumonía adquirida en la comunidad. 119 Uso de antibióticos en neumonía asociada a ventilación mecánica 120 G. Salud del personal: 122 Restricciones y exclusiones laborales 122 Exposiciones laborales no cortopunzantes 123 Exposiciones de riesgo biológico de tipo cortopunzantes. 124 Exposiciones a tóxicos químicos 130

ANEXO 1: LISTADO DE ANTIBIÓTICOS 141



INTRODUCCION

Las Infecciones Intrahospitalarias (IIH) son complicaciones frecuentes y severas de la atención hospitalaria con un alto costo asociado y constituyen un problema de salud pública. Además son consideradas uno de las mejores indicadores de calidad de la atención hospitalaria, dado su incidencia, gravedad y que son el resultado de condiciones relevantes y modificables de las prácticas de atención de pacientes. Como resultado de la creciente complejidad de la atención hospitalaria asociada al envejecimiento de la población, el aumento de patologías crónicas; de las inmunodeficiencias adquiridas o primarias, la mayor posibilidad de sobrevida de los recién nacidos con prematurez extrema, la incorporación de herramientas tecnológicas para efectuar procedimientos diagnósticos y terapéuticos, muchos de ellos invasores, existe cada día mayor riesgo de desarrollar IIH. El gran desafío en la actualidad es dar una atención más segura a nuestros pacientes a través de la prevención de las IIH, dado que son una complicación prevenible si se implementan programas de intervención adecuados, orientados principalmente a mantener un sistema de vigilancia epidemiológico activo y al desarrollo de normas de los procedimientos derivados de la atención, utilizando para ello conocimientos avalados científicamente, basados en la evidencia disponible y actualizada. En este contexto, el presente Manual es un material de consulta clave, elaborado considerando las recomendaciones centrales del Ministerio de Salud, los Manuales previos y la revisión bibliográfica actualizada, realizado por la Unidad de IIH del Hospital Dr. Hernán Henríquez A. de Temuco, que cuenta con un Programa de Prevención y Control de IIH desde 1983 y que pretende contribuir a la mejoría de la calidad en el ámbito de las IIH y en el marco de la autogestión. Además en esta versión se incluyen las recomendaciones para el uso profiláctico y terapéutico de antibióticos elaborada por el Comité de antibióticos. La publicación de estas normas deroga toda la normativa anterior y su vigencia será de un plazo no superior a tres años, cualquier variación de éstas, se dará a conocer por escrito en forma oportuna.

Dr. Ariel Ramos Inostroza Director del Hospital Dr. Hernán Henríquez A.

Temuco Unidad de IIH: Dr. Pedro Lorca Dra. Helen Stegmaier EU Claudia Salazar EU Marcela Vega



A. ESTRATEGIAS BÁSICAS EN PREVENCIÓN Y CONTROL DE IIH: A.1.- NORMA DE TÉCNICA ASÉPTICA

Nombre Norma: Norma de Técnica Aséptica

Objetivo:

Disminuir la contaminación microbiana de fuentes animadas e inanimadas durante los procedimientos de la atención clínica.

Responsables de cumplimiento: Todo los miembros del Equipo de Salud: - Médicos. - Enfermeras - Técnicos Paramédicos - Auxiliares de servicio - Otros profesionales - Alumnos - Supervisores (as) de Servicios y Unidades que deben cautelar su

cumplimiento.

Definiciones y clasificación: Corresponden al conjunto de medidas que se toman durante los procedimientos de atención a los pacientes que incluye:

1. Lavado de manos clínico y quirúrgico 2. Uso de guantes estériles 3. Uso de mascarillas 4. Uso de delantal estéril. 5. Uso de campo estéril para realizar los procedimientos clínicos. 6. Antisepsia de la piel del paciente por medio de limpieza y uso de antisépticos. 7. Uso de material estéril

Indicaciones: Técnica aséptica:

Cada vez que exista ruptura de los mecanismos normales de defensa

- Intervenciones quirúrgicas mayores y menores - Procedimientos invasores mayores y menores

Otros: - Preparación y proceso de esterilización de los materiales y equipos. - Preparación de Equipos de Apoyo Ventilatorio. - Preparación de Nutrición Parenteral. - Etc.

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA

- La técnica aséptica es de cumplimiento obligatorio para garantizar la calidad de la atención al paciente. - Las medidas a implementar se debe adecuar al procedimiento clínico que se realizará, al riesgo y la gravedad de

las infecciones que se quiere prevenir y al grado de contaminación microbiana, a través de la limpieza, desinfección y esterilización.

- Sin excepción se debe aplicar en todos aquellos procedimientos en que se accede a cavidades normalmente estériles del organismo y aquellos en que las consecuencias de una infección sean graves o pongan en riesgo la vida del paciente.

- Debe aplicarse en todos los procesos de la atención clínica



A.1.1.- NORMA DE LAVADO DE MANOS Nombre Norma: Norma de Lavado de Manos

Objetivos:

- Reducir la flora microbiana de las manos utilizando la medida más efectiva para la prevención y control de infecciones.

- Reducir la transmisión de microorganismos desde el personal a los pacientes y de los pacientes al personal.

- Eliminar la flora microbiana transitoria de las manos del personal. Responsables de cumplimiento: Todo el Equipo de Salud:

- Médicos. - Enfermeras. - Matronas. - Técnicos Paramédicos. - Auxiliares de servicio. - Otros profesionales. - Docentes y alumnos de pre y postgrado. - Jefes de CCRR, Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento - Supervisores que deben supervisar su cumplimiento

Definiciones y clasificación: 1. Lavado clínico de manos: aquel que se debe realizar para procedimientos menores o para la atención general de los pacientes

2. Lavado quirúrgico de manos: para procedimientos invasivos y cirugías. 3. Asepsia de manos en seco: asepsia de manos con uso de alcohol gel.

Indicaciones: 1. Lavado clínico de manos: 2. Lavado quirúrgico de manos: 3. Asepsia de manos en seco con

alcohol gel

- Antes de empezar la jornada de trabajo - Antes de manejar material estéril - Antes de atender a cada paciente - Después de atender a cada paciente - Después de tomar contacto con la Unidad del paciente - Después de manejar material contaminado - Después de finalizar la jornada de trabajo - Después de ir al baño, toser, limpiarse la nariz, etc. - Intervenciones quirúrgicas mayores - Intervenciones quirúrgicas menores - Procedimientos invasivos mayores:

o Instalación catéter venoso central o Punción lumbar o Punción pleural o Otros.

- Antes de atender a cada paciente - Después de atender a cada paciente - Después de tomar contacto con la Unidad del paciente - Previo a realizar procedimientos invasores menores - Después de manejar material contaminado - En la atención de pacientes con precauciones de transmisión excepto

Clostridium difficile. - Después de ir al baño, toser, limpiarse la nariz, etc.




- El personal debe usar las uñas cortas y limpias. - No debe usar uñas artificiales ni pintura de uñas (esmalte). - Antes del lavado se deben retirar todas las joyas de las manos (reloj, anillos, argollas y otros). - Las mangas del delantal deben estar sobre el codo. - El primer lavado de la jornada laboral debe ser con agua y jabón. - Se debe hacer énfasis en el lavado entre los dedos, dado que son las áreas donde se encuentra el mayor número

de microorganismos. - La duración del lavado de manos clínico debe ser de 15 a 30 segundos - El lavado clínico de manos se realiza con jabón antiséptico de triclosan al 0,5% o al 0,3%. - El uso de jabón cosmético para el lavado clínico es de excepción, en casos de dermatitis a repetición. - Previo a efectuar el lavado quirúrgico de manos debe colocarse el gorro y la mascarilla - La duración total del lavado quirúrgico debe ser de 5 minutos para procedimientos invasivos o para la primera

cirugía del día, luego la duración disminuye a 3 minutos por el efecto residual del antiséptico. - El lavado quirúrgico debe realizarse con povidona jabonosa al 10%. - El lavado quirúrgico con Clorhexidina jabonosa al 2% está indicado sólo en casos de alergia a povidona o cirugía. - El correcto uso de jabones quirúrgicos reemplaza el escobillado, este último es un factor que aumenta las lesiones

de piel, por lo que se ha eliminado. - El personal con lesiones cutáneas debe abstenerse de la atención directa de pacientes hasta el restablecimiento de

la piel. - El uso de guantes no reemplaza el lavado de manos, por lo que debe realizarse siempre, incluso posterior a

retirarlos. - La asepsia de manos en seco debe realizarse con alcohol gel (alcohol etílico al 70% en gel) - El uso del alcohol gel no es efectivo para la asepsia de manos si existe presencia de materia orgánica o suciedad

evidente en las manos. - La efectividad de la asepsia en seco debe considerar la fricción hasta la evaporación completa del gel de las

manos. Descripción de procedimientos 1. Lavado clínico de manos: 2. Lavado quirúrgico de manos:

- Retirar joyas de manos y muñecas. - Subir mangas sobre el codo. - Abrir la llave del agua, mojar manos y antebrazos. - Aplicar jabón del dispensador en la medida recomendada por el fabricante. - Friccionar las manos produciendo abundante espuma, primero las palmas, luego el

dorso, hacer énfasis en los espacios interdigitales y al final muñecas, manteniendo siempre las manos más altas que los codos.

- Enjuagar con agua corriente, eliminando todo resto de jabón. - Secar primero las manos y luego las muñecas con toalla individual y desechable. - Cerrar las llaves con el codo, rodilla o toalla, sin contaminar las manos. - Desechar la toalla

1. Retirar joyas y accesorios de manos, muñecas y antebrazos. 2. Abrir la llave de agua, regular a la temperatura adecuada y dejar correr el agua. 3. Mojar manos y antebrazos. 4. Tomar del dispensador una porción de jabón y friccionar las manos produciendo

abundante espuma. 5. Frotar vigorosamente las manos con énfasis en los espacios interdigitales,

luego muñecas y antebrazos, manteniendo las manos más altas que los codos. 6. Enjuagar manos y antebrazos tratando que el agua escurra desde la punta de

los dedos hacia los codos. 7. Repetir los pasos del 4 al 6.



3. Asepsia manos en seco con

alcohol gel

8. Cerrar llaves del agua con codos o rodillas según las características de la instalación.

9. Dirigirse al quirófano abriendo la puerta con la espalda, manteniendo manos en alto.

10. Secar manos y luego antebrazos con compresa estéril

- Retirar joyas de manos y accesorios de manos, muñecas y brazos - Dispensar dosis suficiente de alcohol gel sobre la palma de la mano - Friccionar las manos incluir espacios interdigitales y luego muñecas - Esperar hasta que se seque totalmente el producto

Indicadores de calidad:

Supervisión de lavado de manos.

Numerador = Nº de servicios clínicos con Supervisión en Lavado de Manos ejecutado Denominador = Nº total de Servicios o Unidades clínicas X 100

Estándar o umbral de evaluación

Primer año 50% Segundo año 70% Tercero y más 80%

Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990 - Manual de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias MINSAL 1993. - Garner J, Fabero M. Guideline for hand washing and hospital environmental control.

Center for Disease Control, Atlanta, 1985. - Infección Intrahospitalaria, Boletín Técnico SC Johnson, División Hospitalaria, Nº

2/96, 1998. - Rutala W.A. “Chemical Germicides in Health Care”. International Symposium 1994,

panel discussion, pag.215. - CDC, Guideline for Hand Hygiene in Health –Care Settings Recommendations of the

Healthcare Infections Control Practices Advisory Committee and the HICPAC/ SHEA/ APIC/ IDSA. Hand Hygiene Task Force, Vol.51/ October 25, 2002.

- Hygiene of the Skin: When Is Clean Too Clean? Emerging Infectious Diseases. March-April 2001, Vol. 7, Nº 2.

A.1.2.- NORMA DE USO DE GUANTES ESTÉRILES:

Nombre Norma: Norma de uso de guantes estériles

Objetivos:

- Disminuir la transmisión de microorganismos de las manos del personal al paciente durante los procedimientos.

- Mantener la técnica estéril.

Responsables del cumplimiento: Todo el Equipo de Salud: - Médicos. - Enfermeras - Técnicos Paramédicos - Otros profesionales - Alumnos - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento

Indicaciones de Uso:

- Procedimientos invasores en cavidades estériles - Procedimientos quirúrgicos mayores y menores.




- Los guantes son de un sólo uso por lo que deben desecharse posterior a su utilización. - Antes y después de usarlos se deben lavar las manos - El uso de guantes no reemplaza el lavado de manos. - Todo miembro del equipo quirúrgico que tenga contacto directo con el campo quirúrgico debe usar guantes

estériles. - El operador y el ayudante que participan de procedimientos invasores deben usar guantes estériles.

Descripción del procedimiento 1. Colocar los guantes:

2. Retiro de los guantes:

- Lávese las manos con jabón antiséptico según norma - Abra el paquete de guantes. - Tome el primer guante por su cara interna, es decir, la cara que estará en

contacto directo con su mano. - Coloque el primer guante sin tocar la cara externa. - Tome el segundo guante con la mano ya enguantada, por su cara externa, es

decir, por el pliegue del puño. - Acomode ambos guantes sin tocar la cara que está en contacto con la piel. - Para retirar el primer guante, tome el borde por la cara externa y dé vuelta

completamente el guante. - Para retirar el segundo guante, tómelo del puño, dé vuelta completamente el

guante y deseche. - Lave y seque las manos.

Bibliografía: - República de Chile. MINSAL. Normas de Aislamiento y Manual de Procedimientos.1999; 8 : 53-54.

A.1.3.- NORMA DE USO DE MASCARILLA:

Nombre Norma: Norma de uso de Mascarillas

Objetivos:

- Prevenir la transmisión de microorganismos que se propagan por el aire o gotitas en suspensión y cuya puerta de entrada o salida es la vía aérea.

- Proteger al personal de salud del contacto con secreciones, fluidos corporales o drogas oncológicas.

Responsables de cumplimiento: Todos los profesionales y no profesionales del Equipo de Salud: - Médicos. - Enfermeras - Técnicos Paramédicos - Auxiliares de servicio - Otros profesionales y alumnos - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento

Definiciones y clasificación: 1. Mascarilla quirúrgica convencional: sirve de barrera para microorganismos habituales del árbol respiratorio superior.

2. Mascarilla alta eficiencia: sirve de barrera para microorganismos menores a 0.3 micrones de diámetro y de alta resistencia al ambiente como bacilo de tuberculosis.



Indicaciones de Uso: 1. Mascarilla quirúrgica:

2. Mascarilla alta eficiencia tipo N95 (por ej.: 3M 1860):

- Procedimientos invasivos en cavidades estériles - Procedimientos quirúrgicos. - Parte de las precauciones estándar frente al riesgo de contacto con sangre

o con fluidos corporales de alto riesgo. - Precauciones de vía aérea y de gotitas. - Traslado de pacientes con indicación de precauciones de vía aérea o

gotitas.

- Atención de pacientes con Tuberculosis Pulmonar bacilífera y SARS. Puede ser usada por el mismo personal durante todo el día, sin intercambiarla. Esta mascarilla tiene una eficiencia de 95% de filtración vs la mascarilla quirúrgica que tiene un 50% para este bacilo.

- Utilizar en los pacientes neutropénicos en su traslado dentro del recinto durante remodelaciones.

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA - Para ser una barrera efectiva, la mascarilla debe ser del material adecuado para cumplir con los requisitos

de filtración y permeabilidad suficiente. - Las mascarillas deben ser desechables y de un sólo uso. - Debe colocarse previo a iniciar el procedimiento. - Debe utilizarse por todos aquellos que participen en procedimientos invasores y quirúrgicos. - No deben usarse colgadas al cuello o en los bolsillos. - Si se humedece deja de cumplir su función de filtro y debe cambiarse. - Siempre que se toque la mascarilla, por ejemplo, para acomodarla o en un movimiento accidental, deben

lavarse las manos. - El uso inadecuado de mascarilla aumenta la posibilidad de transmisión de microorganismos y da falsa

seguridad. - Las mascarillas protegen tanto al paciente como al personal.

Descripción del procedimiento 1. Colocar la mascarilla

2. Retirar la mascarilla

- Colocarla cubriendo nariz, boca y vello facial. - Amarrarla tomando solamente las tiras. - Atar primero la tiras superiores y luego las inferiores. - Moldear a la altura de la nariz para que quede cómoda y segura. - Desabrochar las tiras desprendiendo las amarras inferiores y después las

superiores de modo que la mascarilla no contamine la ropa del operador al caer sobre ella.

- Eliminar la mascarilla. - Lavar las manos después de eliminarla.

Bibliografía: - República de Chile. MINSAL Normas de áreas críticas. 6: 58, 1990, Santiago Chile. - República de Chile. MINSAL Circular Nº3F/68. Actualiza Circular Nº 3f/17 de Febrero

de 1988 “Precauciones Universales Con Sangre y Fluidos Corporales” 31 de Agosto de 1989.

- República de Chile. MINSAL Normas de Aislamiento y Manual de Procedimientos.1989; 8 : 47-48.Circular Nº3F/68

- República de Chile. MINSAL Manual de Prevención y Control de las IIH y Normas del Programa Nacional, 1993: 89-90

- República de Chile. MINSAL. Recomendaciones y Actualización de la Normativa de Aislamiento de Pacientes del Programa de Infecciones Intrahospitalarias. Circular 46: 15 sept. 1998.



A.1.4.- NORMA DE USO DE DELANTAL ESTÉRIL: Nombre Norma: Norma de uso de delantal estéril

Objetivos:

- Disminuir la posibilidad de contaminación microbiana durante los procedimientos invasores o quirúrgicos realizados a los pacientes.

- Establecer una barrera mecánica para evitar el traspaso de microorganismos desde el personal al paciente y viceversa.

Responsables del cumplimiento: - Todo el personal profesional y no profesional del área de atención clínica - Supervisores que deben cautelar su cumplimiento

Definición: - Delantal o bata quirúrgica de género con mangas, que ha sido sometido a un proceso de esterilización

- Delantal o bata desechable en envase estéril de fábrica Indicaciones de Uso:

- Procedimientos invasores en cavidades estériles:

o Instalación de catéter venoso central o Punción pleural, etc.

- Todos los procedimientos quirúrgicos mayores y menores.

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA - Todo miembro del equipo quirúrgico que tenga contacto directo con el campo quirúrgico debe usar delantal

estéril. - El delantal debe ser lo suficientemente amplio para que cubra totalmente la ropa. Para procedimientos

quirúrgicos son recomendables los modelos envolventes, puesto que cierran las aberturas en la espalda y proporcionan una superficie estéril más amplia.

- El delantal debe ser de material resistente a la humedad en las mangas y región torácica hasta bajo a cintura. En caso de no contar con estos delantales, se debe usar pecheras plásticas estériles en intervenciones donde exista la posibilidad de salpicadura de sangre o secreciones.

- Los delantales de género deben ser largos, con mangas largas y puños. - Deben estar indemnes para que cumplan su función de barrera; amarras, costuras y puños en buen estado. - Los delantales quirúrgicos se consideran estériles por delante desde la cintura a los hombros y las mangas. - La zona del delantal que cubre las axilas y la espalda se considera no estéril.

Descripción del procedimiento 1. Colocar el delantal:

2. Retiro:

- Realizar lavado de manos quirúrgico, según norma - Tomar el delantal por el cuello - Extenderlo sin tocar superficies no estériles - Colocarse el delantal manipulándolo por la cara interna - Luego, tomar las amarras que cuelgan desde la cintura lo más alejado del

cuerpo posible y entregárselas al ayudante sin contaminar - El ayudante debe terminar de fijar el delantal por medio de las amarras en la

espalda

- Retire los guantes - Desate primero las cintas de la cintura y luego las del cuello. - Saque la primera manga introduciendo el dedo de la otra mano por debajo del

puño. - Saque la segunda manga usando la primera para ayudar a deslizarla. - Deséchelo.

Bibliografía: - República de Chile. MINSAL Normas de áreas críticas. 6: 58, 1990. Santiago, Chile.



A.1.5.- NORMA DE PRESENTACIÓN DE MATERIA ESTÉRIL: Nombre Norma: Norma de presentación de material estéril

Objetivo:

- Evitar la contaminación del material estéril durante los procedimientos que

requieren técnica aséptica.

Responsables del cumplimiento:

- Todos los miembros del Equipo de Salud: profesionales y no profesionales - Supervisores de los Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento

Definición:

Material estéril: Todos aquellos insumos o instrumental que han sido sometidos a un proceso de esterilización.


- Siempre que se manipule material estéril se deben realizar un lavado de manos previo. - El que recibe el material debe usar guantes estériles. - El material estéril debe tener claramente señalada su condición a través de controles químicos interno y externo. - Todo el material debe contar con la fecha que establezca su período de vigencia de la esterilización. - Los materiales cuyos envoltorios no se encuentren indemnes o estén húmedos, pierden su condición de

estériles y deben ser reprocesados. - Se debe usar material e instrumental estéril o sometido a desinfección de alto nivel si se accede a áreas

normalmente estériles. - Se considera material estéril aquel esterilizado por los métodos actualmente aceptados y por los tiempos

necesarios.

Descripción del procedimiento

- Lavar las manos antes de manipular el material estéril. - Verificar las fechas de vencimiento, indemnidad del envoltorio y correcto viraje

del control químico externo. - Abrir el equipo sin contaminar su interior. - Colocar el equipo en una superficie limpia, seca y segura. - Ubicar el material estéril a una distancia adecuada que permita su

manipulación sin contaminar. - Verificar el correcto viraje del control químico interno del material. - Determinar dentro del área estéril, un área contaminada para ir dejando el

material utilizado.



A.1.6.- NORMA DE PREPARACIÓN DE PIEL PARA PROCEDIMIENTOS INVASIVOS: Nombre Norma: Norma de preparación de piel para procedimientos invasores

Objetivos:

- Reducir la posibilidad de contaminación microbiana durante los procedimientos invasores

- Disminuir la flora bacteriana transitoria y residente de la piel del paciente. Responsables del cumplimiento: - Todos los miembros del Equipo de Salud: profesionales y no profesionales

- Supervisores que deben Supervisar su cumplimiento

Definición: - Proceso en que se realiza un aseo prolijo y posteriormente se aplica un antiséptico en la zona de la piel del paciente que se va a someter a un procedimiento invasor.

Indicaciones de Uso:

- Procedimientos invasores: o Instalación de catéter venoso central o Punción lumbar o Punción pleural

- Todos los procedimientos quirúrgicos mayores y menores.


- Siempre debe realizarse, previo a cualquier procedimiento invasivo que traspase la barrera de la piel. - En los procedimientos en cuello y zonas adyacentes se debe recoger y proteger el cabello del paciente con gorro. - No se debe rasurar, si el vello del paciente interfiere en el procedimiento, cortarlo con máquina eléctrica (clipper)

previo a la limpieza por arrastre. - Tanto la limpieza con jabón antiséptico como la aplicación del antiséptico se debe realizar desde el centro de la

zona hacia la periferia. - El jabón antiséptico debe aplicarse friccionando para lograr un mayor efecto germicida - El lavado se debe efectuar con povidona jabonosa a menos que exista contraindicación (alergia) - El antiséptico a utilizar es povidona yodada al 10%, con excepción de Neonatología donde se usará como

antiséptico Clorhexidina o alcohol al 70% - En caso de personas alérgicas utilizar alcohol al 70 %. - Previo a iniciar el procedimiento se debe esperar el tiempo de acción del antiséptico que es de 2 minutos para

povidona yodada y hasta la evaporación en caso de productos alcohólicos. Descripción del procedimiento

- Lavado de manos del operador. Uso de guantes de procedimiento. - Definir una amplia zona a preparar. - Seguir los protocolos de pabellón en caso de cirugías. - Realizar limpieza por arrastre con lavador quirúrgico (Povidona Jabonosa) desde

el centro hacia fuera. - Enjuagar y secar la piel para aplicar antiséptico desde el centro hacia fuera. - Esperar el tiempo de acción del antiséptico.

Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990 - Manual de Prevención y Control de I.I.H. y Normas del Programa Nacional de I.I.H.,

MINSAL, 1993. - CDC. Guideline for Prevention of surgical site infection 1999 http://wwwcdc.gov

http://wwwcdc.gov/



A.2.- NORMA SOBRE USO DE ANTISEPTICOS Y DESINFECTANTES: Nombre Norma: Norma sobre el uso de antisépticos y desinfectantes Objetivos:

- Establecer responsabilidades en el manejo y cumplimiento de esta normativa. - Establecer definiciones de desinfectantes y antisépticos. - Establecer un listado único de los desinfectantes y antisépticos más adecuados

para nuestro Hospital. - Establecer las concentraciones de uso, conservación y manipulación de estos

agentes y sus indicaciones Responsables : UNIDAD DE INFECCIONES INTRAHOSPITALARIAS:

- Seleccionar los desinfectantes y antisépticos más adecuados de acuerdo a las necesidades de los servicios y/o unidades.

- Será la única instancia que incorporará o eliminará el uso de estos agentes químicos en el establecimiento.

FARMACIA: - Mantener actualizado el arsenal de antisépticos y desinfectantes - Mantener en cantidades suficientes los productos. - Supervisar que éstos cumplan con las características señaladas por el

fabricante en cuanto a concentración, almacenamiento, duración, etc. - Centraliza la distribución de estos productos, en las concentraciones listas

para su uso, por lo tanto: - No debe entregar productos para ser trasvasijados en los servicios. - Supervisa que los envases sean adecuados en tamaño y calidad y

que cada frasco sea claramente rotulado con el producto que contiene, concentración y fecha de vencimiento.

ENFERMERAS Y MATRONAS SUPERVISORAS: - Se encargarán de mantener en cantidades suficientes los productos. - Supervisarán el uso correcto y conservación de estos productos en los

servicios y unidades a su cargo. - Solicitarán al producto a Farmacia de acuerdo a necesidades. - Utilizarán el conducto regular para solicitar cualquier cambio de producto.

PERSONAL MEDICO Y PARAMEDICO: - Debe conocer las propiedades de los antisépticos y desinfectantes en cuanto a

indicaciones, actividad, efecto residual, efectos adversos, etc. Definiciones y clasificación: 1. LIMPIEZA: Es la eliminación por acciones mecánicas de la materia orgánica y

suciedad. Es condición indispensable previa a la aplicación de antisépticos o desinfectantes.

2. DESINFECCIÓN: Es la destrucción de microorganismos en objetos inanimados que aseguran la eliminación de las formas vegetativas, pero no asegura la eliminación de las esporas bacterianas.

3. DESINFECTANTE: Agente químico que destruye microorganismos en objetos inanimados, pero no elimina esporas. Hay 3 niveles: alto, intermedio y bajo. • Alto: elimina las formas vegetativas de las bacterias, bacilo de la

Tuberculosis, hongos y virus. • Intermedio: actúa sobre las formas vegetativas de los microorganismos,

exceptuando las esporas. • Bajo: su acción alcanza sólo las formas vegetativas. Elimina sólo algunos

virus, hongos y no elimina las esporas. 4. ANTISEPTICO: Agente químico que destruye microorganismos patógenos en

la piel o tejidos vivos.



5. ESTERILIZACIÓN: Es la eliminación completa de toda forma de vida microbiana que puede obtenerse a través del uso de métodos químicos, físicos o gaseosos

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA - Se deben mantener en los envases del fabricante y con tapa para evitar la evaporación y contaminación. - Nunca mezclar antisépticos ni desinfectantes diferentes en un mismo envase. - Nunca devolver al envase original restos de antisépticos no utilizados - Se deben mantener claramente rotulados los envases indicando además la fecha de vencimiento. - Respetar las instrucciones dadas por el fabricante (protección de luz, calor etc.) - Se recomienda atenerse al uso de estos productos, ya que el establecimiento no dispondrá de otros. - Al utilizar un desinfectante debemos asegurarnos que la superficie o material donde se use esté limpio y

libre de materia orgánica. Bibliografía: - Manual de prevención y control de I.IH. y Normas del Programa Nacional de I.IH. -

MINSAL, 1993. - Normas de antisépticos y desinfectantes, Hospital Van Bouren Valparaíso, 1993. - La garantía de calidad, el control de las I.IH., Guía APIC, OPS. 1991 - Boletín Técnico, SC Johnson, División Hospitalaria, Nros.1/89, 2/89, 4/90, 1/91, 2/91,

2/96, 1/98.

A.2.1.- ANTISEPTICOS Y DESINFECTANTES DISPONIBLES EN EL HOSPITAL HERNÁN HENRÍQUEZ ARAVENA.

Producto Tiempo de espera acción Indicaciones de uso Jabón de Triclosan 0,5% 30 segundos -Lavado de manos clínico Jabón de Triclosan 0,3% 30 segundos -Lavado de manos clínico Clorhexidina 2% jabón cremoso 3 a 5 minutos -Lavado de manos para: técnica aséptica y quirúrgica en

caso de alergia a la povidona jabonosa. -Baño preoperatorio de pacientes de cirugía cardíaca. -Contraindicado en Recién Nacidos <26 semanas o <1500 grs.

Clorhexidina 0.5% tintura 15 segundos -Preparación de piel en; cirugías de tiroides, cirugías > a 4 horas de duración y en todas aquellas con implantes.

Povidona jabonosa 10% 90 segundos -Lavado de manos para técnica aséptica o cirugía. -Preparación piel de pacientes para procedimientos invasivos o cirugía.

Povidona yodada 10% 2 minutos -Preparación piel de pacientes para procedimientos invasivos o cirugía. -No utilizar en pacientes alérgicos a yodo ni en sospecha de hipotiroidismo congénito.

Alcohol gel 30 segundos -Lavado de manos clínico en sala y estaciones de enfermería.

Alcohol al 70% 15 segundos (hasta evaporación)

-Preparación de piel para punción venosa y arterial periférica, curación CVC. -Desinfección de fonendoscopios, termómetros.

Puristeril®: Acido peracético 3,5% a 7% max., ácido acético 5% a 10%, peróxido de hidrógeno 26% a 30%

mínimo de 10 horas -Desinfección manual de dializadores (capilares de hemodiálisis), concentración de uso 4%

Citrosteril® solución al 3% 30 minutos -Desinfección y desincrustación de máquinas de hemodiálisis.

Ortoftalaldehído 0.55% (OPA) 10 minutos -Desinfección de alto nivel Cloro en polvo -Desinfección de superficies (concentración de uso: 0.5%)



A.3.- NORMA DE SANEAMIENTO BASICO DEL AMBIENTE Las infecciones que se pueden asociar directamente a la contaminación del ambiente son pocas en comparación con aquellas que se asocian a las prácticas de atención directa del paciente, especialmente cuando se atraviesan barreras defensivas y se invaden cavidades normalmente estériles. Sin embargo, el ambiente inanimado puede tener importancia directa en algunos brotes epidémicos. Nombre Norma: Norma de saneamiento básico del ambiente

Objetivos:

- Mantener el ambiente físico limpio y libre de suciedad visible. - Disminuir el riesgo de contaminación cruzada y facilitar los

procedimientos.

Responsables : - Auxiliares de servicio. - Empresa externa de aseo - Técnicos Paramédicos - Unidad de IIH que debe establecer las bases de la licitación para la

empresa de aseo - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su

cumplimiento - Jefe de Prevención de riesgos para desechos citotóxicos y radioactivos. - Jefe de operaciones y servicios generales para los programas de

desratización, desinsectación y recolección de basuras desde los servicios.

Definiciones y clasificación: Limpieza y desinfección concurrente: es el procedimiento que se realiza a la unidad del paciente mientras se encuentra hospitalizado, con una frecuencia de al menos una vez por turno Limpieza y desinfección terminal: es aquel procedimiento que se realiza a la unidad del paciente cuando éste hace abandono de la habitación o unidad por alta, traslado o defunción. Limpieza y desinfección en pacientes con patología infectocontagiosa: aseo y desinfección que se realiza en la unidad de los pacientes sospechosos de infección, infectados o colonizados con algún microorganismo. Unidad del paciente: es un conjunto formado por el catre, colchón, velador, mesa, repisas y utensilios necesarios para la atención del paciente en su ambiente inmediato.




- Deben existir programas de limpieza de la planta física, desinsectación y desratización. - Deben existir programas de limpieza y mantención de pozos y estanques de agua, y de los sistemas de aire

acondicionado. - El aire del hospital sólo tiene importancia en algunas áreas especiales como son los pabellones quirúrgicos,

unidades de inmunocomprometidos, unidades de quemados y aislamientos. - El aire debe ser filtrado a través de filtros de alta eficiencia o filtros absolutos. - En pabellón el sistema de filtración debe tener una cantidad de 15 a 25 recambios por hora. - La toma de aire desde el exterior debe estar distante de las salidas de ventilación o combustión. - Los sistemas mecánicos de ventilación, incluidos los filtros absolutos, humidificadores y acondicionadores

térmicos deben tener mantención preventiva. - Debe realizarse limpieza periódica de los ductos de salida del aire debido a que suelen acumular polvo en su

interior. - El programa de mantención de sistemas de filtración de aire de los pabellones deberá ser conocido por el Jefe

de Pabellón el cual deberá hacer cumplir este programa. - El aire que circula en las salas de aislamiento requiere que no circule hacia otras áreas de atención de pacientes - En los aislamientos debe existir un mecanismo de flujo de las zonas más limpias a las zonas menos limpias, por

medio de sistemas de presión positiva. - El agua en uso en el establecimiento corresponde a agua de pozo tratada para evitar la transmisión de

microorganismos patógenos a los pacientes por esta vía. - No deben existir depósitos de basuras en los terrenos circundantes al pozo, si existieran estos deben manejarse

en depósitos impermeables. - Deben efectuarse controles microbiológicos periódicos de la calidad del agua (c/6 meses) los que son realizados

por Aguas Araucanía S. A. - La cloración del agua debe ser regulada de acuerdo a las normas nacionales de tratamiento de abastos

particulares de agua. - El hospital debe asegurar el normal abastecimiento de agua en situaciones de desperfectos del sistema. - La planta física del Hospital debe estar limpia, libre de polvo y de suciedad visible. - El personal que realiza las labores de limpieza debe cumplir con las precauciones estándar. - El personal debe usar pechera plástica y guantes de uso domestico reforzados. - La limpieza de las áreas deben ser efectuadas por arrastre con agua y detergente. - Las áreas de atención de pacientes se deben limpiar frecuentemente con agua y detergente. - La limpieza se debe realizar desde lo más limpio a lo más sucio. - La limpieza de las áreas de aislamiento debe realizarse con material exclusivo para esas áreas. - La limpieza de las salas de baño debe realizarse al final, con material exclusivo para este fin y reutilizable

después de su limpieza. - En las salas de baño deben limpiarse primero los lavamanos y finalizar con el WC. - El material para limpiar el WC debe ser exclusivo. - El proceso de limpieza debe hacerse con paños bien estrujados para evitar que escurra agua de sitios sucios a

sectores limpios - La desinfección del mobiliario, artefactos y áreas debe realizarse con solución clorada al 0.5% después de haber

realizado la limpieza con detergente y el enjuague. - Las estaciones de enfermería y los puntos para el lavado de manos son consideradas áreas críticas por lo que

su limpieza debe ser diaria y cada vez que sea necesario. Esto incluye mesones, bandejas, lavamanos, dispensadores de jabón y toalla, etc.

- Los dispensadores de jabón se deben limpiar una vez al día y antes de instalar un nuevo producto. - Finalizado el procedimiento de limpieza y desinfección, todos los elementos utilizados (paños de aseo, traperos,

etc.) deben lavarse prolijamente con detergente y desinfectante para luego dejar secar antes de usar nuevamente. Identificar el trapero de uso exclusivo.

- Utilice el mismo procedimiento con escobillones, hisopos, cepillos y todos los accesorios de limpieza.



- Se debe disponer de un lugar específico para el almacenamiento de los útiles de aseo, el cual debe ser cerrado y seco, y con colgadores para mantener los elementos ordenados.

- Este recinto debe ser aseado antes de guardar los implementos de trabajo con técnica ya descrita. - Los paños de aseo deben ser cambiados cada vez que se deterioren. - En áreas de circulación restringida absoluta, los elementos de limpieza deben ser de uso exclusivo. - Deben existir programas de retiro de basuras o desechos. - La ropa sucia y la basura deben permanecer en contenedores diferentes y cerrados - Las áreas de almacenamiento de basuras y ropa sucia deben permanecer limpias. - Al menos una vez al día debe hacerse una limpieza del área de almacenamiento de basuras y ropa sucia.

Procedimiento: Limpieza y desinfección concurrente Limpieza y desinfección Terminal: Aseo de chateros:

- Lavado de manos previo - Humedecer paño con solución con detergente - Limpiar los muebles con detergente y enjuagar con agua - Limpiar el piso con detergente y enjuagar con agua - Aplicar desinfectante solución clorada al 0,5% sobre las superficies limpias

en la misma secuencia anterior. - Lavado de manos previo - Despejar el velador, cubrirlo con diario y colocar el equipo. - Retirar la cama de la muralla. - Soltar la ropa de cama. - Limpiar la almohada acomodando su contenido y dejarla sobre la mesa. - Coloque las fundas sucias y las colchas en la bolsa plástica. - Limpie con movimientos circulares de arriba hacia abajo con paño húmedo

y detergente los barrotes, patas y ruedas de la cama. - Limpie la parte superior y los costados del colchón, revíselo. - Lave el catre y somier con un paño húmedo empezando por la cabecera

utilizando movimientos de rotación en un solo sentido. - De vuelta el colchón, limpie y lave el resto del catre de la misma forma. - Coloque la bandeja sobre el papel de diario en el somier y limpie el velador,

incluyendo cajones y repisas. - Limpie con detergente y agua, seque y aplique desinfectante en el interior y

exterior abarcando rincones y manillas. - Ventile el colchón y cambie las frazadas. - Limpie y desinfecte mesa de comida, incluya patas y ruedas. - Recoja papeles y ropa sucia. - Posteriormente limpiar, enjuagar y desinfectar con la siguiente secuencia;

murallas y pisos. - Deje secar la unidad al aire antes de hacer la cama. - Ordene la unidad antes de retirarse. - Registre la actividad.

- Lavar y fregar el material, enjuagando bajo agua corriente. - Desinfectar con solución clorada al 0.5 % - Colgar para secar y ordenar chatas y patos - Dejar el resto del material ordenado en los mesones.



A.3.1.- MANEJO DE DESECHOS HOSPITALARIOS Los desechos hospitalarios son muy heterogéneos debido a las diversas actividades realizadas en los hospitales. Algunos de sus componentes pueden ser de alto riesgo para los manipuladores debido a su naturaleza, o presentar desafíos especiales para su eliminación con el ambiente. Esta norma está basada en las recomendaciones para el manejo de desechos hospitalarios realizadas por la OMS, MINSAL, Sociedad Chilena de Control de Infecciones y Epidemiología Hospitalaria y Sociedad Chilena de Infectología. Nombre Norma: Norma de manejo de desechos Hospitalarios Objetivos:

- Unificar criterios en el manejo de desechos hospitalarios - Disminuir riesgos de accidentes en el personal, con material contaminado. - Disminuir la contaminación ambiental.

Responsables : - Auxiliares de servicio. - Empresa externa de aseo - Técnicos Paramédicos - Unidad de IIH: que debe establecer las bases de la licitación para la empresa

de aseo - Supervisores (as) de Servicios y unidades que deben cautelar su cumplimiento

Definiciones y clasificación: A. Desechos cortopunzantes o vidrios: corresponden a aquellos utilizados en el área clínica por ej: bisturí, agujas, ampollas, etc.

B. Desechos microbiológicos o infectantes: corresponden a los desechos que contienen patógenos en suficiente cantidad o concentración para causar enfermedad en huéspedes susceptibles, por ej. Medios de cultivo del Laboratorio de Microbiología.

C. Desechos Patológicos: en esta categoría se clasifican cadáveres, piezas anatómicas, órganos, tejidos, placentas, etc.

D. Sangre o desechos con fluidos corporales de bajo o alto riesgo. E. Desechos generales: en esta categoría se incluye la mayor parte de los

desechos hospitalarios tales como; material de escritorio, alimentos, elementos usados en los pacientes, con y sin fluidos corporales, ej., apósitos, guantes, bolsas de drenaje, tubos de drenaje, etc.

F. Desechos Citotóxicos (antineoplásicos): incluye desechos con propiedades mutagénicas, teratogénicas o carcinógenas. Los más frecuentes son las drogas citotóxicas antineoplásicas, por ej. Las quimioterapias, materiales contaminados con ellas, residuos en envases, etc.

G. Desechos Radioactivos: Incluye todos los materiales sólidos, líquidos y gaseosos contaminados con radionúclidos de fuentes abiertas.


Flujograma de manejo general de desechos

Este flujograma muestra el manejo de los diferentes tipos de desechos generados al interior del Hospital de acuerdo a su condición (7 tipos de la A a la G)




DESCRIPCIÓN DE LA NORMA A Manejo de desechos cortopunzantes o vidrios:

- Los desechos cortopunzantes clínicos (bisturí, agujas) se deben eliminar en contenedores resistentes a las punciones (bidones o cajas de cartón grueso), debidamente identificados, separados de la basura corriente y dispuestos en el área sucia de la estación de enfermería.

- En la bandeja de tratamiento (o carro) se debe contar con un contenedor para desechar el cortopunzante de manera definitiva, las agujas se manipulan con pinzas para su eliminación definitiva.

- Los vidrios provenientes de ampollas o frascos ampollas pueden ser eliminados en los mismos contenedores del material cortopunzante.

- Los contenedores del material cortopunzante deben ser transportados separadamente de las bolsas de desechos generales, evitando su compresión, hasta el lugar de almacenamiento intermedio, desde donde serán retirados por el sistema Municipal de recolección de basuras.

B Manejo de desechos microbiológicos o infectantes: - Estos desechos deben ser autoclavados previo a su eliminación para su disposición final. - Son considerados desechos infectantes los provenientes del Laboratorio de Microbiología e Inmunología. - Los desechos infectantes deben manipularse siempre con guantes. - Los desechos originados en salas de aislamiento de pacientes infecciosos no requieren tratamiento especial.

C Manejo de desechos Patológicos: - No son considerados infectantes y pueden ser eliminados en fosa común en el cementerio sin tratamiento previo. - Estos desechos deben ser trasladados en contenedores resistentes e impermeables hasta el cementerio. - Siempre deben manipularse con precauciones estándar

D Manejo de Sangre o desechos con fluidos corporales: - La mayor parte de la sangre que se elimina es estéril y puede ser eliminada en la red de alcantarillado y las bolsas que las

contienen se eliminan con el resto de los desechos generales. E Manejo de desechos generales:

- En esta categoría se incluye la mayor parte de los desechos hospitalarios - Todos los desechos que contengan materia orgánica deben ser recolectados en contenedores resistentes protegidos con

bolsas plásticas resistentes y eliminados directamente sin vaciar su contenido. - Si éste tipo de desechos contiene líquidos debe eliminarse en doble bolsa plástica. - Todos los contenedores de desechos deben estar ubicados en el área sucia, deben permanecer tapados y protegidos con

bolsas plásticas. En estos mismos contenedores se deben desechar las toallas desechables, papeles u otros objetos similares.

- Al retirar una bolsa con desechos, el contenedor debe quedar cubierto con una nueva bolsa plástica. - Los lugares de almacenamiento de basuras deben permanecer siempre limpios. - La recolección de basuras en el Hospital se debe efectuar en carros cerrados y lavables, los que deben quedar limpios una

vez terminado el procedimiento de recolección. - Los desechos generales provenientes de áreas clínicas deben manipularse siempre con guantes. - Los desechos provenientes de áreas administrativas (oficinas) pueden manipularse sin barreras protectoras.

F Manejo de desechos Citotóxicos (antineoplásicos): - Incluye desechos con propiedades mutagénicas, teratogénicas o carcinógenas. Su principal exponente son las drogas

citotóxicas antineoplásicas (materiales contaminados con ellas, residuos en envases, etc.) - Previo a su eliminación, estos materiales deben ser sometidos a una neutralización química en el área clínica y su posterior

traslado para su disposición final en el vertedero municipal. G Manejo de Desechos Radioactivos:

- Incluye todos los materiales sólidos, líquidos y gaseosos contaminados con radionúclidos de fuentes abiertas. - La práctica habitual es esperar el decaimiento de la actividad radioactiva bajo los límites permitidos antes de su eliminación

en relleno sanitario. H Manejo de desechos hasta la recolección Municipal:

- El almacenamiento final de basuras debe hacerse en un lugar cerrado, frío, lavable, protegido de roedores, insectos y animales domésticos.

- El área de almacenamiento final de los desechos debe ser lavada después del retiro de basuras. - Todos los desechos que contengan sangre o fluidos deben manipularse con guantes, mascarilla, anteojos y pechera

impermeable.



Bibliografía: - Rutala W, Mayhall CG. Medical Waste – SHEA Position Paper. Infection Control and Hospital Epidemiology. 1992:13(1):38-48

- Phillips G. Microbiological aspects of clinical waste. J Hosp Infect. 1999 Jan;41(1):1-6. - Daschner FD, Dettenkofer M. Protecting the patient and the environment--new aspects and

challenges in hospital infection control. J Hosp Infect. 1997 May;36(1):7-15. - Andrzejak R, Kucharski W, Mioduszewska J. Cytostatic drugs: occupational hazard to health care

workers. Med Pr. 1999;50(1):61-5. - Sessink PJ, Bos RP. Drugs hazardous to healthcare workers. Evaluation of methods for

monitoring occupational exposure to cytostatic drugs. Drug Saf. 1999 Apr;20(4):347-59. - Reglamento de Condiciones Sanitarias y Ambientales Básicas en los Lugares de Trabajo,

Ministerio de Salud, D.OF. 29.04.00 - Decreto N° 201/01 del 27/04/2001 del Ministerio de Salud, D.OF. 05.07.01 - Norma Chilena Oficial NCh 382.of98 “Sustancias peligrosas – Terminología y clasificación

general”, Instituto Nacional de Normalización, 1998. - Ministerio de Salud, 1998. Norma General Técnica N°25 “Manipulación de Medicamentos

Antineoplásicos” Cáp. VII “Normas para el tratamiento de desechos de fármacos antineoplásicos y de residuos contaminados”.

- Desechos Hospitalarios: Riesgos Biológicos y Recomendaciones Generales Sobre su Manejo MINISTERIO DE SALUD DIVISION DE INVERSIONES Y DESARROLLO DE LA RED ASISTENCIAL DEPARTAMENTO DE CALIDAD EN LA RED UNIDAD DE EVALUACION DE TECNOLOGIAS DE SALUD Agosto 2001

- CDC. Guidelines for Environmental Infection Control in Health-Care Facilities Healthcare. Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC) 2003 http://wwwcdc.gov

A.3.2.- ÁREAS DE TRABAJO PARA CLÍNICAS DE ENFERMERÍA Nombre Norma: Norma de áreas de trabajo para clínicas de enfermería

Objetivos:

- Evitar riesgo de contaminación durante los procedimientos de Enfermería y de almacenaje de material estéril o limpio.

Responsables : - Enfermeras Clínicas. - Técnicos Paramédicos - Supervisores (as) que deben cautelar su cumplimiento

Definición de las áreas: 1 Área Administrativa: Es el lugar para realizar labores administrativas y mantener material de escritorio.

2 Área Limpia: Es el lugar donde se preparan o realizan los procedimientos de atención de pacientes, permite almacenar material estéril y limpio.

3 Área Sucia: Es el lugar donde se realiza el lavado del material contaminado, permite mantener transitoriamente el material sucio y el cortopunzante.

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA - Cada clínica debe tener espacio suficiente para delimitar las áreas:

1. Administrativa 2. Limpia 3. Sucia

- Las áreas limpia y sucia deben estar físicamente separadas y señaladas por carteles visibles. - Deben tener espacio suficiente para las actividades. - Deben tener estantes cerrados y mesones lavables. - Deben contener lavamanos provistos de jabón y toallas desechables. Pueden usarse dispensadores de alcohol

gel en aquellas áreas donde no haya lavamanos disponibles. - Deben tener basureros protegidos con bolsas plásticas y tapas. - El material estéril debe mantenerse en lugar exclusivo

http://wwwcdc.gov/



A.3.3.- NORMA DE MANEJO DE LA ROPA DE USO CLÍNICO Nombre Norma: Norma de manejo de la ropa de uso clínico Objetivos:

- Evitar la contaminación ambiental y del personal con la ropa sucia. - Evitar la contaminación de la ropa limpia

Responsables : - Enfermeras Clínicas. - Técnicos Paramédicos - Supervisores (as) que deben velar por su cumplimiento


- La institución debe proveer de ropa limpia ya sea por su procesamiento en el Hospital o por medio de servicios contratados.

- El proceso de lavado de ropa debe reunir los siguientes requisitos: - El lavado se debe realizar a una temperatura de 80ºC por al menos 30 minutos. - Se debe usar un detergente químico y posteriormente desinfectante que asegure la destrucción de los

gérmenes vegetativos y virus. - La ropa debe plancharse a vapor con rodillos o un equivalente a más de 120ºC. - La ropa limpia se debe manipular en forma separada de la ropa sucia a fin de protegerla de su

contaminación. - El proceso de lavado desde su entrega hasta el despacho a los Servicios clínicos debe ser supervisado

en forma permanente. - La ropa limpia debe ser trasladada desde lavandería a los servicios clínicos en carros limpios y cerrados. - La ropa limpia debe almacenarse tanto en lavandería como en los servicios clínicos en estanterías que la

protejan del polvo. - La ropa limpia debe almacenarse en el área limpia. - Los lugares de almacenamiento de ropa limpia deben permanecer limpios y cerrados. - La ropa limpia debe ser manipulada con las manos limpias y no debe entrar en contacto con la

vestimenta del operador. - La institución debe proveer de ropa y elementos de protección para todo el personal que debe manipular

ropa sucia. - La ropa sucia debe almacenarse en bolsas plásticas impermeables en el área sucia. - Los lugares de almacenamiento deben ser cerrados, lavables, fríos y protegidos de vectores. - Los lugares de almacenamiento de la ropa sucia deben permanecer limpios. - En el procedimiento cambio de ropa de cama, ésta debe recolectarse en bolsas impermeables. - La ropa sucia no debe sacudirse ni contarse en las áreas clínicas. - La ropa sucia usada en los procedimientos no debe tener contacto con el suelo. - El operador que manipula la ropa sucia debe estar protegido con guantes reforzados, mascarilla y

pechera plástica que le permita el libre desplazamiento por su lugar de trabajo. - La ropa sucia no debe entrar en contacto con las vestimentas del operador. - La ropa procedente de pacientes con Sarna noruega y/o Clostridium difficile debe recogerse en bolsa

plástica directamente, sin manipular ni sacudir. No requiere tratamiento especial de lavandería. - El horario de retiro de la ropa sucia debe ser aquellos en que el tránsito de personal y pacientes sea

menor, o sea antes de comenzar la jornada de trabajo habitual del establecimiento. El personal que realiza estas labores debe iniciar su jornada entre la 7 y 7,30 horas.

- El personal que manipula ropa sucia debe hacerlo con ropa y zapatos de uso exclusivo la que no debe salir del área sucia de la lavandería.

- El personal que labora en sector de ropa sucia no debe ingerir alimentos al interior del recinto. Bibliografía: - Manual de prevención y control de Infecciones Intrahospitalarias, MINSAL.1993.

- Normas de manejo de basuras y desechos hospitalarios, Hospital San Juan de Dios. 1993. - Centers for Disease Control and Prevention. Guidelines for environmental infection control in

health-care facilities: recommendations of CDC and the Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC). MMWR 2003; 52 (No. RR-10): 1–48.



B. PRECAUCIONES ESTANDAR Y AISLAMIENTOS HOSPITALARIOS Esta norma presenta las Precauciones estándar y las precauciones según vía de transmisión vigentes para nuestra institución. Se debe tener presente que estas indicaciones no son excluyentes entre sí. Objetivo: Disminuir el riesgo de transmisión de microorganismos de un paciente a otro, del paciente al personal y del personal al paciente. Responsables del cumplimiento: Todos los miembros de equipo de salud del área clínica

- Médicos - Enfermeras - Técnicos Paramédicos - Auxiliares de servicio - Otros profesionales - Docentes y alumnos de pre y postgrado - Supervisores de los Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento

Precauciones y Tipos de Aislamientos: Esta Norma presenta en detalle los siguientes aspectos: 1. Precauciones estándar 2. Precauciones hospitalarias según vía de transmisión:

2.1.3 Precauciones por vía aérea 2.2.3 Precauciones por gotitas 2.3.3 Precauciones de contacto

3. Precauciones específicas:

3.1.3 Precauciones en Pacientes portadores de microorganismos multiresistentes 3.2.3 Precauciones en Pacientes con Clostridium difficile 3.3.3 Precauciones en Pacientes con Sarna Noruega

4. Manejo de Pacientes con Enterococo Resistente a la Vancomicina



1. PRECAUCIONES ESTÁNDAR: Definición:

Medidas de control

Consiste en el uso de barreras protectoras por el personal de salud para prevenir el contacto con sangre o fluidos corporales, deben ser aplicadas siempre independientemente del tipo de precauciones de transmisión que estén indicadas en los pacientes hospitalizados.

Lavado de manos:

− Antes y después de atender pacientes. − Antes y después de realizar procedimientos invasivos. − Después de tener contacto con sangre, fluidos corporales o material

contaminado. − Después de retirarse los guantes.

Guantes o manoplas: − Siempre que pueda existir contacto con sangre, secreciones, mucosas o piel

no intacta. − Cuando el personal de salud presente lesiones en la piel.

Mascarillas y/o Lentes: − Cuando el operador tiene riesgos de recibir salpicaduras, derrame de sangre

o secreciones corporales en cara o mucosas. Pechera:

− Cuando el operador tiene riesgos de una gran exposición de sangre, secreciones o fluidos sobre su cuerpo.

− Eliminación de desechos biológicos no corto punzantes. Material corto punzante:

− Mantener la separación en el área de trabajo y eliminar en contenedores ad hoc.

− No recapsular agujas − No manipular luego de desechar el material cortopunzante



2. PRECAUCIONES HOSPITALARIAS SEGÚN VÍA DE TRANSMISIÓN: Tipo Medidas de control 2.1. Precauciones por Vía Aérea: precauciones que deben ser implementadas frente a pacientes con diagnóstico o sospecha de patologías que se transmiten a partir de partículas de 5 micrones o menos, generadas por gotitas que pueden permanecer en el aire por largos períodos de tiempo y ser llevadas por corrientes de aire incluso más allá de la habitación donde son generadas.

Habitación individual − Obligatoria con presión negativa o extractor de aire − Se debe mantener la puerta cerrada − En caso de no haber disponibilidad de éste tipo de aislamientos, se debe

usar pieza individual con ventana al exterior que permita la ventilación. − Puede implementarse una cohorte durante el período de transmisibilidad

Lavado de manos o asepsia con alcohol gel − Antes y después de entrar a la habitación − Después de tomar contacto con el paciente − Después de tomar contacto con la unidad del paciente − Debe ser realizado con jabón antiséptico (triclosán al 0.5%) o alcohol gel − Después de retirarse los guantes

Mascarilla: − Uso obligatorio para todo el personal susceptible − Idealmente utilizar mascarilla alta eficiencia N95 (de uso individual del

funcionario, duración hasta 24 horas., portar protegida en bolsa) − Mascarillas quirúrgicas desechables (para uso de visitas, personal de

alimentación, empresa de aseo, otros de corta estadía y en caso de no contar con mascarilla N95 para el personal de salud, es de un solo uso no mayor a 20 minutos y se desecha)

− Debe ser puesta antes de entrar a la habitación y retirada después de salir de ella.

Guantes o manoplas: − Usarlos después del lavado de manos y antes de entrar en contacto directo

con el paciente. − Retirar previo a salir de la habitación.

Pechera: − Uso antes de entrar en contacto con el paciente o su ambiente inmediato. − Un solo uso y se elimina

Mantención de precauciones de vía aérea durante traslado y en unidades de apoyo:

− La enfermera a cargo debe informar vía telefónica y consignar en los registros correspondientes (ficha clínica, órdenes de exámenes, etc.) la condición del paciente a su lugar de destino.

− El paciente debe permanecer durante todo el período con mascarilla N95 o quirúrgica según disponibilidad, esta última con recambio cada 20 minutos y según la condición del paciente.

Indicaciones: Cuadros clínicos: − TBC pulmonar bacilífera − Varicela − Herpes Zoster diseminado − Sarampión − Sd. de exantemas maculopapulares



Tipo Medidas de control

2.2 Precauciones por Gotitas: corresponden a las precauciones que deben implementarse frente al diagnóstico o sospecha de enfermedades que se transmiten por partículas mayores a 5 micrones generadas por pacientes portadores de estos agentes, a través de la tos, estornudo o al hablar. Por su tamaño dichas partículas no quedan en suspensión más allá de un metro desde donde se generan.

Habitación individual: − Si es posible, que no requiere presión negativa o extractor de aire. − Si no es posible, debe existir la separación de al menos 1 metro entre un

paciente y otro. Lavado de manos:

− Antes y después de ponerse en contacto con el paciente. − Después de ponerse en contacto con el ambiente inmediato del paciente (la

unidad paciente). − Debe ser realizado con jabón antiséptico (triclosán al 0.5%)

Mascarilla : − Uso obligatorio para cualquier persona que se acerque a menos de 1 metro

del paciente ya sea para la atención directa o para realizar algún procedimiento (aspiración de secreciones, paciente tosedor).

Guantes o manoplas: − Desechables − Uso obligado antes de tomar contacto con el paciente o su ambiente

inmediato. Pechera:

− Uso único para cada atención, no dejar para un próximo horario o turno. − Uso obligado antes de entrar en contacto con el paciente o su ambiente

inmediato.

Indicaciones: Cuadros Clínicos: − Meningitis meningocócica o por H. Influenzae − Adenovirus − Influenza − Micoplasma − Coqueluche − Parotiditis − Infecciones estreptocócicas (faringoamigdalitis)



Tipo: Medidas de control 2.3 Precauciones de Contacto:

aquellas que se implementan en pacientes con diagnostico o sospecha de patologías en que el mecanismo de transmisión es por contacto directo o indirecto.

Habitación individual − Idealmente, si es posible − Si no es posible, implementar precauciones de contacto en la unidad del

paciente. − Se debe mantener una distancia mínima de 1 metro entre pacientes

Lavado de manos o uso de alcohol gel: − Antes y después de ponerse en contacto con el paciente. − Después de ponerse en contacto con la unidad del paciente. − Debe ser realizado con jabón antiséptico (triclosán al 0.5%) o alcohol gel − Luego de retirarse los guantes

Guantes o manoplas: − Desechables − Uso obligatorio para tener contacto directo con el paciente y con su

ambiente inmediato Pechera:

− Uso obligatorio para tener contacto directo con el paciente y con su ambiente inmediato

Otros: − Fonendoscopio y Termómetro exclusivo, si no es posible, desinfección con

alcohol al 70% entre paciente y paciente. − Manguito del aparato de presión individual o utilizar una protección

(polietileno) entre piel del paciente y éste. Mantención de precauciones de contacto durante traslado y en unidades de apoyo:

− La Enfermera a cargo del paciente deberá informar en forma telefónica y a través del registro en la ficha clínica la condición del paciente a su lugar de destino.

− Verificar que la puerta de salida del microorganismo o localización de la infección se encuentre debidamente contenida (observar y corregir filtración de fluido corporal en sondas o drenajes, verificar indemnidad de los apósitos en la curación (limpia, seca y sellada), pañal seco, etc. según corresponda.

− Utilizar ropa de cama limpia para cubrir la superficie de la camilla o silla de traslado, procurando que la superficie corporal del paciente, incluyendo extremidades, quede contenida dentro de la misma. (si el traslado es permanente se dejará con la misma ropa de cama en el lugar de destino, si el paciente pasa a una superficie provisoria ej. camilla de rayos, ecografía etc. entonces se debe contar con sabana limpia extra para esa superficie o con sabanilla de papel desechable. En caso de no contar con ninguno de estos elementos se debe limpiar y desinfectar con alcohol al 70% la superficie en contacto con el paciente. Dicho procedimiento también es valido para los insumos reutilizables que se hayan ocupado en él.

− El o los funcionarios que participen en el traslado o movilización del paciente deben usar las barreras de protección especialmente guantes de procedimiento y pechera desechable.

Indicaciones: Cuadros Clínicos

− Sd. diarreico en pacientes no continentes − Diarrea por Rotavirus − Virus Respiratorio Sinsicial (VRS) − Sarna − Pacientes infectados o colonizados por bacterias multiresistentes (secciones

3.1, 3.2 y 4)



3. PRECAUCIONES ESPECÍFICAS.

3.1 Precauciones de Contacto para el Manejo de Pacientes Infectados o Colonizados con Microorganismos Multiresistentes:

3.1.1 Objetivo: Evitar la infección cruzada vía mano portada en nuestros pacientes. 3.1.2. Responsables: todos los miembros del equipo de salud profesionales y no profesionales. 3.1.3 Indicaciones:

3.1.3.1 Pacientes colonizados o infectados con Bacilos Gram negativos productores de Betalactamasas de espectro expandido (BLEE)

3.1.3.2 Pacientes colonizados o infectados con Serratia marcescens 3.1.3.3 Pacientes colonizados o infectados con Agentes no fermentadores (ej.: Acinetobacter, Pseudomonas)

sólo sensibles a carbapenémicos o resistentes a todos los antimicrobiano incluidos en el antibiograma 3.1.4 Medidas de Control:

3.1.4.1 Pieza individual si es posible 3.1.4.2 Si no es posible aplicar barreras en la unidad del paciente 3.1.4.3 Lavado de manos clínico con jabón antiséptico o uso de alcohol gel (según normativa) antes y después

de cada atención y después del contacto con la unidad del paciente. 3.1.4.4 Uso de pechera desechable (un sólo uso). 3.1.4.5 Guantes de procedimiento o manoplas de uso único para cada paciente y cada atención. 3.1.4.6 En caso de brotes se puede establecer manejo en cohortes. 3.1.4.7 Las medidas se mantendrán mientras dure el tratamiento antibiótico en caso de infecciones (cuando sea

posible se debe confirmar la erradicación con cultivos ej.: infección urinaria). 3.1.4.8 En los casos de colonizaciones donde no hay terapia antimicrobiana y en los pacientes con Serratia en

los que a pesar de la terapia no se logra erradicación, las medidas deben mantenerse durante toda la hospitalización.

3.2 Precauciones de Contacto o Barreras Específicas para el Manejo de Pacientes con Diarrea por Clostridium difficile

3.2.1 Objetivo: protocolizar el uso de precauciones en el manejo de casos de diarrea por Clostridium difficile, con el fin de reducir la probabilidad de diseminación de éste microorganismo y evitar la emergencia de brotes intrahospitalarios. 3.2.2 Responsables: todo el equipo de salud 3.2.3 Medidas de Control: 3.2.3.1 Pieza individual con baño exclusivo, mantener hasta 48 hrs. después de última diarrea. 3.2.3.2 Lavado de manos con agua y jabón (según normativa) antes y después de cada atención y después del contacto

con la unidad del paciente. 3.2.3.3 No está indicado el uso de alcohol gel dado que no es tan efectivo para eliminar esporas 3.2.3.4 Delantal manga larga (práctico) de uso único para cada paciente y cada atención. 3.2.3.5 Guantes de procedimiento de uso único para cada paciente y cada atención. 3.2.3.6 Equipamiento básico de uso exclusivo (ej: termómetro) 3.2.3.7 En caso de brotes se puede establecer manejo en cohortes.



3.2.3.8 Las medidas se mantendrán mientras duren los síntomas, es decir la diarrea. 3.2.3.9 Mientras se mantenga con diarrea se debe comunicar su condición al acudir a unidades de apoyo sea por

exámenes, procedimientos o consultas tanto dentro como fuera del establecimiento. Esta misma conducta es válida para el traslado de los pacientes a otros establecimientos y al alta.

3.2.3.10 Uso de baño exclusivo. 3.2.3.11 Desinfección de equipos y artefactos que se comparten con alcohol al 70%

3.3 Precauciones en el Manejo de Pacientes con Sarna Noruega 3.3.1 Objetivo: Evitar la diseminación de esta ectoparasitosis de alta contagiosidad entre los pacientes y al personal de salud. 3.3.2 Responsables: todos los miembros del equipo de salud profesionales y no profesionales. 3.3.3 Medidas de Control: 3.3.3.1 Aislamiento en pieza individual, idealmente con baño exclusivo por alta contagiosidad. 3.3.3.2 Atención del paciente con delantal de manga larga desechable (de un solo uso) y guantes de procedimiento.

Ambos deben ser eliminados en el interior de la sala en bolsa de basura. 3.3.3.3 Uso de manguito de presión individual, termómetro exclusivo y desinfección obligada del fonendoscopio con

alcohol al 70% después de su uso. 3.3.3.4 La ropa de cama del paciente debe ser manipulada cuidadosamente, plegada (sin sacudir) y depositada en

bolsa plástica para evitar diseminación. 3.3.3.5 La vajilla usada en el paciente debe ser personal (en lo posible desechable). Manipular con guantes y eliminar

en bolsa. 3.3.3.6 Se debe minimizar al máximo los traslados del paciente para exámenes y si es necesario hacerlo, el personal de

salud debe estar protegido con delantal desechable y con guantes, al igual que el personal que va a realizar el examen o interconsulta.

3.3.3.7 El término del aislamiento del paciente será determinado por el médico dermatólogo. 3.3.3.8 El personal de salud que refiera lesiones cutáneas debe ser evaluado por un especialista en dermatología. Los

casos confirmados recibirán tratamiento indicado por el dermatólogo y deberán acogerse a licencia médica durante 3 días.



3.4. Tipo de Precauciones y duración según patología infecciosa: A continuación se presenta una tabla resumen con las patologías infecciosas más frecuentes, el tipo de precauciones a implementar y la duración de las mismas.

Infección/Enfermedad Tipo de Precauciones Duración Abscesos: Drenaje no contenido Drenaje contenido

Contacto Estándar

Hasta cese del drenado

Adenovirus Gotitas Hasta el alta Aspergillosis Estándar Toda la hospitalización Bronquiolitis sin agente etiológico identificado en lactantes o niños pequeños

Contacto Hasta cese de síntomas

Candidiasis todas sus formas Estándar Toda la hospitalización Chlamydia trachomatis (ocular, genital o respiratoria)

Estándar Toda la hospitalización

Chlamydia pneumoniae Estándar Toda la hospitalización Cisticercosis Estándar Toda la hospitalización Citomegalovirus Estándar Toda la hospitalización Clostridium perfringens

− gangrena gaseosa − intoxicación alimentaria

Contacto si exudado Estándar

Toda la hospitalización

Conjuntivitis bacteriana Estándar Toda la hospitalización Coqueluche (Bordetella pertussis) Gotitas Primeros 5 días terapia AB Conjuntivitis aguda viral hemorrágica Contacto Hasta cese enfermedad Diarrea, síndrome sin agente Estándar en continentes y adultos

Contacto en caso de incontinencia o uso pañal

Hasta cese diarrea

Diarrea por: Clostridium difficile

Contacto específicas para Clostridium difficile

Hasta 48 hrs. posterior al cese de la diarrea

Rotavirus Contacto en caso de niños, incontinencia o uso pañal (*) Estándar en pacientes sin incontinentes y adultos.

Hasta cese diarrea

Shigella Idem (*) Hasta cese diarrea Campylobacter Idem (*) Hasta cese diarrea Vibrio cholerae y parahaemolyticus Idem (*) Hasta cese diarrea Cryptosporidium Idem (*) Hasta cese diarrea Giardia lamblia Idem (*) Hasta cese diarrea Salmonella Idem (*) Hasta cese diarrea Shiguella Idem (*) Hasta cese diarrea

Difteria cutánea Contacto Hasta cultivo negativo Difteria faríngea Gotitas Hasta cultivo negativo Endometritis Estándar Toda la hospitalización Epiglotitis por H. influenzae Gotitas Hasta 24 horas de terapia Epstein-Barr mononucleosis Estándar Toda la hospitalización Eritema infeccioso (Parvovirus B 19) Estándar Toda la hospitalización Fiebre reumática Estándar Toda la hospitalización Gangrena Estándar Toda la hospitalización Gonorrea Estándar Toda la hospitalización Gripe (Influenza) Gotitas Hasta que cese la enfermedad Guillain Barré Estándar Toda la hospitalización Hantavirus Gotitas Toda la hospitalización Helicobacter pylori Estándar Toda la hospitalización



Infección/Enfermedad Tipo de Precauciones Duración Hepatitis aguda viral:

− A Estándar


− A con incontinencia Contacto Toda la hospitalización en < 3 años, en edades mayores hasta 14 días desde el inicio de síntomas

− B HBsAg (+) aguda o crónica Estándar Toda la hospitalización − C y otras Estándar Toda la hospitalización

Heridas infectadas − Mayores − Menores

Contacto Estándar

Hasta cese condición 0Toda la hospitalización

Herpes simple − Encefalitis − Neonatal − Muco cutánea, diseminada o

grave − Muco cutánea, recurrente

cutánea, oral o genital

Estándar Contacto Contacto Estándar

Toda la hospitalización Hasta cese enfermedad Hasta cese enfermedad Toda la hospitalización

Herpes Zoster − Localizado o diseminado en

paciente inmunosuprimido

Aérea y Contacto

Hasta cese enfermedad

− Localizado en paciente inmunocompetente


Hidatidosis Estándar Toda la hospitalización Impétigo Contacto Hasta 24 horas de terapia efectiva Infección urinaria con o sin catéter Estándar Toda la hospitalización Jacob-Creutzfeld Estándar Toda la hospitalización Leptospirosis Estándar Toda la hospitalización Listeriosis Estándar Toda la hospitalización Malaria Estándar Toda la hospitalización Meningitis: − A líquido claro, sin agente − Compatible con etiología bacteriana y

resultado pendiente. − Por bacilos Gram negativos − Por hongos − Por Listeria − Por Neumococo − Por Tuberculosis − Por Haemophilus influenzae o sospecha − Por Meningococo o sospecha

Estándar Gotitas, ajustar según agente Estándar Estándar Estándar Estándar Estándar Gotitas Gotitas

Toda la hospitalización Toda la hospitalización Toda la hospitalización Toda la hospitalización Toda la hospitalización Toda la hospitalización Toda la hospitalización Hasta 24 horas de tratamiento efectivo. Hasta 24 horas de tratamiento efectivo.

Mucormicosis Estándar Toda la hospitalización Multiresistencia como infección o colonización gastrointestinal, respiratoria o cutánea (herida o quemadura)

Contacto Hasta cultivo negativo en infectados, toda la hospitalización en caso de colonización y también en ERV y Serratia

Mycoplasma pneumoniae Gotitas Hasta 5 días de terapia Neisseria meningitidis como meningitis, neumonía o sepsis

Gotitas Hasta 24 horas de tratamiento efectivo

Neumonía cuya etiología requiere precaución por gotitas:

− Adenovirus − Virus Influenza − M. pneumoniae − H. influenzae − S. pyogenes (niños y lactantes)

Gotitas

Hasta el alta Hasta cese enfermedad Hasta cese enfermedad Hasta 24 horas terapia Hasta 24 horas terapia



Infección/Enfermedad Tipo de Precauciones Duración Neumonía cuya etiología requiere precaución por contacto:

− Virus Sincicial Respiratorio en niños

Contacto Hasta cese enfermedad

Neumonía cuya etiología requiere precaución estándar:

− Neumococo − S. aureus − Chlamydia − influenzae en adultos − Legionella pneumophila − Pneumocystis jiroveci (carinii) − Hongos − Streptococcus pyogenes en

adultos − CMV


Parainfluenza en infección respiratoria de lactantes y niños


Parotiditis Gotitas 9 días de iniciado aumento volumen Parvovirus B19 Gotitas Hasta cese enfermedad, en

inmunosuprimidos con infección crónica aplicar durante toda la hospitalización.

Pediculosis Contacto Hasta 24 horas de terapia efectiva Rubéola y Rubéola congénita Contacto En cada rehospitalización hasta el año de

edad Sarampión Aéreo Hasta cese de enfermedad Sarna Contacto Hasta 24 horas de terapia Sarna Noruega Contacto específicas Hasta indicación especialista Síndrome de shock tóxico

− Por Staphylococcus − Por Streptococcus grupo A con

lesiones cutáneas mayores

Estándar Contacto y gotitas

Toda la hospitalización Hasta 24 horas de terapia antibiótica efectiva

Sífilis − Cutánea o mucosa, incluyendo

congénita, primaria o secundaria. − Latente (terciaria) y seropositivos

sin lesiones

Estándar Estándar


Streptococo Grupo B (neonatal) Estándar Toda la hospitalización Tétanos Estándar Toda la hospitalización Tiña Estándar Toda la hospitalización Tifoidea, fiebre Estándar Toda la hospitalización Toxoplasmosis Estándar Toda la hospitalización Tracoma Estándar Toda la hospitalización Triquinosis Estándar Toda la hospitalización Tuberculosis

− Extrapulmonar con fistulización − Extrapulmonar, meningitis − Pulmonar (incluye sospecha) − Laríngea

Estándar Estándar Aérea Aérea

Hasta baciloscopía negativa Hasta 3 semanas efectivas de terapia

Varicela (ver también herpes zoster) Aérea Hasta que todas las lesiones estén secas y costrosas. No permitir entrada de susceptibles a la pieza.

Virus Sincicial Respiratorio en lactantes, niños o adultos inmunocompetentes


VIH Estándar Toda la hospitalización



Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990

- Manual de Prevención y Control de I.I.H. y Normas del Programa Nacional de I.I.H., MINSAL, 1993.

- Normas de Áreas Críticas, MINSAL 1990. - Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC): Management of

Multidrug-Resistant Organisms In Healthcare Settings, 2006 - Centers for Disease Control and Prevention. Guidelines for environmental infection

control in health-care facilities: recommendations of CDC and the Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC). MMWR 2003; 52 (No. RR-10): 1–48. CDC. Guideline for Isolation Precautions: Preventing Transmission of Infectious Agents in Healthcare Settings June 2007http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/pdf/isolation2007.pdf

4 MANEJO DE PACIENTES CON ENTEROCOCO RESISTENTE A VANCOMICINA 4.1 Introducción: Considerando que el estudio de prevalencia realizado en nuestro establecimiento en febrero de 2008 reveló que la colonización por Enterococcus Resistente a Vancomicina (ERV) de los pacientes estudiados alcanza al 25% se han implementado una serie de estrategias y normativa para su control que a continuación se señalan: 4.2 Objetivos:

4.2.1 Controlar la diseminación de Enterococcus resistente a vancomicina (ERV) en los pacientes del Hospital. 4.2.2 Prevenir infecciones intrahospitalarias asociadas a ERV. 4.2.3 Evitar la emergencia de cepas de mayor resistencia antimicrobiana (mantener cepas de ERV Van B). 4.2.4 Evitar la emergencia de Staphylococcus resistente a vancomicina

4.3 Responsables de su cumplimiento: Todos los miembros de equipo de salud

- Médicos - Enfermeras - Matronas - Técnicos Paramédicos - Auxiliares de servicio - Otros profesionales - Docentes y alumnos de pre y postgrado - Personal de la empresa de aseo - Supervisores de los Servicios y unidades que deben cautelar su cumplimiento

4.4 Clasificación de pacientes respecto de su estado de portación de ERV: 4.4.1 Positivos: corresponden a los pacientes infectados con ERV tratados o en tratamiento antibiótico y los colonizados

con ERV. 4.4.2 En estudio: Pacientes que se encuentran en etapa de estudio con hisopado rectal tomado y resultado pendiente. 4.4.3 Negativos: Pacientes con hisopado rectal negativo. 4.4.4 Alto riesgo de portación: pacientes provenientes de otras Unidades de Paciente Crítico (UPC) y otros definidos por

la Unidad de IIH que concentran varios factores de riesgo y serán tratados como positivos sin realizar hisopado (ej.: pacientes en hemodiálisis crónica)



4.5 Vigilancia Microbiológica Enterococo Resistente a Vancomicina 4.5.1 Búsqueda activa de pacientes con ERV:

4.5.1.1 En las unidades de paciente crítico de adultos del establecimiento: se realizará hisopado rectal a todo paciente a su ingreso.

4.5.1.2 En la unidad de Neonatología: sólo se estudiaran al ingreso los recién nacidos: - Trasladados de otras Unidades de paciente crítico neonatal de la región o el país - Derivados de otros establecimientos de baja o mediana complejidad donde hayan estado

hospitalizados por ej: en fototerapia y no sólo en puerperio con su madre. 4.5.1.3 En la UCI-UTI pediátrica se realizará hisopado al ingreso a los pacientes:

- Trasladados de otras unidades o servicios del establecimiento que hayan pernoctado al menos una noche.

- Derivados de otras unidades de pacientes crítico de la región o el país. - Con antecedente de hospitalización dentro los últimos 6 meses previos al ingreso.

4.5.1.4 El hisopado rectal se debe enviar a laboratorio Microbiología de lunes a viernes en horario hábil (8 a 16 hrs), fines de semana y festivos de 9 a 12 hrs.

4.5.1.5 En los pacientes que ingresen durante horario no hábil debe tomarse la muestra a primera hora del día siguiente.

4.5.1.6 En caso de traslado de pacientes entre unidades de paciente crítico dentro del establecimiento, no esta indicado realizar nuevo hisopado al ingreso si el paciente está estudiado.

4.5.1.7 En los pacientes positivos no está indicado realizar seguimiento microbiológico con nuevos hisopados. 4.5.2 Búsqueda habitual: se realizará el primer jueves de cada mes a todos los pacientes hospitalizados en Unidades

de paciente crítico (UCI o UTI) que tengan más de cinco días de estada y que su hisopado rectal al ingreso sea negativo.

4.5.3 Técnica de hisopado rectal: es el procedimiento de toma de muestra para identificar la colonización intestinal por ERV.

4.5.3.1 Materiales: Tubos y tórulas estériles en cantidad equivalente a un tubo por paciente a testear. 4.5.3.2 Preparación del paciente: no requiere. 4.5.3.3 Toma de muestra y transporte:

− Lavado clínico de manos en el operador y su ayudante. − Uso de guantes de procedimientos para el operador y el ayudante. − Introducir cuidadosamente una tórula estéril a través del esfínter anal aproximadamente 4 a 5 cm, con

suavidad rotar la tórula en forma circular, retirar e introducir en el tubo. − El tubo debe solicitarse con anticipación al laboratorio. − Enviar la muestra antes de 30 minutos al laboratorio, sin refrigerar, si esto se cumple no se requiere

medio de transporte. − Anexar la nómina o las órdenes de los pacientes evaluados.

4.6 Precauciones de Contacto o barreras específicas para el manejo de pacientes con ERV: 4.6.1 Identificar en la ficha clínica, de enfermería y en la unidad del paciente como: Precauciones de Contacto para

ERV. 4.6.2 Lavado de manos con jabón antiséptico o uso de alcohol gel (según normativa) antes y después de cada atención

y después del contacto con la unidad del paciente. 4.6.3 Delantal manga larga (práctico) de uso único para cada atención y/o contacto con la unidad del paciente. 4.6.4 Guantes de procedimiento de uso único para cada atención de paciente y/o contacto con la unidad 4.6.5 Equipamiento de uso exclusivo (ej: termómetro, manguito de presión, fonendoscopio, etc) 4.6.6 Los elementos de uso compartido deben ser sometidos a limpieza y desinfección después de cada uso. 4.6.7 No se realizará manejo en cohortes, pero se recomienda concentrar a los pacientes en salas determinadas. 4.6.8 No se recomienda personal exclusivo para la atención de estos pacientes



4.6.9 No existirán salas ni unidades con movilidad controlada o bloqueadas, los pacientes se manejaran con barreras en su unidad.

4.6.10 Cada unidad debe contar con una bolsa de desechos la que se debe cambiar mínimo tres veces al día y para evitar el acumulo de basura.

4.6.11 La ropa de cama no requiere tratamiento especial y debe ser retirada sin sacudirla, manipulada con guantes y pechera, y retirada en bolsa plástica.

4.7 Limpieza y Desinfección de la Unidad. 4.7.1 La limpieza y desinfección concurrente de la unidad del paciente se realizará mínimo una vez en cada turno y

debe quedar registrado. 4.7.2 Los implementos de limpieza y desinfección que se utilizarán en el aseo de la unidad deben ser de uso exclusivo. 4.7.3 El material de aseo debe quedar limpio y desinfectado posterior a su uso. 4.7.4 Las mopas y paños de aseo deben estar limpios y secos para ser utilizados. 4.7.5 La limpieza y desinfección de la unidad del paciente colonizado o infectado por ERV es la última que se realiza

durante el ciclo de aseo del servicio. 4.7.6 La limpieza y desinfección de la unidad se debe realizar en el siguiente orden:

- Monitores y bombas de infusión. - Soportes de sueros. - Mesa de paciente. - Velador. - Silla. - Catre.

4.7.7 La limpieza se efectúa con agua y detergente. 4.7.8 La desinfección con solución clorada al 0.5% debe ser posterior a la limpieza y enjuague. 4.7.9 En aquellas superficies o equipos que pudieran deteriorarse con el uso del Cloro la desinfección debe realizarse

con Alcohol 70°. 4.7.10 Al egreso del paciente se efectuará Limpieza y Desinfección Terminal, incluyendo el lavado de cortinas cuando

se cuente con ellas. C 4.8 Manejo de los pacientes (Ver flujograma) 4.8.1 Positivos: Uso de precauciones de contacto para ERV (barreras) independiente de la Unidad o Servicio en donde

estén hospitalizados así como en las unidades de apoyo. 4.8.2 En estudio: Uso de barreras independiente de la Unidad o Servicio en donde estén hospitalizados así como en las

unidades de apoyo, hasta el resultado de su examen. 4.8.3 Negativos: Uso de precauciones estándar. 4.8.4 Alto riesgo de portación: Uso de barreras independiente de la Unidad o Servicio en donde estén hospitalizados

así como en las unidades de apoyo. 4.8.5 Reingresos: los pacientes positivos que se rehospitalicen serán tratados con barreras independiente del tiempo

transcurrido. 4.8.6 Alta al domicilio: los pacientes colonizados o infectados podrán egresar a su domicilio sin medidas especiales,

constando su condición en la ficha clínica, epicrísis, carné de alta y registro informático. 4.8.7 Traslados: en todo paciente con ERV previo al traslado se debe comunicar su condición, con el fin de tomar

las precauciones correspondientes, al acudir a unidades de apoyo para exámenes, procedimientos o consultas tanto dentro como fuera del establecimiento. Esta misma conducta es válida para el traslado de los pacientes a otros establecimientos y al alta. Durante el traslado se deben mantener las mismas medidas utilizadas en el servicio de origen. (lavado de manos, guantes y delantal manga larga).

4.8.8 Exámenes y Procedimientos Quirúrgicos: Los exámenes y procedimientos quirúrgicos deben ser programados en la medida de lo posible para el final de la jornada. En la solicitud del examen debe ir consignada la condición de colonización por ERV.



4.9 Manejo paciente sospechoso o portador ERV en áreas quirúrgicas 4.9.1 Los pacientes que ingresan a pabellón bajo sospecha de portación de ERV o colonizdos con ERV serán atendidos

con las Precauciones de Contacto para ERV durante toda su estadía en pabellón y hasta que sean trasladados a su servicio de destino.

4.9.2 En lo posible programar al paciente ERV positivo o sospechoso al final de la tabla operatoria. 4.9.3 Lavado de manos antes y después de retirarse los guantes y al atender al paciente. 4.9.4 Uso de delantal manga larga y guantes al atender al paciente y al tomar contacto con los elementos y/o artículos

contenidos en la sala de pabellón. 4.9.5 Limitar al máximo la circulación de personal en el pabellón. 4.9.6 Retiro de guantes y delantal eliminándolos antes de salir del pabellón del paciente ERV. 4.9.7 Lavado de manos con antiséptico. 4.9.8 No circular con pecheras o guantes por los pasillos. 4.9.9 La pechera y guantes serán eliminados en bolsa o receptáculo de desechos dispuestos para éste fin en la unidad

del paciente. 4.9.10 Al solicitar el traslado del paciente se le informará al servicio de destino acerca de la condición de sospechoso o

portador de ERV y se consignará en la ficha o registro anestésico. 4.9.11 Posterior al egreso del paciente deberá realizarse limpieza con agua y detergente de todas las superficies y luego

desinfección con cloro (pisos, mesa operatoria, colchoneta, brazaletes, fijadores, soportes de suero, mesas de arsenalería, mesa anestésica, máquina de anestesiaetc. etc.)

4.9.12 Todos los artículos que no puedan ser limpiados con agua y detergente se desinfectaran con alcohol 70° (teclera de monitor,bombas de infusión, dinamap, oxímetro etc.)

4.9.13 Si es posible utilizar film plástico (alusaplast) sobre las superficies de tecleras digitales que podrían dañarse con el alcohol, debiendo ser retirada al finalizar la atención del paciente ERV.

4.9.14 No olvidar que el material ocupado para el aseo terminal (trapero, paños de limpieza) son de uso exclusivo, debiendo ser eliminados posterior a su uso. Si se utiliza mopas para la limpieza asegurar enviar a lavandería.

4.9.15 En pabellón de Cardiocirugía podrá ubicarse otro paciente en la sala de preanestesia, siempre que no se transgredan las precauciones antes mencionadas.

4.9.16 El personal que participe en el retiro y traslado del paciente debe aplicar todas las precauciones de contacto descritas. Los guantes y pecheras se eliminarán en la unidad de destino del paciente.

4.9.17 Posteriormente deben lavarse las manos con antiséptico. 4.10 Manejo de pacientes portador de enterococo resistente a la vancomicina (ERV) en Endoscopias bajas: 4.10.1 Todos los pacientes portadores de ERV, serán atendidos con precauciones de contacto o barreras específicas

para ERV. 4.10.2 En lo posible asignar la última hora para efectuar el procedimiento. 4.10.3 Efectuar lavado de manos con jabón antiséptico antes y después de atender al paciente o tener contacto con las

secreciones o excreciones. 4.10.4 Atender al paciente con delantal manga larga y guantes los que serán de un solo uso. 4.10.5 Posterior a la atención del paciente efectuar limpieza de superficies y material de trabajo (camilla, silla, receptáculo

y todo lo que haya tenido contacto con el enfermo o con las secreciones o excreciones) con agua y detergente y paño exclusivo, limpio y seco.

4.10.6 Finalizada la limpieza realizar desinfección con una solución de cloro al 0.5%. 4.10.7 Los endoscopios deben someterse a la limpieza y desinfección según norma.



4.11 Instructivo para el personal de aseo para el Manejo unidades con pacientes colonizados o infectados por

Enterococo Resistente a Vancomicina (ERV) 4.11.1 El Enterococo resistente a la vancomicina es un microorganismo que vive habitualmente en el intestino y región

perianal de algunas personas sin provocarles daño, a estos pacientes se les denomina como pacientes colonizados.

4.11.2 Cuando este microorganismo es sacado de esa zona y trasladado a otro lugar del cuerpo puede provocar infecciones muy graves y difíciles de tratar con medicamentos

4.11.3 El traslado del Enterococo de un paciente a otro puede ser hecho por el personal que trabaja en el hospital a través de las manos o los elementos de trabajo que han estado en contacto con el microorganismo

4.11.4 El Enterococo permanece en el medio ambiente por largo tiempo por lo cual es importante mantener los ambientes lo más limpios posible.

4.11.5 Está comprobado que la limpieza frecuente de los ambientes hospitalarios disminuye la probabilidad de contagio así como también el uso de barreras protectoras para entrar a la unidad del paciente o para su atención.

4.11.6 A continuación se detalla como se recomienda realizar el aseo de una unidad de paciente portador de un ERV. - El aseo del servicio debe efectuarse desde lo más limpio a lo más sucio considerando como lo mas sucio

a la unidad del paciente con ERV. Por lo tanto, el aseo de la unidad del paciente infectado es lo último que se efectúa durante el ciclo de aseo.

- El aseo debe efectuarse siempre con material exclusivo para esa unidad para no desparramar los microorganismos a otras unidades.

- Todo el material de aseo debe quedar limpio y desinfectado al término del procedimiento para evitar la multiplicación de microorganismos.

- El aseo siempre se realiza con material que debe estar limpio y seco antes de ser humedecido. - El funcionario que realiza el aseo debe estar protegido con guantes de procedimiento y pechera de uso

exclusivo, los que son desechados dentro de la unidad posterior a su uso - Los desechos de la unidad deben ser retirados con frecuencia a lo menos 3 veces al día. - Los desechos no requieren tratamiento especial sólo manipulación con guantes y eliminación de los

guantes un vez finalizado el procedimiento - LAVE SUS MANOS CON JABÓN ANTISÉPTICO CA DA VEZ QUE SE RETIRE LOS GUANTES - El aseo de la unidad comprende muros hasta 1.80 mts. de alto y pisos. - La limpieza a realizar siempre debe ser con paños o mopas húmedas para no desparramar los

microorganismos en las partículas de polvo. - Previo a la limpieza retire las bolsas de desechos. - La limpieza se inicia por paredes hasta una altura de 1,80 mts. comenzando de arriba hacia abajo y por

las partes más alejadas del paciente. - El aseo termina con el piso de la unidad, iniciando la limpieza por lo más alejado del paciente. - Utilice una cara del paño o mopa por vez. - No olvide dejar los útiles de aseo limpios y ordenados.

4.12 Manejo de la colonización y tratamiento de la infección por ERV: 4.12.1 Está contraindicado el tratamiento antimicrobiano de la colonización por ERV, sólo se debe realizar a éste

en caso de infección y debe evaluarse según la localización. 4.12.2 Infección urinaria asociada a catéter urinario permanente: con frecuencia se resuelve con el cambio o retiro

del catéter, de no ser así, preferir el antibiótico más eficaz según sensibilidad. Si es sensible, tratar con nitrofurantoina.

4.12.3 Infección del torrente sanguíneo (bacteremia, septicemia) asociada a uso de catéter venoso central: con frecuencia se resuelve con el cambio o retiro del catéter, de no ser así, preferir el antibiótico más eficaz según sensibilidad. Si es sensible, usar ampicilina o cloranfenicol, asociado a un aminoglicósido.

4.12.4 Infección de herida operatoria: Las infecciones superficiales pueden ser tratadas con curaciones sin uso de antimicrobianos. Las infecciones profundas pueden requerir el uso de antimicrobianos, de preferencia cloranfenicol asociado a un aminoglicósido.

4.12.5 Si el ERV es resistente a nitrofurantoina, cloranfenicol y aminoglucosidos, el tratamiento debe ser consultado al Médico Infectólogo.


Bibliografía - Manual de Procedimientos MINSAL 1990 - Manual de Prevención y Control de I.I.H. y Normas del Programa Nacional de I.I.H.,

MINSAL, 1993. - Normas de Áreas Críticas, MINSAL. - CDC. Guideline for Isolation Precautions: Preventing Transmission of Infectious Agents

in Healthcare Settings June 2007http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/pdf/isolation2007.pdf - Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC): Management of

Multidrug-Resistant Organisms In Healthcare Settings, 2006 - Circular 4C “VIGILANCIA, PREVENCIÓN Y CONTROL DE INFECCIONES

INTRAHOSPITALARIAS POR ENTEROCOCOS RESISTENTES A VANCOMICINA” MINSAL Mayo 2000

- Plan de Control de Pacientes con ERV Hospital DR. Hernán Henríquez A. Temuco Abril 2008.

- Ordinario C13/Nº 1141 comunica actualización Normativa Vigilancia, Control y Prevención ERV, indica manejo traslado, control visitas y rechazo atención. MINSAL, Abril 2008


SERVICIO SALUD ARAUCANIA SUR HOSPITAL HERNAN HENRIQUEZ A. UNIDAD DE I.I.H.


C.- MANEJO DE BROTES. NORMAS DE MANEJO DE BROTES Sobre el 99% de las Infecciones Intrahospitalarias (IIH), se producen en forma endémica, ocasionalmente se detectan brotes epidémicos que generan gran alarma y preocupación en el personal, los pacientes y la comunidad. El estudio y control de un brote es una prioridad para los hospitales, pues en general se trata de infecciones prevenibles, asociadas a prácticas de atención de pacientes y que afectan a enfermos con patologías graves, aumentando el riesgo de complicaciones severas. Definición: Corresponde al aumento significativo de la incidencia de una enfermedad determinada producida por una sola cepa microbiana o agente etiológico, en general en un corto período de tiempo, en una misma población. Frente a sospecha o aumento de infecciones en un determinado grupo de pacientes debe darse aviso inmediato a la Unidad de Infecciones Intrahospitalarias para que comience el estudio del brote y se establezcan las medidas de control. Estudio de Brote: - Revisión de la literatura - Elaboración de la curva epidémica (Nº de casos en función del tiempo) - Búsqueda de factores de riesgo asociados a la IIH - Verificar el Diagnóstico, se debe comprobar que el diagnóstico clínico y de laboratorio correspondan a la definición. - Definición de caso: la definición de caso debe describir las características clínicas y de laboratorio de las personas

afectadas. Es conveniente definir “caso propiamente tal”, “caso probable”, “colonización”. - Búsqueda activa de casos: debe hacerse vigilancia activa no sólo de los pacientes estudiados sino extenderla a

otros pacientes, puede ser necesario revisar fichas de otros pacientes, entrevista con el personal clínico buscando probables causas, realizar cultivo a personas que presentes el mismo cuadro clínico u otras actividades.

- Evaluación preliminar: se puede determinar la existencia del brote comparando las cifras y/o tasas actuales con lo histórico registrado en otros períodos.

- Describir el brote: se debe determinar el tiempo de duración del brote (inicio y término), lugar, personas involucradas, cuadro clínico, morbilidad y letalidad.

- Análisis preliminar: con el fin de obtener una impresión de la naturaleza del brote su magnitud y severidad, se debe formular una hipótesis tentativa que incluya los posibles reservorios, vías de transmisión u otros factores que puedan estar condicionando el brote.

- Iniciar medidas de control: se deben iniciar medidas de control frente a sospecha de un brote mientras se inician las investigaciones para la comprobación de las hipótesis.

- Revisar, afinar y supervisar las medidas de prevención y control ya iniciadas de acuerdo a los resultados obtenidos en las investigaciones.

- Vigilancia de grupos de riesgo: mantener vigilancia de estos grupos con el fin de evaluar el impacto de las medidas. - Informe: dejar constancia por escrito sobre el diagnóstico del brote, actividades realizadas, análisis y conclusiones. Bibliografía: Ministerio de Salud. Manual de Prevención y Control de las Infecciones Intrahospitalrias (IIH) y Normas del Programa Nacional de IIH. 1993; 5: 40-43



D NORMAS DE PREVENCIÓN Y CONTROL DE INFECCIONES ASOCIADAS A

PROCEDIMIENTOS INVASORES ESPECÍFICOS:

D.1.- PREVENCIÓN DE NEUMONIA NOSOCOMIAL ASOCIADA A VENTILACIÓN MECÁNICA (NAVM) Nombre Norma:

Norma de Prevención de Neumonía asociada a Ventilación Mecánica

Objetivo:

- Aplicar medidas efectivas para prevenir las infecciones respiratorias asociadas

a procedimientos con intubación endotraqueal. Responsables de cumplimiento:

- Médicos que indican el procedimiento y lo realizan. - Enfermeras que manipulan el tubo endotraqueal y el ventilador mecánico - Técnicos Paramédicos que ayudan en los procedimientos - Otros profesionales - Alumnos - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento

Definiciones y clasificación:

NAVM: Neumonía que se presenta en el paciente después de 48 horas de conectado a ventilación mecánica.

Indicaciones de Ventilación Mecánica:

- Insuficiencia respiratoria aguda - Insuficiencia respiratoria crónica reagudizada - Schock séptico y cardiogénico - Manejo del edema cerebral - Tórax volante - Ventilación profiláctica en cirugía torácica y abdominal de gran envergadura y

obesidad mórbida - Manejo de secreciones en pacientes con mecánica límite y tos ineficaz - Protección de vía aérea en pacientes con alto riesgo de aspiración (compromiso

de conciencia) - Reanimación cardiopulmonar - Anestesia general




- En cada Unidad o Servicio debe estar normado por el Médico jefe los fundamentos y el tiempo de la ventilación. - La indicación y fundamento de instalación del tubo endotraqueal es de responsabilidad médica y debe estar

consignado en la evolución clínica de la ficha del paciente. - Los procedimientos invasores de la vía aérea deben realizarse con técnica aséptica y por personal calificado. - Se debe utilizar material y equipos estériles en los procedimientos de la vía aérea. - Los fluidos empleados en el manejo de la vía aérea deben ser estériles. - Se debe mantener la intubación endotraqueal por el mínimo tiempo posible - El oxígeno administrado debe ser húmedo y temperado. - Los tubos endotraqueales que se utilizan deben ser de plástico inerte, siliconado y estar estériles. - Para la intubación se debe contar con campo y guantes estériles además de tubos de diferentes medidas. - Los tubos endotraqueales de adultos deben tener un manguito (cuff) complaciente de baja presión. - Durante la permanencia del tubo endotraqueal, el manguito o cuff se manipula sólo para monitorizar la presión - Los tubos endotraqueales se deben fijar para evitar su desplazamiento y arrastre de gérmenes de la vía respiratoria

superior a la inferior. - Los tubos endotraqueales No deben cambiarse en períodos pre-establecidos, sino después de evaluar la situación

de cada paciente. (está indicado en caso de extubación accidental, si obstruyen la vía aérea, y cuando se produce rotura de cuff, filtración o tubo inadecuado a la necesidad del paciente)

- Se debe mantener al paciente semisentado en un ángulo de 30 a 45º. - Los pacientes post quirúrgicos deben recibir analgesia y kinesioterapia respiratoria. - Se debe realizar lavado de manos antes y después de manipular la vía aérea o los circuitos de ventilación

mecánica. - La aspiración se debe realizar con técnica aséptica y material estéril. - La aspiración de secreciones endotraqueales debe ser realizada por personal profesional capacitado en forma

contínua en las técnicas y en conocimiento de los riesgos que éstas representan para el paciente. - El equipo a usar en cada procedimiento debe ser de un sólo uso. - La técnica se debe realizar entre 2 personas (a 4 manos). - La aspiración de secreciones debe realizarse según necesidad del paciente. No programar aspiraciones de rutina - El procedimiento de aspiración debe ser durante el menor tiempo posible. - Se debe aspirar primero el tubo y finalizar con la boca. - Para el lavado de la sonda intraprocedimiento se deben emplear ampollas de suero fisiológico o agua destilada

estéril y al finalizar la aspiración se debe descartar la sonda. - No es recomendable la instilación a través del TET ya que arrastra gérmenes hacia el interior de la tráquea,

aumentando con esto el riesgo de infección. - La sonda NO DEBE PASAR del extremo del TET, ya que produce daño a la mucosa - Si durante el procedimiento se contamina parte del material el operador debe cambiar todo el material necesario

para mantener la técnica aséptica del procedimiento. - Siempre que sea posible, el paciente debe ser informado del procedimiento para lograr su colaboración. - La conexión al respirador (tubo en T) debe permanecer idealmente en las manos del ayudante mientras se realiza

el procedimiento o en su defecto sobre campo estéril - Se deben mantener las mangueras libres de líquido condensado, evitar que el líquido fluya hacia el paciente. - Emplear nebulizadores estériles al adicionarlos al sistema de ventilación mecánica. - Asegurar la desinfección del laringoscopio, fibrobroncoscopio y ambú. - Cambiar todos los elementos de la terapia respiratoria entre pacientes. - No se debe cambiar el tubo ni el circuito del ventilador con una frecuencia prefijada. - Considerar el uso de filtros higroscópicos en el tubo espiratorio para disminuir la condensación.



Descripción de procedimientos

1. Intubación orotraqueal o nasotraqueal

2. Retiro del tubo endotraqueal.

3. Mantención y cambio cánulas de traqueostomía

- Realizar lavado de manos clínico - Colocar al paciente en posición para el procedimiento (decúbito

dorsal, cabeza en hiperextensión o bien semiflectado si la intubación es nasotraqueal)

- Colocarse mascarilla, luego guantes - Colocar bandeja o campo estéril para dejar el tubo endotraqueal

si es necesario - Un segundo operador aspirará secreciones de la cavidad oral. - Asistir la ventilación con ambú - En los TET de adultos verificar la indemnidad del cuff - Una vez intubado el paciente, verificar la adecuada posición del

tubo. - Inflar el manguito con aire indicado cuando corresponda. - Fijar el tubo - Aspirar secreciones endotraqueales con técnica aséptica - Conectar el tubo endotraqueal al sistema de ventilación con

técnica aséptica. - Lavar las manos - Medir presión del cuff cada 12 hrs - Suspender alimentación con la antelación suficiente - Informar al paciente de las características del procedimiento que

se realizará en lenguaje comprensible a su nivel educacional. - Reunir dos equipos de material para aspiración (2 bandejas , 2

pares de guantes, 2 sondas) - Lavado de manos, según técnica. - Aspirar la nasofaringe. NO LA TRAQUEA y desechar material. - Desinflar Cuff y soltar la fijación - Aspirar la vía respiratoria a través del tubo endotraqueal - Retirar el tubo suavemente siguiendo la curvatura, SIN ASPIRAR. (se

recomienda incluso insuflar con ambú para evitar atelectasias). - Conectar al paciente al nuevo método de oxigenoterapia

indicada. - Retirar los guantes - Lavar manos - Registrar el procedimiento

- La cánula del traqueostoma no debe cambiarse a no ser que se rompa el

manguito (cuff) o que se requiera presión superior a 25 mmHg en forma sostenida para sellar vía aérea.

- La fijación de la cánula se debe realizar con una cinta alrededor del cuello. - El manguito (cuff) se maneja en la misma forma que el del tubo endotraqueal

monitorizando la presión del cuff. - La aspiración de secreción corresponde a la descrita para el tubo endotraqueal. - La piel que rodea el traqueostoma se debe mantener limpia y seca. - La frecuencia de cambio de la curación del traqueostoma se debe establecer en

base a la evaluación constante de los apósitos.



4. Limpieza y desinfección de laringoscopio:

5. Aspiración de secreciones

- Colocar guantes de procedimientos limpios - Prepare solución detergente en riñón o bandeja. - Desarme el laringoscopio. - Sumerja la hoja del laringoscopio en agua con detergente. - Escobille la hoja removiendo secreciones adheridas. - Enjuague con agua corriente. - Seque con paño limpio. - El mango se limpia por la superficie externa con una compresa húmeda. - Desinfecte el mango y la hoja del laringoscopio con alcohol al 70%. - Arme el laringoscopio y pruébelo. - Déjelo guardado en su caja correspondiente para posterior uso. - Informar al paciente sobre el procedimiento si su condición lo permite - Si el paciente está en ventilación mecánica se debe asistir con FI02 de 100%

por 3 minutos antes y después del procedimiento. - El operador y el ayudante deben realizar lavado de manos clínico previo al

procedimiento. - Verificar la correcta posición y fijación del tubo endotraqueal - El operador se coloca guantes estériles en ambas manos y el ayudante emplea

guantes de procedimiento. Conectar la sonda de aspiración estéril a la fuente de aspiración. Es recomendable usar presión de aspiración de

- 100 – 150 cm de agua, en los

- paciente y mantener

- sonda sin aspirar y cuidando de no sobrepasar el

lugares donde se pueda determinar el vacío. Desconectar el sistema de oxigenoterapia que usa elsostenido por el ayudante o dejarlo sobre campo estéril. Introducir suavemente laextremo distal del tubo.

- Retirar la sonda aspirando con movimientos suaves de rotación - El tiempo de aspiración no debe ser más de 10 - 15 segundos - Repetir el procedimiento si es necesario - Reinstalar oxigenoterapia durante unos segundos antes de repetir la aspiración. - ntilación mecánica.

ire nasofaringe SOS, vuelva a lavar y a si es necesario.

el material.

o. Registro de la técnica en hoja ad-hoc especificando cantidad y calidad de

secreciones.

Terminado el procedimiento reinstalar la ve- Lavar la sonda en agua destilada, asp

aspire finalmente la boc- Descartar la sonda y retirar - Retirar los guantes. - Realizar lavado de manos. - Si el paciente está intubado o traqueostomizado (sin V.M) se debe apoyar con

ambú y FI02 por 2 -3 minutos antes y después del procedimiento. - Lavado de manos del operador y su ayudante al final del procedimient-

- El ayudante debe dejar el equipo limpio para ser usado nuevamente.



Indicador de calidad: Tasa de NAVM Núm o lación mecánica (24 horas o más) /

núm o

er de neumonías en pacientes en ventier de días de ventilación mecánica según Unidad Clínica X 1000

Estándar o umbral de evaluación Está and r Nacional anual para cada Unidad Bibliografía: -

-

- 03 - Ruiz, Y; Diaz, H Movimiento rotatorio de la sonda durante la aspiración traqueal.

Revista electrónica de medicina intensiva [en línea]. Junio 2008. Vol. 8 nº 2.

Manual de Procedimientos MINSAL 1990 Manual de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias MINSAL 1993. Hernández G, Dalmazzo R, De - La Cerda G, Saavedra C, Calvo M. Prevención de laneumonía asociada a ventilación mecánica. En: Neumonía asociada a ventilación mecánica; Bases para su diagnóstico, tratamiento y prevención. Consenso. Rev Chil Infect 2001; 18 (Suppl 2):66-76 CDC Guidelines for preventing Health- care associated Pneumonia, 20

Disponible en Internet http://remi.uninet .edu/2008/02/200802C1.html D.2.- NORMASVENTILADOS

DE PREVENC

Norma d s no ventilados

ION DE NEUMONIA NOSOCOMIAL EN PACIENTES NO

Nombre Norma: e Prevención de Neumonía Nosocomial en paciente

Objetivos:

ntrahospitalarias en los - Aplicar medidas efectivas para prevenir las neumonías ipacientes no ventilados.

Responsables de cumplimiento: dican el procedimiento y lo realizan. s que realizan los procedimientos

alizan o ayudan en los procedimientos

-

- Médicos que in- Enfermeras y matrona- Técnicos Paramédicos que re- Kinesiólogos - Otros profesionales - Alumnos de pre y postgrado

Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento Definiciones y clasificación: Neumonía intrahospitalaria:

del paciente al hospital y que no estaba en incubación o con síntomas al momento de su ingreso

- Neumonía que aparece hasta 7 días posterior al alta del paciente.

- Es la neumonía bacteriana que aparece después 48 hrs. del ingreso



DESCRIPCIÓN DE LA NORMA - Procurar hospitalizaciones cortas - El personal que realiza procedimientos de apoyo de la terapia respiratoria, debe estar capacitado y

supervisado constantemente en las técnicas y en conocimiento de los riesgos que representan para el paciente.

- Mantener al enfermo en posición semisentada a 45° especialmente durante las comidas. - Alimentación enteral fraccionada, evitando grandes volúmenes gástricos - Movilizar periódicamente a los enfermos sin movilidad espontánea - Mantener un buen aseo oral con cepillado dental c/12 horas. - Kinesioterapia respiratoria y analgesia en los postraumátizados y post operados para mantener la eficacia de la tos

y prevenir atelectasias. - Realizar lavado de manos antes y después de realizar procedimientos de oxigenoterapia. - La administración de oxígeno debe ser por indicación médica. - Todos los materiales utilizados para la administración de oxígeno (nariceras, mascarillas, halo, humedificador,

etc) deben ser de uso individual y cambiarse entre pacientes por otros limpios y secos. - El oxígeno se debe administrar humidificado para evitar la sequedad y el enfriamiento de la vía respiratoria

superior, que favorece la proliferación de gérmenes al cambiar las condiciones naturales del sistema. - Los reservorios húmedos deben ser llenados inmediatamente antes de usarlos con agua destilada que debe

renovarse cada 24 horas. - Para cambiar el agua debe eliminarse el remanente. NO SE DEBE RELLENAR. - Las nariceras, mascarillas, humedificadores, hood, nebulizadores, etc. no requieren cambio con una frecuencia

pre-establecida en un mismo paciente, sólo en caso necesario (suciedad por ej.). - Las nariceras, mascarillas, ambú y otros, deben mantenerse siempre protejidos en bolsa de polietileno en la

unidad del paciente. NO DEBEN COLGARSE DE BALONES O MANOMETROS SIN PROTECCION. - El fluído que se administra debe ser estéril y debe colocarse en el nebulizador con técnica aséptica en el

momento que se utiliza. - Los nebulizadores deben ser de uso individual y deben cambiarse por otro estéril entre un paciente y otro. - Mientras permanezca en la unidad del paciente debe estar seco y protegido con bolsa de polietileno. - La aspiración de secreciones nasobucales debe realizarse con técnica aséptica y sonda estéril de un solo uso. - El equipo a usar en cada procedimiento debe ser de uso individual - Los frascos colectores deben guardarse estar limpios y secos. Si no se usan frecuentemente deben cubrirse para

evitar el depósito de polvo ambiental en la salida. - El profesional que realiza la aspiración y su ayudante deben lavarse las manos antes y después del procedimiento. - En la medida de lo posible, el paciente debe ser informado del procedimiento para lograr su colaboración. - Se debe registrar en el documento correspondiente la calidad y cantidad de secreción aspirada.

Descripción de procedimientos Nebulización:

- Realizar lavado de manos clínico o asepsia manos con alcohol

gel - Explicar al paciente el procedimiento para lograr su colaboración. - Colocar al paciente en posición semi-sentado. - Llenar con técnica aséptica el reservorio del nebulizador. - Iniciar la nebulización con O2 10 lts por minuto, asegurándose

que el paciente cumple las indicaciones recibidas. - Dejar nebulizando el tiempo necesario para cumplir la indicación. - Guardar los medicamentos cuya presentación sea de dosis

múltiple, siguiendo instrucciones del fabricante. - Dejar el nebulizador seco y protejido con bolsa de polietileno.

para la próxima nebulización.



Limpieza y desinfección de material de oxigenoterapia

- Registrar el procedimiento

- Se deben lavar con agua tibia y detergente en forma prolija. - Una vez lavados, enjuagar con agua corriente (caliente para facilitar el secado). - Proceder a secar rigurosamente con compresa o paño limpio. - Friccionar con gasa empapada en alcohol al 90 %. - Guardar en bolsa de polietileno limpia y almacenar en estante cerrado

Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990 - Manual de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias MINSAL

1993. - CDC Guidelines for preventing Health- care associated Pneumonia, 2003

D.3.- NORMAS DE PREVENCION DE INFECCION URINARIA ASOCIADO AL USO DE CATETER URINARIO. Nombre Norma: Norma de Prevención de Infecciones del Tracto Urinario asociadas al uso de

Catéter Urinario Permanente Objetivos:

- Aplicar medidas efectivas de Prevención de infecciones urinarias asociadas al uso de catéteres, con el fin de disminuir su ocurrencia.

Responsables de cumplimiento: - Médicos que indican el procedimiento de instalación y retiro de los catéteres urinarios.

- Enfermeras y Matronas que instalan los sondas urinaria, toman muestras de orina para exámenes y retiran catéter

- Técnicos Paramédicos que vacían bolsa colectora y manipulan catéter. - Técnicos Paramédicos, camilleros y Auxiliares que trasladan pacientes. - Jefes de Unidad que deben cautelar su cumplimiento - Supervisores que deben Supervisar todos los procesos y realizar el seguimiento

de los diferentes Indicadores de Calidad. - Docentes y alumnos de pre y post grado.

Definiciones: - ITU.- Infecciones del Tracto Urinario. - Catéter Urinario Permanente: aquella que permanece por más de 24

horas instalada. - ITU/CUP.- Infecciones del tracto urinario asociadas al uso de catéter

urinario permanente.

Indicaciones de Catéter urinario permanente (CUP):

- Hematuria importante. - Cirugía urológica - Medición de diuresis horaria - Obstrucción de la vía urinaria.




- En cada Unidad o Servicio debe estar normado por el Médico jefe los fundamentos y el tiempo de uso del CUP. - La indicación y fundamento de instalación del CUP es de responsabilidad médica y debe estar consignado en la

evolución clínica de la ficha del paciente. - El tiempo de permanencia del catéter debe ser el mínimo necesario por lo que se debe evaluar diariamente la

necesidad de su mantención - Los catéteres a permanencia NO DEBEN cambiarse en forma arbitraria ni a intervalos regulares preestablecidos - Si las condiciones del paciente lo permiten, preferir el uso de preservativo o pañales desechables. - La instalación del catéter urinario transitorio o permanente debe ser realizada por profesionales debidamente

capacitados y supervisados. - La instalación de catéter urinario transitorio o permanente siempre debe realizarse con técnica aséptica. - La instalación de catéter urinario transitorio o permanente debe realizarse por 2 personas (operador y ayudante) - El drenaje de orina debe ser fluido, sin obstrucción de ningún tipo. - La sonda sólo se pinzará transitoriamente para el traslado de los pacientes, debiendo despinzarse en los tiempos

de espera para exámenes o procedimientos. - La fijación del catéter en los muslos se debe realizar con tela en forma de Ω, permitiendo los movimientos de las

extremidades del paciente y evitar la tracción y deslizamiento del catéter. - Los CUP siempre deben mantenerse con sistema de drenaje en circuito cerrado y permeable - Éste sólo podrá ser desconectado, por el mínimo tiempo posible, para los procedimientos de cambio de bolsa

recolectora cuando sea requerido. - La bolsa colectora debe mantenerse siempre bajo el nivel de la vejiga, con el fin de evitar el reflujo de orina. - La bolsa recolectora no debe llenarse más de ¾ de su capacidad. - El frasco de vaciamiento de orina debe permanecer limpio y seco y en lo posible de uso individual. - Para medir la orina debe desinfectarse el tubo de evacuación con alcohol de 70º - La obtención de muestras de orina para exámenes debe realizarse con técnica aséptica según normativa. - A menos que exista indicación médica precisa se debe seleccionar el catéter de menor calibre que cumpla con el

objetivo deseado a fin de evitar traumatismos en la uretra. - Durante el período de hospitalización del paciente, la técnica de autocateterismo requiere del USO DE MATERIAL

ESTERIL, para disminuir el riesgo de contaminación por contacto con flora microbiana intrahospitalaria. - La zona genital debe mantenerse limpia realizando aseo genital con agua y jabón al menos dos veces al día y cada

vez que sea necesario, de acuerdo a la presencia de suciedad visible. - Se debe educar al paciente sobre los cuidados del sistema para lograr su colaboración. - La fijación externa (en el muslo) del catéter a permanencia se debe cambiar cada 12 hrs. para evitar maceraciones

y úlceras de apoyo. Esta maniobra puede realizarse junto con los aseos genitales externos. - En pacientes con heridas operatorias o lesiones periuretrales, los aseos genitales deben ser más frecuentes - Se debe evitar la presencia de apósitos húmedos que pueden constituir un foco de contaminación cercano al

catéter. - La práctica de “reeducación vesical”, que consiste en pinzar el catéter de pacientes que lo han usado por largo

tiempo antes de su retiro a fin de generar sensación de necesidad miccional, obstruye el catéter e impide el libre flujo urinario, por lo que no debe utilizarse.

- La irrigación vesical continua o discontinua sólo está indicada si se anticipa obstrucción (en cirugía vesical o prostática) y debe realizarse con técnica aséptica.

- El circuito debe permanecer cerrado durante la irrigación. - No se debe pinchar los sueros para acelerar los flujos, para este efecto utilizar equipos que tengan toma de aire. - El uso de antisépticos en irrigaciones no tiene indicación.



Descripción de procedimientos 1. Instalación del CUP:

2. Cateterismo intermitente

- Debe ser realizado por un operador y un ayudante. - La instalación del catéter urinario debe ser con técnica aséptica. - Informar al paciente de las características del procedimiento en lenguaje

comprensible a su nivel educacional. - Realizar aseo genital con agua y jabón (por arrastre) por el operador o

supervisado por éste, inmediatamente antes de la inserción del catéter. - Realizar lavado de manos clínico antes de la instalación o manipulación del

catéter o sistema de drenaje. - El operador se colocar guantes estériles

Preparar el campo estéril, asegurándose que éste le permita realizar las maniobras sin contaminar los materiale

- s, es decir, sin que los materiales

- namiento del balón y lubricar el extremo ina estéril u otro.

a cerrada a fin de evitar

- rificar que el prepucio quede en posición fisiológica, al

caciones como parafimosis.

do siempre el

- - - cumento correspondiente la hora, calibre del catéter,

ca (por ej. primera cateterización, obtenida y cualquier hallazgo de

ica aséptica

- -

alizar el alizar las maniobras sin que los

no estériles.

estériles toquen superficies no estériles. Preparar el catéter, probando el funcioa introducir con vasel

- Introducir el catéter. - Inflar el balón con agua destilada o suero estéril (5-10 cc), dependiendo de las

recomendaciones del fabricante. - Conectar el catéter al recolector sin que los extremos entren en contacto con

superficies no estériles. - Comprobar que el recolector tenga la válvula de salid

derrames de orina. Traccionar suavemente la sonda a fin de dejar in situ.

- En los varones, vefinalizar el procedimiento, para evitar compli

- Retirar los guantes - Fijar el catéter a la cara interna del muslo. - Fijar la bolsa recolectora a la cama del paciente, sin traccionar. - Verificar la permeabilidad del recorrido, en especial evitando que el catéter o el

tubo recolector se acoden o aplasten. e el paciente y el recolector mantenien- Establecer la gradiente entr

recolector bajo el nivel de la vejiga. Retirar los equipos usados y desechos de la unidad del paciente. Lavarse las manos. Registrar en el do

pacidad del balón, tipo de procedimientorecambio, cantidad y calidad de orinaimportancia).

- Se debe realizar con técn- Realizar el aseo genital

Lavado clínico de manos Colocar guantes estériles

- Preparar el campo estéril asegurándose que éste le permita reprocedimiento, es decir, que puede remateriales estériles toquen superficies



3. Autocateterismo intermitente

4. Manipulación de la bolsa recolectora y medición de diuresis

5. Toma de exámenes:

- Preparar el catéter, lubricando el extremo que se introduce en uretra. Introducir el ca- téter hasta que fluya orina

riñón con la orina y el resto de los materiales de la unidad

- Lavado de manos.

Es el mismo procedimiento descrito anteriormente realizado por el propio

estéril

-

ejiga durante todo el tiempo del paciente.

- Vaciar toda la orina en el riñón estéril - Retirar el catéter, el

del paciente. - Medir el volumen de orina en la copa graduada

Retirar los guantes. -- Registrar la hora, calibre del catéter, tolerancia del procedimiento, cantidad y

calidad de la orina retenida.

-paciente, siendo condición esencial hacerlo con técnica y material durante la hospitalización.

Al manipular la bolsa recolectora, debe hacerse con Técnica Aséptica

- Aplicar alcohol gel o realizar lavado clínico de manos - Mantener la bolsa recolectora bajo el nivel de la v

que permanezca instalado el catéter, independiente de la posición - El catéter y las conexiones deben mantenerse libres de acodaduras. - Colocarse guantes de procedimiento o manoplas

Usar una copa graduada limpia y seca p- - Previ

ara recoger la orina. cohol de 70º

r los bordes de la

Tom e sonda vesical instalada hace 24 horas o men :

- previo al procedimiento

catéter con alcohol 70%, esperar que se ción

el momento de tomar la muestra

-

Tom e onda vesical instalada hace más 24 de horas: para cambiar la sonda antes de proceder a

lsa recolectora

o al vaciamiento desinfectar el tubo de evacuación con alr (sin toca- Vaciar la orina en la copela graduada sin contamina

copela ni la orina acumulada en ella). - - Registrar lo medido (cantidad y calidad de la orina vaciada). - El procedimiento es individual para cada paciente. a d muestra en pacientes conos

Realizar lavado de manos clínico - Colocar guantes de procedimiento o manoplas - No desconectar el circuito - Limpiar la superficie externa del

seque para que ejerza su ac- Pinzar el catéter en- Efectuar punción en ángulo de 30º - Depositar la orina en frasco estéril - Realizar lavado de manos

Rotular la muestra - Enviar de inmediato al laboratorio. a d muestra en pacientes con s- Seguir pasos de instalación CUP

tomar la muestra de orina - Tomar ésta antes de conectar la bo- Depositar en un frasco estéril - Enviar de inmediato al laboratorio



6. Retiro del Catéter urinario:

RET

dimiento.

- Vaciar el cuff con jeringa. - Traccionar suavemente la sonda, hasta retirarla totalmente.

IRO DE CATETER URINARIO:- Realizar lavado clínico de manos. - Colocarse guantes de proce- Soltar la fijación del catéter urinario.

- Realizar lavado de manos - Registrar el procedimiento.

Indicador de calidad: Número de infecciones urinarias en pacientes con catéter urinario permanente (24 Tasa de ITU-CUP horas o más) / número de días catéter urinario X 1000

Estándar o umbral de evaluación Está arnd nacional del año correspondiente para cada servicio o Unidad

Bibliografía:

SAL, 1993. E FOR PREVENTION OF

- - Norma General Técnica Nº 95 de Prevención de Infecciones del Tracto Urinario

Asociadas a uso de Catéter Urinario Permanente en adultos. MINSAL 2007.

- Normas de Procedimientos Invasivos para la Prevención y Control de las I.I.H., MINSAL, 1989. Manual de Prevención y Control de I.I.H., Normas y Programa, MIN-

- Edward S. Wong and Thomas M. Hooton. CDC. GUIDELINCATHETER ASSOCIATED URINARY TRACT INFECTIONS 1981

- Journal Hospital Infection. Mayo 2000 vol. 45 Infection Control Hospital Epidemiology. Mayo 2000, vol. 21

DEL TORRENTE SANGUINEO ASOCIADAS A S INTRAVASC

rma: Nor d a

Disposi

D.4.- PREVENCIÓN DE INFECCIONESDISPOSITIVO ULARES

Nombre No ma e Prevención de Infecciones del Torrente sanguíneo asociadastivos intravasculares centrales (CVC) y periféricos

Objetivo:

- Prevenir el riesgo de infecciones asociadas al uso de dispositivos . endovenosos centrales y periféricos y su manipulación

Responsables del cumplimiento: - l catéter venoso central

imiento y manipulan férico

procedimientos

-

ondiciones adecuadas limiento

- Médicos que indican el procedimiento y lo realizan. Enfermeras que manipulan e

- Enfermeras, Matronas y Tecnólogos que realizan el procedel catéter venoso peri

- Técnicos Paramédicos que ayudan en los- Otros profesionales

Docentes y Alumnos de pre y postgrado - Unidad de Farmacia que debe velar que la entrega de la Nutrición Parenteral

por el proveedor sea en las c- Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cump

Definiciones y clasificación: ITS: ecCVC is

- sculares pueden ser centrales o periféricos.

de larga duración.

inf ción del torrente sanguíneo : d positivos que permiten el acceso al espacio intravascular central.

Según localización, los catéteres va- Según el tiempo de permanencia pueden ser transitorios o de corta duración; o

permanentes o- Según el material de fabricación pueden ser de silicona, teflón, recubiertos o

impregnados



Catéter central periféricamente instalado (CCPI): dispositivo de silicona biocompatible y radiopaco, de inserción periférica, pero la ubicación de su extremo distal (punta ) es central

más utilizado cuando se necesita un acceso poyo

vo de inyección para tratamiento endovenoso intermitente.

o cuantitativo del extremo distal del catéter, del segmento subcutáneo o de

largo del trayecto subcutáneo (por dentro del cuff) de un catéter

itema y/o piel

te.

ciones clínicas de infec n otra fuente aparente de infección. Adem s

- - al hasta detectarse crecimiento bacteriano, de al menos 2 hrs.,

distal del dispositivo y hemocultivos), pero

(vena cava superior o subclavia), utilizado generalmente n neonatología y oncología pediátrica. Catéter de hemodiálisis: Es un catéter de doble lumen para la realización de hemodiálisis. No debe utilizarse para otros fines. Catéter tunelizado: Es el dispositivo prolongado a la circulación central, ya sea para la administración de quimioterapia o anutricional Parenteral de larga duración. Catéter venoso periférico: dispositivo que permite acceder a una vena periférica. Tapón in luer: es un dispositiFlebitis: Induración o eritema con aumento de la temperatura local y/o dolor alrededor del sitio de inserción del catéter. Colonización del catéter: Crecimiento significativo de un microorganismo (recuento ≥ a 15 UFC) en un cultivla conexión. Este fenómeno no implica bacteremia, ni requiere de tratamiento antimicrobiano. Infección del túnel: eritema, aumento de la sensibilidad y/o induración a más de 2 cms, del sitio de salida, a lotunelizado (Hickman-Broviac o de hemodiálisis) con o sin infección concomitante del torrente sanguíneo. Infección del bolsillo: Infección con salida de fluido en el bolsillo subcutáneo de un catéter totalmente implantable. A veces asociado con aumento de la sensibilidad, erinduración sobre el bolsillo. Puede haber rotura espontánea y drenaje o necrosis de la que cubre el reservorio, con o sin infección del torrente sanguíneo concomitanITS relacionada a la infusión: Crecimiento de igual microorganismo de la infusión y desde hemocultivos periféricos, sin evidencia de otra fuente de infección. ITS relacionada al catéter: Bacteremia o fungemia en un paciente con dispositivo vascular con uno o más hemocultivos periféricos positivos, con manifesta

cio es (fiebre, calofríos, y/o hipotensión) y siná se deben cumplir al menos una de las siguientes condiciones.

Cultivo positivo del extremo del catéter Tiempo diferencientre el hemocultivo obtenido por catéter y el hemocultivo periférico (sistemas automatizados).

- Cultivos negativos (cultivo del extremocon mejoría clínica al retirar el catéter.

Indicaciones: EL CVC:

DEL CATÉTER VASCULAR PERIFÉRICO:

hemodinámica entos o realizar exámenes específicos.

- os venosos periféricos, pacientes multipuncionados con pérdida

ugías Son m rte médico:

- Terapias, - Monitorización

D

- Monitorización - Infusión de medicam- Plasmaféresis

Nutrición Parenteral - Carencia de acces

de indemnidad de la piel - Grandes cir

sie pre de reso- Exámenes



DESCRIPCIÓN DE LA NORMA - La instalación de un dispositivo intravascular siempre es una indicación médica - Deben existir normas claras de indicación médica del CVC en cada Servicio donde se realiza este procedimiento. - El personal que instala y maneja dispositivos intravasculares tanto centrales como periféricos debe estar

debidamente capacitado. - En los servicios en que se ha delegado la cateterización periférica en el personal técnico paramédico es de

responsabilidad de la supervisora realizar la capacitación y el programa de supervisión correspondiente. - La instalación de un CVC por un operador en formación debe ser realizado con la supervisión y acompañamiento

de un operador más experimentado - La elección del material y tipo de dispositivo se efectuará considerando el objetivo, necesidades del paciente por

ej.: uno o más lúmenes y la disponibilidad en el Establecimiento. - En el caso de los catéteres periféricos, se debe elegir el del menor calibre que cumpla con el objetivo de la punción

de modo de evitar trauma o irritación local. - La piel del sitio de punción debe estar indemne. - Previo a la instalación se debe preparar la piel del paciente realizando lavado de la misma con jabón antiséptico y

luego aplicar antiséptico, respetando los tiempos de acción. - La instalación de cualquier dispositivo debe ser con técnica aséptica - En el caso del CVC debe ser instalado con técnica aséptica y con utilización por parte de él o los operador es de

mascarilla quirúrgica, gorro, lavado de manos quirúrgico con jabón antiséptico, delantal estéril y guantes estériles. El campo estéril debe ser lo más amplio posible.

- Se recomiendan los CVC por vía vías subclavias y yugular en adultos, el acceso femoral no es recomendable en adultos, ya que se ha demostrado un mayor porcentaje de complicaciones infecciosas y de trombosis en comparación con las anteriores.

- En niños no se cuenta con evidencia de mayores complicaciones en relación al acceso femoral. - No se debe utilizar el acceso subclavio para instalación de CVC destinados a hemodiálisis. Preferir

acceso vía yugular interna y si se prevé que la duración de este acceso será mayor a 3 semanas utilizar un catéter tunelizado.

- Para pacientes que requieran terapias intermitentes y prolongadas, preferir un CVC tunelizado o un catéter permanente con bolsillo subcutáneo.

- En la venopunción periférica, de preferencia utilizar las venas de las extremidades superiores, y en orden de distal a proximal.

- Las punciones con catéter periférico en extremidades inferiores de jóvenes y adultos deben ser cambiadas en cuanto sea posible a una vena en extremidades superiores, por el riesgo de embolia.

- Se deben evitar las punciones en zonas de pliegues por que la movilización del paciente aumenta el riesgo de pérdida de la vía.

- Los catéteres periféricos y líneas de infusión instaladas en situaciones de emergencias prehospitalarias (SAMU), donde las técnicas de asepsia no fueron controladas, deben ser cambiados en cuanto sea posible.

- Los pacientes que serán intervenidos quirúrgicamente en la región torácica o de una extremidad superior deben ser cateterizados en el lado opuesto a la intervención.

- Un catéter periférico permite sólo una punción, se debe reemplazar por otro estéril si fracasa la cateterización. No se debe puncionar en otro sitio con el mismo catéter.

- Se debe asegurar en la instalación de cualquier CVC, el uso de las máximas barreras de protección para impedir la contaminación del campo estéril.

- El sitio de punción se debe cubrir con gasa estéril, limpiando previamente cualquier resto de sangre al final del proceso de instalación y luego fijar con tela adhesiva. No se debe permitir que material no estéril quede en contacto directo con el sitio de punción.

- La tela usada para la fijación debe ser de calidad tal que no provoque erosión o irritación de la piel del paciente y no se desprenda.



- En el caso de punciones en extremidades de pacientes pediátricos inmovilizar por arriba y por abajo del sitio de

punción con la ayuda de una tablilla. No colocar telas en manguito. - El sitio de punción se debe cubrir con gasa estéril y luego fijar con tela adhesiva. No se debe permitir que material

no estéril quede en contacto directo con el sitio de punción. - Se debe eliminar el material punzante en un receptáculo especialmente designado sin lavar, doblar, quebrar, o

recapsular. - La tela usada para la fijación debe ser de calidad tal que no provoque erosión o irritación de la piel del paciente y no

se desprenda. - En el caso de pacientes pediátricos inmovilizar por arriba y por abajo del sitio de punción con la ayuda de una

tablilla y revisar diariamente en busca de ulceras de presión. No colocar telas en manguito - Se debe eliminar el material punzante en un receptáculo especialmente designado sin lavar, doblar, quebrar, o

recapsular. - Los pacientes con catéteres intravenosos deben ser evaluados diariamente en busca de reacciones inflamatorias

en el sitio de punción. - La evaluación debe ser hecha palpando por sobre la gasa estéril. Si el paciente tiene fiebre inexplicada, dolor o

sensibilidad local, se debe retirar la gasa para examinar visualmente el sitio de punción. - La gasa se debe reemplazar por otra estéril cada vez que se observe húmedo, sucio o contaminado. Siempre se

pincelará la piel con antiséptico antes de realizar éste procedimiento. - Cada vez que se cambie el catéter se deberá rotar el sitio de la punción. - En adultos, el catéter periférico se debe reemplazar junto con el set de flebo (equipo de fleboclisis, micro y macro

goteo, llave de tres pasos, LS2, conexiones, alargadores, etc.) cada 72 hrs. - En pediatría, el catéter periférico se debe mantener mientras sea clínicamente necesario, bajo vigilancia diaria en

busca de infección o complicaciones, sin cambio rutinario establecido. - Realizar el recambio de los equipos de infusión, equipos de microgoteo, llaves de tres pasos y extensores cada 24

horas en caso de administración de lípidos o hemoderivados. - Si hay sospecha o evidencia de complicaciones mecánicas relacionadas con el catéter (ejemplo: extravasación), se

debe cambiar el sitio de punción de inmediato. - Cuando existe o se sospecha bacteremia y hay evidencia de flebitis, celulitis o tromboflebitis purulenta, SE DEBE

CAMBIAR EL SISTEMA COMPLETO (catéter periférico, equipo de infusión, dispositivos y la solución que se está administrando).

- En caso de CVC, efectuar curación del sitio de inserción (cuando esté indicado o para exploración) debe realizarse lavado de manos previo con jabón antiséptico y uso de guantes estériles o de procedimiento.

- El riesgo de infección aumenta con el grado de manipulación de las conexiones. - El sistema de perfusión, compuesto por las líneas, catéter y cualquier otro accesorio debe manejarse como circuito

cerrado. - La administración de medicamentos se hará en los puntos especialmente diseñados para la punción o a través de

dispositivos especiales. - Todas las entradas al sistema deben mantenerse cerradas con la tapa estéril. No se debe puncionar el matraz

para adicionar soluciones o para permitir la entrada de aire. - Las soluciones deben ser cambiadas cada 24 hrs. después de iniciada la administración. - Las soluciones y medicamentos se deben preparar con técnica aséptica en el área limpia de la estación de enfermería. - El personal encargado de la preparación siempre debe lavarse las manos antes de realizar el procedimiento. - Las soluciones, con o sin aditivos, se deben preparar inmediatamente antes de su uso para evitar la contaminación del

fluido después de abierto el envase. - Los aditivos de las soluciones parenterales deben ser agregados a través del gollete del matraz y no por punción del

mismo - Los medicamentos deben prepararse en el mismo momento para ser administrados, no se recomienda su

preparación y almacenamiento previo, aunque sean sometidas a refrigeración.



- Las tijeras destinadas a cortar los golletes deben ser de material inoxidable, mantenerse secas, limpias y protegidas en el área limpia de la estación de enfermería.

- Antes de usarlas deben ser desinfectadas con Alcohol al 70%. NO MANTENER EN SOLUCIONES DESINFECTANTES.

- Todos los matraces de líquidos parenterales deben ser revisados para buscar alteraciones o cambio de color, turbidez, partículas visibles y comprobar la vigencia de la solución de acuerdo a la fecha de expiración del fabricante. Si se encuentra alguna alteración, el matraz debe ser retirado y devuelto a farmacia.

- Los medicamentos de dosis múltiples deben guardarse de acuerdo con las instrucciones del fabricante. - Se deben realizar revisiones periódicas de los productos almacenados en los servicios clínicos, incluido los de carros de

paro cardíaco, a fin de renovar aquellos que se encuentren alterados, vencidos o sin identificación - Todas las soluciones deben ser claramente identificados anotando tipo de aditivo, dosis, fecha, hora de preparación,

nombre de la persona que prepara y nombre del paciente. - Los equipos de infusión endovenosos deben ser de calidad tal que asegure la mantención del circuito cerrado. Las

llaves de paso que posibilitan las gotas deben ser exactas para evitar accidentes o iatrogenias. - Los equipos de infusión endovenosa deben tener en la zona de inserción con el matraz una toma de aire con filtro

para impedir que se abra el sistema en forma indiscriminada. - Los equipos de infusión endovenosa deben poseer un dispositivo de goma cerca de su inserción para ser utilizados

en aquellos pacientes que requieran administrar soluciones o medicamentos en forma directa. - El conector de los equipos de infusión debe ser atornillado al catéter endovenoso, para impedir su desconexión

involuntaria. - El profesional que administra el medicamento siempre debe lavarse las manos antes de realizar el procedimiento con

jabón antiséptico o con alcohol gel. - Antes de inyectar un medicamento al torrente sanguíneo, siempre se debe verificar la permeabilidad del catéter

comprobando que refluye sangre. - No se deben inyectar medicamentos ejerciendo presión en un catéter por el que no ha refluido sangre fácilmente al

aspirar. - Las jeringas que contienen medicamentos deben ser llevadas hasta la unidad del paciente en una bandeja u otro

recipiente estéril similar. - Las tapas de los dispositivos que forman parte del sistema de perfusión deben ser manejadas con técnica aséptica

durante la administración de medicamentos colocándola en una superficie estéril. - Desinfectar los sitios de conexión con alcohol al 70% antes de su utilización en el caso de cambio de NPT. - La nutrición parenteral debe ser indicada por médicos especialistas capacitados y fundamentada en cada paciente

de acuerdo a un plan nutricional. - La preparación de la NPT es responsabilidad de la Empresa externa que se haya adjudicado la licitación y que

cumpla con todas las normas y requisitos técnicos y administrativos solicitados por el Hospital - La dispensación de la NPT es de responsabilidad del Servicio de farmacia en conjunto con la empresa - La administración de la NPT es de responsabilidad de las Enfermeras o Matronas de los Servicios Clínicos - La Coordinación de todo el proceso es responsabilidad del Servicio de Farmacia el cual contará con personal con

capacitación específica en nutrición parenteral, Químicosfarmacéuticos y Técnicos Paramédico de Farmacia - Los catéteres instalados para la administración de nutrición parenteral NO DEBEN SER USADOS para otros fines

(administrar sangre o sus derivados, medicamentos por microgoteo o extracción de muestras de sangre), a fin de evitar la contaminación del sistema.

- Las soluciones de NPT deben ser administradas lo más cercano posible a su preparación. - Si el inicio de la administración se pospone por un periodo no superior a una hora, se debe mantener a temperatura

ambiente, en caso contrario debe ser refrigerada (entre 4-8 ºC) y administrada una vez que alcance temperatura ambiente

- Las soluciones de NPT con osmolaridad de hasta 900 miliosmoles/lt pueden ser administradas por vía periférica - Las soluciones con cualquier signo de alteración deben ser desechadas. - Las soluciones deben ser cambiadas cada 24 horas



- Los dispositivos deben retirarse en cuanto termine la indicación para su uso, o en caso de obstrucción o de infección.

- Cada vez que se sospeche bacteriemia asociada a CVC se deben realizar hemocultivos según la normativa. - El cambio de CVC por técnica de Seldinger es un procedimiento de excepción y está indicado siempre y cuando el

motivo del cambio no sea la sospecha de infección. Descripción de procedimientos:

1. Instalación de CVC:

- Informar al paciente cada vez que sea posible las características

del procedimiento en lenguaje comprensible para su nivel educacional.

- Previo a la instalación del catéter se debe restringir la circulación de personas y se debe suspender el aseo de la sala o unidad hasta después del procedimiento evitando flujos de aire.

- Poner al enfermo en posición adecuada para facilitar el retorno venoso. Por ejemplo decúbito dorsal, con un pequeño cojín bajo los hombros y posición de Trendelenburg si es un catéter subclavio o yugular interno.

- Previo al lavado de manos quirúrgico, el operador debe colocarse mascarilla y gorro.

- El operador debe realizar lavado de manos quirúrgico, según norma

- Presentar delantal estéril y guantes, con técnica aséptica al operador.

- La enfermera debe realizar lavado del sitio de punción con agua y jabón antiséptico frotando en forma circular desde dentro hacia fuera por 3 minutos y luego enjuagar.

- El operador debe pincelar con antiséptico de uso tópico (Povidona yodada al 10% o Clorhexidina tintura), considerando los tiempos de acción.

- Presentar con técnica aséptica paños estériles para campo operatorio y materiales necesarios.

- Colocar paños amplios para armar su campo estéril. - Colaborar con las necesidades del operador durante la punción e

instalación del catéter. - Si durante el procedimiento se requiriera de un segundo operador

para ingresar al campo estéril, éste DEBE PREPARARSE DE LA MISMA FORMA QUE EL PRIMER OPERADOR.

- Los CVC deben ser fijados a la piel con un punto para evitar su desplazamiento.

- Conectar el catéter a la solución a administrar y al sistema de medición de la Presión Venosa Central en caso necesario.

- Presentar la solución antiséptica para pincelar el sitio de inserción antes de colocar el apósito o cubierta estéril.

- Cubrir el sitio de inserción con una gasa estéril seca e inmovilizar con tela adhesiva. Se puede utilizar un apósito transparente siempre que tenga la característica de semi-permeable, manteniendo la gasa en el sitio de inserción, para empapar filtraciones o sudor.

- Registrar siempre en el sitio de punción: fecha en que se realizó el procedimiento y fecha de curación de éste.



2. Catéter Percutáneo

3. Toma de cultivos de CVC

- Acomodar al paciente. - Registrar el procedimiento en el documento de enfermería

correspondiente y ficha clínica. CCPI (Catéter Percutáneo).

- A los catéteres instalados por vía periférica se les aplican las mismas normas descritas para el CVC.

MUESTRAS PARA CULTIVO DE CATETERES VASCULARES CENTRALES Indicación: Paciente con catéter venoso central que presente fiebre 38º C., sin foco aparente que la explique con o sin infección a nivel de la inserción del CVC. Cuando se retira el C.V.C.: Método semicuantitativo de Maki

- Limpiar la piel donde se inserta el catéter con alcohol de 70º, esperar que seque.

- Retirar el catéter con técnica aséptica - Cortar con tijera estéril 3 cm. de la punta del extremo distal - Guardar la punta del catéter en un tubo seco estéril - Enviar al laboratorio - Tomar 2 hemocultivos periféricos con técnica habitual, (diferentes sitios de

punción) para documentar bacteriemia. Cultivo sitio de inserción CVC:

- Realizar aseo superficial con gasa y suero fisiológico o agua destilada estéril - Exprimir desde los bordes para obtener pus con una tórula - Enviar al laboratorio.

Nota: No tomar muestra de sitio de inserción en ausencia de signos inflamatorios locales sugerentes de infección. Cuando permanece el C.V.C.:

- En el caso que el catéter no es retirado, se recomienda efectuar el tiempo diferencial de la positividad de los hemocultivos

- Este método se puede realizar sólo en laboratorios que dispongan de sistemas automatizados como el nuestro.

Tiempo diferencial de los hemocultivos: - Tomar primero el volumen de sangre (según la edad del paciente) a través del

catéter en botella de hemocultivo por método automatizado, indicar en la solicitud de examen el origen de la muestra

- Inmediatamente después, tomar el volumen de sangre periférica (según la edad del paciente) en otra botella de hemocultivo por método automatizado, enviar la muestra con otra solicitud de examen indicando también el origen de la muestra.

Interpretación: Se considera indicativo de bacteriemia relacionada a CVC un tiempo diferencial de 2 horas a favor del hemocultivo central con respecto del periférico, por lo que es fundamental rotular claramente el origen de la muestra



4. Toma de muestras vía CVC

5. Curación sitio inserción

6. Retiro de CVC

7. Recepción e Instalación de Nutrición Parenteral

El procedimiento se realiza con Técnica Aséptica:

- Realizar lavado de manos clínico con jabón antiséptico. - Colocar guantes de procedimiento o manoplas en caso de riesgo de contacto

con sangre. - Desinfectar la zona a puncionar con Alcohol 70%, dejar secar. - Extraer la muestra - Eliminar material cortopunzante en contenedor ad-hoc - Etiquetar las muestras y registrar. - Realizar observación a diario del sitio de punción. - Efectuar la curación cada vez que el sitio de inserción se moje ,

se ensucie o se despeguen las telas y cada 72 hrs. cuando se cambie el set de fleboclisis.

- Utilizar equipo de curación. - Eliminar restos de sangre o cualquier suciedad con tórula con

suero fisiológico. - Pincelar la zona de inserción con povidona yodada. - Esperar que seque - Cubrir con gasa estéril el sitio de inserción. - Fijar gasa y tela adhesiva o similar - Registrar fecha de instalación y fecha de curación sobre la tela. - Registrar en hoja de enfermería estado del sitio de inserción.

- Realizar lavado de manos clínico - Utilizar equipo de curación. - Pincelar la zona de inserción con povidona yodada. - Esperar que seque - Cortar puntos a piel con técnica aséptica - Retirar el CVC - Pincelar con antiséptico - Cubrir con gasa o apósito estéril - Registrar el procedimiento

Recepción e inspección en Farmacia:

- Técnico Paramédico de Farmacia en Área de Producción, previo acondicionamiento del lugar de revisión y lavado de manos clínico procederá a recepcionar según procedimientos, las mezclas de nutrición parenteral y llenará Planilla de Revisión de NPT

- La empresa a través de su encargado, hará llegar las NPT a los servicios respectivos entregándolas con un orden determinado:

o Neonatología. o UCI y UTI pediátrica. o UCI y UTI adulto. o Cirugía. o Otros.

Una vez finalizada la entrega, la empresa dejará en Farmacia Producción (o Unidosis ) la guía de despacho, el libro de entrega y se llevará las recetas originales a Terapia .



8. Instalación del catéter venoso periférico:

Recepción y administración en los servicios clínicos: Recepción: La entrega de la NPT del Servicio respectivo será solo a una enfermera o matrona. La Enfermera debe verificar:

- La NPT con el nombre del paciente de su servicio y revisar el volumen aproximado de la mezcla a través de la escala graduada de la bolsa de nutrición.

- Registrará cualquier observación relevante en cuanto a la mezcla (precipitaciones, alteraciones, etc.) y anotará las observaciones pertinentes en el libro de registro.

- Si alguna preparación no va a ser utilizada entregará y anotará en el libro de entrega el motivo de la devolución.

- Firmar la recepción de la NPT. - Cualquier duda se comunicar con Técnico Paramédico de Farmacia o Q.F.

encargado. Administración : Será responsabilidad de la enfermera o matrona respectiva quien debe : Administrar por IC durante 24 hrs. a partir de la conexión al paciente.

- Desinfectar las conecciones con compresa o apósito embebido con alcohol al 70%

- Conectar la nueva NP sin contaminar - Registrar el procedimiento - Revisar de manera periódica y agitar suavemente la NPT durante la

administración. - Si desconecta la NPT, se debe desechar. - La mezcla de nutrición parenteral tiene un vencimiento asignado por la

empresa ,después de esta fecha y hora no debe ser administrada (información registrada en la etiqueta )

- Si el inicio de la administración se pospone mantener a temperatura ambiente si no pasara mas de una hora ,sino debe ser refrigerada (entre 4-8 ºC) y administrada una vez que alcance temperatura ambiente .

- Informar al paciente de las características del procedimiento, en lenguaje

comprensible para su nivel educacional. - Realizar lavado de manos clínico o usar alcohol gel. - Elegir el sitio de punción según las características del enfermo (edad, condición

de la piel, patología), objetivo de la punción y material disponible. - Lavar la piel con tórulas con agua y jabón - Aplicar antiséptico para la piel esperar al menos 15 segundos. - Colocar guantes si hay riesgo de contacto con sangre. - Realizar la punción - Fijar el catéter cubriendo el sitio de inserción con gasa estéril y conectar la

bajada del suero o tapón in luer sin contaminar. - En el caso de pacientes pediátricos inmovilizar el sitio de punción con la ayuda

de una tablilla. - Eliminar el material corto punzante en un receptáculo especial para éste fin. - Registrar el día de instalación y número de catéter sobre la tela adhesiva (si se

cambian o salen las telas repetir el registro)



9. Preparación de medicamentos y soluciones para uso endovenoso:

10. Administración de

medicamentos endovenosos:

PREPARACION DE MEDICAMENTOS Y SOLUCIONES PARA USO INTRAVENOSO - Utilizar técnica aséptica y realizar en el área limpia de la estación de enfermería. - Realizar lavado de manos clínico antes de realizar el procedimiento. - Lavar los matraces de sueros a utilizar con jabón haciendo abundante espuma,

enjuagar prolijamente y secar con toallas desechables a excepción de los viales tipo Baxter.

- Desinfectar las tijeras destinadas a cortar los golletes con un desinfectante de acción rápida, por Ej. : alcohol al 70%.

- Preparar las soluciones, con o sin aditivos, inmediatamente antes de su uso para evitar la contaminación del fluido después de abierto el envase.

- Agregar los aditivos de las soluciones parenterales a través del gollete del matraz o el sitio destinado a ello.

- Identificar todas las soluciones con una etiqueta que consigne: tipo de aditivo, dosis, fecha, hora de preparación y nombre de la persona que prepara.

ADMINISTRACIÓN DE MEDICAMENTOS POR VIA INTRAVENOSA - Uso de técnica aséptica - Lavado de manos clínico previo a administrar el medicamento - Preparar el medicamento en el mismo momento para ser administrado - Llevar la jeringa con el medicamento hasta la unidad del paciente en una bandeja

u otro recipiente estéril. - Antes de administrar el medicamento verificar las condiciones del sitio de

punción en la búsqueda de alteraciones como enrojecimiento, dolor espontáneo o a la palpación, aumento de volumen local o equimosis

- Retirar la tapa del dispositivo que forma parte del sistema de perfusión y eliminarla.

- Desinfectar las tapas de goma de los equipos de infusión con alcohol al 70% antes de ser puncionar para la administración de los medicamentos.

- Verificar la permeabilidad del catéter comprobando que refluye sangre. - Inyectar el medicamento con suavidad sin ejercer presión. - Desechar material cortopunzante en dispositivo adecuado - Registro del procedimiento en hoja de enfermería, medicamento, hora, etc.

TRATAMIENTO ENDOVENOSO POR MEDIO DE TAPÓN IN LÜER - Aplicar antiséptico en tapón in luer por medio de fricción con tórula con alcohol

al 70%. - Introducir en su totalidad aguja nº 23 evitando dejar alguna parte expuesta de la

aguja al medio. - Fijar con tela adhesiva para evitar el desplazamiento de la aguja. - Una vez finalizado el tratamiento, retirar la aguja ocupada (eliminando en

receptáculo resistente, sin recapsular) y en su lugar tapa del circuito. - Proceder a marcar con una “e” dicho envase como una forma de indicar que

está estéril. NOTA: Deberá utilizarse aguja nº 23, ya que esta es la más adecuada en cuanto a su tamaño y calibre.

Indicadores de calidad: Tasa de ITS asociada a CVC Tasa de flebitis asociada a vía venosa periférica

Número de infecciones del torrente sanguíneo en pacientes con catéter venoso central permanente (24 horas o más) / número de días catéter venoso central X 1000 Número de flebitis en pacientes con catéter venoso periférico (24 horas o más) / número de días de vía venosa periférica X 100



Estándar o umbral de evaluación Estándar Nacional del año correspondiente para cada Unidad Tasa histórica en servicios o unidades vigiladas

Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990 - Manual de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias MINSAL 1993. - CDC. Guidelines for the prevention of intravascular catheter- related infections. MMWR

2002; 51 RR-10:1-36 - Brenner P, Bugedo G, Calleja D, Del Valle G, Fica A, Gómez ME, Jofré L, Sutil L.

Prevención de Infecciones asociadas a catéteres vasculares centrales. Rev Chil Infectol 2003; 20: 51-9

D.5 NORMAS PARA LA PREVENCION DE INFECCION DEL SITIO OPERATORIO

Nombre Norma: Norma para la Prevención de Infecciones de Sito Operatorio (ISO)

Objetivo:

- Aplicar medidas efectivas para prevenir las infecciones asociadas a procedimientos quirúrgicos y a manejo de heridas operatorias

Responsables de cumplimiento: - Médicos que indican y realizan procedimientos quirúrgicos. - Enfermeras y Matronas participan de los procedimientos y realizan curaciones - Técnicos Paramédicos que participan de los procedimientos y realizan o ayudan

en curaciones - Otros profesionales - Auxiliares de servicio que trasladan pacientes - Alumnos de pre y postgrado - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento

Definiciones y clasificación: ISO: La infección de sitio operatorio es la presencia de secreción purulenta en el sitio de incisión quirúrgica, incluido el sitio de salida de drenajes, que se presenta dentro de los primeros 30 días posterior a la cirugía CLASIFICACIÓN DE LAS HERIDAS OPERATORIAS: Limpia: Heridas producto de cirugías electivas, cerradas, no infectadas sin inflamación, sin quiebre de técnica, sin sección del aparato respiratorio, gastrointestinal, genitourinario u orofaríngeo. Limpia-contaminada: Con sección de tracto gastrointestinal, genitourinario, biliar, orofaringeo y respiratorio, de urgencia, reintervenciones, trauma o quiebre de técnica. Contaminada: Infección preexistente (sin pus), perforación o comunicación a cavidades contaminadas o trauma penetrante de más de 4 hrs. de evolución. Sucia: Infección preexistente con presencia de pus perforación o comunicación a cavidades contaminadas o trauma penetrante de más de 4 hrs. de evolución




- Se recomienda que el período de hospitalización previo al acto quirúrgico sea el mínimo necesario. - En caso de suspensión de cirugía electiva en lo posible dar de alta al paciente transitoriamente. - Idealmente en el pre-operatorio debe realizarse la evaluación, manejo y tratamiento de la malnutrición y obesidad. - Se debe realizar pesquisa y manejo de focos infecciosos distales con el fin de evitar diseminación hemolinfática

de microorganismos hasta el sitio de la intervención. - El paciente debe llegar el día de la intervención en condiciones higiénicas óptimas, por lo que debe realizarse

educación en policlínico respecto de las condiciones generales en las que se debe hospitalizar, siendo responsable de esta educación el profesional que lo atiende.

- Se debe realizar preparación de la piel en sala de hospitalización mediante ducha con jabón la noche anterior y en la mañana de la operación.

- En pacientes de cirugía Cardiaca y Traumatológica (implantes y prótesis), el baño se debe realizar con jabón antiséptico de acuerdo a los protocolos respectivos.

- No se debe remover el vello excepto que interfiera con la cirugía. De ser necesario, realizarlo inmediatamente antes de la operación usando cliper eléctrico (corta vello). No rasurar.

- Corte de uñas de manos y pies. - En los pacientes con higiene personal deficiente el baño debe ser supervisado. - El paciente que no pueda realizarse baño de inmersión o ducha, debe hacerse baño en cama con especial énfasis

en la zona operatoria. - Posterior al baño el paciente debe usar camisa de dormir y ropa de cama limpias. - El transporte si es realizado en camilla, debe ser hecho con sábanas limpias. - Se debe educar al paciente para que no manipule la zona operatoria una vez preparada. - La jefatura del pabellón quirúrgico deben normar la circulación y el comportamiento del equipo quirúrgico en la

sala de operaciones, normativa que debe ser cumplida por todo el personal. - Se debe evitar turbulencias de aire en pabellón durante la intervención, por lo que se debe restringir las salidas y

entradas de funcionarios a los pabellones. - El sistema de filtración de aire debe garantizar un número de recambios por hora que garantice una disminución de

la carga bacteriana en las salas de operaciones. - El sistema de filtración de aire debe ser evaluado en intervalos de tiempo definidos por profesionales capacitados. - El programa de mantenimiento del sistema de filtración de aire de pabellón deberá ser conocido por el jefe de la

Unidad de Anestesia y Pabellón. - El jefe de Anestesia y Pabellón debe hacer cumplir el programa programado para el sistema de filtración de aire. - El personal al interior de la sala de operaciones debe ser el estrictamente necesario para la intervención. No debe

haber más de 8 personas en cada pabellón incluyendo alumnos - Debe existir un Programa de Orientación para toda persona que ingrese por primera vez a los pabellones

quirúrgicos. Debe existir un registro de esta actividad. - Al término de cada intervención quirúrgica se debe realizar aseo con agua y detergente y luego desinfección de

pisos, superficies de mesas y lámparas. - Los servicios que realicen actividades de docencia de pre o post grado deben realizar programas de orientación

a todas las personas que estén en formación antes de iniciar las actividades en pabellón u otras áreas restringidas. Esta orientación debe ser certificada previo a su ingreso a Pabellón.

- Los alumnos sólo pueden realizar actividades quirúrgicas o asistir a operaciones dentro de un programa docente aprobado por el servicio.

- La preparación de la piel en pabellón debe ser amplia, de tal forma que permita la incisión y colocación de drenaje si es necesario. Debe realizarse con jabón antiséptico.

- El antiséptico debe aplicarse en círculos desde el área propuesta para la incisión hacia la periferia previa limpieza de la piel.



- El equipo quirúrgico debe usar gorro limpio que cubra todo el cabello, y mascarilla de alta eficiencia durante el acto quirúrgico, que cubra todo el vello facial, nariz y boca.

- Todo miembro del equipo quirúrgico debe realizar lavado de manos quirúrgico previo a la intervención, con jabón antiséptico (povidona yodada jabonosa, clorhexidina jabonosa).

- El lavado quirúrgico preoperatorio se realiza antes de tocar el campo estéril, instrumental estéril o la piel preparada del paciente.

- El equipo quirúrgico deberá usar delantal estéril con técnica aséptica rigurosa. - Todo guante de uso en los pabellones para las intervenciones quirúrgicas y procedimientos invasivos debe ser

estéril y de un solo uso. - La zona operatoria debe ser aislada durante el acto quirúrgico con ropa estéril. Las zonas contaminadas cercanas

al sitio de la intervención, deben ser aisladas con compresas estériles u otro similar. - La duración de las intervenciones debe ser la mínima necesaria. - En intervenciones quirúrgicas de más de 2 horas de duración, el equipo de cirujanos, incluida la arsenalera,

deberán proceder a cambiarse nuevos guantes estériles. - Debe considerar la técnica aséptica durante toda la intervención, la cual debe ser normada. - Toda técnica quirúrgica específica debe ser evaluada constantemente por profesionales de cada especialidad. - Si se utilizan drenajes en la intervención quirúrgica se recomienda que sean colocados por contrabertura. - Toda herida operatoria debe ser clasificada por el cirujano según grado de contaminación en el protocolo

operatorio, con el fin de realizar vigilancia epidemiológica selectiva de infecciones de herida operatoria y obtener tasas representativas que puedan ayudar a evaluar en parte la técnica quirúrgica.

- El personal que colabora en la presentación del material estéril debe efectuarse lavado clínico de manos con jabón antiséptico antes de manipular este material.

- Todo material o instrumental quirúrgico que ingresa a cavidades y tejidos normalmente estériles se considera un artículo crítico, por lo tanto debe estar estéril.

- La condición de esterilidad del material debe ser evaluada previa a la intervención por personal responsable en cuanto a indemnidad del envoltorio, fecha de vencimiento, sellos y controles químicos de esterilización.

- En cuanto al material a utilizar en implantes o prótesis sólo se certificará su esterilidad y estará en condiciones de uso, una vez efectuado el análisis de los CONTROLES BIOLÓGICOS de esterilización los que deben ser negativos. Este material NO DEBE SALIR DE LA CENTRAL DE ESTERILIZACION sin el resultado del CONTROL BIOLOGICO.

- Los materiales quirúrgicos e insumos necesarios para el desarrollo de la intervención deben estar disponibles antes del inicio de ésta con el fin de disminuir el tiempo de exposición de los tejidos.

- Si no presentan complicaciones, las heridas operatorias no deben ser manipuladas en el postoperatorio, es decir la herida no debe ser descubierta, tocada o curada.

- Todo el material usado en las curaciones y que entre en contacto con la herida operatoria, debe ser estéril. - El personal profesional responsable de realizar las curaciones debe estar capacitado y debe aplicar técnica

aséptica. - La periodicidad de las curaciones debe ser establecida según necesidad de mantener limpia y seca la 3 - herida operatoria. - El personal profesional responsable de realizar las curaciones debe estar capacitado y debe aplicar técnica

aséptica. - Todo el material usado en las curaciones y que entre en contacto con la herida operatoria, debe ser estéril. - La periodicidad de las curaciones debe ser establecida según necesidad de mantener seca la herida operatoria. - La irrigación a alta presión y la limpieza por fricción con algodón están contraindicadas por interferir negativamente

en el proceso de cicatrización. - Las soluciones recomendadas para arrastre mecánico puede ser solución Ringer Lactato, solución Fisiológica 0.9%

o agua bidestilada. Estas tres soluciones tienen un Ph neutro que no altera el proceso de cicatrización. - Los antisépticos no están recomendados para efectuar arrastre mecánico, su uso está restringido a piel sana. - No se aconseja el uso tópico de medicamentos porque la mayoría son citotóxicos.



- La periodicidad de la curación estará dada por el tipo de curación y las condiciones de la herida. - Todo drenaje debe estar conectado a un reservorio que permita recoger lo drenado y su medición volumétrica

correspondiente. - La conexión al reservorio debe hacerse a través de una sonda en lo posible transparente. - La instalación de las conexiones debe hacerse previo lavado de manos y utilización de guantes estériles o de

procedimiento según corresponda. - La movilización y/o retiro de reservorio para su medición debe ser hecha previo lavado de manos y uso de guantes. - Si se requiere permeabilizar un drenaje que se sospecha está obstruido, esto debe hacerse con técnica aséptica

para evitar la contaminación secundaria. - Curación del punto de salida del drenaje no es necesaria a menos que los apósitos se encuentren manchados con

secreción del drenaje mismo. De ser así, la curación debe hacerse con la misma técnica de las heridas quirúrgicas. - El retiro de cualquier drenaje debe ser previo lavado de manos y utilización de guantes. La aspiración de éste,

antes de su retiro puede ser útil para retirar restos de secreción y evitar que éstos queden en el lugar en que se encontraba el drenaje.

- Por último, no olvidar que en todo procedimiento está latente el riesgo de la contaminación y por ello es necesario observar siempre la indicación de lavado de manos antes y después de éste.

- Se debe consignar en hoja de enfermería la cantidad y características del material drenado. Descripción de procedimientos: Preparación de la piel preoperatorio Técnica de curación básica

PREPARACIÓN DE LA PIEL DEL PACIENTE EN SALA:

- Realizar baño o ducha con agua y jabón la noche previa y la mañana de la cirugía

PREPARACION DE LA PIEL DEL SITIO OPERATIO EN PABELLON: - Verificar que la zona que se prepara corresponda a la zona que se operará - Despejar la zona de la piel a preparar - Mojar una compresa con solución antiséptica jabonosa

(Povidona espumante, Clorhexidina). - Realizar limpieza de una amplia zona de la piel, con agua y jabón antiséptico,

hacerlo en círculos desde el centro hacia la periferia. - La aplicación del lavador quirúrgico debe realizarse en forma de

fricción y la duración del procedimiento es de por lo menos tres minutos. Hacer énfasis en los pliegues y el ombligo cuando corresponda.

- Cuidar que el antiséptico no escurra por las zonas de declives o plieges de la piel del paciente, para evitar irritaciones por contacto prolongado con la solución.

- Eliminar la compresa en el compresero después del lavado. - Enjuagar la zona lavada con solución estéril, suero fisiológico o

agua destilada estéril, manteniendo los movimientos circulares desde la insición hasta la periferia.

- Secar toda el área preparada con una nueva compresa estéril, comenzando siempre por el sitio de la incisión.

Utilizar técnica aséptica

- Realizar lavado de manos clínico o uso alcohol gel - Abrir el equipo estéril - Desprender la tela y retirar apósito - Eliminar apósito en bolsa desechable - Colocar guantes (si hay riesgo de contaminarse las manos) - Realizar la curación según corresponda a cambio de apósito o arrastre



mecánico con tórula empapada en suero fisiológico, iniciar por la zona de la incisión y terminaren la piel que rodea la herida.

- Eliminar las tórulas después de cada uso. - Cubrir con apósitos o gasas estériles lo suficiente para cubrir la herida y

contener las secreciones - Fijar los apósitos - Retirar el equipo de la unidad del paciente - Lavar manos - Registrar procedimiento y observaciones, con énfasis en la descripción de la

herida operatoria en relación a si hay o no signos de infección MANEJO DE COLOSTOMÍAS Y DRENAJES QUIRÚRGICOS

- Las colostomías pueden ser transitorias o permanentes y desde el punto de vista quirúrgico se describen al menos cinco tipos:

o Colostomía en asa con puente de piel, o En doble caño (Mikulicz) o Terminal o Dividida (Devine) o Cecostomía

- Lavado de manos antes y después de la manipulación. - Utilizar guantes de procedimiento - Irrigación, especialmente para las que se realizan a nivel de colon izquierdo a

objeto de regular la eliminación de heces. - Uso de bolsas. Existen diversos tipos de bolsas y los factores a tomar en

cuenta para la selección de ella incluye: tipo de ostomía, naturaleza del efluente, ubicación del ostoma, firmeza del abdomen, presencia de pliegues, cicatrices, arrugas, edad, capacidad funcional del paciente.

- En el caso de colostomías derechas, en que el efluente es líquido, generalmente es necesario utilizar selladores de piel y barreras cutáneas de gelatina pectina o sintéticas.

- Finalmente en el manejo de las colostomías y especialmente en el caso de las ileostomías es necesario tener un manejo muy cuidadoso de la piel, ya que algunos pacientes hacen una reacción alérgica a algunos componentes de las prótesis; ya sea el adhesivo, el solvente y/o el material de la bolsa. Esta irritación también puede producirse por filtración de una prótesis mal puesta.

- En cirugía se utilizan diversos tipos de drenajes y con distintas finalidades. Independiente del objetivo por el cual se colocó un drenaje determinado, su manejo requiere técnica aséptica.

- La conexión al reservorio debe hacerse a través de una sonda en lo posible transparente.

- La instalación de las conexiones debe hacerse previo lavado de manos y utilización de guantes estériles o de procedimiento según corresponda.

- La movilización y/o retiro de reservorio para su medición debe ser hecha previo lavado de manos y uso de guantes.

- Si se requiere permeabilizar un drenaje que se sospecha está obstruido, esto debe hacerse con técnica aséptica para evitar la contaminación secundaria.

- Curación del punto de salida del drenaje no es necesaria a menos que los apósitos se encuentren manchados con secreción del drenaje mismo. De ser así, la curación debe hacerse con la misma técnica de las heridas quirúrgicas.

- El retiro de cualquier drenaje debe ser previo lavado de manos y utilización de



guantes. La aspiración de éste, antes de su retiro puede ser útil para retirar restos de secreción y evitar que éstos queden en el lugar en que se encontraba el drenaje.

- Por último, no olvidar que en todo procedimiento está latente el riesgo de la contaminación y por ello es necesario observar siempre la indicación de lavado de manos antes y después de éste.

- Se debe consignar en hoja de enfermería la cantidad y características del material drenado.

Indicadores de calidad: Tasas de ISO

Número de infecciones de herida operatoria en cirugía limpia / número de pacientes con cirugía limpia X 100 Número de infecciones de herida operatoria en cesárea / número de pacientes operados de cesárea X 100

Número de infecciones de herida operatoria en intervenciones de hernia inguinal en niños / número de niños operados de hernia inguinal X 100. Número de infecciones de herida operatoria en intervenciones de hernia inguinal en adultos / número de pacientes adultos operados de hernia inguinal X 100. Número de infecciones de herida operatoria en intervenciones de colecistitis crónica por laparotomía / número de pacientes operados de colecistitis crónica por laparotomía X 100. Número de infecciones de herida operatoria en intervenciones de colecistitis crónica por laparoscopía / número de pacientes operados de colecistitis crónica por laparoscopía X 100. Número de infecciones de herida operatoria en pacientes con implante de cadera totales y parciales / número de pacientes operados con implante de cadera X 100

Estándar o umbral de evaluación Estándar nacional anual para cada indicador Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990

- Manual de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias MINSAL 1993. - Normas de Procedimientos Invasivos para la Prevención y Control de I.I.H., MINSAL,

1989. - Prevention and Control Nosocomial Infections, Richard Wenzel. 2º edición. - Normas de Preparación de piel para el acto quirúrgico, Publicación de la Sociedad de

Cirujanos de Chile, 1996. - Guideline for Prevention of Surgical Wound Infection, 1999. Infection Control and

Hospital Epidemiology, Vol. 20 Nº 4 - Guideline for Prevention of surgical site infection 1999 http://wwwcdc.gov - New Surgical Techniques and Surgical Site Infections. Emerging Infectious Diseases

March-April 2001 Vol.7, Nº 2.

http://wwwcdc.gov/



D.6 NORMA PARA LA PREVENCIÓN DE ENDOMETRITIS PUERPERAL .Nombre Norma: Normas de Prevención de Endometritis Objetivo:

Aplicar medidas efectivas para prevenir que durante los procedimientos de atención obstétrica se produzca una infección bacteriana del endometrio

Responsables de cumplimiento: - Médicos que atienden partos y realizan cesáreas - Matronas - Técnicos Paramédicos - Otros profesionales - Auxiliares de servicio - Alumnos de pre y postgrado - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su

cumplimiento Definiciones y clasificación: - ENDOMETRITIS: Es el proceso infeccioso bacteriano, originado a nivel

del lecho placentario, evidenciable en el post - parto o post- aborto. - ENDOMETRITIS PUERPERAL: Para efectos de notificación debe

cumplir al menos uno de los siguientes criterios: CRITERIO 1: La paciente tiene al menos dos de los siguientes

signos o síntomas: - fiebre sobre 38° - sensibilidad uterina o subinvolución uterina - secreción uterina purulenta o de mal olor.

CRITERIO 2: La paciente tiene cultivo positivo de fluídos o tejidos endometriales obtenidos intraoperatoriamente, por punción uterina o por aspirado uterino con técnica. aséptica

CRITERIO 3: Existe diagnóstico médico de endometritis Nota: Todas las endometritis post-parto deben notificarse excepto si el líquido amniótico se encontraba purulento al ingreso o tiene antecedentes de ruptura de membranas más de 48 hrs. previo al ingreso.




- Las técnicas y procedimientos de prevención de endometritis son de responsabilidad de todos los miembros del equipo y deben ser de cumplimiento obligatorio para garantizar la calidad de la atención a las pacientes.

- Las normas y técnicas para la prevención deben ser aplicadas en todas las unidades de la atención : Recepción, Pre-parto, Parto, Pabellón y Puerperio

- La atención del parto debe realizarse con técnica aséptica que incluye: o lavado de manos quirúrgico del operador o uso de guantes estériles o uso de material estéril o uso de campos estériles que impidan el contacto del material estéril con superficies no estériles.

- Los tactos vaginales que se realizan durante la atención del trabajo de parto deben realizarse previo lavado de manos del operador y con uso de guantes estériles

- Deben realizarse los tactos vaginales que tengan indicación justificada idealmente no más de 4. - Se debe consignar en la ficha clínica del paciente en cada oportunidad el tacto realizado, quien lo

realizó y la causa por la que fue indicado. Si se realiza más de un tacto se debe consignar cada uno - El personal que realiza la atención del pre parto, parto o puerperio, incluido los tactos vaginales, debe

tener la piel de las manos sin lesiones ni infecciones y no deben tener infecciones respiratorias altas (amigdalitis, faringitis).

- Las pacientes sometidas a cesárea deben recibir antibioprofilaxis de acuerdo al esquema definido en el establecimiento.

- Durante el puerperio debe realizarse aseo genital según técnica cada 6 horas. Descripción de procedimientos: Tacto vaginal.

- Aseo genital externo con agua tibia - Lavado de manos previo y posterior al tacto - Uso de guantes estériles - Entreabrir labios mayores y menores - Realizar tacto vaginal

Indicadores de calidad: Tasas de Endometritis

Número de endometritis posparto vaginal / número de mujeres con parto vaginal. X 100 Número de endometritis posparto cesárea / número de mujeres con parto cesárea X 100

Estándar o umbral de evaluación

Estándares nacionales para cada indicador

Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990 - Manual de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias MINSAL 1993. - Normas de Procedimientos Invasivos para la Prevención y Control de I.I.H., MINSAL,

1989. - Obstetricia y Ginecología, Dr. Ricardo Celis, Editorial Univerdad de la Frontera. - Infecciones en Ginecologïa y Obstetricia, Dr.Sergio Silva, Editorial Mediterraneo,1997. - Normas de Prevención de Endometritis. Ministerio de Salud. Chile. 2006 - Surveillance of nosocomial infections in french maternity units Infect Control Hosp

Epidemiol 2008; 29:487– 495



E.- NORMA DE TOMA DE MUESTRAS PARA CULTIVO INTRODUCCION: En la recuperación de microorganismos causantes de infección, lo más importante es la recolección de la muestra para el estudio microbiológico. Esta recolección consta de los siguientes pasos:

- Seleccionar el sitio anatómico más adecuado para tomar la muestra - Usar la técnica más apropiada - Poner la muestra recolectada en un envase que favorezca la viabilidad de los microorganismos causantes del

proceso infeccioso, y que evite la filtración o derrame de la muestra, como forma de protección para el personal que la manipulará posteriormente

- Enviar la muestra en forma rápida y expedita al laboratorio, y en el caso que esto no sea posible, asegurarse que sea almacenada a la temperatura y en los medios de transporte adecuados

Una muestra mal recolectada puede inducir a error en el aislamiento del microorganismo etiológico real, y la recuperación de contaminantes puede llevar a indicar un tratamiento de antibiótico incorrecto. La calidad del trabajo realizado en el laboratorio no puede ser superior a la calidad de la muestra recibida. OBJETIVO: Obtener una muestra de acuerdo a la localización, que permita un óptimo rendimiento del examen bacteriológico, libre de contaminación. Dirigido a:

- Médicos que solicitan y realizan el procedimiento de toma de muestras - Enfermeras (os) que realizan o ayudan en la toma de muestras - Técnicos Paramédicos - Otros profesionales - Alumnos de pre y postgrado - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA DE TOMA DE MUESTRAS PARA CULTIVOS

- La muestra debe ser tomada con máximas precauciones de asepsia, usando el instrumental adecuado y estéril - La muestra debe ser representativa del proceso infeccioso, es decir, debe tomarse del sitio de infección, evitando

la contaminación con tejido adyacente, órganos o secreciones - Se debe obtener una cantidad suficiente de muestra, según el número de exámenes requeridos, y debe ponerse

en receptáculos adecuados y estériles - Una vez obtenida la muestra, ésta debe enviarse al laboratorio a la brevedad (en medios de transporte adecuados

si el caso lo requiere), debido a que algunos microorganismos tienen baja resistencia a las condiciones ambientales y en otras muestras (orina) la temperatura ambiente favorece la multiplicación bacteriana, induciendo a error en el recuento de colonias

- En lo posible, para que la muestra tenga un valor significativo, ésta debe obtenerse antes de la administración de antibióticos. Esto es especialmente importante en el aislamiento de Streptococcus beta hemolítico (muestras faríngeas), Neisseria gonorrhoeae (cultivos genitourinarios), Haemophilus influenzae y Neisseria meningitidis (L.C.R.).

- Si el enfermo ya está en tratamiento con antibióticos, idealmente éstos deberán suspenderse por un plazo mínimo de 4 veces la vida media del fármaco y posteriormente tomar la muestra.



- La muestra debe rotularse en forma adecuada e ir acompañada de una solicitud de examen, en la que se anotará,

en forma legible: - Nombre completo del paciente - Edad o Fecha denacimiento - Nº ficha clínica - Cuenta corriente (si está hospitalizado) - Nº de RUT - Procedencia (si es hospitalizado, indicar servicio; o si es ambulatorio) - Tipo de muestra - Fecha y hora en que se recolectó la muestra - Examen solicitado - Diagnóstico clínico o agente etiológico probable - Si hay tratamiento antibiótico previo o actual, tratamientos concomitantes - Nombre y firma del médico - Otras observaciones (si se trata de una repetición, si es un control, técnica usada en la obtención de la

muestra, etc.) Estos datos son fundamentales en el procesamiento de la muestra, ya que permiten una mejor orientación en la búsqueda del agente etiológico

1 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS RESPIRATORIAS: 2.1 LAVADO BRONQUIOALVEOLAR (LBA) Procedimiento: Toma de Labado bronquioalveolar

Definición: Muestra de secreción del árbol respiratorio inferior obtenida por fibroboncoscopia.

Indicaciones: - Sospecha de patología endobronquial y pulmonar - Estudio citológico, histológico y bacteriológico de patología pulmonar.

Descripción del procedimiento:

- Proceder a realizar la fibrobroncoscopía con técnica aséptica, por el clínico - Registrar.



1.2 MINILAVADO BRONQUIOALVEOLAR (MiniLBA) Procedimiento: Toma de Minilabado bronquioalveolar (MiniLBA)

Definición: Muestra de secreción del árbol respiratorio inferior obtenida a través del tubo

endotraqueal

Indicaciones: - Sospecha de Neumonia asociada a ventilación mecánica


- Deben ser tomados con técnica aséptica, a través del

tuboendotraqueal. - El tubo endotraqueal debe ser aspirado previo al procedimiento - La sonda de aspiración debe ser lo suficientemente larga para que

pueda impactar en un bronquio. - La sonda de aspiración se llenará con solución fisiológica antes de

introducir - Posteriormente se insertará esta sonda a través del tubo endotraqueal

hasta que se impacte en un bronquio. Si se desea aspirar secreciones de un pulmón en particular, se deberá colocar al paciente decúbito lateral del lado que se quiere aspirar

- Una vez impactada la sonda se deben introducir de 5, 10 a 20 ml. de solución salina 0.9%. La cantidad se determinará si el paciente es neonato, niño o adulto

- Después de instilar se debe colocar el kit de aspiración en la sonda y aspirar hasta obtener la muestra que no debería ser menor de 5 ml.

- Desconectar el kit de aspiración y tapar - Etiquetar las muestras - Enviar de inmediato al laboratorio especificando que se trata de un

mini LBA ya que el proceso de esta muestra es distinto al de otras. - El nivel de corte utilizado es de 104 ufc/ml. -



1.3 ASPIRADO ENDOTRAQUEAL (AET) Procedimiento: Toma de Aspirado Endotraqueal (AET)

Definición: Muestra de secreción del árbol respiratorio inferior obtenida a través del tubo endotraqueal

Indicaciones: Todo paciente con sospecha de Neumonia asociada a ventilación mecánica (NAVM ), conexión a ventilación mecánica más de 48 horas y presencia de criterios clínicos radiológicos, en el cual no se hayan efectuado cambios de tratamiento antimicrobiano durante las últimas 72 horas.


- La muestra debe ser obtenida con técnica aséptica. - El procedimiento debe ser realizado por profesional capacitado en

procedimientos sobre la vía aérea. - Se debe aspirar el tubo endotraqueal antes de obtener la muestra - Se obtiene introduciendo sonda de aspiración por el tubo endotraqueal y

conectar al otro extremo a un colector o trampa estéril - No se debe instilar suero fisiológico con el fin de facilitar la recolección ya que

se diluye la muestra (recuerde que se trata de un cultivo cuantitativo). - Si las secreciones son espesas, se deben aplicar aspiraciones intermitentes

hasta conseguir la muestra. - La muestra debe ser enviada inmediatamente a sección bacteriología

Laboratorio Central. - Se debe especificar claramente en solicitud de examen: - Examen solicitado: CULTIVO CUANTITATIVO ASPIRADO ENDOTRAQUEAL. - El nivel de corte utilizado es de 106 ufc/ml.

1.4 ASPIRADO NASOFARINGEO (ANF) Procedimiento: Toma de Aspirado Nasofaringeo (ANF)

Definición: Muestra de secreción del árbol respiratorio superior obtenida mediante la aspiración de secreciones de la nasofaringe

Indicaciones: Sospecha de infecciones por Bordetella pertussis y estudio de virus respiratorios


- Tomar el examen con técnica aséptica - Conectar un extremo de la tapa de dos salidas a la bomba o red de

aspiración - Conectar el extremo de diámetro menor a la sonda de alimentación - Insertar la sonda en la fosa nasal del paciente aproximadamente 8 cms - Retirar la sonda, repetir el procedimiento en la otra fosa nasal - Aspirar aproximadamente un volumen de 4-5 ml de Buffer tampón PBS

frío a través de la sonda para arrastrar toda la secreción - Cambiar la tapa al tubo recolector, anotar los datos del paciente o

etiquetar - Enviar de inmediato al Laboratorio con hoja de solicitud de examen. - Si no puede ser enviada de inmediato al laboratotio, guardar

refrigerado el tubo con la muestra, el tiempo máximo es de 24 hrs, luego debe ser enviado al Laboratorio para su procesamiento.



1.5 MUESTRA DE ESPECTORACIÓN Procedimiento: Toma de muestra de espectoración

Definición: Muestra de secreción del árbol respiratorio superior obtenida mediante la expectoración de secreciones por el paciente

Indicaciones: Sospecha de infecciones por B.pertussis y estudio de virus respiratorios


- El paciente debe lavarse los dientes y realizar enjuagues con agua para limpiar la cavidad oral, con el objeto de eliminar los restos de partículas de alimentos y los gérmenes saprófitos de la cavidad bucal

- En lo posible tomar la primera expectoración de la mañana, mediante tos espontánea o provocada eliminar la expectoración en una caja de boca ancha. El paciente debe ser asistido en el momento de la obtención de la muestra

- La muestra debe ser enviada de inmediato al laboratorio - En la orden de exámen solicitar Gram directo

Evaluación: Si en el Gram se observa más de 10 células epiteliales por campo, indica que hay contaminación orofaríngea y se debe considerar la muestra no representativa, repetirla con buena técnica

1.6 MUESTRA DE SECRECION FARINGEA Procedimiento: Toma de muestra de Secreción Faríngea.

Definición: Muestra de secreción o exudado faríngeo mediante tórula o hisopo

Indicaciones: Sospecha de infección faringoamigdaliana Descripción del procedimiento:

- Buena iluminación y exposición de la faringe del paciente - Deprimir la lengua con bajalengua - Frotar la tórula contra la pared posterior de la faringe y las amígdalas tocando

cualquier exudado - Evitar tocar la lengua, úvula y pared de la boca - Depositar la tórula dentro de un tubo estéril - Enviar de inmediato al laboratorio



2 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRA DE HEMOCULTIVOS Y CATÉTERES

VENOSOS CENTRALES (CVC) 2.1 TOMA DE MUESTRAS DE HEMOCULTIVOS: Procedimientos: Toma de Hemocultivos

Objetivo: Obtener una muestra de sangre que permita un óptimo rendimiento del examen, libre de contaminación.

Responsables de cumplimiento: - Médicos que lo solicitan - Enfermeras, Matronas, Tecnólogos médicos - Técnicos Paramédicos - Otros profesionales - Alumnos de pre y postgrado - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento

Definiciones y clasificación: HEMOCULTIVO: Es un examen microbiológico que permite la detección en el laboratorio, de una bacteremia o fungemia y permite adecuar la terapia antimicrobiana de acuerdo al microorganismo aislado y a la sensibilidad in vitro que éste presente, ya que la terapia, generalmente se inició en forma empírica. CLASIFICACIÓN DE LOS HEMOCULTIVOS: - Para pacientes adultos o pediátricos - Según la toma de la muestra pueden ser hemocultivos periféricos o centrales

(obtenidos a través de catéter venoso central). - Según el tipo de microorganismo que se esté investigando (aerobios o

anaerobios) - Según la metodología del sistema de hemocultivos en métodos manuales,

semiautomatizados o automatizados. Indicaciones: - Sospecha de bacteremia o fungemia en pacientes con o sin foco aparente de

infección. - Sospecha de infección del SNC. - Lactante menor de 3 meses con hipertermia (mayor de 39.5) - Síndrome febril de más de 4 días de evolución, sin foco clínico evidente. - Pleuroneumonias. - Paciente inmunodeprimido, con fiebre - Sospecha clínica de septicemia. - Cardiopatía, con fiebre, sin foco clínico evidente. - Osteoartritis aguda. - Celulitis facial en niño menor de 5 años. - Pielonefritis

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA OPORTUNIDAD E INTERVALO DE LA TOMA DE MUESTRAS: - Lo ideal es tomar la muestra inmediatamente previo al alza febril, sin embargo este momento no se puede

predecir pero muchas veces coincide con un período de calofríos del paciente.



- Los hemocultivos se puede obtener al mismo tiempo de diferentes sitios de punción, sin fijar plazos de tiempo entre ellos, sobre todo en pacientes que requieren inicio inmediato de antimicrobianos.

- La muestra debe obtenerse por punción periférica (venosa o arterial), siempre por una nueva punción - Debe ser la primera muestra que debe obtenerse si existe indicación de otros exámenes. - En pacientes con terapia antimicrobiana la muestra debe tomarse inmediatamente antes de la próxima dosis de

antimicrobiano. - Se deben obtener los 2 hemocultivos en un periodo máximo de 24 horas. MEDIDAS PARA EVITAR LA CONTAMINACIÓN DE LAS MUESTRAS: - Utilizar técnica aséptica estricta en la toma de la muestra, es esencial para evitar contaminación - Realizar lavado de piel del paciente con agua y jabón. - Utilización de antiséptico aplicando en forma excéntrica desde el sitio de punción elegido - En el caso de los sistemas manuales que no son sellados, se debe destapar el frasco para inocular la muestra,

este procedimiento tiene riesgo de contaminación por lo que se debe tener máxima precaución en no tocar las paredes exteriores ni interiores de la botella con la aguja ó jeringa

- La mascarilla se utilizará en caso que el operador esté cursando un estado gripal, pero se debe mantener la disciplina en cuanto a no hablar mientras se inocula la muestra

- Se acepta un porcentaje de contaminación que varía entre un 2 a 3% - Esta contaminación se atribuye principalmente a una contaminación durante la toma de muestra - La tasa de contaminación de los hemocultivos, constituye un indicador de calidad - La decisión final del significado clínico de un hemocultivo positivo, depende en última instancia de la

presentación clínica y del curso de la enfermedad en un paciente determinado - El Laboratorio evaluará y emitirá un informe semestral, dando a conocer, el porcentaje de contaminación de los

hemocultivos tomados en cada Servicio. NÚMERO Y VOLUMEN DE LAS MUESTRAS: - Se ha demostrado que en un episodio bacterémico la positividad de dos o tres muestras para hemocultivo no

tiene diferencia significativa por lo que se recomienda tomar 2 muestras tanto en adultos como en niños. - Si se sospecha endocarditis infecciosa, se recomienda tomar 2 hemocultivos, si éstos están negativos a las 24

hrs., obtener un segundo set de 2 hemocultivos más - No se debe tomar una muestra de sangre para hemocultivo en forma aislada, dado que disminuye la

positividad y complica la evaluación de contaminación. - Las recomendaciones son obtener el máximo de volumen que la botella sea capaz de tolerar manteniendo la

relación 1:5 a 1:10 entre la muestra y el volumen del medio de cultivo - Esta dilución permite neutralizar las propiedades bactericidas de la sangre y de los agentes antimicrobianos

que puedan estar presentes en la muestra. - Para la gran mayoría de los sistemas automatizados este volumen es de 10 ml para adultos y es variable para

los niños según la edad: o Recién nacidos: 1-2 ml o Lactantes de 1 mes a 2 años: 2-3 ml o Niños mayores de 2 años y <12 años: 3-5 ml o Adolescentes: 10 ml o Adultos: 10 ml

- Las muestras se deben mantener a temperatura ambiente, nunca refrigerar - La incubación a 35ºC debe realizarse lo antes posible, pudiendo darse como máximo de tiempo 2 hrs desde que

se tomó la muestra




El procedimiento se realiza con Técnica Aséptica: - Reuna el material - Examine cada frasco antes de usar en busca de indicios de daño,

contaminación o deterioro como: derrames, turbidez, decoloración u oscurecimiento o el tampón hinchado o hundido, si es así, el frasco se debe devolver.

*En el momento de la toma de muestra, el frasco de cultivo debe estar a temperatura ambiente.

- Explique el procedimiento al paciente - Realizar lavado de manos clínico con jabón antiséptico. - Colocar guantes de procedimiento o manoplas en caso de riesgo de contacto

con sangre. - Prepare la zona a puncionar lave la piel con tórulas con agua y jabón

antiséptico desde el centro a la periferia - Desinfectar la zona a puncionar con Alcohol 70%, excepto en los recién

nacidos donde se debe usar clorhexidina - Se debe esperar que el antiséptico se seque para que ejerza su acción residual - La punción debe ser efectuada con guantes, que deben ser estériles cuando se

requiere palpar nuevamente la vena - Extraer la muestra - Inocular la muestra, previo descontaminar el tapón de goma de la botella con

alcohol y esperar que seque. - En el caso de los sistemas manuales que no son sellados, se debe destapar el

frasco para inocular la muestra - Eliminar material cortopunzante en contenedor ad-hoc - Rotular muestras (no escriba en el código de barras) consigne:

o Nombre completo del paciente o Fecha, hora y servicio o unidad o Vía de obtención de la muestra: periférico, por CVC, etc o N° de muestra. I o II

- Registrar el procedimiento Mantención y transporte de las botellas

- Mantener a temperatura ambiente - Enviar rápidamente al laboratorio - Nunca refrigerar - Transportar a temperatura ambiente - La incubación a 35ºC debe realizarse lo antes posible, pudiendo darse como

máximo de tiempo 2 hrs desde que se tomó la muestra Indicadores de calidad:

Contaminación de Hemocultivos Nº de hemocultivos contaminados por servicio/ Nº de Hemocultivos tomados por servicio X 100

Estándar o umbral de evaluación 2 a 3% de contaminación de hemocultivos

Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990 - Manual de Prevención y Control de Infecciones Intrahospitalarias MINSAL

1993.



2.2 MUESTRAS PARA CULTIVO DE CATÉTERES VENOSOS CENTRALES Procedimiento: Toma de Muestras de CVC

Definiciones y clasificación: Cultivo de punta de CVC: cultivo que se toma al retirar el CVC cortando una porción de la punta para cultivo

Indicaciones: Pacientes con catéter venoso central que presente fiebre 38º C., sin foco aparente que la explique con o sin infección a nivel de la inserción del CVC.

Descripción del procedimiento: MUESTRAS PARA CULTIVO DE CATETERES VASCULARES CENTRALES

Cuando se retira el C.V.C.: Método semicuantitativo de Maki - Lavado clínico de manos. - Uso de guantes estériles: - Instalar campo estéril. - Cerrar la conexión del catéter. - Limpiar la piel donde se inserta el catéter con alcohol de 70º - Con una pinza y tijera estéril cortar punto que fija el catéter a la piel y traccionar

suavemente hacia el exterior. - Cortar con tijera estéril 3 cm de la punta del catéter, partiendo desde

algunos milímetros bajo el nivel subcutáneo del catéter. - Guardar la punta del catéter en un tubo estéril de boca ancha. - Enviar al Laboratorio antes de 2 horas. - Tomar en forma paralela 2 hemocultivos periféricos al paciente.(diferentes sitios

de punción) para documentar bacteriemia. Interpretación:

- Si el recuento de colonias es menos de 15 (15 UFC) se interpreta como una contaminación del catéter al momento de retirarlo.

- Si el recuento es igual o superior a 15 (15 UFC) se interpreta como una colonización significativa del catéter.

Cultivo sitio de inserción CVC: - Hacer aseo superficial con gasa y suero fisiológico o agua destilada estéril - Exprimir desde los bordes para obtener secreción con una tórula - Enviar al laboratorio.

Nota: No tomar muestra de sitio de inserción en ausencia de signos inflamatorios locales sugerentes de infección. Cuando permanece el C.V.C.:

- En el caso que el catéter no es retirado, se recomienda efectuar el tiempo diferencial de la positividad de los hemocultivos

- Este método se puede realizar sólo en laboratorios que dispongan de sistemas automatizados.

Tiempo diferencial de los hemocultivos: - Preparación de la piel, lavado por arrastre con jabón antiséptico. - Lavado clínico de manos con jabón antiséptico, uso de guantes estériles. - Extraer 1 hemocultivo a través de catéter central y luego un hemocultivo de

vena periférica - Rotular cada una de ellas y enviar al laboratorio.

Interpretación: Se ha señalado como indicativo de bacteriemia relacionada a CVC un tiempo diferencial de 2 horas a favor del hemocultivo central con respecto del periférico.



3 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRA DE ORINA PARA CULTIVO Procedimiento: Toma de Muestras de Urocultivos

Indicaciones: Pacientes con sospecha de infección urinaria

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA - Preferentemente se debe obtener la primera orina de la mañana (ya que se trata de una muestra más

concentrada). De no ser posible, el paciente debe abstenerse de orinar durante las tres horas previas al examen. - No forzar la ingestión de líquidos, ya que con ello se diluye la orina, alterando el recuento. - Volumen recomendado a recolectar: 25 a 50 ml - Volumen mínimo: 3 ml - Se debe tomar la muestra siempre previo aseo genital - Una vez obtenida la muestra debe procesarse antes de 2 horas

Clasificación y descripción del procedimiento:

Orina de segundo chorro; Recolección de orina en mujeres adultas: - Tener un frasco estéril proporcionado por el laboratorio - Tener a lo menos 3 horas de retención de orina - Separar los labios genitales y mantener los pliegues separados - Realizar higiene genital con agua sola o con jabón neutro - Enjuagar con abundante agua - Secar sin friccionar - Colocar tampón vaginal - Destapar el frasco estéril cuidando de no tocar las partes internas - Comenzar la micción descartando el primer chorro - Sin cortar el chorro de orina, colocar el frasco recolector obteniendo la porción

media de la orina - Tapar el frasco y rotular - Enviar al laboratorio.

Toma de muestra en varones adultos: - Tener un frasco estéril proporcionado por el laboratorio - Tener a lo menos 3 horas de retención de orina - Lavar con jabón la cabeza del pene empezando por la abertura uretral previa

retracción del prepucio - Enjuagar con agua y secar suavemente - Destapar el frasco recolector en el momento de la micción - Sin tocar con los dedos la parte interior - Recolectar la muestra eliminando el primer chorro - Depositar la muestra media del chorro - Rotular muy bien el frasco - Enviar al laboratorio.

Orina obtenida mediante recolector pediátrico: - Realizar aseo prolijo con agua y jabón - Aplicar el recolector para obtener la muestra - Tener la precaución de cambiar el recolector cada 30 minutos - Enviar la muestra al laboratorio



Orina obtenida a través de catéter vesical permanente:

- Generalmente los catéteres vesicales están colonizados ya a las 48 hrs de instalados y los microorganismos aislados no necesariamente son el agente causal de la infección urinaria.

Toma de muestra en pacientes con sonda vesical instalada hace 24 horas: - Limpiar la superficie externa del catéter con alcohol 70%, esperar que se seque

para que ejerza su acción. - Efectuar punción en ángulo de 30º - Pinzar el catéter en el momento de tomar la muestra - Depositar la orina en un frasco estéril - Enviar de inmediato al laboratorio.

Toma de muestra en pacientes con sonda vesical instalada hace 24 más de horas: - Cambiar la sonda antes de proceder a tomar la muestra de orina - Tomar ésta de conectar la bolsa recolectora - Depositar en un frasco estéril - Enviar de inmediato al laboratorio

Punción vesical: - Es el método de referencia para la obtención de orina a cultivar ya que

evita la contaminación con flora uretral; sin embargo, se reserva para casos especiales por ser un procedimiento invasor.

Cateterización vesical transitoria: - Se considera una alternativa a la punción vesical pero es también un

procedimiento invasor y puede generar arrastre retrógrado de microorganismos

Transporte de la muestra: - La orina es un buen medio de cultivo que permite la multiplicación de los

microorganismos incrementando el recuento bacteriano, por lo que las muestras deben procesarse antes de las 2 horas de obtenidas.

Indicadores de calidad: Contaminación de Urocultivos

Nº de urocultivos contaminados por servicio/ Nº de urocultivos totales tomados por servicio X 100

Estándar o umbral de evaluación Hasta 5% de urocultivos contaminados 4 PROCEDIMIENTO DE TOMA DE MUESTRAS DE LÍQUIDO CEFALORRAQUIDEO Procedimiento: Toma de muestra de Líquido cefalorraquídeo (LCR)

Definición: Muestra de LCR obtenida por punción lumbar

Indicaciones: Sospecha de infección meníngea




- Lavar la región lumbar del paciente con agua y jabón. - Realizar lavado con agua y jabón antiséptico y posteriormente antisepsia

de la piel mediante la realización de movimientos concéntricos que van desde el lugar donde se realiza la punción hacia fuera. Esperar tiempo de latencia del antiséptico.

- Proceder a la punción lumbar con técnica aséptica, por el clínico - Recolectar el L.C.R. en tres tubos estériles. Utilizar el segundo tubo para el

estudio microbiológico ya que el primero tiene más posibilidades de contaminarse con flora cutánea. El otro tubo se utiliza para efectuar estudio citológico, bioquímico, antígenos capsulares, etc.

- La cantidad de L.C.R. afecta directamente la sensibilidad del diagnóstico bacteriológico. En general cantidades de 1-3 ml del L.C.R. para el estudio microbiológico son adecuadas, pero si es necesario determinar antígenos capsulares (látex) debe enviarse otro tubo con una cantidad similar de L.C.R.

- En aquellos casos en que se obtiene escasa cantidad de muestra, se debe consultar al clínico, acerca de cual de los estudios que se realizan con el L.C.R., reviste mayor importancia para el paciente

- El transporte se debe realizar lo más pronto posible, en tubos estériles, ya que la mayoría de los microorganismos causantes de meningitis son sensibles a los cambios de temperatura y desecación.

5 PROCEDIMIENTOS PARA TOMA DE MUESTRAS DE CAVIDADES SEROSAS

Procedimiento: Toma de muestra de Líquido pleural, peritoneal, pericárdico, sinovial, etc.

Definición: Muestra de cavidades serosas que se obtiene por punción.

Indicaciones: Sospecha de infección meníngea Descripción del procedimiento:

- El líquido pleural, peritoneal, pericárdico, sinovial, etc., se obtienen generalmente por punción cutánea, por lo tanto, se debe realizar un riguroso aseo y antisépsia de la zona que se va a puncionar, para evitar la contaminación de la muestra con la flora flora cutánea y minimizar el riesgo de infección del paciente asociado al procedimiento. La muestra debe ser obtenida por un médico experimentado en la técnica y un asistente, ambos vestidos con ropa estéril, guantes y mascarilla.

- Se recomienda usar jeringa heparinizada para tomar muestras de L.

articular o L. pleural que contengan gran cantidad de proteínas, enviar 1-3 cc. del líquido

- Con respecto a los L. Ascíticos se ha observado una mayor positividad si se envía 5-8 ml en matraz de hemocultivos de adulto.

TRANSPORTE: - Una vez que el clínico ha obtenido la muestra, en tubos estériles o jeringa,

debe ser conducida a la brevedad posible al laboratorio, a temperatura ambiente.



6 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE TRACTO GENITAL 2.2 MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL MASCULINO Procedimiento: Toma de muestra de Tracto genital masculino

Definición: Muestra de secreción uretral o balanoprepucial masculino.

Indicaciones: Sospecha de infección del tracto genital masculino Descripción del procedimiento:

Secreción uretral: - Debe ser matinal antes de orinar - Aseo genital con agua y jabón.

Si existe secreción abundante, tomar la muestra con tórula desde el inicio de la uretra posterior. Si no se ve secreción, introducir una tórula fina unos 2 a 3 cm dentro de la uretra y rotar suavemente en ambos sentidos, tomar 2 tórulas, una para Gram y otra para cultivo

Si existe secreción escasa: obtener orina de 1er chorro, de primera micción matinal en frasco de urocultivo

- Enviar antes de 15 minutos al laboratorio y registrar en solicitud de examen la búsqueda de N. gonorrhoeae.

Balanoprepucial: - Realizar aseo genital con agua y jabón - Retraer el prepucio - Tomar con tórula estéril desde el surco balanoprepucial - Enviar al laboratorio.

6.2 MUESTRAS DEL TRACTO GENITAL FEMENINO

Procedimiento: Toma de muestra de Tracto genital femenino

Indicaciones: Sospecha de infección del tracto genital femenina Descripción del procedimiento:

Glándula de Bartholino, para búsqueda de: -Bacterias aerobias -N .gonorrhoeae

- Aseo vulvar con agua y jabón - Pincelar con povidona yodada - Puncionar con técnica aséptica y aspirar pus - Eliminar el aire de la jeringa y sellarla - Enviar de inmediato al laboratorio.

S. vaginal para búsqueda de: -Candida spp -Gardnerella vaginalis -Streptococcus agalactiae -Listeria



- Colocar especulo sin lubricante - Introducir tórula estéril seca - Tomar muestra de secreción - Enviar al laboratorio.

Cervix uterino para búsqueda de: -N. gonorrhoeae:

- Colocar espéculo - Limpiar con gasa la secreción vaginal y mucus del cervix - Introducir tórula en endocérvix y rotarla para obtener exudado - Enviar de inmediato al laboratorio.

Loquios:

- No se deben cultivar loquios obtenidos desde la vagina, ya que la contaminación con secreción vaginal los hace no representativos de procesos endometriales

Fondo de saco de Douglas, para búsqueda de: -Bacterias aerobias -N. gonorrhoeae

- Limpiar con gasa estéril el fondo de saco vaginal posterior - Desinfectar con povidona yodada - Puncionar con jeringa estéril y aspirar - Enviar al laboratorio.

S. uretral para búsqueda de: -N. gonorrhoeae

- Aseo perineal como en urocultivo - Introducir tórula fina y rotar - Enviar de inmediato al laboratorio.

Orina para búsqueda de: -N. gonorrhoeae

- Aseo perineal como en anterior - Tomar muestra de orina del 1er chorro (10 ml ) y primera orina de la

mañana con técnica aséptica - Llevar de inmediato al laboratorio y registrar en solicitud de examen la

búsqueda de N. gonorrhoeae.



7 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE TRACTO GASTROINTESTINAL Procedimiento: Toma de muestra de Coprocultivos

Indicaciones: Diagnóstico etiológico de diarrea aguda bacteriana: Mediante cultivo: Salmonella spp. Shigella spp. Yersinia enterocolitica E.coli enterohemorrágica V.cholerae Mediante tinción de Gram de deposiciones: Campylobacter spp. Mediante detección de toxina: Clostridium difficile


Toma de muestra La muestra de deposición debe tomarse al comienzo del proceso agudo, no se recomienda realizar coprocultivos en pacientes con más de 3 días de hospitalización, debe estar sin tratamiento antibiótico previo. Idealmente deposición recién emitida, incluyendo productos patológicos (mucus, pus, sangre) en un frasco limpio. Se puede obtener de dos formas, especialmente en niños: 1. Sonda rectal: Se debe emplear una sonda nelaton fina y se aspira con jeringa. 2. Hisopado rectal: Introducir tórula en el recto y rotarla suavemente para obtener

materia fecal, ésta debe ser enviada en medio de transporte Cary-Blair.

- Para pesquisa de toxina A de C. difficile se debe obtener aproximadamente 5 cc de deposición en un frasco limpio (sin fijador) que proporciona el laboratorio.

En caso de hospitalización por diarrea, se tomará sólo una muestra al ingreso del paciente, ya que se ha demostrado que más de una muestra no aumenta el rendimiento en forma significativa, pero sí aumenta el costo. Se solicita indicar en la orden presencia de sangre en deposiciones. Criterios de rechazo de una muestra: - orden incompleta - letra ilegible - ausencia de medio de transporte - pacientes hospitalizados más de 72 hrs que han consultado por SDA - Deposición formada.



8 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS OCULARES Procedimiento: Toma de muestras oculares

Indicaciones: Estudio en pacientes con presencia de secreción ocular u ojo rojo Descripción del procedimiento:

Toma de muestra - Tomar la muestra para cultivo antes de la aplicación de anestésico tópico. - Tomar la muestra con extremo cuidado, con la ayuda de otra persona que

inmovilice la cabeza del paciente. - Limpiar la superficie externa del ojo con un algodón humedecido en suero

fisiológico estéril o agua destilada estéril - Luego se frota una tórula estéril humedecida en suero estéril, el fondo de saco

conjuntival inferior en dirección hacia el borde interno del ojo evitando el borde de las pestañas

Transporte de la muestra: - Enviar la muestra inmediatamente al laboratorio.

9 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS OTICAS Procedimiento: Toma de muestras oticas

Indicaciones: Estudio de pacientes con sospecha de otitis externa u otitis media Clasificación Secreción del conducto auditivo externo: muestra obtenida uando se presenta

exudado, es mejor recolectar pus con una tórula fina. Secreción de oído medio: fluido de oído obtenido por Timpanocentesis.


Toma de muestra Otitis externa

- Hacer aseo cuidadoso de la piel ( para disminuir flora residente ) - Con una tórula estéril y seca, tomar muestras en el mismo sentido del conducto

auditivo - Enviar al laboratorio.

Otitis media

- No se recomienda la tórula para estudio de otitis media - El cultivo del canal auditivo externo no refleja la causa de una otitis media,

salvo que la membrana timpánica se haya roto recientemente. En este caso limpiar el conducto auditivo externo con suero fisiológico estéril y tomar muestra con tórula fina, sin contaminar con la superficie externa

- La muestra de elección es la punción timpánica aspirativa con técnica aséptica que debe ser tomada por especialista otorrinolaringólogo

- Enviar al laboratorio



10 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE PIEL Y TEJIDOS BLANDOS Procedimiento: Toma de muestras de piel y tejidos blandos

(Herida, abscesos, quemadura, exudados, etc.) Indicaciones: El diagnóstico de infección, es clínico y se basa en la presencia de síntomas y signos

clínicos en el sitio de la lesión. El cultivo se solicita sólo: - Con diagnóstico de infección, si se requiere confirmar la etiología con fines epidemiológicos y/o terapéuticos. - Si el clínico decide que el estado del paciente amerita un tratamiento antibiótico sistémico.

Clasificación: La infección puede ser superficial o profunda, dependiendo de las estructuras comprometidas.

Infección superficial: existe compromiso de dermis, epidermis y celular subcutáneo. Infección profunda: existe compromiso de además de la fascia y músculo, pudiendo o no comprometer cavidades u órganos.

Descripción del procedimiento: Lesiones superficiales: Absceso cerrado, Celulitis,

vesículas Absceso abierto y heridas:

Toma de muestras Lesiones secas: No se recomienda cultivo. Lesiones costrosas:

- Aseo de piel con suero fisiológico - Remover costra - Frotar lesión con tórula humedecida en suero fisiológico estéril.

Absceso cerrado:

- No usar tórula - Descontaminar piel con alcohol 70% - Puncionar el absceso, aspirar su contenido con jeringa, mínimo 0.5 ml.

Celulitis: - Descontaminar la piel con alcohol 70% - Inyectar 0.5-1.5 ml de suero fisiológico estéril con aguja Nº 21 o jeringa

de tuberculina y aspirar - Enviar el aspirado en la misma jeringa.

Vesículas: - Descontaminar piel con alcohol - Abrir vesícula con lanceta estéril - Tomar muestra de secreción con tórula humedecida en suero

fisiológico estéril - Colocar en tubo seco estéril. - Remover flora superficial de la piel y exudados con gasa y suero

fisiológico - Con una tórula estéril frotar firmemente los márgenes internos del

absceso, en la región más alejada de la piel, pero no del centro mismo del absceso

- Si el contenido es muy fluido extraer con jeringa. - Enviar de inmediato al laboratorio.



Superficies quemadas: Pié diabético: Escaras y úlceras tróficas: Secreción umbilical:

- Los cultivos de superficie quemada solo se justifican si hay signos locales o generales de infección, en tal caso se recomienda hacer biopsia quirúrgica del tejido para cultivo cuantitativo

- Los cultivos rutinarios de vigilancia de superficies quemadas muestran solamente microorganismos colonizantes, por lo tanto no se justifican.

Ulceras: Si no hay evidencia clínica de infección no deben ser cultivadas.

Ulceras infectadas

- Las muestras superficiales de úlceras infectadas no deben ser tomadas con tórula o irrigación con suero fisiológico, ya que inevitablemente están altamente contaminadas por organismos que forman parte de la flora comensal de la piel y por organismos patógenos, que no participan de la infección

- La muestra adecuada para este tipo de herida es la obtenida por curetaje.

Curetaje: - Hacer aseo con suero fisiológico estéril - Debridar el tejido necrótico superficial con hoja de bisturí estéril - Obtener muestra profunda a través de curetaje.

Punción aspirativa: - También son útiles, para este tipo de herida, las muestras obtenidas

por punción aspirativa con jeringa, de abscesos o bulas - Tienen menor sensibilidad ( 50% ) que las obtenidas por curetaje.

- No se debe cultivar lesiones superficiales ya que éstas están mal

vascularizadas - Se colonizan y son reservorio de microorganismos intrahospitalarios - No llegan los antimicrobianos sistémicos - Su tratamiento es local con curaciones o aseo quirúrgico.

Si se sospecha que la puerta de entrada de una sepsis sea la escara: - Obtener muestra post aseo superficial con gasa y suero fisiológico - Eliminar el tejido necrótico - Obtener tejido profundo por curetaje o biopsia.

- Tomar sólo en R.N. - Hacer aseo superficial con suero fisiológico - Introducir la tórula en el orificio umbilical y rotar suavemente.



11 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS PARA INFECCIÓN ARTICULAR, OSEA Y

DE MEDULA OSEA Procedimiento: Toma de muestras de infecciones articulares y oseas

Indicaciones: Sospecha de artritis séptica, infección de artroplasía de caderas y osteomielitis Descripción del procedimiento: Artritis séptica Diagnóstico de infección de artroplastía de cadera Osteomielitis aguda Mielocultivo

Toma de muestras Líquido articular : Tomar una muestra de líquido articular e inocular directamente en frasco de hemocultivo pediátrico. Si existe sospecha de artritis de etiología tuberculosa, debe tomarse la muestra con heparina; 1 gota de solución de heparina al 5% estéril, para 5 ml de líquido. Punción aspirativa: Si existen evidencias clínicas y radiológicas de infección protésica, lapunción aspirativa articular para obtener líquido para cultivo, es una ayuda valiosa para el estudio diagnóstico (la sensibilidad es de 50 a 70% y especificidad de 80%). Tomar una muestra y vaciar en frasco de hemocultivo y enviar a Laboratorio. Nota: Si desea Tinción de Gram, se debe enviar fracción de muestra en jeringa o frasco estéril. Cultivo intraoperatorio: Se deben tomar tres muestras, de sitios representativos, como 1 muestra de cápsula articular y 2 de membranas alrededor de los componentes protésicos, depositar las muestras en frascos de hemocultivo respectivamente (un frasco con cápsula y otro con las membranas). La tinción de Gram tiene alta especificidad pero muy baja sensibilidad (98% versus 12%). - Muestra intraoperatoria de tejido sinovial o tejido óseo: Las muestras de tejido óseo o sinovial, obtenidas por procedimiento quirúrgico, deben ser inoculadas en frasco tradicional de hemocultivo. - Muestra por punción percutánea: Las muestras osteoarticulares, por punción percutánea bajo visión radiológicas, deben ser inoculadas en frasco de hemocultivo. . Nota: en caso de sospecha de bacteremia simultánea, obtener muestra de sangre para hemocultivos. Tomar la muestra de médula ósea, con técnica aséptica. Inocular un caldo de hemocultivo pediátrico automatizado Transporte: Las muestras tomadas, deben ser enviadas inmediatamente al Laboratorio Central.



12 PROCEDIMIENTOS DE TOMA DE MUESTRAS DE AGUAS DE DIALISIS Los controles microbiológicos en los Centros de Diálisis deben hacerse a lo menos semestralmente. La Unidad de Diálisis, la Unidad de IIH y el Laboratorio de Microbiología han determinado realizar mensualmente estos controles, estipulando que, el primer jueves de cada mes serán tomadas las muestras y enviadas al Laboratorio para su procedimiento La Unidad de Hemodiálisis cuenta con 7 máquinas y además, existe una en cada unidad de paciente crítico (UCI, UCICQ y UTI Adultos) Cantidad de muestras para cultivo: 1. Unidad de Hemodiálisis crónico − 1 muestra obtenida de agua post filtración de ablandamiento − 1 muestra previo entrada a la primera máquina de diálisis (Pre-procedimiento) − 1 muestra previo entrada a la última máquina 2. Unidad Hemodiálisis aguda: − 1 muestra en UCI − 1 muestra en UTI − 1 muestra en UCI CQ − Líquido de diálisis (Post procedimiento): − 1 muestra para cada máquina o monitor de diálisis (7 en total) − 1 muestra al primer paciente del mes que se dialice en UCI adultos − 1 muestra al primer paciente del mes que se dialice en UTI adultos − 1 muestra al primer paciente del mes que se dialice en UCICQ Método de obtención de muestra: − Abrir la válvula y dejar fluir el agua por 2 minutos − Con técnica aséptica tomar un volumen de 5 ml en frasco estéril que proporcionará el Laboratorio − Si se ha sanitizado, se debe hacer flush por toda la línea de agua por 15 minutos previo a la toma de muestra − Enviar al Laboratorio Interpretación: − El recuento en agua de diálisis no debe exceder 200 UFC/ml − El recuento bacteriano en líquido de diálisis no debe exceder 2000 UFC/ml Todo recuento superior a estos límites será informado a la brevedad a la Unidad respectiva y al Comité de Vigilancia en IIH



F. USO RACIONAL DE ANTIMICROBIANOS Y GUÍAS DE PROFILAXIS Y TRATAMIENTOS

1.- Objetivos: - Disminuir o retardar la aparición de resistencia de los patógenos a los antimicrobianos. - Prevenir IIH. - Disminuir el impacto económico de las IIH por el uso de antimicrobianos de alto costo. - Prevenir efectos adversos ocasionados por los antimicrobianos. - Racionalizar el uso de profilaxis antimicrobiana en procedimientos quirúrgicos y obstétricos. - Establecer un esquema de terapias antimicrobianas para infecciones específicas.

2.-Dirigido: a todos los médicos del área clínica 3.- Antimicrobianos de uso restringido o supervisado:

El Hospital Dr. Hernán Henríquez A. de Temuco aplica un programa de uso racional de antimicrobianos para mejorar la calidad de la práctica asistencial, prevenir o controlar la emergencia de resistencia antimicrobiana y para contener costos. Los compuestos bajo regulación son los señalados en la siguiente tabla, algunos de ellos requieren autorización previa y otros son supervisados luego de su inicio. COMPUESTOS QUE REQUIEREN AUTORIZACIÓN POR INFECTOLÓGOS

COMPUESTOS SUPERVISADOS LUEGO DE SU INICIO

Meropenem Meropenem Imipenem Imipenem Ertapenem Ertapenem Vancomicina Vancomicina Linezolid Voriconazol Caspofungina Teicoplanina El manejo de las infecciones nosocomiales requiere la solicitud previa de cultivos antes de iniciar un esquema empírico para ajustar la terapia o para descartar la infección.



A continuación se presentan los criterios de uso inapropiado de ellos: USO REGULADO DE VANCOMICINA Y CARBAPENÉMICOS

SE CONSIDERA USO INADECUADO DE VANCOMICINA:

- Profilaxis quirúrgica de rutina, exceto en los casos de alergia severa a beta-lactámicos. - Uso empírico prolongado mayor a 5 días en pacientes con supuesta infección por Gram positivo meticilino

resistentes sin confirmación bacteriológica. - Tratamiento de un solo hemocultivo positivo a Staphylococcus coagulasa negativo. - Tratamiento de infecciones por Gram positivos betalactamico sensibles en pacientes con falla renal con el sólo

objeto de acomodar posología. - Tratamiento de primera línea en diarrea asociada a antibióticos - Terapia empírica de rutina en paciente neutropénico febril, excepto evidencia de infección cutánea en área de

vía venosa. - Profilaxis sistemática para la infección de catéteres intravasculares centrales o periféricos. - Profilaxis de rutina para recién nacidos de muy bajo peso (<1500 grs). - Erradicación de la colonización con Staphylococcus aureus MR. - Descontaminación selectiva del tracto digestivo.

Nota: Considerar que vancomicina es menos bactericida que cloxacilina para Staphylococcus sensibles a oxacilina.

SE CONSIDERA USO INADECUADO DE CARBAPENÉMICOS:

- Manejo de infecciones comunitarias de cualquier tipo. - En profilaxis quirúrgica - Infecciones superficiales por Bacilos Gram negativos sensibles a ceftazidima y betalactamicos con inhibidores

de betalactamasas. - Manejo empírico de IIH sin uso previo dentro de los 5 días precedentes de otras alternativas de amplio

espectro. - Tratamiento de pacientes con neutropenia febril u otras condiciones de inmunosupresión sin utilizar

previamente otros esquemas de amplio espectro. - Tratamientos prolongados de infecciones asociadas a prótesis o cuerpos extraños sin remoción de ellos. - Tratamiento de paciente con urocultivo positivo a bacilo gram negativo multirresistente en presencia de

cateterismo urinario permanente y sin evidencia clínica de infección. - Tratamiento de cultivo positivo de paciente con escara de decúbito (tomado en forma superficial), sin

evidencias sistémicas de infección o sin intención terapéutica de mejorar la escara. - Manejo de pie diabético sin cultivos de respaldo o basado en cultivos superficiales y sin intención de revertir la

condición isquémica de la extremidad. - Tratamiento de una colonización y no de una infección por agentes sólo sensibles a carbapenémicos. Notas: * No se recomienda el uso de Imipenem durante el embarazo. * En pediatría especialmente en infecciones del sistema nervioso preferir uso de Meropenem.



FORMA DE OPERAR:

- Farmacia en forma diaria informará de los nuevos tratamientos con Vancomicina o carbapenémicos iniciados en la tarde del día anterior o durante el fin de semana.

- Los médicos responsables del control recibirán este informe y procederán a evaluar cada caso, idealmente en conjunto con el médico tratante.

- Para definir el uso de estos antibióticos, se utilizará la presente norma aprobada por el Comité de Antibióticos del Hospital Dr. Hernán Henríquez A., en base a recomendaciones internacionales y la realidad epidemiológica local.

- Si el uso es adecuado se informará a farmacia para continuar el tratamiento, si es inadecuado se avisará a farmacia para suspender el despacho de la receta, sugiriendo las alternativas terapéuticas que correspondan si el caso lo amerita.

- La forma de prescripción debe ajustarse a la norma de despacho de antibióticos restringidos.

4.- PROFILAXIS ANTIMICROBIANA EN PACIENTES QUIRURGICOS 4.1.- Definición: Es la administración de fármacos antimicrobianos con el objetivo de prevenir infecciones asociadas a procedimientos quirúrgicos 4.2.- Objetivos de la profilaxis antibiótica en cirugía:

- Reducir la incidencia de infecciones del sitio operatorio. - Minimizar el efecto del antimicrobiano sobre la flora normal del paciente. - Minimizar los efectos adversos - Lograr un uso racional de antimicrobianos

La profilaxis antimicrobiana en cirugía es un elemento importante en la prevención y control de infecciones, sin embargo no reemplaza la técnica quirúrgica adecuada. 4.3.- Clasificación de Heridas quirúrgicas: En la siguiente tabla se muestra la clasificación de las heridas quirúrgicas en cuatro categorías en función de la contaminación bacteriana, lo que constituye un factor de riesgo para las infecciones de sitio operatorio. Tipos Características Limpia Heridas producto de cirugías electivas, cerradas, no infectadas sin inflamación, sin

quiebre de técnica, sin sección del aparato respiratorio, gastrointestinal, genitourinario u orofaríngeo.

Limpia-contaminada Con sección de tracto gastrointestinal, genitourinario, biliar, orofaringeo y respiratorio, de urgencia, reintervenciones, trauma o quiebre de técnica

Contaminada Infección preexistente (sin pus), perforación o comunicación a cavidades contaminadas o trauma penetrante de más de 4 hrs. de evolución

Sucia Infección preexistente con presencia de pus perforación o comunicación a cavidades contaminadas o trauma penetrante de más de 4 hrs. de evolución



4.4.- Principios Generales de la profilaxis antibiótica quirúrgica: Requisitos Consideraciones Discriminada Grupos de alto riesgo, Grupos de bajo riesgo si la infección potencial es grave

(cirugías de prótesis o implantes, endocarditis, etc.) Oportuna Para lograr niveles tisulares útiles del antibiótico al momento de la incisión, ello

implica dosis pre-operatorias, en caso de uso endovenoso idealmente en el intervalo de 60 minutos previo a la incisión durante la inducción anestésica. (por consenso 30 min.)

Antibiótico(s) efectivos contra la flora endógena relacionada al sitio quirúrgico

En general Cocáceas Gram positivas y Bacilos Gram negativos.

Emplear ruta y dosis adecuada Generalmente vía endovenosa, ajustar dosis al peso del paciente función renal, etc. Utilizar dosis extra intraoperatoria si la cirugía dura más de dos vidas medias del antibiótico o existe sangrado mayor a 1500 ml.

Duración breve Una o dos dosis desde el preoperatorio, no se recomiendan dosis postoperatorias. No reemplaza la adecuada técnica quirúrgica

Minimizar drenajes, control de hemostasia, remoción de tejidos desvitalizados, etc.

4.5.- Procedimientos quirúrgicos sin indicaciones de profilaxis antibiótica.

- Cirugía abdominal limpia - Herniorrafias sin instalación de malla - Cirugía de cabeza y cuello sin abertura de vía aérea - digestiva - Instalación (o mantención) de drenaje ventricular externo

4.7.- Esquemas de antibióticos sugeridos en las cirugías: 4.7.1.- Cirugía Limpia: Tipo cirugía Indicaciones Esquema Cardíaca Válvula protésica, bypass, cirugía

abierta en general, implante de marcapasos.

- Pacientes con estadía menor a 7 días preoperatorio: Cefazolina 1-2 gramos ev (repetir dosis al retirar de CEC), mantener por 24 horas. -Alternativa Cefuroxima 1,5 g ev c/12 horas por 24 horas. -Pacientes con estadía >7 días preoperatorio: dado alta prevalencia de Stapylococcus aureus meticilinoresistente (MRSA) uso de Mupirocina intranasal desde la noche preoperatoria hasta 5 días postoperatorio c/12 hrs. - Sólo en pacientes con alergia grave a betalactámicos o en situación de reintervención por sangramiento está indicado el uso de Vancomicina 1 g ev c/12 horas por 48 horas, utilizar asociado a gentamicina para cubrir gram negativos.



Tipo cirugía Indicaciones Esquema Cirugía torácica no cardíaca

Lobectomía o neumectomía Cefazolina 1-2 gramos ev cada 6 horas por 24 horas. Alternativa en alérgicos Clindamicina 600 mg ev

Vascular Cirugía arterial que involucra la aorta abdominal o una incisión inguinal. Amputación de isquemia de extremidad inferior -En los casos previos con estadía menor a 7 días y sin prótesis -Con estadía preoperatoria mayor a 7 días y/o prótesis

Cefazolina 1-2 gramos ev. Alternativa en alérgicos Clindamicina 600 mg ev Vancomicina 1 g ev por una dosis

Neurocirugía

Craneotomía, derivación ventricular interna, cirugía de columna con material de osteosíntesis.

Cefazolina 1-2 gramos ev. La dosis de cefazolina puede repetirse si la cirugía se prolonga más de 3 horas o si hay perdidas excesivas de sangre (>1500 ml).

Ortopédica Cirugía limpia con implantes Fijación interna de fracturas prolongadas Instalación de prótesis en cualquier sitio articular. Reparación funcional sin implante o prótesis.

Cefazolina 1 gr. ev. por 3 dosis Alternativa en alérgicos Clindamicina 600 mg ev

4.7.2.- Cirugía Limpia-contaminada: Tipo cirugía Indicaciones Esquema Cabeza y cuello

Cirugía extensa y prolongada (vaciamientos ganglionares, colgajos extensos, etc.). Cirugía con entrada del tracto aerodigestivo superior (boca, fosas nasales, faringe, laringe, esófago): Con compromiso mucosa bucal o faríngea

Cefazolina 1 gr ev + PNC 2 a 4 millones ev o. Cefazolina + Metronidazol 500 mg. cada 8 horas por 24 horas

Cirugía plástica Cirugía extensa y prolongada (secuelas de quemaduras, movilización de colgajos, abdominoplastía, mamoplastía)

Cefazolina 1 g EV. Repetir si la cirugía se prolonga más de 3 horas.

Cirugía de mama Cirugía con incisión en Región Axilar. Pacientes con quimioterapia recientes (menos de 60 días). Pacientes Diabéticas. Reconstrucción mamaria, con tejido antólogo y/o prótesis. Lesiones ulceradas.

Cefazolina 1 g EV preoperatorio, repetir si la cirugía se prolonga más de 3 horas.



Tipo cirugía Indicaciones Esquema Cirugía Gastroduodenal

Úlcera duodenal con obstrucción Úlcera gástrica péptica Cáncer Gástrico Hemorragia Obstrucción Gastrostomia endoscópica de alto riesgo (obesidad, obstrucción, etc)

Cefazolina 1 gr ev por una vez Alternativa Cefuroxima 1,5 g ev em uma dosis En caso alergia: gentamicina 80 mg ev más Cloranfenicol 1 gr. ev por una dosis

Cirugía Biliar por laparotomía

Todos los casos (alto y bajo riesgo) En colangitis se requiere tratamiento

Cefazolina 1-2 gr. ev En caso alergia: gentamicina 80 mg ev y cada 8 horas por 3 dosis totales

Cirugía Biliar por laparoscopía

Solo en alto riesgo (>70 años, colecistitis aguda, ictericia obstructiva) En colangitis se requiere tratamiento no profilaxis

Cefazolina 1-2 gramos ev.

Herniorrafia Con malla Cefazolina 1-2 gramos ev. Cirugía Colorectal o de intestinodelgado

Todos los casos Indispensable preparación adecuada

Cirugía electiva: Metronidazol 500 mg c/8 oral desde 36 horas antes de la Cirugía. Preop. Inmediato en cirugía electiva o de urgencia: Cefazolina 1-2 gramos ev. + Metronidazol 500 mg ev Metronidazol 500 mg ev Alternativa: Metronidazol 500 mg ev + Gentamicina 1,5 mg/Kg ev cada 8 horas por 2 a 3 dosis. Mantener por 48 horas en caso de escurrimiento intraoperatorio

Colangiografía por Sonda T

Sólo en pacientes alto riesgo (> 65 años e inmunodeprimidos)

Cefazolina 1-2 gramos ev.

Colangiopancreatografía endoscópica retrógrada

Sólo en condiciones donde no es posible asegurar el drenaje adecuado de la vía biliar como: patología tumoral de la vía biliar o cáncer periampular, coledocolitiasis múltiple, algunas condiciones obstructivas no neoplásicas y en pacientes inmunosuprimidos.

Cefazolina 1-2 gramos ev. Alternativa: Ciprofloxacino 500-750 mg via oral 2 horas previo al procedimiento.

Apendicetomía Apendicitis flegmonosa Cefazolina 1 gr. ev preoperatorio, luego c/6 hrs. por 3 dosis. En caso de alergia: Metronidazol 500 mg ev + Gentamicina 1,5 mg/Kg ev cada 8 horas por 2 a 3 dosis.

Cesárea Todas Cefazolina 1 g inmediatamente después de ligar el cordón umbilical - Monodosis Em alergia a β-lactámicos: Quemicetina o Clindamicina 600 mg + Gentamicina 80 mg/kg dosis única

Histerectomía Histerectomía vaginal o abdominal Cefazolina 1 gr. ev + Metronidazol 500 mg ev dosis única



Tipo cirugía Indicaciones Esquema Intervención urológica

De cualquier tipo con bacteriuria. Incontinencia urinaria Vasectomía Orquiectomía uni o bilateral Ureterostomía cutánea Pielolitotomía - Ureterolitotomía Nefrectomía por atrofia renal Cistostomía Ureteroplastía Adenomectomía por RTU Epididimectomía Transplante renal Nefrectomía donante Tx. LALA con apendicectomía Penectomía Uretrotomía Interna RTU Cáncer vesical Prostatectomía radical Procedimientos ureterales: litotricia, etc. Cirugía renal percutánea

Profilaxis según último antibiograma disponible. Cefazolina 1 gr. ev. 30 a 60 minutos previo a la cirugía. En casos de cirugías mayores de 3 horas usar una nueva dosis intraoperatoria. En cirugías prolongadas usar 1 gr. c/ 8 horas por 24 horas. Como alternativa en alergia a β-lactámicos : Cíprofloxacino 500 mg. c/ 12 hrs o Gentamicina 80 mg.



5.- SERVICIO DE CIRUGIA INFANTIL, ORTOPEDIA Y TRAUMATOLOGIA INFANTIL Las normas internas para uso de antibióticos en nuestro servicio son esquemas avalados por la práctica clínica y la evidencia científica. 5.1.- USO DE ANTIBIOTICOS PROFILACTICOS Y TERAPÉUTICOS EN PATOLOGIAS FRECUENTES

PATOLOGIA ESQUEMA • Apendicitis

Aguda flegmonosa

• Metronidazol: 30 mg/kg/día ev. c/8 hrs. Primera dosis preoperatorio se mantiene por 24 hrs.

• Amikacina: 15 mg/kg/día ev. c/ 12 a 24 horas • Cirugía

Colorectal con colon preparado

• Metronidazol: 30 mg/kg/día ev. c/8 hrs. por 24 hrs. • Amikacina: 15 mg/kg/día ev. c/ 12 a 24 horas.

Si la cirugía es sucia o colon mal preparado- se mantienen antibióticos con fines de tratamiento.

• Cirugía Gastroduodenal

• Ampicilina: 100 mg/kg/día ev. c/6 hrs. por 24 hrs. • Amikacina: 15 mg/kg/día ev. c/12 a 24 horas

• Cirugía Hidatidosis Hepática

• Ampicilina: 100 mg/kg/día ev. c/6 hrs. por 24 hrs. • Amikacina: 15 mg/kg/día ev. c/12 a 24 hrs. por 24 hrs.

Si presenta fístula biliar, se instala drenaje y se mantienen los antibióticos con fines de tratamiento.

• Cirugía Urológica

• Cirugía genital con colgajo

• Cefotaxima: 100 mg/kg/día ev. c/8 hrs. por 48 hrs. ∗ Si el urocultivo intraoperatorio es (+), se mantiene tratamiento antibiótico y se adecua

según antibiograma. ∗ Si el paciente se mantiene con sondas uretrales, ureterales o vesicales, se mantiene con

tratamiento antibiótico mientras esté con ellas. Se cambia al tercer día a tratamiento antibiótico oral si las condiciones lo permiten. Cefadroxilo 50 mg/kg/día.

∗ Cefazolina 100 mg/Kg/día c/8 hrs por 48 a 72 horas.

• Peritonitis Apendicular

• Metronidazol: 30 mg/kg/día ev. c/48 hrs. Iniciar primera dosis preoperatorio se mantiene por 7 día. Cambio oral lo antes posible

• Amikacina: 15 mg/kg/día ev, c/8 hrs. c/12-24 horas. Iniciar primera dosis preoperatoria. Se mantiene por 7 días.

• Ampicilina: 100 mg/kg/día ev. c/6 hrs. Iniciar primera dosis pre-operatoria. Cambio oral (50 mg/kg/día). Se mantiene por 7 días.

• Cirugía Colorectal de urgencia o colon mal preparado

• Metronidazol: 30 mg/kg/día ev. c/48 hrs. Iniciar primera dosis preoperatorio se mantiene por 7 día. Cambio oral lo antes posible

• Amikacina: 15 mg/kg/día ev, c/8 hrs. c/12-24 horas. Iniciar primera dosis preoperatoria. Se mantiene por 7 días.

• Ampicilina: 100 mg/kg/día ev. c/6 hrs.. Iniciar primera dosis pre-operatoria. Cambio oral (50 mg/kg/día). Se mantiene por 7 días.

• Abscesos Residuales

Esquema Segunda línea: • Clindamicina: 30 mg/kg/día ev. c/8 hrs. • Cefotaxima: 100 mg/kg/día ev. c/8 hrs. por 7-10 días

• Colecistitis Aguda

• Amikacina: 15 mg/kg/día ev. c/12-24 horas. • Ampicilina: 100 mg/kg/día ev. c/6 hrs.



En terapia secuencial de vía endovenosa a oral se indicará: Amoxicilina/Acido Clavulánico 45 mg/kg/día vía oral para completar tratamiento. Válido especialmente para Cirugía Abdominal y Apendicitis 5.2.- PROFILAXIS ANTIBIÓTICA EN ORTOPEDIA INFANTIL: Se indica en cirugía mayor, especialmente de cadera:

- Cefazolina 100 mg/Kg/día c/8 horas por 1 a tres dosis. El uso de Vancomicina solo esta indicado en caso de alergia severa a betalactámicos. 5.3.- USO ANTIBIÓTICOS EN CIRUGIA DE FISURADOS FUNDAMENTO: Se plantea como necesaria la profilaxis en este tipo de cirugía porque:

• La disección de las áreas comprometidas significa crear grandes zonas cruentas • Estas zonas quedan expuestas durante toda la cirugía a la flora microbiana habitual de fosas nasales, cavidad

bucal y faringe • Es esencial evitar la complicación “infección” para asegurar una adecuada cicatrización que evite

intervenciones • Esto último significa menor sufrimiento al paciente y menores gastos al Servicio de Salud.

ESQUEMA: Considerando la flora bacteriana habitual sugerimos Amoxicilina / Ácido clavulánico en dosis de 45 mg/kg/día, repartidos en 2 dosis cada 12 hrs., la primera, al comenzar la cirugía. En especial, para cuando se efectúen injertos óseos sugerimos Cefazolina, en dosis de 100 mg/kg/día por su especial concentración en el hueso, con la primera dosis preoperatoria. 5.4.- MANEJO ANTIBIÓTICO EN PACIENTE QUEMADO 1) No se realiza profilaxis antibiótica para los ingresos 2) Profilaxis para los injertos: Cefazolina 50 mg/kg/día, primera dosis EV pre-op. 3) Escarlatina quirúrgica: a) 1ª línea: Cloxacilina + Penicilina

b) 2ª línea: Clindamicina 4) Staphilococcus aureus: a) 1ª línea: Cloxacilina

b) 2ª línea: Vancomicina, según sensibilidad 5) Streptococcus pyogenes: a) 1ª línea: Penicilina

b) 2ª línea: Cefalosporina de 1ª generación 6) Pseudomona aeruginosa: a) 1ª línea: Amikacina o Gentamicina

b) 2ª línea: Ceftazidima c) según sensibilidad

7) Klebsiella sp : a) 1ª línea : Amikacina o Gentamicina Proteus sp. b) 2ª línea: Cefotaxima

b) según sensibilidad 8) Germen desconocido: a) 1ª línea: Cloxacilina + Penicilina y Amikacina

b) 2ª línea: Cloxacilina + Clindamicina y Cefotaxima



6.- NORMAS DE USO DE ANTIBIOTICOS EN PEDIATRIA 6.1.- USO PROFILÁCTICO DE ANTIBIÓTICOS EN PATÓGENOS BACTERIANOS 6.1.1 Haemophilus influenzae tipo b (Hib) Objetivo: prevenir las infecciones invasivas en contactos estrechos al caso índice en menos de 1 año y aquellos de 12 a 47 meses no completamente inmunizados. En Chile sin las tres dosis del 1er año. Práctica cada vez más infrecuente, por la disminución de la enfermedad en el país. Bien establecido para contactos del hogar, incluyendo adultos, que tengan niños menores de 5 años no inmunizados o con calendario incompleto. Esquema: Rifampicina: Dosis 20 mg/kg/ máximo 600 mg una vez/día por 4 días. En menores de un mes 10 mg/kg. En adultos 600 mg/día, alternativa Ciprofloxacino oral en niños 250 mg y adultos 500 mg por una vez. 6.1.2 Neisseria meningitidis (meningococo) Objetivo: evitar infección meningocócica en personas expuestas susceptibles.

a) Son de alto riesgo: - Contactos del hogar, particularmente niños menores de 5 años. - Contacto estrecho escolar o institución cerrada (internado), los 7 días previos al diagnóstico del caso

índice. - Exposición directa a secreciones del caso índice (besos, cepillos de dientes, utensilios de alimentación). - Resucitación boca a boca. Contacto desprotegido frente a intubación endotraqueal 7 días previos a

establecimiento de la enfermedad. - Contacto estrecho doméstico (comidas - alojamiento).

b) No está recomendada en otras situaciones de bajo riesgo. Contactos casuales, indirectos a nivel escolar por ejemplo o personal médico sin exposición directa a las secreciones del paciente.

c) En epidemias; la quimioprofilaxis para otras personas que no sean de alto riesgo debe realizarse de común acuerdo con epidemiólogos e infectólogos del área de salud correspondiente o al comité de vigilancia epidemiológica de nuestra región.

Esquema: a) Rifampicina: Niños: 10 mg/kg/ (máximo 600 mg), cada 12 horas v. oral, por dos días.

Adultos: 600 mg/dosis c/12 horas por 2 días. - Alternativa: 20 mg/kg (máximo 600 mg) v. oral cada 24 horas por 4 días. - En menor de un mes 5 mg/kg vía oral cada 12 horas por 2 días (siempre que no presente

hiperbilirrubinemia). - En embarazadas se recomienda ceftriaxona 250 mg IM por 1 vez, ó Celfriazona 50 mg/kg 1 vez EV.

b) Ciprofloxacino en mayores de 8 años y adultos, 500 mg/ V.O. en una dosis. En niños menores de 8 años: 30 mg/kg/dosis única.



6.1.3 Bordetella pertussis (Coqueluche)

Objetivo: Evitar los casos secundarios de tos convulsiva en los contactos de alto riesgo. En nuestro medio se considera de alto riesgo, a los menores de seis meses, particularmente aquellos con calendario incompleto de vacunas. Los casos índices bajo tratamiento requieren aislamiento por cinco días. Esquema: Inmunización: Los contactos menores de 6 años no vacunados con menos de 4 dosis de vacuna DPT, deben iniciar o completar el esquema vigente. Si en el grupo familiar del caso índice hay menores de 6 años con calendario incompleto, no deben asistir a escuela o jardín infantil o sala cuna hasta que los casos y contactos hayan recibido antibiótico cinco días por lo menos. Quimioprofilaxis: Sin perjuicio de las vacunas colocadas, se administran Eritromicina 40 a 50 mg/kg/día, cada 6 horas por 7 días. Ocasionalmente debe efectuarse la quimioprofilaxis en recintos cerrados (salas lactantes u otros establecimientos similares). Se considera a los adultos portadores del agente y fuente de infección para los niños, por lo tanto el esquema debe incluirlos, en contactos del hogar. 6.1.4 Estreptococo Grupo B (Streptococcus agalactiae) Objetivo: Prevenir la infección neonatal precoz.

- Idealmente debiera efectuarse cultivo de muestra vaginal y rectal en busca de EGB a las 35 – 37 semanas de gestación a todas las embarazadas.

- Embarazada de alto riesgo; lactante previo con enfermedad invasiva por EGB intraparto. Bacteriuria por EGB en este embarazo (gestación menor de 37 semanas, RPM mayor de 18 horas ó Tº intraparto > 38,1ºC). En estas situaciones, está indicada la profilaxis para evitar transmisión al recién nacido.

Esquema: Penicilina G 5 millones de unidades EV por 1 vez al inicio, luego 2,5 millones cada 4 horas hasta el parto. - Alternativa: Ampicilina EV en 2 gramos por 1 vez, luego 1 gramo cada 4 hasta el parto. - En alergias a penicilina puede usarse Cefazolina o Clindamicina.

El uso rutinario de antimicrobianos en los recién nacidos asintomáticos de madres con quimioprofilaxis intraparto no está indicado. Deben monitorizarse en forma estricta. 6.1.5 Estreptococo Grupo A (Streptococcus pyogenes) Objetivo: Prevención de recurrencias de fiebre reumática. Esquema:

- Penicilina G Benzatina : 1.200.000 U IM cada 4 semanas, ó - Penicilina V: 250 mg 2 veces/día oral. En la práctica poco utilizada. - En alérgicas a Penicilina: Eritromicina 250 mg 2 veces día oral.

Duración de profilaxis:

- Enfermos sin carditis: 5 años (hasta 21) - Enfermos con carditis pero sin enfermedad valvular residual: 10 años o hasta adultez. - Enfermos con carditis y enfermedad valvular residual: 10 años después del último episodio y al menos hasta

los 40 años. A veces por toda la vida. El uso rutinario de antimicrobianos en contactos de pacientes con faringitis estreptocócica, escarlatina o infección de piel y tejidos blandos, no está indicado. Se emplean en situaciones específicas: contacto muy estrecho, enfermedad reumática con profilaxis mayor de 15 días, brotes epidémicos, gravedad de caso índice (fasceítis necrotizante).



6.1.6 Neisseria gonorrhoeae (gonococo) Objetivo: Prevenir infección urogenital o neonatal en personas expuestas. Esquema:

- Ungüento oftálmico de Eritromicina al 0.5% aplicado en cada ojo. Debe ser precoz. No previene oftalmia por chlamydia.

- RN de madres con gonorrea junto a la profilaxis de oftalmia, los RN deben recibir una sola dosis de Ceftriaxona, 125 mg IM ó IV. En prematuros ajustar dosis a 25-50 mg/kg, no exceder 125 mg. Alternativa: Cefotaxima 100 mg/kg/ IM ó IV.

- Niños y adolescentes con exposición sexual a pacientes con diagnóstico conocido de gonorrea. Deben ser examinados, cultivados y tratados igual que si tuvieran gonorrea (Ceftriaxona 125 mg IM)

6.1.7 Treponema pallidum (Sífilis) Objetivo: Prevenir sífilis en personas expuestas. RN con posible sífilis congénita. Madre con diagnóstico clínico o serológico (VDRL positivo) con tratamiento insuficiente o sin tratamiento. Esquema: Penicilina G 100.000 U por kg/día cada 6-8 horas, por 10 días. 6.1.8 Mycobacterium tuberculosis (TBC) Objetivo: Prevenir enfermedad en RN hijos de madre bacilífera o niños contactos de enfermos bacilíferos. Esquema: Descartar enfermedad y evaluar condición de infección con PPD 2U y radiografía de tórax. Isoniacida (HIN) y 5 mg/kg/día 3 a 6 meses. Control radiológico y PPD 2U a los 3 meses. 6.2.- PREVENCION DE INFECCIONES EN NIÑOS ASPLENICOS ASPLENIA: Condición determinada por ausencia congénita del bazo, extirpación quirúrgica o enfermedades como drepanocitosis. Se asocia a mayor riesgo de bacteremia fulminante, especialmente en niños pequeños. Agentes más comunes: Streptococcus pneumonie es el más frecuente. También lo son Neisseria meningitidis, Haemophilus influenzae tipo b y Escherichia coli. Menos frecuentes: Streptococcus sp., Staphulococcus aureus y otros bacilos Gram (-) como Klebsiella, Salmonella y Pseudomona. Esquemas: 1) Inmunización active con vacunas:

- Vacuna Neumocócica: Conjugada heptavalente para niños menores de 2 años, completar esquema con vacuna 23 Valente.

- Para niños mayores de 2 años, se puede efectuar esquema mixto con 2 dosis de vacuna conjugada seguidos de vacuna 23 Valente. En niños mayores vacuna 23 Valente. En esplenectomía electiva, administrar al menos dos semanas antes. Se recomienda repetir la dosis a los 4 años de la primera administración.

- Vacuna cuatrivalente antimeningocócica conjugada, práctica en EEUU sobre los 2 años de edad. - Vacuna conjugada anti hemophilus influenzae b de acuerdo a calendario para edad.



2) Profilaxis antibiótica

a) Penicilina Benzatina: 600.000 a 1.200.000 U IM cada 30 días. b) Amoxicilina 20 mg/kg/día vo c) Trimetoprim - Sulfametoxazol (4/20 mg/kg/día) en menores de 5 años

En general esta práctica es más recomendada en pacientes con drepanocitosis, talasemia o condiciones similares, que en esplenectomía post traumática. No se sabe cual sería la duración de esta medida. Debiera ser para toda la vida en pacientes con riesgo elevado. En el resto de condiciones sólo está indicado el uso de vacunas antineumocócicas. Las enfermedades febriles, especialmente en niños no sujetos a profilaxis obligan a conducta agresiva con uso de antibióticos eficaces (vg: cefalosporinas de 3era. generación) previa toma de cultivos. 6.3. PROFILAXIS DE ALGUNAS ENFERMEDADES VIRALES 6.3.1 Prevención de Varicela Objetivo: Prevenir la enfermedad en contactos de alto riesgo:

- Embarazada susceptible contacto de varicela, particularmente el primer trimestre. - RN Pretérmino < de 28 semanas de EG. - RN hijo de madre con varicela clínica 5 días antes y 2 días después de inicio del parto. - Pacientes con neoplasias (leucemias, linfomas). - Pacientes con tratamiento inmunosupresor o corticoidal (Prednisona > 2 mg/kg/día) - Pacientes portadores de inmunodeficiencias. - Pacientes en tratamiento con ácido acetilsalicílico.

Esquema: • Gammaglobulina anti-varicela-zoster de uso endovenoso. 1 cc/kg en una vez, con máximo de 20 cc. • En nuestro medio debe solicitarse al Servicio de Urgencia (SAMU) de Posta Central de Santiago (Arsenal

Crítico-Crítico) (Fono: 2- 6349768). • Debe ser colocada idealmente antes de las 72 horas del contacto o post-parto en RN. En su carencia, puede

utilizarse Gammaglobulina estándar de uso intramuscular, 0,6 a 1,2 ml/kg, con máximo de 12 ml (6 ampollas de 2 ml).

• No está comprobada la utilidad de aciclovir oral profiláctico. • En pacientes HIV puede asociarse, cubriendo el período máximo de incubación (21 días). • En el caso de RN deben quedar en observación de varicela congénita hasta 28 días post aplicación de GGEV.

6.3.2 Hepatitis B Objetivo: Prevenir enfermedad en RN hiño de madre HBsAg (+) o paciente de riesgo (accidente, abuso, sexual). Esquema:

• Gammaglobulina inmune anti Hepatitis B 0.5 ml IM en sitio diferente a la vacuna antihepatitis B (1ª dosis). Antes de las 12 horas de vida.

6.3.3 Virus Respiratorio Sincicial

Palivizumab (anticuerpo monoclonal recombinante de origen murino, de uso IM) para prevenir infección por VRS en menores de 2 años de alto riesgo en épocas invernales:

- Pretérmino. - Displasia broncopulmonar - Cardiopatía congénita cianótica y no cianótica.



6.3.4 VIH (SIDA) Objetivo: Prevenir la transmisión vertical de la infección por VIH/SIDA durante el embarazo, parto y puerperio. El protocolo de prevención de transmisión vertical consiste en:

- Pesquisa de infección VIH en la embarazada en el control de embarazo mediante test de ELISA VIH con consentimiento informado

- Inicio de triterapia a las embarazadas positivas en la semana 24 de edad gestacional, esquema según condición de la madre.

- Si no se realizó test ELISA VIH en el embarazo ofrecer test rápido al momento del parto. - Administración de Zidovudina* (AZT) endovenoso desde 4 horas antes previo al parto vía cesárea

programada. Dosis: 2 mg/kg primera hora, luego 1 mg/kg/hora hasta el parto. - Uso de AZT* en el RN por 6 semanas, 2 mg/kg. Vía oral 4 veces/día desde las 8-12 horas post-parto en

los de término. Estas medidas han logrado una notable reducción de la transmisión vertical.

*Esquema: sólo o asociado según si cumplió protocolo durante el embarazo y parto 7.- RECOMENDACIONES DE TRATAMIENTO ANTIBIOTICO EN PATOLOGÍAS SELECCIONADAS DEL SERVICIO DE PEDIATRÍA

7.1 MENINGITIS PURULENTA 7.1.1 Recién Nacidos y lactante menor de 3 meses. Tratamiento inicial: Ampicilina más Ceftriaxona o Cefotaxima EV (en menor de 2.000 gramos). Tratamiento según agente: Streptococcus agalactia (EGB): - Ampicilina en menor de 7 días: 200-300 mg/kg/día IV, en 3 dosis. - Mayor de 7 días: Ampicilina 300-400 mg/kg/día IV, en 4-6 dosis, por 14 a 21 días. - Más Amikacina: 14 mg/kg/día IV, en una dosis, por 10 días. Listeria monocytogenes: - Ampicilina 400 mg/kg/día en esquema similar con duración de 21 días. Para otros agentes Gram (-), el tratamiento debe ser mínimo 21 días, algunos recomiendan PL de control para confirmar erradicación. 7.1.2 Lactante mayor de 3 meses y niños mayores. Tratamiento Empírico Inicial: - Ceftriaxona 100 mg/kg/día EV, en 2 dosis o - Cefotaxima 200 mg/kg/día EV, en 4 dosis. Duración del tratamiento - 7a 10 días para Haemophilus influenzae o Neisseria meningitidis - 10 a 14 días para Streptococcus pneumoniae



En ambientes de Streptococcus pneumoniae resistente a Cefalosporina (mayor de 2 ug/ml de CIM), se asocia Vancomicina, la que se mantiene si laboratorio demuestra esta condición. Ocasionalmente se asocia Rifampicina. En nuestro medio, sólo se ha detectado cepas de Streptococcus pneumoniae resistente a PNC. Se señala que con resistencia comprobada > 4%, el esquema inicial debe incluir Vancomicina. 7.2 ABSCESO CEREBRAL - Ceftriaxona: 100 a 150 mg/kg/día EV (cada 12 horas) más Metronidazol: 30 mg/kg/día (cada 8 horas) más

Cloxacilina: 100-150 mg/kg/día EV (cada 4 horas). Clindamicina no penetra adecuadamente al LCR - En infecciones con alta sospecha de Staphilococcus aureus, puede adicionarse Rifampicina oral: 10 mg/kg/día (2

dosis). Duración del tratamiento: 15-21 días EV y posterior cambio a terapia oral según evolución clínica y cuadro de base.

7.3 INFECCIONES ESTAFILOCOCICAS GRAVES O INVASORAS Para agente meticilinosensible: Cloxacilina 100-150 mg/kg/día, EV Duración del tratamiento - Dependerá de la localización y evolución clínica, radiológica y parámetros de laboratorio (hemograma, PCR), y

fluctuará entre 21 días a 8 sem (BRN, infecciones osteoarticulares, endocarditis). Para Staphilococcus aureus meticilino resistente (MRSA) o Coagulasa (-) - Alta sospecha: Cloxacilina 100-150 mg/kg/día (cada 4 horas) más Rifampicina 10 mg/kg/día - Infección comprobada: Vancomicina 30-40 mg/kg/día (cada 6 horas) o Linezolid < 12 años 10 mg/kg, > 12 años 600

mg/día (vía oral 3 veces al día, vía venosa 2 veces al día). - Duración del tratamiento: igual que punto anterior 7.4 INFECCIONES DEL TRACTO URINARIO 7.4.1 Pielonefritis Aguda a) Cefotaxima 100 mg/kg/día (c/8 horas), o Ceftriaxona 100 mg/kg c/12 o 24 horas, o Amikacina 15 mg/kg/día, cada 24 horas por 3 a 5 días según evolución y luego tratamiento oral, hasta completar 10 días.

Tratamiento secuencial: Cefalosporina oral (preferentemente Cefadroxilo: 50 mg/kg/día (en 2 dosis), idealmente según antibiograma para evaluar la resistencia local a agentes bacterianos, ó

b) Cefalosporina oral; 1ra, 2 a ó 3ra generación por 10 días. 7.4.2 ITU Baja - Nitrofurantoína: 5-7 mg/kg/día en 3 dosis, por 7 días, ó - Cefadroxilo: 50 mg/kg/día, en 2 dosis, por 7 días.



7.5 INFECCIONES RESPIRATORIAS BAJAS 7.5.1 Neumonía en RN: 1ra. Línea: Ampicilina EV 100 mg/kg/día fraccionada 6 horas más Amikacin EV 15 mg/kg/día (c/12 hr). 7.5.2 Neumonía de Lactante mayor de 1 mes - Ampicilina EV: 150-200 mg/kg/día, en 4 dosis - Terapia secuencial: según evolución, a partir de las 48 a 72 hrs.de tratamiento se podrá efectuar el cambio a vía oral,

continuando con Amoxicilina: 80-100 mg/kg/día hasta completar 7 a 10 días de terapia. 7.5.3 Neumonia del preescolar y escolar Ambulatoria: Amoxicilina 80-100 mg/kg/día, cada 8 horas, por 7 días. Hospitalizado: Penicilina Sódica: 200 a 300.000 U/kg/día EV en 4 dosis por 7 días. Según evaluación, podrá efectuarse terapia secuencial a Amoxicilina oral: 80-100 mg/kg/día a partir del 2 o o 3 er. día hasta completar los 7 días. 7.5.4 Neumonia supurada y evolución tórpida 7.5.4.1 Niño menor de 5 años

1. Cefotaxima EV: 100-150 mg/kg/día (cada 8 horas), asociar Cloxacilina EV: 100 mg/kg/día (cada 4-6 horas) si existe sospecha clínica o radiológica de infección estafilocócica.

Duración del tratamiento y selección posterior de antimicrobiano según etiología (14-21 días). 2. Alternativa: Cefuroxima EV: 100 mg/kg/día en 3 dosis Duración del tratamiento y terapia secuencial a vía oral con cefalosporina de 2a. generación o combinación de Amoxicilina/Acido Clavulánico según evolución y condición clínica, o antibioterapia especifica según agente identificado.

7.5.4.2 Niño mayor de 5 años 1. Penicilina: 300.000 U/kg/día EV (cada 6 horas) más Cloxacilina: 100 mg/kg/día (cada 4 horas), si hay

sospecha de infección por Staphylococcus, ó 2. Cefuroxima EV: 100 mg/kg/día en 3 dosis.

La emergencia de neumococo resistente a penicilina requieren el uso de Cefalosporinas 3ra generación. En caso de resistencia a Cefalosporina, se aumenta la dosis de estos agentes y excepcionalmente se usa Vancomicina ya que se ha determinado un corte de 8 ug/mg de CIM en este parénquima. Generalmente la evolución tórpida está dada por un derrame o colección no drenada. Duración del tratamiento y terapia secuencial a vía oral con cefalosporina de 2a. generación o combinación de Amoxicilina / Acido Clavulánico según evolución y condición clínica, o según agente etiológico.

7.5.5 Neumonia atípica 7.5.5.1 Lactante menor de 3 meses:

Descartar como etiología Chlamydia trachomatis. Tratamiento empírico: macrólidos: Eritromicina oral 50 mg/kg/día por 10 días, ó Claritromicina oral 15 mg/kg/día en 2 dosis por 10 días.

7.5.5.2 Lactante mayor de 3 meses, preescolar y escolar: Descartar Mycoplasma pneumoniae y Chlamydia pneumoniae Macrólidos: Eritromicina : 50 mg/kg/día en 3 dosis por 10 días o Claritromicina 15 mg/kg/día por 10-14 días



7.5.6 Coqueluche Tratamiento de elección: - Eritromicina : 50 mg/kg/día en 2 dosis por 14 días, ó Claritromicina : 15 mg/kg/día en 2 dosis por 7 días 7.6 INFECCIONES PROFUNDAS DE TEJIDOS BLANDOS 7.6.1 Celulitis periorbitaria y orbitaria Niño menor de 5 años: - Con foco anteseptal: Penicilina: 200-300 mil U/kg/día (cada 6 horas) más Cloxacilina 100-150 mg/kg/día (cada 6

horas) por 10 a 15 días - Sin foco anteseptal (probable bacteremia): Cefuroxima: 100 mg/kg/día EV (cada 8 horas) ó Cloxacilina: 100

mg/kg/día c/6 horas más Cefotaxima: 100 mg/kg/día cada 8 horas. Duración del tratamiento y eventual cambio a vía oral según evolución, condición médica ó complicaciones quirúrgicas. Niño mayor de 5 años - Penicilina EV: 200-300 mil U/kg/día (cada 6 horas) más Cloxacilina: 100-150 mg/kg/día (cada 6 horas, ó Cefuroxima

EV 100 mg/kg/día cada 8 horas. - Duración del tratamiento y eventual cambio a vía oral según evolución y/o hallazgos etiológico. 7.6.2 Celulitis facial a) Niño menor de 5 años, sin foco visible - Cefuroxima: 100-150 mg/kg/día (cada 8 horas) - Duración del tratamiento y eventual cambio a vía oral según evolución - Alternativa: Cloxacilina: 100 mg/kg/día (cada 6 horas) más Cefotaxima 100 mg/kg/día (cada 8 horas) - Duración del tratamiento: 10 a 14 días

b) Niño mayor de 5 años, sin foco visible - Penicilina: 200 mil U/kg/día EV (cada 6 horas) más Cloxacilina: 100 mg/kg/días EV (cada horas). - Alternativa: Cefuroxima: 100 mg/kg/día EV (cada 8 horas). - Duración del tratamiento: 10 a 14 días 7.6.3 Fasceitis Necrotizante o Síndrome de Shock Tóxico estreptocócico o estafilocócico: 1. Penicilina Sódica: 300 mil U/kg/día (cada 6 horas) más Cloxacilina: 100 mg/kg/día (cada 6 horas). 2. En determinados casos se usará Clindamicina 30 mg/kg/día, cada 6-8 horas, asociada a Betalactámicos. 7.7 SINDROME DIARREICO AGUDO 7.7.1 Shigellosis: La emergencia de cepas multiresistentes en nuestro medio, obliga a revisar la sensibilidad de este agente antes de indicar el tratamiento antibiótico. A partir del 2002 las cepas de pacientes hospitalizados en nuestro medio, fueron resistentes a los agentes indicados previamente (Ampicilina, Sulfa Trimetropín y Cloranfenicol), por tanto se indica: - Ciprofloxacino oral: 20-30 mg/kg/día en 2 dosis, por 5 días.



- En pacientes grave, vía oral limitada Ceftriaxona 100 mg/kg/día EV (2 dosis) o Ciprofloxacino 20 mg/kg/ EV por 5 días, cambio a Ciprofloxacino según evolución a las 24-48 hrs.

Observación: El tratamiento con Ciprofloxacino debe ser reservado para uso intrahospitalario y en condiciones clínicas que lo ameriten. 7.7.2 Campylobacterosis: Eritromicina: 50 mg/kg/día en 4 dosis por 7 días, o Claritromicina 15 mg/kg/día, en 2 dosis por 7 días, en paciente desnutrido o comprometido inmunologicamente. 7.7.3 Fiebre Tifoídea: - Primera elección: Cloranfenicol 50 mg/día (cada 8 horas) por 14 días. Disminuir la dosis en la 2 a. semana. - No se describen cepas resistentes a cloranfenicol en Chile. Por excepción se indica Cefalosporina de 3a generación o

Quinolonas.

8.- PROTOCOLO MANEJO DE INFECCIONES EN PACIENTE PEDIATRICO ONCOLÓGICO. Todo paciente en quimioterapia, con 2 registros de temperatura axilar > 38°C ó un registro > 38,5°C:

• Examen físico completo, tomar Hemograma y PCR. Si RAN > 500 y PCR < 60: control clínico periódico, profilaxis infecciones. Si RAN > 500 y PCR > 60: exámenes destinados a identificar foco infeccioso y tratamiento según localización y cultivos. Si RAN < 500 y PCR < 60:

- Paciente con buen estado general y examen físico normal: control clínico periódico (implica permanencia del paciente en la ciudad), profilaxis infecciones e inicio G-CSF (5 mcg/kg) (según protocolos PINDA).

- Paciente con compromiso estado general: hospitalización, toma de cultivos, inicio ATB, PCR seriada e inicio de G-CSF (5 mcg/kg) (según protocolos PINDA).

Si RAN < 500 y PCR > 60: - Hospitalización - Toma de cultivos (hemocultivos, urocultivo, frotis faríngeo, coprocultivo y otros) y Rx tórax. - Inicio Cloxacilina (100-150 mg/kg/día) + Cefotaxima (100 mg/kg/día), asociar Metronidazol (20-30

mg/kg/día) en presencia de mucositis severa o lesiones perianales. - Fluconazol VO (3 mg/kg/día) en caso de candidiasis orofaríngea. - Inicio G-CSF (5 mcg/kg/sc) (según protocolos PINDA).

Reevaluar a las 48-72 horas: - Afebril, cultivos (-) y PCR en descenso: cambio a ATB oral: Cefuroximo (50 mg/kg/día), Cefprozilo (30

mg/kg/día) o Amoxicilina/Ac. Clavulánico (40 mg/kg/día), hasta completar 7 días o RAN > 500. - Afebril, cultivos (+) y PCR en descenso: continuar con esquema ATB en uso (antibiograma) por tiempo

establecido según germen identificado. Si RAN > 500 evaluar cambio a terapia oral después de 7 días. - Afebril, cultivos (-) y PCR en ascenso: repetir cultivos, evaluar situación clínica, PCR seriada y de acuerdo

con infectólogo eventual cambio ATB. - Febril, cultivos (-) y PCR en descenso: continuar con esquema ATB en uso, evaluación clínica y PCR

seriada, repetir, cultivos. Ajustar terapia según estos. - Febril, cultivos (-) y PCR en ascenso: repetir cultivos, cambio aesquema ATB 2° línea: Vancomicina (40

mg/kg/día) si hay sospecha clínica o riesgo de infección por estafilococo no controlada, + Ceftazidima



(100 mg/kg/día) + Amikacin (15 mg/kg/día). Evaluar asociación Metronidazol (20-30 mg/kg/día) según situación clínica.

- Febril, cultivo (+) y PCR en descenso: evaluación clínica y PCR seriada, evaluar según localización y antibiograma esquema ATB en uso, ampliar espectro o cambiar ATB según germen identificado.

- Febril, cultivo (+) y PCR en ascenso: adecuar esquema ATB según antibiograma o localización, evaluar presencia de colecciones, ampliar espectro ATB contra germen identificado, repetir cultivos, asociar Metronidazol (20-30 mg/kg/día).

Reevaluar a las 48-72 horas: - Afebril, PCR en descenso: completar tiempo establecido, según situación clínica y bacteriológica, con

esquema ATB en uso. - Febril, PCR en descenso: evaluación clínica y PCR seriada. - Febril, PCR en ascenso: repetir cultivos, cultivo o hongos, búsqueda de focos infecciosos no

identificados, colecciones, cambio esquema ATB 3° línea: Vancomicina (40 mg/kg/día) + Imipenem (60-100 mg/kg/día) o Meropenem (60-100 mg/kg/día) + Fluconazol (10 mg/kg/día). Si hay sospecha de candidiasis sistémica Anfotericina-B (1-1,5 mg/kg/día).

Profilaxis Infecciones

- Solo alimentos cocidos recién preparados. - Aseo bucal periódico con cepillado suave y/o colutorios con agua bicarbonatada y Perio-Aid. - Mantener tránsito intestinal periódico, uso lactulosa si es necesario. - Cotrimoxazol 3-5 mg/kg/día, 3 veces por semana, para Pneumocystis jiroveci.

Infecciones nosocomiales por gérmenes resistentes: El uso de antibióticos como Vancomicina, Ceftazidima o asociaciones como Ampicilina-Sulbactan, Cefoperazona-Sulbactan, Amoxicilina-Sulbactan, Imipenem o Meropenem quedará sujeto a situaciones específicas y de común acuerdo entre médico tratante o médico infectólogo. PREVENCION DE INFECCIONES EN EL PACIENTE NEUTROPENICO 1) Disminuir hospitalizaciones innecesarias. 2) Medidas de aislamiento: No se ha demostrado que sean superiores al lavado rutinario de manos.

- Idealmente pieza privada. - Mascarillas para personal y visitas con infección respiratoria alta - Evitar consumo de fruta, verduras crudas, ensaladas, incluso tener flores en la pieza.

3) Uso profiláctico de antibióticos No hay consenso en el uso de ellos. Se ha usado Trimetropim sulfaxozasol con resultados controversiales. Se produciría neutropenia prolongada, reacciones alérgicas y emergencia de bacterias Gram (-) resistentes. Tampoco hay acuerdo respecto a otros antibióticos como quinolonas.

4) Otras medidas en el huésped: - Alimentos cocidos, recién preparados. - Aseo bucal periódico con cepillado suave y/o aseo con agua bicarbonada y Perio-Aid. - Mantener tránsito intestinal periódico, usar lactulosa si es necesarioi. - Minimizar procedimientos invasivos y líneas venosas. - Administrar por una vez vacuna neumocócica. - Vacuna antiinfluenza anualmente. - No utilizar vacunas a virus vivos. - Evitar en lo posible administrar corticoides.



9.- USO DE ANTIBIOTICOS EN ENDOCARDITIS INFECCIOSA: 9.1 PROFILAXIS DE ENDOCARDITIS INFECCIOSA: Nota: En esta revisión se ha disminuido considerablemente la profilaxis de Endocarditis Infecciosa (EI) en pacientes que tienen anormalidades cardíacas y que se someten a procedimientos que producen bacteriemia. Las consideraciones que aquí se exponen no pretenden ser absolutas, y se basan en la experiencia que se ha publicado hasta ahora. Pero se necesita seguir aquiriendo experiencia y hacer incesantemente trabajos para adquirir un conocimiento más definitivo al respecto. 9.1.1 Condiciones de riesgo que requieren profilaxis: 1.-Portadores de válvulas protésicas de cualquier tipo 2.- Antecedentes de Endocarditis infecciosa (EI). 3.- Cardiópatas congénitas cianóticas no resueltas o con cirugía paliativa: a) Cardiopatías congénitas cianóticas no reparadas, incluyendo aquellas en que se ha realizado un shunt o conducto paliativo. b) Defecto congénito completamente reparado con material protésico o dispositivo, colocado ya sea quirúrgicamente o con catéter, durante los primeros 6 meses de la intervención (lo que demora el material colocado en endotelializarse). 4.-Lesión valvular reumática reparada con defecto, o adyacente al sitio de una válvula protésica o un dispositivo protésico. 5.- Pacientes sometidos a transplante cardíaco que desarrolla una valvulopatía. 9.1.2. Profilaxis de EI en procedimientos dentales: Se sabe que la frecuencia de bacteremias sin expresión clínica de origen dental en el día a día son muy frecuentes, especialmente en actos como masticar, lavarse los dientes, o limpiar los espacios interdentarios con seda o hilo dental, lo que ha sido comprobado con hemocultivos. No hay suficientes estudios que prueben que las bacteremias producidas por intervenciones dentales sean de más alto grado, o tengan más duración que las que ocurren en la vida diaria al usar la cavidad oral en actos habituales. Por lo demás, se sabe que la gran mayoría de los pacientes con endocarditis infecciosa no han tenido procedimientos dentales en las dos semanas previas al comienzo de los síntomas. Por otra parte se estima que el uso excesivo o habitual de profilaxis en todos los pacientes que tienen alguna condición que pueda exponerlos a tener una endocarditis infecciosa tiene inconvenientes, por posibilidades de alergia a drogas o creación de resistencia bacteriana. Se aconseja aumentar las facilidades para que la comunidad tenga una dentadura y cavidad bucal limpia y sana como la mejor prevención para una infección endocárdica. De tal manera que se acuerda restringir la profilaxis con antibióticos en procedimientos dentales a pacientes en quienes una endocarditis infecciosa tendría más riesgo vital y más alta mortalidad. De acuerdo con este criterio, se ha restringido la indicación de profilaxis antibiótica para EI en procedimientos dentales a las condiciones indicadas en el punto 9.1.1: La AHA no recomienda profilaxis para otras cardiopatías congénitas o cardiopatías reumáticas.



Procedimientos dentales en los cuales se aconseja profilaxis en la indicaciones listadas más arriba (9.1.1): Todos los procedimientos dentales que incluyen manipulación del tejido gingival o de la región periapical del diente o perforación de la mucosa oral. En los casos indicados, la profilaxis se dirige al grupo de estreptococo viridans. Desgraciadamente, el St. viridans ha desarrollado una considerable resistencia (por ej. 13% a la Penicilina, 15% a la amoxicilina, 17% a la Ceftriazona y también bastante resistencia a los macrólidos. Esto desalienta más la práctica de la profilaxis a un nivel más vasto.

Los antibióticos para la profilaxis se dan en una sola dosis antes del procedimiento. Si por alguna circunstancia no se da antes, puede darse hasta 2 horas después. 9.1.3 Profilaxis de EI para procedimientos en el aparato respiratorio. Aunque se ha reportado que una variedad de procedimientos efectuados en el aparato respiratorio pueden causar bacteremias por una variedad de organismos, no se ha demostrado relación de estos procedimientos con la adquisición de EI. La profilaxis está recomendada, en los casos de procedimientos invasivos en el tracto respiratorio que incluyan incisión o biopsia de la mucosa respiratoria, tales como tonsilectomía o adenoidectomía. No se recomienda profilaxis para broncoscopía, a menos que el procedimiento incluya biopsia o incisión de la mucosa en los pacientes de riesgo (9.1.1). Para estos pacientes en que se realice un procedimiento invasivo para tratar una infección establecida (como drenaje de un absceso o empiema), la American Heart Asociacion (AHA), recomienda que el régimen antibiótico de estos pacientes contenga un agente activo para el estreptococo viridans. Si cabe sospecha o certeza que la infección sea causada por estafilococo aureus, el régimen de antibióticos debe contener un agente activo contra estafilococo aureus, como penicilinas o cefalosporinas antiestafilocócicas, o vancomicina en pacientes alérgicos o si la infección es intrahospitalaria o probadamente resistentes a otros antibióticos. 9.1.4 Profilaxis de EI para procedimientos gastrointestinales o génito-urinarios. El enterococo es parte de la flora normal del tubo digestivo. Este germen puede causar infecciones intraabdominales o hépatobiliares. Frecuentemente estas infecciones son polimicrobianas, con una mezcla de gérmenes aeróbicos y anaerobios gram positivos y gram negativos, pero entre éstos sólo el enterococo representa una amenaza mayor de producir endocarditis. También el enterococo puede producir infecciones urinarias, especialmente en hombres mayores con hipertrofia prostática obstructiva o prostatitis. La administración de antibióticos para prevenir endocarditis no se recomienda en pacientes que sean sometidos a procedimientos diagnósticos del tracto digestivo o génitourinario, incluyendo esogastroduodenoscopía o colonoscopía. La AHA estima que no se ha demostrado que estos exámenes endoscópicos causen EI, o que la profilaxis con antibióticos la eviten. Sin embargo, los pacientes con infecciones abdominales o génitourinarias pueden tener bacteriemias sostenidas o intermitentes por enterococo. Para los pacientes con las patologías cardíacas de riesgod e EI y que tengan una infección abdominal o génitourinaria establecida, o que reciban antibióticos para prevenir invasión desde un foco séptico, es razonable que el régimen antibiótico incluya un agente activo contra el enterococo, como ampicilina o vancomicina o piperacilina. En los pacientes con indicación de profilaxis de EI (9.1.1), que tengan una infección urinaria por enterococo, y en los que se proyecte una cistoscopia u otro procedimiento invasivo electivo, es razonable usar tratamiento previo para erradicar el enterococo de la orina. Si el procedimiento no es electivo, es razonable hacerlo bajo tratamiento de antibióticos activos frente al enterococo. Desgraciadamente se ha producido un dramático aumento de resistencia del enterococo a la ampicilina, vancomicina y



aminoglucósidos, lo que ha aumentado las dudas sobre la eficacia de una terapia profiláctica eficaz en los procedimientos gastrointestinales y génitourinarios. La AHA no recomienda actualmente profilaxis de EI en parto vaginal o histerectomía. 9.1.5 Profilaxis de EI para procedimientos en piel o tejido musculoesquelético infectados: Estas infecciones son frecuentemente polimicrobianas, pero solamente el estafilococo y el estreptococo betahemolítico son de mayor preocupación en la posibilidad de producir EI. Para pacientes que tengan las patologías de riesgo con indicación de profilaxis para EI, es razonable que el régimen terapéutico contenga una agente activo contra estos gérmenes, como penicilinas antiestafilocócicas, o mejor aún ciertas cefalosporinas, como la Cefazolina. La Vancomicina está indicada cuando hay alergia a los betalactámicos, o cuando se sospecha o se verifica la presencia de estafilococo resistente. 9.1.6 Situaciones especiales: - Los pacientes que están en tratamiento para EI deben recibir profilaxis para procedimiento dental con el o los

antibióticos que está recibiendo en una dosis por vía parenteral 30 a 60 minutos antes del procedimiento, esto para asegurar una alta concentración sanguínea en el momento que se realiza la intervención dental.

- Los pacientes que están recibiendo penicilina como profilaxis de Enfermedad Reumática en forma rutinaria no deben

recibir como profilaxis en intervenciones dentales penicilinas, ya que es muy probable que tengan estreptococo viridans resistente en la boca. En ese caso es conveniente usar otro tipo de antibióticos, como claritromicina, azitromicina o clindamicina. Por la posibilidad de resistencia cruzada de Penicilinas con Cefalosporinas, no es aconsejable usarlas.

- Los pacientes en tratamiento anticoagulante no deben recibir los antibióticos profilácticos por vía intramuscular en

ellos, se debe usar la vía EV u oral. - En pacientes que van a ser sometidos a cirugía cardíaca es recomendable hacer una evaluación dental, de tal manera

que tengan una dentadura sana en el momento de la intervención quirúrgica sobre las válvulas cardíacas o corrección de alteraciones cardíacas congénitas. Así se disminuyen las posibilidades de infección por estreptococo viridans.

- Los pacientes a los que se les colocan válvulas protésicas u otros materiales intracardíaco tienen riesgo de infección.

Las infecciones precoces son producidas más frecuentemente producida por S. aureus, S. coagulasa negativo y menos frecuentemente por difteroides. La profilaxis en cirugía cardíaca debe dirigirse primariamente contra el estafilococo y debe ser de corta duración. Una cefalosporina de primera generación se usa frecuentemente, pero la elección del antibiótico debe escogerse según la importancia de la resistencia del gérmen el hospital. Por ejemplo una importante resistencia del S. aureus del hospital a las penicilinas antiestafilocócicas debe sugerir el uso de vancomicina en la profilaxis perioperatoria. En el caso de S. epidermides parece ser más rara la resistencia paralelela a las cefalosporinas, y aunque en general se recomienda vancomicina, no es seguro que sean resistentes a las cefalosporinas de primera. La profilaxis debe iniciarse inmediatamente antes de la cirugía para alcanzar altas concentraciones durante el acto quirúrgico y repetir la dosis en operaciones prolongadas.Debe continuarse por no más de 48 hrs para minimizar la emergencia de cepas resistentes.

- No hay evidencia que la cirugía de by-pass coronario se asocie con riesgo de infección. Tampoco se recomienda

profilaxis antibiótica en la colocación de stents.



9.1.7 Esquema de tratamiento profiláctico de EI en procedimientos dentales y respiratorios en las patologías indicadas por la AHA. Situación Antibiótico Esquema Estándar por vía oral Amoxicilina Adultos: 2 grs.

Niños: 50 mg/kg Vía oral una hora antes del procedimiento

Com vía oral contraindicada Ampicilina Cefazolina

Adultos: 2 g IM o IV Niños: 50 mg/kg IM o IV Adultos: 1 g IM o IV Niños: 50 mg IV o IM 30 minutos antes del procedimiento

En paciente alergico a Penicilina (por vía oral)

Clindamicina

ó Cefalexina ó Cefadroxilo

ó Azitromicina o Claritromicina

Adultos: 600 mg Niños: 20 mg/kg Vía oral: 1 hora antes del procedimiento Adultos: 2.0 g Niños: 50 mg/kg Vía oral : 1 hora antes del procedimiento Adultos: 500 mg Niños: 15 mg/kg Vía oral : 1 hora antes del procedimiento

Em paciente alérgico a Penicilina com via oral impedida

Clindamicina

ó Cefazolina

Adultos: 600 mg IV Niños: 20 mg/kg IV 30 minutos antes del procedimiento Adultos: 1.0 g Niños: 25 mg/kg IM ó IV: 30 minutos antes del procedimiento

Total de dosis en niños no debe exceder dosis adultos. Cefalosporinas no deben usarse en individuos con reacción severa inmediata a penicilina



9.2 TRATAMIENTO ANTIBIOTICO DE ENDOCARDITIS INFECCIOSA Esta norma contiene recomendaciones para el tratamiento inicial de pacientes afectados por endocarditis infecciosa tanto de válvula nativa o protésica en espera de hemocultivos y según el agente etiológico identificado. Estas normas han sido elaboradas de acuerdo a recomendaciones de expertos contenidas en la literatura. 9.2.1 ENDOCARDITIS INFECCIOSATRATAMIENTO ANTIBIOTICO ADULTOS EI por Streptococcus viridans o Streptococcus bovis penicilina sensible (MIC ≤ 0.1 µg/mL) en válvula natural.

Antibiótico Dosis/Vía Duración (sem.)

Comentarios

Penicilina G acuosa sódica ó Ceftriaxona o Penicilina G acuosa sódica + Gentamicina ó Vancomicina

12-18 millones U/24 horas EV, en infusión continua o en 6 dosis iguales. 2 gr/día EV 12-18 millones U/24 horas EV en infusión o en 6 dosis. 1 mg/kg IM o IV c/8 hrs. 30 mg/kg/ 24 horas EV en 2 dosis, no exceder 2 g/24 horas a menos que se monitoreen niveles séricos

4 4 2 4

Preferida en la mayoría de los pacientes mayores de 65 años y en aquellos con compromiso de 8° par o función renal. Monitorizar niveles de Gentamicina Idealmente < 1 µg/ml Para pacientes alérgicos a betalactámicos. Niveles plasmáticos 30-45 µg/ml

EI Streptococcus viridans o Streptococcus bovis relativamente resistente a Penicilina G (CIM > 0.1 y < 0.5 µg/mL) en válvula natural.


Comentarios

Penicilina G acuosa sódica + Gentamicina ó Vancomicina

18 millones/24 horas EV continuo en 6 dosis 1 mg/kg IM o EVcada 8 horas 30 mg/kg/ 24 horas EV en 2 dosis. No exceder 2 g 24 horas sin niveles séricos

4 2 4

En alergia retardada a penicilina, cefazolina Recomendada en alergia aguda, severa a betalactámicos.



Terapia estándar para Endocarditis por Enterococo


Comentarios

Penicilina G acuosa sódica + Gentamicina

18-30 millones/24 hras EV en infusión continua o 6 dosis 1 mg/kg/ IM/EV cada 8 horas

4-6 4-6 ó

4 semanas: pacientes con menos de 3 meses de síntomas. 6 semanas: más de 3 meses de duración.

Ampicilina + Gentamicina

12 g/24 hrs EV, en infusión continua o 6 dosis 1 mg/kg IM/EV cada 8 horas

4-6 4-6 ó

Vancomicina + Gentamicina

30 mg/kg/24 hrs EV en 2 dosis iguales, no exceder 2 g/24 hrs sin monitorizar niveles séricos 1 mg/kg/IM/EV cada 8 hrs.

4-6 ó 4-6

Alergia a betalactámicos. Cefalosporinas no son alternativa adecuada en alergia a penicilina

Endocarditis por Staphilococcus aureus en ausencia de material protésico

Antibiótico Dosis/Vía Duración (semanas)

Comentarios

Stafilococcus meticilino sensible Esquema para pacientes no alérgicos a betalactámico: Cloxacilina sódica más Gentamicina (opcional)

2 g EV cada 4 horas 1 mg/kg IM/EV cada 8 horas

4-6 3-5 días

La utilidad de aminoglicósidos adicional no está establecida

Esquema para pacientes alérgicos a betalactámicos Cefazolina más Gentamicina (opcional)

2 g EV/ c 8 horas 1 mg/kg IM/EV c/ 8 horas

4-6 3-5 días

No utilizar en hipersensibilidad inmediata a penicilina

Vancomicina 30 mg/kg/24 horas EV en 2 dosis, no exceder 2 g/24 horas sin monitorizar niveles séricos.

4-6 Pacientes alérgicos severos a penicilina

Stafilococcus meticilino resistente Vancomicina

30 mg/kg/24 horas EV en 2 dosis, no exceder 2 g/24 horas sin monitorizar niveles séricos.

4-6



Endocarditis por Staphilococcus aureus en presencia de prótesis valvular u otro material protésico


Comentarios

Esquemas para Stafilococcus meticilino resistente Vancomicina más Rifampicina más Gentamicina

30 mg/kg 24 horas EV en 2 o 4 dosis. No exceder 2 g/24 horas sin monitorizar niveles séricos 20 mg/kg/día oral hasta 300 mg//kg c/8 horas (adultos) 1.0 mg/kg/ IM/EV cada 8 horas

≥6 ≥ 6 2

Rifampicina aumenta requerimientos de Warfarín (antitromboterapia)

Esquemas para Stafilococcus meticilino sensible Cloxacilina más Rifampicina más Gentamicina

2 g EV c/4 horas. Niños: 150-200 mg/kg/día EV c/4 horas 20 mg/kg/día oral. Adultos: 300 mg c/8 horas oral 1.0 mg IM/EV c/ 8 horas

≥6 ≥6 2

Cefalosporinas de 1ª generación o Vancomicina deben ser usadas en pacientes alérgicos a betalactámicos. Cefalosporinas no indicadas en alergia inmediata a penicilina o SMR.

Endocarditis provocada por HACEK (Haemophilus parainfluenzae, Haemphilus aphrophilus, Actinobacillus actinomycetemcomitans, Cardiobacterium hominis, Eekenella corredens y Kingella kingae)


Comentarios

Ceftriazona o Ampicilina más Gentamicina

2 g/día IM/EV 150 mg/kg/día en niños, tope 2 g. 12 g/24 hrs. EV en infusión continua o en 6 dosis. Niños: 150-200 mg/kg/día EV continuo o 6 dosis. 1 mg/kg/ IM/EV cada 8 horas

4 4 4

Cefotaxima alternativa



Tratamiento para Endocarditis micótica y presuntamente bacteriana con cultivo (-)

Antibiótico Dosis/Vía Duración (semanas) Endocarditis Micótica Anfotericina B con o sin Flucitosina

1 mg/kg/día EV (dosis total 2.0-2.5) 150 mg/kg/día oral en 4 dosis

6 – 8 6 – 8

Endocarditis con cultivo (-) Vancomicina más Clindamicina

15 mg/kg EV c/12 horas 1 mg/kg IM/EV c/ 8 horas

6 6

9.2.2 ENDOCARDITIS INFECCIOSA TRATAMIENTO ANTIBIOTICO EN NIÑOS

CAUSADA POR ESTREPTOCOCO EN PACIENTES NO ALÉRGICOS A PNC I. Estreptococo o Enterococo altamente sensible a PNC (CIM ≤ 0.1 μg/ml Esquema 1 ó 2 ó 3

Fármaco Dosis Duración

1. PNC G Sódica cristalina 200.000 UI/Kg/día EV por 6 dosis (máx. 20 mill). 4 semanas

2. PNC G Sódica cristalina + Gentamicina

200.000 UI/kg/día EV por 6 dosis (máx. 20 mill). 2.0 – 2.5 mg/kg/dosis EV (máx. 80 mg/kg/dosis) cada 8

horas.

2 semanas

2 semanas



horas.

4 semanas

2 semanas

II. Estreptococo o Enterococo medianamente resistente a PNC (CIM > 0.1 μg/ml, < 0.5 μg/ml) Esquema único



300.000 UI/Kg/día EV por 6 dosis (máx. 20 mill). 2.0 – 2.5 mg/kg/dosis EV (máx. 80 mg/kg/dosis) cada 8

horas.

4 semanas 2 semanas



III. Estreptococo o Enterococo resistente a PNC (CIM ≥ 0.5 μg/ml) Esquema 1 ó 2




horas.

4-6 semanas 4-6 semanas

1. Ampicilina + Gentamicina

300 mg/Kg/día EV por 4 dosis (máx. 12 g/día). 2.0 – 2.5 mg/kg/dosis EV (máx. 80 mg/kg/dosis) cada 8

horas.

4 semanas 2 semanas

CAUSADA POR ESTREPTOCOCO EN PACIENTES ALÉRGICOS A PNC I. Estreptococo o Enterococo altamente sensible a PNC (CIM ≤ 0.1 μg/ml) Esquema 1 ó 2


1. Cefazolina 100-150 mg/kg/día EV por 4 dosis (máx. 12 g/día). 4 semanas

2. Vancomicina 40 mg/Kg/día EV por 2-4 dosis (máx. 2 g/día). 4 semanas

II. Estreptococo o Enterococo medianamente resistente a PNC (CIM > 0.1 μg/ml, < 0.5 μg/ml) Esquema 1 ó 2


1. Cefazolina + Gentamicina

100-150 mg/kg/día EV por 4 dosis (máx. 12 g/día). 2.0- 2.5 mg/kg/dosis EV (máx. 80 mg/kg/dosis) c/ 8

horas.

4 semanas 2 semanas

2. Vancomicina + Gentamicina

40 mg/kg/día EV por 2-4 dosis (máx. 2 g/día). 2.0-2.5 mg/kg/dosis EV (máx. 80 mg/kg/dosis) c/ 8 horas.

4 semanas 2 semanas

III. Estreptococo o Enterococo resistente a PNC (CIM ≥ 0.5 μg/ml) Esquema 1 ó 2




2. Vancomicina + Gentamicina

40 mg/Kg/día EV por 2-4 dosis (máx. 2 g/día). 2.0 – 2.5 mg/kg/dosis EV (máx. 80 mg/kg/dosis) c/8

horas.

4-6 semanas 4-6 semanas

Nota: 1. La asociación de PNC + Vancomicina + Gentamicina es sinérgica y podría ser utilizada en casos de pacientes no alérgicos a β-lactámicos con Estreptococo altamente resistente. 2. En Enterococo resistente a Vancomicina, debe usarse alternativa como Linezolid. CAUSADA POR ESTAFILOCOCO METICILINO SENSIBLE EN AUSENCIA DE PRÓTESIS VALVULAR I. No alérgicos a PNC esquema único


1. Cloxacilina con o sin

Gentamicina

150-200 mg/kg/día EV por 6 dosis (máx. 12 g/día).

2.0-2.5 mg/kg/dosis EV (máx. 80 mg/kg/dosis) c/ 8 horas

4-6 semanas

5 días

II. Alérgicos a PNC Esquema 1 ó 2


1. Cefazolina con o sin

Gentamicina

80-100 mg/kg/día EV por 4 dosis (máx. 6 g/día).

2.0- 2.5 mg/kg/dosis EV (máx. 80 mg/kg/dosis) c/ 8 horas.

4-6 semanas

5 días

2. Vancomicina 40 mg/kg/día EV por 2-4 dosis (máx. 2 g/día). 4-6 semanas

CAUSADA POR ESTAFILOCOCO METICILINO SENSIBLE EN PRESENCIA DE PRÓTESIS VALVULAR I. No alérgicos a PNC, esquema único


1. Cloxacilina + Rifampicina + Gentamicina

150-200 mg/kg/día EV por 6 dosis (máx. 12 g/día). 20 mg/kg/dosis VO (máx. 900 mg/día) 1 dosis


6-8 semanas 6-8 semanas 2 semanas

II. Alérgicos a PNC



Esquema único


1. Vancomicina + Rifampicina + Gentamicina

40 mg/kg/día EV por 2-4 dosis (máx. 2 g/día). 20 mg/kg/dosis VO (máx. 900 mg/día) 1 dosis.



CAUSADA POR ESTAFILOCOCO METICILINO RESISTENTE EN PRESENCIA DE PRÓTESIS VALVULAR I. Esquema único


1. Vancomicina + Rifampicina + Gentamicina

40 mg/kg/día EV por 2-4 dosis (máx. 2 g/día). 20 mg/kg/dosis VO (máx. 900 mg/día) 1 dosis



Nota:

En tratamiento empírico inicial, en pacientes post cardiocirugía, presencia de prótesis o catéter venoso central, iniciar esquema cloxacilina + rifampicina + gentamicina

TRATAMIENTO DE ENDOCARDITIS MICÓTICA O DE ALTA PRESUNCIÓN (NEONATOS, INMUNODEPRIMIDOS) I. Esquema único


1. Anfotericina B* 0.5 a 1 mg/kg inicial en infusión de y 1 hora de duración. Completar dosis de 30-50 mg/kg

* En caso de resistencia, se señalan experiencias exitosas con Caspofungina. 10.- PROFILAXIS DE ANTIBIÓTICA EN ADULTOS 10.1 PROFILAXIS DE ENFERMEDAD REUMÁTICA :

La profilaxis primaria de la enfermedad reumática se realiza tratando en forma adecuada la amigdalitis estreptocócica o muy probablemente estreptocócica. La forma más segura de tratamiento suficiente es de 1.200.000 UI de Penicilina benzatina IM por una vez. En los alérgicos a la penicilina se puede usar Azitromicina 500 mg por 5 días, o



Eritromicina 500 mg c/6 hr por 10 días. En la profilaxis secundaria está indicada la penicilina benzatina 1.200.000 UI IV cada 4 semanas, aunque

investigaciones recientes indican que sería más eficaz cada 3 semanas. En los alérgicos se puede usar sulfas (1 g al día). La profilaxis debe mantenerse por lo menos 5 años, o hasta los 25 o 30 años. Algunos son partidarios de extender la profilaxis de por vida en los pacientes con enfermedad valvular reumática del corazón, pero en la práctica es un objetivo difícil de cumplir y probablemente innecesario, ya que realmente no vemos adultos con enfermedad reumática. 10.2 PROFILAXIS DE INFECCIÓN URINARIA RECURRENTE EN LA MUJER:

Las infecciones urinarias repetidas en la mujer constituyen un problema relativamente frecuente. Muchas veces se aconseja profilaxis cuando se producen 3 o más infecciones en 6 meses. En la mayoría de los casos no hay en la mujer alteraciones estructurales del tracto urinario, pero deben investigarse si se repiten infecciones severas recurrentes. Además de las recomendaciones generales (abundante ingestión de líquidos, frecuencia de micción, micción después de las relaciones sexuales, etc.), también se ha probado efectiva la profilaxis antimicrobiana. Los esquemas más usados son Cotrimoxazol simple 1 tableta en la noche al día o día por medio, o nitrofurantoína 50 a 100 mg en la noche todos los días. Este último preparado puede eventualmente producir toxicidad hepática o pulmonar, que puede ser grave. No se recomienda usar las quinolonas menores en profilaxis, por la sospecha que pueda producirse resistencia cruzada con ciprofloxacina, que se mantiene como agente terapéutico importante, incluyendo las pielonefritis, aunque en los últimos años han surgido cepas resistentes. Obviamente, no debe usarse en profilaxis. También se han usado estrategias alternativas, como una dosis de antimicrobianos (por ej. Cotrimoxazol) después de cada acto sexual, o esquemas cortos de tratamiento (3 días) inmediatamente que empiecen los síntomas de infección baja 10.3 PROFILAXIS DE INFLUENZA: En familiares de alto riesgo no vacunados, con Oseltamivir o Zanamivir por un periodo corto parece ser razonable, ya que ha demostrado disminuir los casos secundarios. Sin embargo su uso debe ser ponderado, porque puede inducir resistencia a estos antivirales. 11.- USO RACIONAL DE ANTIBIÓTICOS EN PACIENTES ADULTOS CON NEUMIONIA DE LA COMUNIDAD: Los esquemas sugeridos se establecen según la gravedad de paciente; Pacientes ambulatorios de 65 años o menos, sin comorbilidad ni factores de riesgo: Amoxicilina 1gr c/ 8hrs. Alternativa Claritromicina 500 mg c/12 hrs. por 7 dias o Azitromicina 500 mg/ dia por 5 dias. Pacientes ambulatorios mayores de 65 años o de cualquier edad con comorbilidad especifica: Amoxicilina + ac clavulanico por 7 dias o cefuroximo 500 mgs cada 12 hrs por 7 dias. Alternativa: Claritromicina 500 mg c/12 hrs. por 7 dias o Azitromicina 500 mg/ dia por 5 dias. Pacientes que requieren hospitalización en sala: Ceftriaxona 1-2 grs por día y en caso de sospecha de gérmenes atípicos agregar Claritromicina 500 mg c/ 12 hrs o Azitromicina 500 mg x dia.



Pacientes graves que requieren manejo en UTI o UCI: Ceftriaxona 1-2 grs por día + levofloxacina 500 mg a 1 gr IV o Moxifloxacino 400 mg día IV. Alternativa: Amoxicilina+ Acido Clavulanico o Ampicilina/Sulbactam (2 fcos) 3 gr c/ 8 hrs.+ levofloxacino o Moxifloxacino. En casos de sospecha de aspiración el esquema es Ceftriaxona 1 a 2 grs dia+ Clindamicina 600 mg c/ 8 hrs. o como alternativa Metronidazol 500mgs c/ 8 hrs. En caso de pacientes con bronquiectasias, EPOC o uso prolongado de esteroides en que se sospecha de infección por Pseudomona aeruginosa : Ceftazidima 2 gr c/ 8 hrs IV + Ciprofloxacino 500 mg a 750 mg o como alternativa Imipenem 5000 c/ 6 hr IV o Cefepime 2 gr c/ 8 hrs. 12.- GUÍA USO DE ANTIBIÓTICOS EN NEUMONIA ASOCIADA A VENTILACIÓN MECÁNICA (NAVM) EN PACIENTES DE UCI ADULTOS Definición:

Neumonía que aparece después de 48 hrs. de ventilación mecánica. Se le clasifica en temprana o tardía según aparezca en los primeros 4 días o con más de 5 días de ventilación mecánica. Diagnóstico: Se proponen como criterios de sospecha clínica de NAVM: la presencia de dos de tres criterios mayores y uno de los criterios menores. Con los datos de sospecha clínica se inicia la toma de muestras bacteriológicas para llegar al diagnostico de certeza. Criterios de sospecha de NAVM 1. Presencia de dos de tres de los siguientes signos mayores:

- Fiebre (>38’2º) - Secreciones purulentas (definir purulencia) - Infiltrado pulmonar (Rx de tórax, TAC torácico)

2. Presencia de uno o más de los criterios menores:

- Leucocitosis (>12000/mm3) - Leucopenia (< 4000/mm3) - Presencia de formas inmaduras (>10%) - Hipoxemia (pO2/FiO2<250, en un paciente agudo) - Aumento de >10% de FiO2 respecto a la previa - Inestabilidad hemodinámica

Obtención de muestra bacteriológica: Es de importancia extrema la obtención de una muestra bacteriológica para poder tener el diagnóstico de certeza. En esta unidad la muestra es obtenida por aspirado endotraqueal. También se deben obtener hemocultivos Etiología de la NAVM: NAVM Precoz: Microorganismos comunitarios endógenos

• Staphylococcus aureus MS • Streptococcus pneumoniae



• Haemophilus influenzae • Bacilos Gram Negativos

NAVM Tardía: Microorganismos multirresistentes

• Staphylococcus aureus MR • Pseudomonas aeruginosa • Acinetobacter baumannii • Stenotrophomonas maltophilia • Serratia marcescens • Klebsiella pneumoniae Multirresistente

Tratamiento: Se inicia tratamiento empírico una vez obtenidas las muestras bacteriológicas y después se debe desescalar. NAVM Precoz: A pesar de us epidemiología han aparecido cada vez con más frecuencia germenes multirresistentes.

Unasyn o Sulperazona + Vancomicina NAVM Tardía:

Imipenem o Meropenem + Vancomicina Prevención: Un aspecto fundamental es el preventivo por lo que se resume aquí las principales medidas para prevenir la neumonia asociada a ventilación mecánica

- Lavado de manos - Evitar la reintubación - Estrategias que reduzcan la duración de la ventilación mecánica - Posición semisentada a 30-45 grados - Evitar uso de sedación profunda y bloqueadores neuromusculares - No usar descontaminación digestiva selectiva, ni antibióticos sistémicos como profilaxis de NAVM - Mantener el cuff del tubo endotraqueal con presión óptima

Bibliografía: - Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC): Management of Multidrug-Resistant Organisms In

Healthcare Settings, 2006 - Center for Disease Control. Recommendations for preventing the spread of vancomycin resistance: recommendations of the

Hospital Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC). MMWR 1995; 44(No RR-12):1-13 - Norma Técnica General Nº 43. Uso de antimicrobianos, MINSAL, 1999 - Bratzler et al. Antimicrobial Prophylaxis for Surgery: An Advisory Statement from the National Surgical Infection Clinical

Infectious Diseases 2004; 38:1706–15 - The Society of Thoracic Surgeons Practice Guideline Series: AntibioticProphylaxis in Cardiac Surgery, Part II: Antibiotic Choic.

Ann Thorac Surg 2007;83:1569–76 http://ats.ctsnetjournals.org/cgi/content/full/83/4/1569 - National Institute of Health. Profilaxis Antibiótica en: http://www.nih.org - Hopkins L, Smaill F. Antibiotic prophylaxis regimens and drugs for cesarean section. Cochrane Database Systematic Reviews,

1, 2005. - Salinas P. Normas de Profilaxis Antibiótica en Procedimientos Obstétricos. Rev Chil Obstet Ginecol 2006; 71(1) - CDC. Guideline for Isolation Precautions: Preventing Transmission of Infectious Agents in Healthcare Settings June

2007http://www.cdc.gov/ncidod/dhqp/pdf/isolation2007.pdf



- Healthcare Infection Control Practices Advisory Committee (HICPAC): Management of Multidrug-Resistant Organisms In Healthcare Settings, 2006

- Circular 4C “VIGILANCIA, PREVENCIÓN Y CONTROL DE INFECCIONES INTRAHOSPITALARIAS POR ENTEROCOCOS RESISTENTES A VANCOMICINA” MINSAL Mayo 2000

- Plan de Control de Pacientes con ERV Hospital DR. Hernán Henríquez A. Temuco Abril 2008. - Consenso Manejo racional del paciente con cáncer, neutropenia y fiebre Rev Chil Infect 2005; 22 (Supl 2): S79 - American Heart Asociation, Abril 19, 2007. G.- SALUD DEL PERSONAL El desarrollo de las actividades derivadas de la atención clínica, constituye un riesgo constante tanto para el personal de salud, como para estudiantes y alumnos en práctica, por su permanente exposición a sangre y otros fluidos corporales contaminados, si además no se cumple con las Normas de Prevención y Control de Infecciones en el personal de salud esto se traduce en riesgo de infectar o ser infectados. La presente normativa pretende reducir los riesgos facilitando el manejo de la exposición laboral, preservando y privilegiando el bienestar y la salud de nuestros funcionarios, beneficiando además a nuestra institución. 1. RECOMENDACIONES DE RESTRICCIÓN LABORAL DEL PERSONAL CON INFECCIONES Cuando un miembro del personal clínico cursa con una enfermedad infecciosa puede requerir la restricción parcial o total de la atención de pacientes por lo que se sugiere seguir las siguientes recomendaciones:

1.1 OBJETIVOS: - Prevenir las infecciones que se transmiten entre el personal y entre el personal y los pacientes. - Manejar al personal de salud que cursa infecciones con una normativa conocida, estandarizada y priorizada según las

áreas en que labore. - Manejar las exposiciones laborales a gérmenes patógenos

1.2 RESPONSABLES: - Jefes de Unidades y Servicios - Supervisores (as) que deben velar por su cumplimiento - Médicos, Enfermeras, Matronas y otros profesionales - Técnicos paramédicos - Auxiliares de servicio - Docentes y Alumnos de pre y post grado

ENFERMEDAD RESTRICCIÓN DURACIÓN



Conjuntivitis purulenta Restringir contacto con pacientes y su entorno

Hasta el cese de la secreción

Enfermedad diarreica aguda Restringir el contacto con pacientes y su entorno. No manipular alimentos. Reforzar las medidas de higiene personal

Hasta la resolución de los síntomas

Infecciones por enterovirus Restringir en lo posible contacto con pacientes pediátricos o inmunosuprimidos

Hasta la resolución de los síntomas

Hepatitis A Restringir en lo posible el contacto directo con los pacientes y su entorno. No manipular alimentos. Reforzar medidas de higiene personal

Hasta 7 días después del término de la ictericia

Hepatitis B en condición Aguda o crónica

No participar en procedimientos de riesgo de accidentes cortopunzantes para el paciente

Hasta HbsAg negativo

Difteria Excluir del trabajo Licencia Hasta el término del tratamiento y 2 cultivos faríngeos negativos

ENFERMEDAD RESTRICCIÓN DURACIÓN Herpes simplex en manos Restringir contacto directo con los pacientes

y su entorno Hasta la cicatrización de las lesiones

Herpes simplex orofacial Restringir contacto con pacientes de alto riesgo (inmunosuprimidos)

Hasta la cicatrización de las lesiones

Infección estreptocócica Evitar contacto directo con pacientes Hasta 24 horas de tratamiento antibiótico efectivo

Infección estafilocócica activa (secreción)

Restringir contacto directo con los pacientes y su entorno.

Hasta la cicatrización de las lesiones

Infección respiratoria aguda Excluir del contacto con pacientes de alto riesgo: neonatos, inmunosuprimidos, pacientes quirúrgicos, etc.

Hasta resolución de los síntomas

Infección por VIH

No participar en procedimientos de riesgo de accidentes cortopunzantes.

Sarampión activo Excluir del trabajo. Licencia Hasta 7 días después de la desaparición del exantema

Infección meningocócica Excluir del trabajo. Licencia Hasta 24 horas después de terapia efectiva

Parotiditis activa Excluir del trabajo. Licencia Hasta 9 días después del inicio de la parotiditis

Pediculosis Restricción de contacto con el paciente Hasta terminar el tratamiento Coqueluche activa Excluir del trabajo. Licencia Hasta 5 días de iniciar tratamiento

Antibiótico efectivo Rubéola activa Excluir del trabajo. Licencia Hasta 5 días después de la

desaparición del exantema Tuberculosis activa Excluir del trabajo. Licencia Hasta baciloscopías negativas Varicela activa Excluir del trabajo. Licencia Hasta lesiones secas y costrosas Herpes zóster localizado en personal sano

Cubrir lesiones, restricción de contacto con pacientes inmunosuprimidos

Hasta que todas las lesiones estén secas y costrosas

Herpes zóster localizado o generalizado en personal inmunosuprimido

Restricción de contacto con pacientes Hasta que todas las lesiones estén secas y costrosas



Sarna Excluir del trabajo Hasta 3 días de tratamiento efectivo 2 EXPOSICIONES LABORALES NO CORTOPUNZANTES QUE REQUIEREN MANEJO PROFILÁCTICO. En la siguiente Tabla se incluye el manejo de exposición laboral a agentes de transmisión respiratoria que son motivo de consulta frecuente a la Unidad de IIH

ENFERMEDAD INDICACIÓN DE PROFILAXIS DOSIS Difteria Personal expuesto a casos de difteria

o en aquellos identificados como portadores Penicilina Benzatina 1,2 millones IM en 1 dosis o eritromicina 500 mg c/6 hrs vo por 7 días

Coqueluche Personal en contacto directo con secreciones respiratorias

Eritromicina 500 mg c/6 hrs vo o Cotrimoxazol forte 1tab. c/12 hrs por 14 días luego de la exposición

Meningococo Personal en contacto directo con secreciones respiratorias sin uso de protección y en las primeras 24 horas de terapia antibiótica del paciente

Rifampicina 600 mg vo c/12 hrs por 2 días o Ciprofloxacino 500 mg vo en una dosis

3 MANEJO DE ACCIDENTES DE RIESGO BIOLÓGICO DE TIPO CORTOPUNZANTES. Nombre Norma: Norma de manejo de accidentes cortopunzantes

Objetivos:

- Mantener un programa de vigilancia de los accidentes provocados por aguja ó material cortopunzante y/o exposición significativa de piel no intacta ó mucosas a sangre ó líquidos biológicos contaminados con sangre.

- Manejar las exposiciones laborales a gérmenes patógenos y fluidos corporales de alto riesgo.

- Elaborar programas de educación, prevención y control según los resultados de la vigilancia a este tipo de exposiciones laborales.

- Llevar un registro de los accidentes y exposiciones del Personal de Salud por la Unidad de I.I.H.

Responsables de cumplimiento: - Médicos, Enfermeras y Matronas - Técnicos Paramédicos - Otros profesionales - Auxiliares de servicio - Docentes, Alumnos de pre y postgrado - Supervisores de Servicios y Unidades que deben cautelar su cumplimiento - Responsables del programa: Unidad de Infecciones Intrahospitalarias y Programa

de VIH. - Responsables de coordinación: enfermeras y profesionales de la Unidad de

infecciones intrahospitalarias y Programa VIH/SIDA. - Responsabilidad de la notificación: Jefe de Servicios, enfermeras y matronas

supervisoras de los Servicios Clínicos y Jefes de Unidades de Apoyo. - Responsabilidad de la indicación de profilaxis: en horario hábil médicos y

enfermeras integrantes de la Unidad de IIH, fuera de la jornada laboral y durante los festivos, la responsabilidad será del médico internista de turno en el servicio de urgencia

- Farmacia Unidosis: debe disponer de los fármacos antiretrovirales durante las 24 horas.



- Farmacia Central: En caso de requerirse antiretrovirales de excepción o gammaglobulina hiperinmune antihepatiits B será responsabilidad de farmacia central disponer de ellos y además informar a la Unidad de IIH de los Tratamientos antiretrovirales que se inicien como PEP.

- El médico del Programa de VIH y SIDA: será el encargado del seguimiento y control de los funcionarios que inicien terapia antirretroviral.

- El vacunatorio: será el responsable de disponer de las vacunas anti VHB para los funcionarios que la requieran tanto en el contexto de manejo de un accidente como para todo funcionario que ingrese independiente de su categoría o tipo de contrato.

Definiciones y clasificación: - PRECAUCIONES ESTANDARES: se aplican a sangre, fluidos corporales, secreciones y excreciones del cuerpo ya sea que contengan sangre o no.

- FLUIDOS CORPORALES: Se entiende por “fluidos corporales” a todas las

secreciones o líquidos biológicos, fisiológicos ó patológicos, que se producen en el organismo.

TIPO DE EXPOSICIONES Y FLUIDOS DE ALTO RIESGO

Exposición de riesgo para agentes transmisibles por sangre

Fluidos de alto riesgo

Accidente corto punzante Contacto con mucosa Contacto con piel no indemne Contacto prolongado con piel indemne

Sangre Semen Secreción vaginal LCR Líquido sinovial Líquido pleural Líquido peritoneal Líquido pericárdico Líquido amniótico Cualquier fluido con sangre visible

- FLUIDOS CORPORALES DE BAJO RIESGO: Son aquellos que se consideran de

bajo riesgo para la transmisión de agentes vía parenteral, tales como: las deposiciones, secreciones nasales, expectoración, transpiración, lágrimas, orina ó vómito, con la excepción de los casos en que contengan sangre visible.

- EXPOSICION SIGNIFICATIVA: Se considera a toda inoculación percutánea ó exposición de piel o mucosas con erosión o lesión reciente a sangre ó instrumentos contaminados con fluido corporal de alto riesgo.

- CONTACTO PERCUTANEO MASIVO: transfusión de sangre ó derivados, inyección desde aguja con sangre, corte con bisturí o similar durante cirugía con instrumento usado en el paciente.

- CONTACTO PERCUTANEO NO MASIVO: punción con aguja hueca ó sólida que contenga sangre ó líquidos de riesgo.

- CONTACTO MUCOSO O PIEL NO INTACTA, MUCOSA ORAL U OCULAR: piel con dermatitis, erosiones ó heridas (menos de 48 horas).

- SEROCONVERSION: Se considera al viraje de la condición serológica de un



paciente, conocida como negativa hacia positiva, respecto de un agente patógeno determinado.

- PERSONAL DE SALUD INMUNE PARA HEPATITIS B: Personal de salud que ha recibido 3 dosis de vacuna Hepatitis B durante los últimos 10 años, o tuvo una Hepatitis B documentada.

- PROFILAXIS POST EXPOSICION (PPE): Nombre que se le da al uso de terapia antiretroviral ya sea con 2 ó 3 drogas, luego de accidente de sangre ó fluidos de riesgo con VIH.

- ACCIDENTE DE BAJO RIESGO VIH: Se da en pacientes fuentes de VIH positivos asintomáticos, carga viral menor a 1500 copias/ml.

- ACCIDENTE ALTO RIESGO VIH: Paciente fuente VIH positivo; - sintomático ó SIDA - en fase sero conversión (primoinfección) - con alta carga viral.

- ACCIDENTE PERCUTÁNEO NO SEVERO: punción con aguja sólida o lesión superficial.

- ACCIDENTE PERCUTÁNEO ALTO RIESGO: corte profundo o sangre visible o aguja puesta en arteria o vena del paciente fuente.

DESCRIPCIÓN DE LA NORMA - Toda lesión producida por material cortopunzante ó exposición significativa a sangre, sus derivados ó líquidos

biológicos con sangre; debe ser comunicada a la enfermera ó matrona supervisora ó Jefe de Servicio en forma inmediata, quien determinará el riesgo de la exposición.

- Toda lesión significativa se debe notificar a la Unidad de IIH por el Jefe de Servicio ó supervisora quien es responsable de comunicarlo por escrito dentro de las primeras 24 horas de ocurrido el accidente.

- Si la lesión es de riesgo se debe tomar serología para VIH, Hepatitis B y C al paciente fuente y al funcionario. - La realización de exámenes serológicos para detectar infección por VIH tanto en Personal de Salud como en el

paciente fuente, debe hacerse previa información y autorización de los afectados (sólo en circunstancias excepcionales podría realizarse sin la autorización del paciente fuente). El examen se hará con consejería y debe mantenerse la confidencialidad de la información obtenida.

- Si la fuente rechaza realizarse el examen se tomará solo al funcionario. - Es fundamental que en caso que se requiere PPE con antiretrovirales, se debe iniciar dentro de las dos primeras horas

de ocurrido el accidente. - Si el paciente fuente rechaza el examen VIH y el accidente fuese considerado de riesgo, se procederá como si el

paciente fuese VIH (+) y se iniciará tratamiento antiretroviral. - Si se desconoce el origen de la muestra sanguínea, se manejará como una fuente con serologías negativas. - El tratamiento debe ser supervisado por el equipo médico encargado de los tratamientos antiretrovirales de los

pacientes VIH-SIDA en control en el programa, quienes en situaciones especiales como: embarazo, estudios de genotipificación con resistencia a algunas drogas, o pacientes politratados con antiretrovirales determinará el esquema más adecuado profiláctico a seguir.

- Es obligación que todos los funcionarios de los servicios clínicos incluidos los reemplazos estar vacunados contra hepatitis B. En caso que alguno rechace la administración de la vacuna, el funcionario debe firmar y liberar de responsabilidades a la institución. El esquema de vacunas será el habitual, y la vacuna estará disponible en el vacunatorio del Hospital donde se llevará registro de quienes rechacen su administración.

- Todo alumno de las carreras médicas deben ingresar a los servicios clínicos con el esquema de vacuna contra la Hepatitis B.




Una vez que se produzca la exposición, se debe: - Dar aviso al jefe o supervisor correspondiente - Lavar en forma inmediata la zona accidentada con agua y jabón, seguida de

aplicación de alcohol ó povidona yodada, no ordeñar o clorar la zona. - Evaluar el riesgo de la exposición para determinar conducta - Identificar la fuente según antecedentes de infección por VIH, Hepatitis B y C. - En caso que se evalúe como de riesgo, tomar serología para VIH, Hepatitis B y

C al paciente fuente y al funcionario, previo consejería - Si el paciente fuente tiene una serología VIH (-) y no ha tenido factores de

riesgo; no debe hacerse nada, sólo consejería y educación. - Si el paciente tiene una serología VIH (+) confirmada (ISP), o tiene una alta

sospecha clínica de infección por VIH, el funcionario debe tratarse según protocolo y repetir su serología VIH a los 3 meses.

- Si la exposición es no severa, punción con aguja sólida o punción superficial se debe ofrecer tratamiento antiretroviral con 2 drogas.

- Si la exposición es de riesgo, corte profundo, o sangre visible en el lumen de la aguja ó con aguja puesta en vena ó arteria, se debe recomendar profilaxis con triterapia (terapia con 3 drogas).

- Independiente del tipo de contacto, si se desconoce la fuente, no se dejará PPE, salvo en situaciones especiales en que el médico a cargo evalúe la indicación de profilaxis antiretroviral con dos drogas.

- Si la exposición es a mucosas o piel no intactas con pequeños volúmenes de fluidos independiente del riesgo de la fuente, se procederá a indicar profilaxis antiretroviral con 2 drogas.

- Si la exposición es con grandes volúmenes y la fuente es de bajo riesgo, se utilizarán 2 drogas. Si la fuente de alto riesgo, se hará la profilaxis con 3 drogas.

- Si el funcionario es VIH (+), se realizará solo consejería y educación. - Si el contacto es a piel intacta independiente del volumen de fluidos no se

dejará tratamiento antiretroviral profiláctico.

- Si el paciente fuente tiene una serología para hepatitis B (-) y no tiene clínica sugerente de daño hepático viral, no debe hacerse nada, sólo consejería y educación.

- Si el paciente tiene una serología confirmada de hepatitis B o tiene clínica sugerente de daño hepático viral y el funcionario está vacunado, no debe hacerse nada, sólo consejería y educación.

- Si el paciente fuente tiene una serología confirmada de hepatitis B o tiene clínica sugerente de daño hepático viral y el funcionario no está vacunado se debe tratar según esquema (ver tabla).

- Si el funcionario tiene una serología para hepatitis B (+), sólo se realiza consejería y educación.

- Se considerará clínica sugerente de daño hepático viral a: paciente fuente con ictericia y alteración de pruebas hepáticas y riesgo adicional al alcoholismo (ej.: transfusión). Además serán de riesgo pacientes con síndrome Down, paciente en tratamiento en hemodiálisis, drogadictos, trabajadores sexuales, pacientes VIH, etc.

- La información de serología para hepatitis B, en personal de salud, debe


obtenerse antes de 48 horas; las medidas preventivas deben ser tomadas idealmente antes de 48 horas del accidente, si no hay información �osp.�gico proceder como si fuera susceptible y modificar posteriormente según resultados basales.

- Si el funcionario estudiado tiene serología (-) para hepatitis B, se debe usar Gammaglobulina hierinmune (HBIG) 0.06 ml/mg. Dentro de las primeras 48 horas. El día 1º y 30 del accidente, además se debe vacunar contra hepatitis B en el esquema clásico 1-28 y 180 días 2 ml de preferencia en deltoides y en brazo contrario al que se usó gamaglobulina.

Conductas frente a accidentes con fluidos corporales con antecedentes de Hepatitis C

- Si el paciente fuente tiene una serología hepatitis C (+) confirmada con técnicas de biología molecular: PCR, RIBA, se deberá hacer serología hepatitis C y determinación de transaminasas basal al funcionario que sufrió el accidente.

- Se deberá hacer seguimiento serológico de hepatitis C a los 4 y 6 meses además de control con transaminasa, no se justifica seguimiento serológico más allá del 6º mes.

- Si se documenta seroconversión con: HCV RNA u otra técnica confirmatoria se debe considerar al funcionario para iniciar tratamiento anti HCV

Bibliografía: - Manual de Procedimientos MINSAL 1990 - Manual de Prevención y Control de las Infecciones Intrahospitalarias (IIH) y Normas del

Programa Nacional de IIH. 1993. - Curso de Formación Médica Continuada sobre la Infección por el Virus de la

Inmunodeficiencia Humana. R.Najera., J.Gonzalez Lebroz. - "Accidentes en personal sanitario" Cap. 13, Pág. 391. - MMWR, 7 de Junio 1996. - NEJM 332:444, 1995. - MMWR, 44:929, 1995. - ANNALS IM 125:497, 1996. - Revista Médica de Chile, 1997, 125:605. - AJIC 22, Nº 2:65, April 1994. - Revista Médica de Chile; 1992, 120:1247. - Infect Control Hosp Epidemiol 2000;21:780. - MMWR2001;50(RR-1). - Ann Intern Med 1990; 113:740. - N Engl J Med 1997; 337:1485.

129

UNIDAD DE INFECCIONES INTRAHOSPITALARIAS

TABLA

VIH Y SIDAVIH Y SIDAProfilaxis Post ExposiciProfilaxis Post Exposicióón en Accidentes n en Accidentes PercutPercutááneosneos

Generalmente ninguna, considerar 2 drogas

3 drogas PEP3 drogas PEPSevera: corte profundo, sangre en aguja, aguja en arteria/vena


3 drogas PEP2 drogas PEPNo severa, aguja sólida, superficial

Serología fuente desconocida

Fuente HIV (+) y alto riesgo*

Fuente HIV (+) y bajo riesgo*

Exposición

Serología Fuente

* Bajo riesgo: paciente asintomático HIV o carga viral < 1.500 copias* Alto riesgo: paciente sintomático HIV, SIDA, seroconversión, alta carga viral



Estado del expuesto Fuente

HBAgs (+)

Fuente

HBAgs (-)

Fuente desconocida

No vacunado IgHB × 1 vez/ iniciar esquema de vacuna

Iniciar esquema de vacuna

Iniciar esquema de vacuna

Vacuna previa respondedor

Nada Nada Nada

VIH Y SIDAVIH Y SIDAProfilaxis Post ExposiciProfilaxis Post Exposicióón en Accidentes Membrana n en Accidentes Membrana

Mucosa y Piel no Intacta**Mucosa y Piel no Intacta**


3 drogas PEP2 drogas PEPGrandes volúmenes (salpicadura)


2 drogas PEP2 drogas PEPPoco volumen (gotas)

Serología fuente desconocida

Fuente HIV (+) y alto riesgo*

Fuente HIV (+) y bajo riesgo*

Exposición

Serología Fuente

* Bajo riesgo: paciente asintomático HIV o carga viral < 1.500 copias* Alto riesgo: paciente sintomático HIV, SIDA, seroconversión, alta carga viral** Piel no intacta: dermatitis, erosiones, heridas.



4 INMUNIZACIONES. 4.1 Vacunación Anti -Hepatitis B: El programa de inmunizaciones contra Virus Hepatitis b consiste en la inoculación

intramuscular de tres dosis de vacuna en el siguiente esquema. 1ª Dosis: día cero 2ª Dosis: 30 días 3ª Dosis: 180 días

Todo funcionario que se incorpora al Hospital Dr. Hernán Henríquez A. en labores donde exista riesgo de exposición a fluidos corporales, tiene como derecho y deber recibir sin costo alguno el esquema de vacunación Anti-Hepatitis B. Es responsabilidad del vacunatorio realizar la vacunación y registro de los funcionarios y las fechas y dosis recibidas, el cual debe ser enviado periódicamente a la Unidad de IIH. Todo alumno en práctica ya sea de Establecimientos de Educación Superior como de Institutos y Centros Formadores que ingresa a nuestro establecimiento a desarrollar labores donde exista riesgo de exposición a fluidos corporales, debe contar previamente con su esquema de vacunación completo o en curso. 4.2 Vacunación Anti-Influenza: El personal de salud está especialmente expuesto a adquirir el virus, porque durante los periodos de epidemia atienden gran cantidad de personas infectadas y a su vez tiene el potencial de transmitir la infección a pacientes altamente susceptibles que se encuentran hospitalizados (Ej. Neonatos, inmunosuprimidos, etc). Por lo anterior, el personal de salud debe ser vacunado anualmente con la vacuna anti-influenza recomendada y a cargo del Programa Nacional de Inmunizaciones. Tiene prioridad de vacunación, el personal de salud del Servicio de Urgencia, Pabellón Quirúrgico y Unidades de Alto Riesgo.

5 PREVENCION DE RIESGO ASOCIADO AL USO DE TOXICOS QUIMICOS



Se realizará vigilancia de los funcionarios que estén expuestos a los siguientes elementos tóxicos:

- OXIDO DE ETILENO ( ETO) - FORMALDEHIDO - GLUTARALDEHIDO - XILOL - GASES ANESTESICOS

5.1 NORMAS DE PREVENCION DE RIESGO ASOCIADO A EXPOSICION CON OXIDO DE ETILENO Características fisicoquímicas:

Gas incoloro, más pesado que el aire, olor etéreo detectable entre 230 a 700 ppm, soluble en agua y en la mayoría de los solventes.

Efectos tóxicos: La inhalación de altas concentraciones en tiempo breve (mayor de 100 ppm) produce:

- Irritación ocular, mucosa nasal y faríngea - Irritación de las vías respiratorias ( disnea, cianosis, edema pulmonar) - Sintomas digestivos (náuseas, vômitos, diarrea) - Síntomas neurológicos (cefalea, somnolencia, descoordinación) - Dermatitis alérgica ( al estar en estado líquido) - Potencialmente cancerígeno en humanos.

Personal expuesto: Funcionarios del Servicio de Esterilización que manejen el equipo de ETO. Valores límites de exposición: 0.8 ppm. o 1,4 mg/m cúbico. MEDIDAS DE PREVENCION Y CONTROL.

- De acuerdo al D.S Nº 594/1999 el personal no debe exponerse a concentraciones ambientales de oxido de etileno mayores a 0.8 ppm. en 8 hrs. de trabajo.

- En ambientes donde se manipule óxido de etileno deberán hacerse mediciones periódicas, tanto de

óxido de etileno ambiental como residual en los artículos esterilizados. Estas mediciones deberán realizarse cada seis meses y estará a cargo de la enfermera supervisora de esterilización.

- Está prohibida la esterilización con ETO en ausencia de equipos e instalaciones adecuadas.

- El personal deberá utilizar mascarillas de doble vía con filtros, las que deben ser de uso individual, y

deberá usarse al descargar el material.

- El personal deberá someterse a control médico con exámenes de salud específicos para el tipo de exposición, por lo menos una vez al año.

SUPERVISION DEL CUMPLIMIENTO DE LAS MEDIDAS.

- Las medidas de prevención deberán ser evaluadas y supervisadas periódicamente por la Enfermera de Esterilización.



- Deberá realizarse capacitación al personal expuesto en relación al tema.

- El personal que presente síntomas de efectos tóxicos, deberá ser remitido de inmediato a los Centros de atención en Convenio (Ley Nº 16.744)

5.2 NORMAS DE PREVENCION DE RIESGOS ASOCIADOS A LA EXPOSICION CON FORMALDEHIDO Solución química utilizada en Farmacia producción y como fluido de embalsamamiento en Anatomía Patológica. Características fisicoquímicas :

Gas incoloro, con olor picante, altamente soluble en agua, que reacciona con ella para producir formalina. La formalina se utiliza en concentración variable (comúnmente al 4 %).

Efectos tóxicos :

- Irritación primaria en ojos, nariz y garganta. - Broncoespasmo severo y lesiones cáusticas graves del árbol respiratorio. - Signos de irritación de la mucosa ocular y de vías respiratorias ( asma) . Se describe además que la

exposición cutánea puede desencadenar cuadros cutáneos tipo eczema.

Identificación de los expuestos: Personal de la Unidad de Farmacia Producción y Anatomía Patológica.

MEDIDAS DE PREVENCION Y CONTROL. - El personal deberá usar barreras protectoras para evitar exposición accidental. Estas barreras consisten

en uso de guantes, mascarilla de doble vía con filtros para gases y vapores orgánicos, pechera y lentes protectores.

- La concentración ambiental máxima permitida es de 0.3 ppm. en 8 hrs. de trabajo, la cual no podrá ser

superada en ningún momento de la jornada de trabajo.

- Deberán hacerse mediciones periódicas de concentración ambiental.

- Las salas donde se manipule el agente debe poseer un extractor de aire y ventilación adecuada.

- El personal deberá someterse a control médico con exámenes de salud específicos para el tipo de exposición por lo menos una vez al año.

SUPERVISION DEL CUMPLIMIENTO DE MEDIDAS.

- Se deben aplicar pautas de observación en relación a las medidas de prevención de riesgos de toxicidad, las que serán de responsabilidad del Profesional a cargo del servicio.

- Se deberá realizar actividades de capacitación del personal de la unidad en relación al tema.

- El personal que presente síntomas de efectos tóxicos, deberá ser remitido de inmediato a los Centros de

atención en Convenio (Ley Nº 16.744)



5.3 NORMAS DE PREVENCION DE RIESGO ASOCIADO A LA EXPOSICION CON GLUTARALDEHIDO. Desinfectante de alto nivel al 2 % activado, utilizado en la desinfección de instrumentación de Pabellones. Características fisicoquímicas : Solución líquida, de olor picante, que actúa en condiciones de solución activada al 2 %. Efectos tóxicos:

- Irritación ocular - Irritación de vías respiratorias (faríngea y pulmonar), con síntomas de tos, dolor al pecho, asma. - Dermatitis, eczema alérgico - Irritación de mucosas - Cefalea

Identificación de los expuestos: Personal de Pabellón Central y Pabellón del CDT que lava y desinfecta endoscopios tanto rígidos como flexibles, personal de servicio dental. MEDIDAS DE PREVENCION Y CONTROL.

- Uso de mascarilla de doble vía con filtro, guantes y lentes protectores al estar en contacto con la solución.

- Se debe trabajar en áreas ventiladas, las que deben contar con un extractor de aire.

- Debe mantenerse el recipiente con la solución tapada. SUPERVISION DEL CUMPLIMIENTO DE MEDIDAS

- Las medidas de prevención deberán ser evaluadas y supervisadas periódicamente por la Enfermera Supervisora del Servicio.

- De acuerdo al D.S Nº 594/1999 el personal no debe exponerse a concentraciones ambientales de

Glutaraldehido mayores a 0.05 ppm. en 8 hrs. de trabajo, el cual no podrá ser superado a ninguna hora de la jornada de trabajo.

- Aplicar supervisión en relación al uso de barreras protectoras.

- Capacitar al personal en relación al tema.

- Vigilancia de reacciones adversas del personal expuesto. En caso de intoxicación este deberá ser

remitido de inmediato a los Centros de atención en Convenio (Ley Nº 16.744).

5.4 NORMAS DE PREVENCION DE RIESGO ASOCIADO A LA EXPOSICION CON XILOL. Sustancia Química utilizada en el aclaramiento de muestras histológicas en Citopatología. Características fisicoquímicas: Solución líquida, incolora, transparente, de olor azucarado, hidrocarburo aromático acre.



Efectos tóxicos: - Irritación ocular - Irritación de vías respiratorias (faríngea y pulmonar), con síntomas de nauseas, dolor de cabeza, mareos,

somnolencia, inconciencia. - Dermatitis, eczema alérgico - Irritación de mucosas - Cefalea - Depresión del Sistema Nervioso Central

Identificación de los expuestos: Personal de Laboratorio de Histología. MEDIDAS DE PREVENCION Y CONTROL.

- Uso de mascarilla de doble vía con filtro, guantes y lentes protectores al estar en contacto con la solución, en caso que los niveles se encuentren sobre lo permitido.

- Se debe trabajar en áreas ventiladas, las que deben contar con un extractor de aire.

- Debe mantenerse el recipiente con la solución tapada.

SUPERVISION DEL CUMPLIMIENTO DE MEDIDAS

- Las medidas de prevención deberán ser evaluadas y supervisadas periódicamente por el Profesional a cargo del área.

- De acuerdo al D.S Nº 594/1999 el personal no debe exponerse a concentraciones ambientales de Xilol

mayores a 80 ppm. en 8 hrs. de trabajo. - Aplicar supervisión en relación al uso de barreras protectoras.




5.5 NORMAS DE PREVENCION DE RIESGO ASOCIADO A LA EXPOSICION A GASES ANESTESICOS. Sustancia Química utilizada en pabellones Centrales, Parto y CDT, en distintas concentraciones y cantidad en forma de vaporización, dependiendo del paciente, a fin de insensibilizar, en el establecimiento se utilizan tres tipos de anestesia Isoflurano, Sevoflurano y Oxido Nitroso. Características fisicoquímicas:



ISOFLURANO Liquido Agradable, Picante SEVOFLURANO Liquido Agradable, a Eter OXIDO NITROSO Liquido Agradable, Dulce Efectos tóxicos: En general las tres sustancias pueden tener los siguientes efectos

- Sequedad y enrojecimiento ocular - Excitación - Vértigo - Somnolencia - Nauseas - Descoordinación - Asfixia

Identificación de los expuestos: Personal de Pabellón Central, Pabellón Parto y Pabellón del CDT que realizan procedimientos Quirúrgicos. MEDIDAS DE PREVENCION Y CONTROL.

- Se deben mantener los equipos anestésicos en perfecto estado, principalmente los sistema de evacuación y filtrado de estos.

- Se debe ventilar el área luego de cada procedimiento.

- Debe mantenerse los recipientes sellados y tapados.

SUPERVISION DEL CUMPLIMIENTO DE MEDIDAS

- Las medidas de prevención deberán ser evaluadas y supervisadas periódicamente por el Profesional a cargo del respectivo servicio

- De acuerdo a Normas Internacionales el personal no debe exponerse a concentraciones ambientales de

Gases Anestésicos mayores a 50 ppm. en 8 hrs. de trabajo, el cual no podrá ser superado a ninguna hora de la jornada de trabajo.

- Aplicar supervisión en relación al uso de barreras protectoras.




5.6 NORMAS DE PREVENCION DE RIESGO ASOCIADO A LA EXPOSICION DE ORTOFTALALDEHIDO (OPA) Antecedentes: Anteriormente esta Unidad trabajaba con Glutaraldehido al 2% para realizar la desinfección de los equipos antes mencionados, actualmente estos procedimientos se realizan con un producto de marca comercial Cidex- OPA Especificaciones del producto



El Cidex- OPA es una solución acuosa Color azul claro, ligero olor característico (antiséptico). Compuesta de ortoftalaldehido que constituye un producto de gran poder desinfectante, en una proporción de 0,55 de ortoftaldehido (CAS 643-78-9) y 99,45 de agua y componentes inertes.

Este producto, que contiene menos de 1% de ortoftalaldehido, no está clasificado como peligroso para la salud. Los riesgos asociados al ortoftalaldehido (OPA) son debidos a efectos locales después de una exposición, tales como irritación de la piel, los ojos o las membranas mucosas (boca, nariz, tubo digestivo, etc.). Estos efectos locales se reducen al diluirlo en agua y CIDEX OPA no está clasificado como peligroso para la Salud, de acuerdo con la Clasificación UE. El Ortoftalaldehido suministrado como una solución al 0’55% es considerado peligroso para los organismos acuáticos En caso de Ingestión: Si se ingiere, cabe esperar una ligera irritación de la boca y el tubo digestivo. Los síntomas pueden incluir vómitos, diarrea y náuseas. En caso Contacto con la piel: El contacto de la piel con este producto puede causar una ligera irritación (picor) y puede causar coloración temporal, sobre todo tras exposición prolongada. Normalmente con muchos otros productos desinfectantes, el contacto repetido con la piel puede causar dermatitis (piel enrojecida y cuarteada). Los síntomas generalmente mejoran cuando finaliza la exposición. No se espera que la absorción por la piel sea una vía importante de exposición excesiva para ninguno de los componentes de este producto. En caso de Contacto con los ojos: Ligera irritación de los ojos, causa conjuntivitis leve (enrojecimiento), picores o lagrimeo excesivo. No se conocen riesgos relacionados con la exposición repetida. No se conoce que el ortoftalaldehido cause efectos adversos a largo plazo.

Medidas de Seguridad a implementar Controles de Exposición y Protección Personal

Para un correcto control de las concentraciones de Cidex OPA en el aire, se cuenta con un sistema de extracción local en la sala de lavado, a fin de disminuir las concentraciones del agente. Se debe utilizar protección visual y facial a fin de evitar salpicaduras en el rostro, la Unidad actualmente cuenta con mascarillas de protección respiratoria y facial que cumplen con la recomendación anterior. Protección de las vías respiratorios con filtros de vapores orgánicos, que como se menciona anteriormente la Unidad cuenta con este sistema de protección, los filtros deben ser repuestos, basándose en la cantidad de utilización. Todos los equipos de protección deben guardarse fuera del área de lavado, a fin de evitar la contaminación de estos, además de identificarse con los nombres de los funcionarios expuestos.

Acciones de Primeros Auxilios

Ingestión: NO debe inducirse el vómito. Enjuáguese la boca a conciencia con al menos 500 ml (4 vasos) de agua, bébase

abundante agua o leche (500 ml). Procúrese atención médica. Piel: Retírese cualquier prenda o calzado contaminados y lávese la zona afectada con agua y jabón suave. Si persiste la irritación, procúrese atención médica. Lávese la ropa antes de volver a utilizarla. Ojos: Efectúese inmediatamente un lavado ocular con agua abundante durante al menos 15 minutos. Si persisten las



molestias, procúrese atención médica. Inhalación: En caso de inhalación de vapores o aerosoles del producto, llévese a la persona afectada al aire libre. Si persisten las molestias, procúrese atención médica. Atención médica: Este material no es muy tóxico y la toxicidad conocida del ingrediente activo puede causar un daño local a las membranas mucosas. El tratamiento debe ser sintomático y basarse en la reducción de la concentración del producto en las zonas afectadas. Acciones contra Incendios Medios de extinción adecuados: Este producto no es inflamable y no reaccionara adversamente con los medios de extinción que se utilizan normalmente al efecto, tales como nebulización de agua, polvo seco, CO2.

Retire el recipiente del fuego, si es posible, sin correr riesgos. Enfríense los recipientes que estén expuestos a las llamas utilizando chorros de agua aplicados lateralmente hasta bien extinguida la llama. Utilícese un sistema de protección dotado de respiración autónoma. Acciones en Caso de derrames Protección personal: Llévense puestos guantes de látex, PVC o nitrilo y gafas de protección cuando se manipule el producto. Úsese un delantal impermeable. Cámbiense los guantes de látex frecuentemente, por ejemplo, cada 10 minutos. Precauciones medioambientales: Viértase al desagüe de la red de alcantarillado con agua abundante. Métodos de limpieza: Los pequeños derrames (normalmente menos de 100ml) deben limpiarse utilizando materiales absorbentes inertes, como esponjas, papeles absorbentes o arena. Después de retirarlo, lave la zona afectada con agua y séquelo para prevenir que se formen residuos secos de ortoftalaldehido.

En caso de derrame grande (más de 100ml), recurra a personal capacitado y conténgase el derrame utilizando materiales absorbentes. La mezcla debe introducirse en un recipiente limpio adecuado y cerrarse, tras lo cual se trasladará a un lugar seguro alejado de las áreas de trabajo y del público. Trátese como residuo peligroso y desecharse por incineración. Después de retirarlo, lávese la zona afectada con agua y seque.

Manipulación y Almacenamiento Manipulación: Utilícese solamente en zonas bien ventiladas. No devolver nada de producto a su recipiente por el riesgo de contaminación. No ingerir; evítese el contacto con los ojos y la piel. Almacenamiento: Almacénese en su recipiente original en un lugar seguro, en las condiciones indicadas en la etiqueta del producto. Almacénese alejado de todas las sustancias incompatibles. Manténgase el recipiente bien cerrado cuando no esté siendo utilizado. Inspecciónense todos los recipientes antes de su almacenamiento para asegurarse que están adecuadamente etiquetados y no están dañados. Otras precauciones: Este producto no deberá utilizarse en forma de pulverizador ni de aerosol. Control de Exposición y Medidas de Protección Límites de exposición: Producto no clasificado como peligroso. No se han establecido límites de exposición profesional para el ortoftalaldehido.



Controles técnicos: Como se menciona anteriormente utilizar en zonas ventiladas o con extracción mecánica. Protección personal: Manipúlese de conformidad con las buenas prácticas industriales de seguridad e higiene en el trabajo, es decir mascarillas, antiparras y guantes de latex, pvc o nitrilo.

5.7 NORMAS DE PREVENCION DE RIESGO ASOCIADO A LA EXPOSICION A PURISTERIL Antecedentes

Anteriormente esta sala trabajaba con formalina al 37% para realizar la desinfección de los equipos y capilares de dialisis, actualmente estos procedimientos se realizan con un producto de marca comercial Puristeril 340. Especificaciones del producto

El Puristeril 340 corresponde a un Agente Oxidante y Corrosivo, debido a la mezcla de Peroxido de Hidrogeno 26 – 35 gr., Acido Acético mayor a 5gr., Acido Peracetico mayor a 3,5 gr. y Agua 100 gr.

El Peroxido de Hidrogeno pertenece al grupo de los agentes oxidantes, lo que corresponde a un producto químico

que aporta su propio oxigeno y que ayuda a otros materiales combustibles a arder más fácilmente. El Acido Acético, pertenece al grupo de sustancias liquidas Inflamables y corrosivas, es decir son líquidos o mezclas

de líquidos que contienen sustancias que desprenden vapores inflamables a cierta temperatura, además al tratarse de una sustancia corrosiva pueden causar lesiones graves a los tejidos vivos que entran en contacto con la sustancias (dermis, vías respiratorias).

El Acido Peracetico, se encuentra en el grupo de peróxidos orgánicos, los cuales son sustancias térmicamente

inestables que pueden sufrir descomposición acelerada al entrar en contacto con calor o a sustancias incompatibles. Además es un irritante severo lo que provoca inflamación en los tejidos en que entran en contacto directo. Esta inflamación se produce, por lo tanto, sólo en los tejidos epiteliales: la piel, la conjuntiva y especialmente la mucosa de la vía respiratoria.

Medidas de Seguridad a implementar

Controles de Exposición y Protección Personal Para un correcto control de las concentraciones de Puristeril en el aire, se cuenta con un sistema de extracción local en

la sala de lavado, a fin de disminuir las concentraciones del agente. Se debe utilizar protección visual y facial a fin de evitar salpicaduras en el rostro, la Unidad actualmente cuenta con

mascarillas de protección respiratoria y facial que cumplen con la recomendación anterior. Protección de las vías respiratorios con filtros de vapores orgánicos, que como se menciona anteriormente la Unidad

cuenta con este sistema de protección, los filtros deben ser repuestos, basándose en la cantidad de utilización. Se debe contar con guantes de neopreno hasta el codo, para evitar contacto directo de la piel con las sustancias

corrosivas e irritantes, estos deben ser repuestos en base a la necesidad de uso, para determinar los plazos específicos de



cambio se deben adquirir para lograr determinar la vida útil y calidad de estos. Es recomendable la adquisición de trajes impermeables o delantales manga larga impermeables, ya que para el lavado

del instrumental se salpican y mojan considerablemente lo que es altamente riesgoso para los funcionarios. Estos trajes deben ser revestidos en vinilo, caucho, teflón o saranex.

Todos los equipos de protección deben guardarse fuera del área de lavado, a fin de evitar la contaminación de estos,

además de identificarse con los nombres de los funcionarios expuestos.

Manejo y Almacenamiento Para el manejo usar siempre protección personal así sea corta la exposición o la actividad a realizar con el producto. Mantener estrictas normas de higiene, no fumar, ni comer en el área de trabajo, mantener siempre los productos en los envases que señale el producto que contiene. No manejar cerca de fuentes de ignición, calor o llama. Evite el contacto o inhalación directa del producto. Almacenar en lugares ventilados, frescos secos y señalizados, a temperaturas adecuadas entre los 15 – 25º Celsius, alejados de fuentes de ignición o calor, separados de otros agentes químicos, y en envases adecuadamente señalizados y bien cerrados. Almacenar bajo la altura de los ojos, verificar que no se encuentren expuestos a golpes o roturas. Medidas en caso de vertido accidental Evacuar, aislar y demarcar el área de peligro, restringir el acceso de personas innecesarias o sin la protección adecuada. Usar equipo de protección personal y ventilar el área, eliminar toda fuente de temperatura cercana al derrame. Absorber con materiales inertes, tales como arena o tierra, luego recoger con materiales que no sean de metal o pudiesen provocar chispa y eliminar en contenedores herméticos, lavar con abundante agua el área del derrame, usar agua en forma de rocío a fin de evitar la generación de vapores.

Medidas en caso de incendio Peligros de incendio y/o explosión: Líquido y vapor inflamables. Por encima de 40 °C produce gases inflamables. Los contenedores pueden explotar durante el fuego. Los vapores son más densos que el aire y forman mezclas explosivas con él. En contacto con oxidantes fuertes puede producir fuego, y puede atacar los metales liberando hidrógeno existiendo la posibilidad de formar mezclas explosivas con el aire. Productos de la combustión: Monóxido de carbono y dióxido de carbono. Igualmente se pueden liberar vapores tóxicos e irritantes. Precauciones para evitar incendio y/o explosión: Evitar toda fuente de ignición y calor. Ventilar los espacios confinados y las zonas bajas. No exponer el producto a calentamientos excesivos. No utilizar agua a presión, en su reemplazo agua en forma de rocío, espuma tipo alcohol, polvo químico seco o dióxido de carbono. Instrucciones para combatir el fuego: Evacuar o aislar el área de peligro. Restringir el acceso a personas innecesarias y sin la debida protección. Ubicarse a favor del viento. Usar equipo de protección personal. Si no hay fuga, usar agua en forma de rocío para refrigerar los contenedores y proteger a las personas que están extinguiendo el fuego. Retirar los contenedores si no hay riesgos.



Procedimiento de primeros auxilios Inhalación: Trasladar al aire fresco. Si no respira administrar respiración artificial. Evitar la reanimación boca a boca. Si respira con dificultad suministrar oxígeno. Mantener la víctima abrigada y en reposo. Buscar atención médica inmediatamente. Ingestión: No inducir el vómito. Lavar la boca con agua. Si está consciente, suministrar abundante agua. No administrar nada si la persona está inconciente. Mantener la víctima abrigada y en reposo. Buscar atención médica inmediatamente. Piel: Lavar la zona afectada con abundante agua y jabón, mínimo durante 15 minutos. Luego retirar la ropa y calzado contaminados. Si la irritación persiste repetir el lavado. Buscar atención médica inmediatamente. Ojos: Lavar con abundante agua, mínimo durante 15 minutos. Levantar y separe los párpados para asegurar la remoción del químico. Si la irritación persiste repetir el lavado. Buscar atención médica inmediata Nota para los médicos: Después de proporcionar los primeros auxilios, es indispensable la comunicación directa que brinde información para el manejo médico de la persona afectada, con base en su estado, los síntomas existentes y las características de la sustancia química con la cual se tuvo contacto.



Distribución Directivos Subdirectores Centros de Responsabilidad Servicios Clínicos Servicios de Apoyo Centro de Atención integral pacientes VIH Centro Odontológico (CODA) Biblioteca Hospital Biblioteca UFRO

Fecha próxima revisión Año 2011

Norma Nombre Fecha Firmas

Elaborada por E.U. Sra. Laura Muñoz.

E.U. Sra. Claudia Salazar Dr. Pedro Lorca

Agosto - 2003

Actualizada por E.U. Sra. Marcela Vega M. E.U. Sra. Claudia Salazar C.

Dra. Helen Stegmaier B.

Agosto-2008

Aprobada por Dr. Pedro Lorca O.

Aprobada por Dirección

Dr. Ariel Ramos I



ANEXO 1

LISTADO Y CLASIFICACION DE ANTIMICROBIANOS SEGÚN ESTRUCTURA QUIMICA: I. BETALACTAMICOS A) Penicilinas

1) Penicilina G acuosa, sódica o potásica, procaína, benzatina, clemizolpenicilina. 2) Penicilina V u oral: fenoximetilpenicilina 3) Penicilinas semi sintéticas:

3.1) Penicilinasa-resistentes, de acción antiestafilocócica • Parenterales: Meticilina, Oxacilina, Cloxacilina, Nafcilina • Orales: Cloxacilina, Flucloxacilina.

3.2) Penicilinas de amplio espectro : • Segunda generación : Ampicilina, Amoxicilina, Bacampicilina, • Tercera generación: carboxipenicilinas: Carbenciclinas, Ticarcilina. • Cuarta generación: ureídopenicilinas: Azlocilina, Mezlocilina, Piperacilina.

3.3) Asociaciones con inhibidores de betalactamasas • Amoxicilina-Clavunalato (oral y parenteral) • Amoxicilina-Sulbactam (oral y parenteral) • Ampicilina-Sulbactam (oral y parenteral) • Ticarcilina-Clavunalato (parenteral) • Piperacilina - Tazobactam (parenteral)

B) Cefalosporinas

1) Primera generación 3) Tercera Generación : • Cefadroxilo (oral) 3.1) Parenterales • Cefalexina (oral) - Cefotaxima • Cefazolina (parenteral) - Ceftazidima • Cefradina (oral, parenteral) - Cefoperazona

2) Segunda generación - Ceftriaxona 2.1) Parenterales :

• Cefuroxima 3.2) Orales : • Cefotetán (no disponible en Chile) - Cefixima • Cefoxitín: (no disponible en Chile) - Ceftibutén

- Cefpodoximo

2.2) Orales: 4) Cuarta Generación: • Cefuroximo-acetil - Cefepima • Cefaclor - Cefpiroma • Cefprozilo - Ceftobiprole 5) Carbacefems: Loracarbef : oral (espectro similar a

cefalosporinas de 2da. generación) 6) Asociaciones con inhibidores de betalactamasas :

- Cefoperazona-Sulbactam (parenteral) C) Carbapenems

• Imipenem-cilastatina • Meropenem • Ertapenem • Doripenem



D) Monobactámicos

• Aztreonam II. AMINOGLUCOSIDOS

- Kanamicina - Estreptomicina - Tobramicina - Gentamicina - Amikacina - Dibekacina - Neomicina - Sisomicina - Espectinomicina - Netilmicina - Arbekasina - Isepamicina

III. MACROLIDOS

- Eritromicina - Claritromicina - Josamicina - Miocamicina - Azitromicina - Roxitromicina - Midecamicina - Espiramicina

IV. KETOLIDOS

- Telitromicina

V. LINCOSINAMIDAS O LINCOSAMINAS VI. ANFENICOLES - Lincomicina - Cloranfenicol - Clindamicina - Tianfenicol - Streptograminas (Quinupristina/Daftopristina)

VII. TETRACICLINAS VIII. GLICOPEPTIDOS-POLIPEPTIDOS-PEPTOLIDOS

- Tetraciclina - Vancomicina - Oxitetraciclina - Teicoplanina - Clortetraciclina - Daptomicina

- Doxicilina - Dalbavancina - Minociclina - Televancina

- Oritavancina - Bacitracina

- Colistin - Polimixima B

IX. QUINOLONAS

1° Generación: Acido Nalidíxico 3° Generación: Sparfloxacina Acido Oxolínico Gatifloxacina Acido Pipemídico

2° Generación: Enoxacina 4° Generación: Moxifloxacina Lomefloxacina Gemifloxacino

Ciprofloxacina Grepafloxacino Levofloxacina Trovafloxacino Ofloxacina Carefloxacino Pepfloxacina Norfloxacino



X. NITROFURANOS XI. SULFAMIDAS

- Furazolidona a) Puros: - Nitrofurantoina - Sulfadiazina - Nifuroxacida - Sulfametoxazol

- Sulfasalazina b) Asociaciones:

- Sulfa-Trimetroprim - Sulfa-Pirimetamina - Eritromicina-Sulfixozasol XII. DERIVADOS DE STREPTOMYCES MEDITERRANEI

- Rifampicina - Rifapentina

XIII. DERIVADOS DE OXAZILIDONA

- Linezolid - Eperozolid

XIV. GLICILCILINAS

- Tigecilina

XV. DERIVADO DE STREPTOMYCES FRADIAE - Fosfomicina

manual iih

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