evaluación del efecto de reguladores del crecimiento en tres especies ornamentales crotos (codiaeum...

8/17/2019 Evaluación Del Efecto de Reguladores Del Crecimiento en Tres Especies Ornamentales Crotos (Codiaeum Variegatum), Marginata (Dracaena Marginata) y Palma Areca (Dypsis …

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AGRADECIMIENTOS

A la Universidad Autónoma Chapingo y al Departamento de Fitotecnia , pordarme la oportunidad de terminar mi carrera profesional.

A mis padres quienes me dieron la vida y me enseñaron a salir adelante. Les doy

las gracias por todas las cosas que me ayudaron a culminar mis estudios

profesionales.

A mis maestros por brindarme su apoyo incondicional, así como sus

conocimientos durante todo el desarrollo de mi carrera, muchas gracias.

Al M.C. José Merced Mejía Muñoz por su apoyo incondicional además de ser mí

guía durante el desarrollo de mi carrera profesional y el de este trabajo, por su

amistad y profesionalismo.

Al Lic. Biviano Gijón Vázquez y al Ing. Juan Carlos Villanueva Flores por el

apoyo brindado durante la realización de los experimentos.

Al Sr. Fredy Solís Baltazar y al Sr. Francisco Javier Villanueva por el apoyo

brindado, al prestar sus viveros para la realización de los experimentos.

A José Manuel Gonzales Fernández mi amigo y compañero, quien me brindó su


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DEDICATORIA

A mi madre Nuemí Rodríguez López, por haberme dado la vida y por brindarmesu apoyo incondicional a diario, por sus consejos, sus valores, su educación y

sobre todo por hacerme fuerte e independiente, también por apoyarme en los

momentos más difíciles, por la motivación que me dio para convertirme en un

hombre exitoso.

A mi padre Félix Álvarez Cruz, por su ejemplo de lucha y responsabilidad, por

ser un hombre íntegro y darme educación, valores, consejos, por brindarme su

apoyo incondicional depositando toda su confianza en mí, por su paciencia,

comprensión y el cariño que me ha brindado a lo largo de mi vida.

A mi Hermana Ilda Álvarez Rodríguez, por estar siempre conmigo, por su cariño

y por ser parte de los seres que me impulsaron a ser cada día una mejor persona.

A mi hijo Eitan de Jesús Álvarez Bautista, por ser el motor y la luz de mi vida,

porque desde el día que supe que iba a ser padre, fui el hombre más feliz del

mundo y me dio una razón más para ser un hombre exitoso; por ser el principal

motivo de mi alegría. ¡Te amo hijo!

A mi esposa Laura Bautista Martínez, por formar parte de mi vida, por darme a


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A mis amigos (as):Ismael, Melissa, Marcos, Gabriel, Antonio, José Manuel,

Leonel, Daniel, Manuel de Jesús, Alberto, quienes durante el desarrollo de mi

carrera profesional estuvieron conmigo en los buenos y malos momentos, quienes

me dieron su apoyo incondicional, por sus consejos, su confianza, su cariño y

comprensión, gracias por su amistad.

A mis compañeros, por brindarme el apoyo en los momento más difíciles, por su

comprensión, su confianza, por enfrentar conmigo cada una de las dificultades quese nos presentaron a lo largo de nuestra convivencia. Sin su apoyo no hubiera

sido posible la culminación de mi carrera profesional, ustedes fueron parte

fundamental de mis logros, ya que compartimos experiencias académicas,

culturales y deportivas que me sirvieron de mucho, con sinceridad agradezco cada

momento compartido.

¡Por siempre los recordaré


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NDICE GENERAL

Pág.

AGRADECIMIENTOS

DEDICATORIA

ÍNDICE GENERAL

ÍNDICE DE CUADROS

ÍNDICE DE FIGURAS

ÍNDICE DE GRAFICAS

ÍNDICE DE ANEXOS

RESUMEN

ABSTRACT

I. INTRODUCCION

II. OBJETIVOS

III. HIPOTESIS

IV. REVISIÓN DE LITERATURA

4.1. Reguladores de crecimiento

4.1.1. Auxinas4.1.1.1. Síntesis y degradación

4 1 1 2 Transporte

I

II

IV

VIII

X

XIII

XIV

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4.1.3.3. Mecanismos de acción

4.1.3.4. Aplicación práctica

4.2. Especies estudiadas

4.2.1. PALMA ARECA (Dypsis lutescens H. Wendel)

4.2.1.1. Clasificación científica

4.2.1.2. Taxonomía

4.2.1.3. Descripción botánica

4.2.1.4. Cultivo

4.2.1.5. Requerimientos agroclimáticos

4.2.1.6. Plantación

4.2.1.7. Plagas y enfermedades

4.2.1.8. Usos

4.2.1.9. Oportunidad de uso de los reguladores de

crecimiento

4.2.2. CROTOS (Codiaeum v ariegatum L.)


4.2.2.2. Taxonomía

4.2.2.3. Descripción botánica4.2.2.4. Cultivo

4 2 2 5 Requerimientos agroclimáticos

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4.2.3.7. Usos

4.2.3.8. Oportunidad de uso de los reguladores de

crecimiento

V. MATERIALES Y METODOS

5.1. área de estudio

5.1.1. Localización

5.1.2. Orografía

5.1.3. Hidrografía

5.1.4. Clima

5.1.5. Ecosistemas

5.2. Material vegetal

5.3. Manejo del cultivo

5.4. Establecimiento del cultivo

5.5. Modo de preparación de los reguladores de crecimiento

5.6. Variables evaluadas

5.7. Modo de aplicación de los reguladores de crecimiento

VI. RESULTADOS Y DISCUSION 6.1. Palma Areca (Dypsis lutescens H. Wendel)

6 1 1 Resultados Aplicación de Giberelina (AG3)

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6.3.3. Resultado Aplicación de cido Naftalenacético (ANA)

6.3.3.1. Marginata tricolor

6.3.3.2. Marginata verde

6.3.3.3. Marginata grisácea

6.3.3.4. Marginata bicolor

VII. CONCLUSIONES

VIII. RECOMENDACIONES

IX. BIBLIOGRAFIA

X. ANEXOS

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ÍNDICE DE CUADROS

Cuadro 1.

Cuadro 2.

Cuadro 3.

Cuadro 4.Cuadro 5.

Cuadro 6.

Cuadro 7.

Cuadro 8.

Cuadro 9.

Cuadro 10.

Cuadro 11.

Cuadro 12.

Hormonas endógenas y sintéticas usadas en la agricultura.

Compuestos usados para cada grupo hormonal.

Experimento de Marginata Verde y Tricolor tratadas con

Kinetina.

Experimento de Palma Areca tratadas con AG3.Experimento de enraizamiento de puntas de Marginata

Tricolor, Verde, Grisácea y Bicolor usando ANA.

Experimento de Crotos de 1 y 2 semanas de enraizamiento

tratadas con Kinetina.

Experimento de Marginata Verde y Tricolor despuntadas

tratadas con BAP.

Variables evaluadas en cada experimento.

Modo de aplicación de los reguladores de crecimiento

Resultados en Palma Areca a la aplicación de AG3.

Experimento de Crotos de 1 semana de enraizamiento


Experimento de Crotos de 2 semanas de enraizamiento

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Cuadro 18.

Cuadro 19.

Cuadro 20.

Experimento de enraizamiento de puntas de Marginata

Verde usando ANA.


Grisácea usando ANA.


Bicolor usando ANA.

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ÍNDICE DE FIGURAS

Figura 1.

Figura 2.

Figura 3.

Figura 4.

Figura 5.Figura 6.

Figura 7.

Figura 8.

Figura 9.

Figura 10.

Figura 11.

Figura 12.

Vista panorámica de plantas de Palma Areca.

Vista panorámica de Palma Areca en inicio de floración.

Vista panorámica del fruto de Palma Areca.

Vista panorámica de plantas de Crotos.

Vista panorámica de plantas de Marginata.Vista panorámica de las hojas de Marginata Verde.

Vista panorámica de las hojas de Marginata Bicolor.

Vista panorámica de las hojas de Marginata Tricolor.

Vista panorámica de las hojas de Marginata Grisácea.

Vista satelital de la ubicación del vivero donde se

realizaron los experimentos: Viveros y Jardinería “El

Chino”, Ejido El Podrido, Acapulco de Juárez, Guerrero,

México.

Vista panorámica del establecimiento de Marginata

Verde.


Tricolor.

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Figura 18.

Figura 19.

Figura 20.

Figura 21.

Figura 22.

Figura 23.

Figura 24.

Figura 25.


Tricolor despuntada.

Comparación de tratamientos con dos aplicaciones de

AG3 en un lapso de 1 semana en Palma Areca.


AG3 en un lapso de 2 semanas en Palma Areca.


AG3 en un lapso de 1 y 2 semanas en Palma Areca.

Resultados del desarrollo de raíces en esquejes de

Crotos de 1 semana de enraizamiento tratadas con

Kinetina con aplicación en un lapso de 1 semana.


Crotos de 1 semana de enraizamiento tratadas conKinetina con aplicación en un lapso de 2 semanas.


Crotos de 1 semana de enraizamiento tratadas con

Kinetina con aplicación en un lapso de 1 y 2 semanas.

Resultados del desarrollo de raíces en esquejes deCrotos de 2 semanas de enraizamiento tratadas con

Kinetina con aplicación en un lapso de 1 semana

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Figura 30.

Figura 31.

Figura 32.

Figura 33.

Figura 34.

Figura 35.

Figura 36.

Figura 37


Kinetina en un lapso de 1 y 2 semanas en Marginata

Tricolor.


Kinetina en un lapso de 1 semana en Marginata Verde.


Kinetina en un lapso de 2 semanas en Marginata Verde.


Kinetina en un lapso de 1 y 2 semanas en Marginata

Verde.

Comparación del tratamiento T1 (45 ppm) en Marginata

Tricolor previamente despuntada tratadas con BAP,

aplicación al suelo y foliar.Comparación del tratamiento T3 (90 ppm) en Marginata

Tricolor previamente despuntada tratadas con BAP,

aplicación al suelo y foliar.


Verde previamente despuntada tratadas con BAP,aplicación al suelo y foliar.


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ÍNDICE DE GRAFICAS

Grafica 1.

Grafica 2.

Grafica 3.

Grafica 4.

Grafica 5.

Resultados de los tratamientos en Palma Areca tratadas

con AG3.

Resultados de los tratamientos en Marginata Tricolor


Resultados de los tratamientos en Marginata Verdetratadas con Kinetina.

Resultados de los tratamientos en Marginata Tricolor

previamente despuntadas tratadas con BAP.

Resultados de los tratamientos en Marginata Verde

previamente despuntadas tratadas con BAP.

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ÍNDICE DE ANEXOS

A1. Boletín Técnico Kinetina.

A2. Boletín Técnico BAP.

A3. Boletín Técnico ANA.

A4. Boletín Técnico AG3.

A5. Estructura de algunas auxinas naturales (IAA, IBA, PAA, Cl-IAA)y sintéticas (NAA, dicamba, 2,4-D y 2,4,5-T).

A6. Vías de biosíntesis del IAA.

A7. Vía de biosíntesis de terpenos. Se muestran las dos rutas para la

síntesis del IPP: a partir de gliceraldehído-3-fosfato y piruvato (en

cloroplastos) y la ruta del mevalonato (citosólica). Distintos

precursores terpenoides dan origen a citocininas, giberelinas,

brasinoesteroides y ácido abscísico.

A8. Vía de biosíntesis de las principales giberelinas a partir de GGPP

en tres etapas y diferentes sitios celulares. Las flechas rojas

muestran el lugar de síntesis en la célula. Aquellas giberelinas

con alta actividad biológica en plantas están enmarcadas en

color verde.

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EVALUACIÓN DEL EFECTO DE REGULADORES DEL CRECIMIENTO EN

TRES ESPECIES ORNAMENTALES: CROTOS (Codiaeum variegatum ),

MARGINATA (Dracaena marginata ) Y PALMA ARECA (Dypsis lutescens )

RESUMEN

Una planta ornamental, es aquella que se cultiva y se comercializa con la finalidad

principal de mostrar su belleza, como decoración ya sea para interiores o

exteriores, se venden con o sin maceta, pero que están preparadas para ser

trasplantadas o simplemente transportadas al lugar de destino. La planta para

crecer además de agua, nutrientes, luz, y aire, necesita de hormonas, las más

importantes por su efecto son los promotores del tipo auxinas, giberelinas y

citocininas las cuales interactúan con el ambiente y el genotipo. El objetivo del

presente trabajo fue la evaluación del efecto de reguladores del crecimiento entres especies ornamentales (Codiaeum variegatum, Dracaena marginata y Dypsis

lutescens). Se establecieron los diferentes experimentos en viveros de

productores de plantas ornamentales en el municipio de Acapulco, Guerrero. En

Palma Areca (Dypsis lutescens) tratadas con AG3 para inducir crecimiento de

follaje el Tratamiento T7 (150 ppm) fue el que presento mejores resultados: 23.50cm de crecimiento promedio en altura. En Crotos (Codiaeum variegatum) se tiene

que el mejor tratamiento consiste en aplicar una concentración de Kinetina de 90


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16.15 cm. En la aplicación de ANA para enraizar estacas en Marginata Tricolor, M.

Grisácea y M. Bicolor no hubo resultado alguno, ya que ambas variedades el

Testigo es el que presento mejor resultados. Sin embargo en Marginata Verde el

mejor tratamiento fue el T3 (1500 ppm).

Palabras clave: Reguladores del crecimiento, Auxinas, Giberelinas, Citocininas,

Ornamentales.


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EVALUATION OF THE EFFECT OF GROWTH REGULATORS IN THREE

SPECIES ORNAMENTAL: CROTOS (Codiaeum variegatum ), MARGINATA

(Dracaena marginata ) AND ARECA PALM (Dypsis lutescens )

ABSTRACT

An ornamental plant, is one that is grown and marketed with the primary purpose

to show her beauty, as decoration either indoors or outdoors, are sold with or

without pot, but who are ready to be transplanted or simply transported to the place

of destination. The plant to grow well water, nutrients, light, and air, need of

hormones, the most important for its effect are the promoters of auxin type,

gibberellins and cytokinins which interact with the environment and genotype. The

aim of this study was to evaluate the effect of growth regulators on three

ornamental species (Codiaeum variegatum, Dracaena marginata and Dypsis

lutescens). Different experiments in nurseries ornamental growers in the town of

Acapulco, Guerrero settled. In Areca palm (Dypsis lutescens) treated with GA3 to

induce growth of foliage Treatment T7 (150 ppm) was the one that presented the

best results: 23.50 cm average height growth. In Crotos (Codiaeum variegatum)

has to be the best treatment is to apply a concentration of 90 ppm kinetinapplication within 2 weeks, 1 weekends with rooting. In marginata (Dracaena

marginata) several experiments were conducted in both varieties: Tricolor, green,


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I. INTRODUCCIÓN

La historia del hombre ha estado ligada a las plantas desde sus comienzos, lascuales han sido consideradas como un elemento estéticamente importante en

todas las civilizaciones. La belleza y el valor ornamental de los plantas están

determinadas no sólo por su flores, sino también por la coloración, la forma y la

textura.

Una planta ornamental, es aquella que se cultiva y se comercializa con la finalidad

principal de mostrar su belleza, como decoración ya sea para interiores o

exteriores, se venden con o sin maceta, pero que están preparadas para ser

trasplantadas o simplemente transportadas al lugar de destino (MCA, 2007). Por

otra parte Sánchez et al . (2004) mencionan que se pueden considerar como

ornamentales aquellas plantas o sus partes que en su estado natural opreservadas pueden cubrir la función de satisfacer visualmente el gusto del

consumidor y en algunos casos presentar un atractivo (flores, frutos o de tipo

aromático).

En agricultura las ornamentales se cultivan al aire libre, en viveros o con una

protección ligera bajo plásticos o en un invernadero con calefacción o temperatura

controlada. En general las especies utilizadas como ornamentales, suelen carecer


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A pesar de ventajas competitivas como la disponibilidad de mano de obra, clima,

agua, experiencia y reconocimiento internacional en la producción de plantas

ornamentales, el desarrollo de la red ha sido lento. Los principales obstáculos

identificados al respecto son la falta de organización, incipiente infraestructura,

escasa disponibilidad de consultores que proporcionen asistencia técnica, escasa

aplicación de tecnologías y un alto intermediarismo, por mencionar algunas de

ellas.

Actualmente, 90% de la producción está destinada a satisfacer el mercado local y

se dirige principalmente a la ciudad de México, Guadalajara y Monterrey.

Así, sólo 10% de la producción se exporta como flor de corte y esquejes. Lo

anterior se explica por el gran tamaño del mercado interior de nuestro país, su

accesibilidad y su excelente nivel de precios, lo que hasta el momento hace pocoatractiva la idea de buscar con mayor empeño el mercado de exportación.

Sin embargo, se comienza a desarrollar un interés por la actividad exportadora y

se insiste en la atención de esta alternativa. No obstante, resulta preciso

mencionar que en los próximos años debemos trabajar fuertemente en atender las

necesidades de ese mercado.

Para lograr tener éxito en la producción de ornamentales es necesario: producir


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internacional de flores de corte en maceta, palmas y follajes. Actualmente el país

ocupa el tercer lugar a nivel mundial en superficie dedicada a esta actividad; sin

embargo, no figura dentro de las más importantes a nivel mundial (Chalate et al ,

2008).

La planta para crecer además de agua, nutrientes, luz, y aire, necesita de

hormonas, las fases de desarrollo vegetal están reguladas por diferentes

sustancias químicas reguladores de crecimiento, fitohormonas y hormonassintéticas (Lluna, 2006), las más importantes por su efecto son los promotores del

tipo auxinas, giberelinas y citocininas, aunque en menor proporción, el etileno es

usado en ocasiones para promover la floración en bromelias. El uso de los

reguladores del crecimiento en ornamentales se ha limitado a unas pocas

especies de plantas en maceta, pero poco se ha hecho en especies tropicales.


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II. OBJETIVOS

Objetivo General

Evaluar el efecto de los reguladores de crecimiento en el desarrollo de tres

especies ornamentales Codiaeum variegatum, Dracaena marginata y Dypsis

lutescens.

Objetivos Particulares

Evaluar las respuestas de la especie Codiaeum variegatum, a la aplicación de

Citocinina: 6 FURFURYL AMINO PURINA (KINETINA).

Evaluar las respuestas de la especie Dracaena marginata, a la aplicación de

Citocinina: 6-N-BENCIL AMINOPURINA (BAP) y 6 FURFURYL AMINO

PURINA (KINETINA); y Auxina: ÁCIDO 1α -NAFTALÉN ACÉTICO (ANA). Evaluar las respuestas de la especie Dypsis lutescens, a la aplicación de

Giberelina: AG3.

Determinar las dosis de aplicación adecuadas de los reguladores de

crecimiento en las especies Codiaeum variegatum., Dracaena marginata y

Dypsis lutescens.


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IV. REVISIÓN DE LITERATURA

4.1. Reguladores de crecimiento

Las plantas han desarrollado estrategias complejas para lograr su supervivencia

en un ambiente en constante cambio. Las interacciones entre el modelo de

desarrollo de cada especie y las condiciones ambientales en donde crecen, son

censadas y trasmitidas por una compleja red de diferentes receptores. A

excepción de la luz, los mecanismos de percepción de la planta ante los cambiosmedio ambientales, no se han esclarecido por completo en todos los casos. Por

ello, son objeto de estudio permanente las vías de señalización que involucran una

o varias hormonas (Cruz et al., 2012).

Estos compuestos tan importantes, responsables de los patrones de expresión

génica de diversos eventos de crecimiento y desarrollo, participan en la regulaciónde múltiples procesos fisiológicos como la germinación de semillas, el

enraizamiento, los movimientos trópicos, la tolerancia a diferentes tipos de estrés

bióticos y abióticos, la etapa de floración, la maduración de frutos y la

senescencia, entre otros (Cruz et al., 2012).

Se considera que normalmente las plantas crecen y se desarrollan de una manera

ordenada y organizada. Los distintos órganos deben coordinar entre sí sus


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mismo efecto. Cada respuesta ocurre en un tiempo determinado en el desarrollo

de la planta y se presenta solamente en un tejido específico u órgano (Cruz et al.,

2012).

Los Reguladores del crecimiento, son sustancias orgánicas que se encuentran a

muy baja concentración, se sintetizan en determinado lugar de la planta y se

translocan a otro, que es donde ejercen sus efectos reguladores; pero todavía no

se conoce el mecanismo preciso mediante el cual funcionan (Weaver, 1976).

Se consideran reguladores de crecimiento a los compuestos orgánicos, naturales

o sintéticos, que modifiquen o inhiban en cierta cantidad el crecimiento o

desarrollo de la planta, siempre que lo hagan de manera similar a como actúan las

hormonas vegetales (Retamales, 2007).

Las hormonas mejor conocidas por sus efectos y acción fisiológica, pertenecen a

cinco grupos: auxinas, giberelinas, citocininas, ácido abscísico y etileno.

Otras hormonas de aparición más contemporánea son el ácido jasmónico, ácido

salicílico, poliaminas (espermina, cadaverina, putrescina, espermidina). Por último

existen otros reguladores que poseen acción hormonal y que se utilizan en laagricultura como: la hidrazida maleica; cloruro de cloromequat (Cycocel), cloruro

de clorofonio (Fosfón-D); los derivados del ácido picolínico (Picloram),


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el metabolismo celular, que pueden igualmente desarrollar efectos semejantes a

hormonas endógenas naturales. Algunas de ellas provocan respuestas más

intensas que los compuestos naturales a igual concentración molar. Al mismo

tiempo algunas de estas sustancias sintéticas de acción afín también pueden ser

reconocidos por receptores específicos de hormonas naturales (por ejemplo:

auxina y reguladores no naturales del “tipo auxina”).

En una clasificación más actual se elimina el término hormona, más propio defisiología animal, y se habla de sustancias reguladoras del crecimiento vegetal (en

lugar de fitohormonas) y reguladores del crecimiento vegetal (en lugar de

hormonas sintéticas) (Arteca, 1996).

A continuación se muestra la clasificación de hormonas endógenas y los llamados

reguladores del crecimiento (hormonas sintéticas) (Cuadro 1):

Cuadro 1. Hormonas endógenas y sintéticas usadas en la agricultura.

Clase Hormona endógenaRegulador del crecimiento

(hormona sintética)

Auxinas AIA (Ácido Indolacético)

IBA (Ácido indolbutírico)

αANA (Ácido α-naftalenacético)βANA (Ácido β- naftalenacético)

2 4-D (2 4 Diclorofenoxiacético)


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Durante varias décadas se han desarrollado numerosos estudios para revelar el

papel de cada fitohormona, cuyas funciones incluyen una variedad muy amplia de

procesos fisiológicos. Se ha dilucidado el rol de las auxinas en procesos de

crecimiento, floración, dominancia apical, crecimiento celular de los meristemos y

formación de raíces en estaca leñosas; las giberelinas participan en la

germinación de semillas e inducen la formación de flores y frutos; por su parte, las

citocininas retardan la caída de la hoja y el envejecimiento e inducen la

diferenciación celular y la formación de nuevos tejidos; mientras que el ácido

abscísico es responsable del cierre de estomas cuando hay déficit hídrico o inhibe

el crecimiento vegetal en momentos de crisis, produciendo una especie de letargo;

y por último, el etileno, facilita la maduración de los frutos, la degradación de la

clorofila y la posterior caída de las hojas (Blanco, 2008).

4.1.1. Auxinas

El término auxina, proviene del griego “auxein” significa “crecer”, que fue aplicado

pocos años después por Kögl y Haagen-Smith al examinar una sustancia

promotora de crecimiento vegetal presente en orina humana pero de estructura

diferente a la hormona vegetal. La hormona vegetal fue luego aislada desde maíz


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de IAA ocurre principalmente en meristemos apicales, hojas jóvenes y frutos en

desarrollo. Plántulas de Arabidopsis pueden sintetizar IAA en hojas, cotiledones y

raíces, siendo las hojas jóvenes las de mayor capacidad sintética. Aunque se sabe

que las plantas tienen varias rutas para sintetizar IAA, ninguna de estas rutas ha

sido definida al detalle de conocer cada una de las enzimas e intermediarios. Las

plantas usan dos rutas biosintéticas para producir IAA (Anexo ), una dependiente

del triptófano (Trp) y otra independiente de él, siendo la primera la más importante

y de la que se tiene más información (Anexo ) (Jordán, 2006).

El catabolismo del IAA puede realizarse mediante dos vías: por oxidación

descarboxilativa de la cadena lateral y por oxidación en las posiciones 2 y 3 del

anillo indólico, sin descarboxilación (Woodward y Bartel, 2005).

Mientras la conjugación es un proceso reversible, la degradación de las auxinas esirreversible.

4.1.1.2. Transporte

El transporte de auxinas es necesario para el desarrollo normal radicular, vascular

y embrionario y para respuestas a tropismos. El transporte de auxinas es complejoy está regulado por la acción de varias proteínas. IAA se sintetiza principalmente

en el ápice de las yemas, y se transporta polarmente hacia la raíz a través de


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el desarrollo embrionario. Las auxinas estimulan a la división de células

localizadas en el periciclo en la zona justo arriba de la zona de elongación para

provocar la formación de raíces laterales. Este fenómeno también se aplica en la

formación de raíces adventicias la cual puede ocurrir en varios tejidos donde

existan un grupo de células en activa división (Jordán, 2006).

Regulación de tropismos. Mientras el crecimiento puede ser definido como un

proceso

irreversible derivado de la elongación celular, los tropismos sonmovimientos de crecimiento direccionales en respuesta a un estímulo también

direccional. El efecto que tienen las auxinas sobre el crecimiento de tallos y raíces

es importante para controlar los tropismos Estas respuestas se concretan con

curvaturas, giros o inclinaciones que realizan los tallos y raíces hacia un estímulo

de luz (fototropismo), de gravedad (geotropismo o gravitropismo), o de contacto

(tigmotropismo). En el caso del fototropismo, la auxina que se produce en el ápice,

en vez de ser transportada hacia la base, es transportada lateralmente hacia el

lado sombreado. Durante la respuesta geotrópica, si una planta en crecimiento se

coloca de lado, el tallo tiende a curvarse hacia arriba y las raíces hacia el suelo.

Cuando la planta está en posición horizontal, la fuerza de la gravedad hace que la

auxina se distribuya mayormente en la parte inferior del tallo o raíz. Mientras en el

tallo las auxinas estimulan el crecimiento de la parte inferior (ocasionando una


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principal efector de la formación de la zona de abscisión. Cuando los tejidos

foliares envejecen, la producción de auxinas decrece, dando paso así a la acción

del etileno y progresión de la abscisión (Jordán, 2006).

Desarrollo de flores y frutos. Plantas que son tratadas con inhibidores de

transporte de auxinas o plantas mutantes defectuosas en transportar auxina

muestran deformidades en las inflorescencias y en la arquitectura floral, lo que

sugiere que esta hormona es necesaria para un adecuado desarrollo de flores. Deigual manera la aplicación de auxina en forma exógena induce el desarrollo floral

en varias especies. Asimismo, auxina contribuye con el crecimiento normal de

frutos (Jordán, 2006).

Diferenciación vascular. Las auxinas controlan la división celular en el cambium

donde ocurre la diferenciación de las células que darán origen a los elementos defloema y xilema. Su mayor efecto se advierte en la diferenciación del xilema. El

número de elementos de xilema que se forman en tallos decapitados tratados con

AIA es proporcional a la cantidad de hormona aplicada (Jordán, 2006).


Crecimiento y elongación celular. Las auxinas promueven el crecimiento de las

plantas principalmente por un aumento de la expansión celular (Jordán, 2006).


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También Actúan en la Mitosis, Alargamiento celular, Formación de raíces

adventicias, Dominancia Apical, Graviotropismo, Diferenciación de xilema,

Regeneración del tejido vascular en tejidos dañados, Inhibición del crecimiento

radical en concentraciones bajas, Floración, senectud, geotropismo, Retardan la

caída de hojas, flores y frutos jóvenes, dominancia apical.

4.1.2. Giberelinas

Las giberelinas (GAs) son hormonas de crecimiento diterpenoides tetracíclicos

involucrados en varios procesos de desarrollo en vegetales. Su descubrimiento en

plantas se remonta a la época de los años 30, cuando científicos japoneses

aislaron una sustancia promotora del crecimiento a partir de cultivos de hongos

que parasitaban plantas de arroz causando la enfermedad del “bakanoe” o “subida

de las plantas”. El compuesto activo se aisló del hongo Gibberella fujikoroi por

Eichi Kurosawa en 1926 por lo que se denominó “giberelina” (Jordán, 2006).

4.1.2.1. Síntesis y degradación

La síntesis de GAs ocurre en varios lugares, sin considerar la situación específicaen semillas de cereales. En plántulas, la síntesis y presencia de altos contenidosde estas hormonas se detecta en hojas y yemas en activo crecimiento y en


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4.1.2.2. Efectos fisiológicos

Según Jordán (2006) menciona los siguientes efectos fisiológicos:

El efecto más notable de las GAs es inducir crecimiento en altura, enmuchos casos atribuibles a GA1 endógena. En el caso de plantas enanas,éstas sintetizan solo pequeñas cantidades de GA1.

Promueven el desarrollo súbito de inflorescencias y la floración en muchasplantas, particularmente en aquellas de día largo (PDL), aunque no enaquellas de día corto (PDC), salvo algunas excepciones.

Inducen la germinación en semillas en condiciones de dormancia.

Están involucradas en la movilización de reservas en granos de cereales.En especial inducen la síntesis de α-amilasas y proteasas. Este procesotiene gran utilidad en la manufactura de cerveza.

Promueven el desarrollo de muchos frutos, inducen partenocarpia y tienenuna aplicación especial en la producción de uvas “sin semilla”.


Jordán (2006) menciona los siguientes mecanismos de acción:

A nivel de la elongación en tallos: Estimulan fuertemente la división y

elongación celular en la porción sub-apical de los tallos y también en el meristemo

intercalar.

A nivel de la movilización de reservas en semillas al inicio del proceso de


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de cereales y elaboración de cerveza. En este proceso industrial se intenta

maximizar la producción de enzimas hidrolíticas para que éstas degraden el

almidón natural de la cebada durante la germinación controlada en el proceso de

malteado. Los azúcares producidos (maltosa) serán luego desdoblados y

fermentados por la levadura Saccharomyces para la producción de alcohol.

Algunas variedades de difícil germinación necesitan la adición de GAs para

acelerar este proceso y así producir una máxima cantidad de azúcares después

del malteado.

Biotecnología: En la tecnología conducente a la regeneración de plantas in vitro,

el cultivo de meristemas es una metodología ampliamente utilizada con el objeto

de eliminar una serie de patógenos presentes en las plantas madres. El rol de GAs

en esta técnica es doble: primero los tejidos meristemáticos extraídos (explantes o

ápices caulinares de mayor tamaño) requieren de GAs para poder crecer en esta

primera fase, aunque ello requiere además de otras hormonas. En segundo lugar,

es posible realizar un tratamiento previo con GAs a plantas madres con objeto de

estimular previamente su crecimiento el cual, en condiciones de altas

temperaturas y humedad, favorece la extracción de ápices igualmente libres de los

patógenos.

Rendimientos en caña de azúcar. El azúcar de la caña (sucrosa) se acumula en


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En caña de azúcar para aumentar rendimiento en sacarosa

Romper latencia en tubérculos de papa y dormancia en semillas.

En malterías para aumentar la hidrólisis del almidón del endosperma decebada.

También cumplen funciones de: Controlan el crecimiento y elongación de los

tallos, Elongación del escapo floral, que en las plantas en roseta es inducido por el

fotoperiodo de día largo, Inducción de floración en plantas de día largo cultivadas

en época no apropiada, Crecimiento y desarrollo de frutos, Estimulan germinaciónde numerosas especies, y en cereales movilizan reservas para crecimiento inicial

de la plántula, Inducen formación de flores masculinas en plantas de especies

diclinas, Reemplaza la necesidad de horas frío (vernalización) para inducir la

floración en algunas especies (hortícolas en general).

4.1.3. Citocininas

Las citocininas han sido consideradas estructuralmente como derivadas de

adeninas o purinas, y dentro de este grupo se incluyen la Kinetina, Zeatina y

Bencil Aminopurina. Debido a su variación estructural se ha llegado a clasificar encitocininas isoprenoides y aromáticas (Cruz et al., 2012).


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En cuanto a su degradación, las citocininas pueden ser inactivadas por O-

glicosilación en el grupo hidroxilo terminal en citocininas tipo Zeatina o por N-

glicosidación en el N3 o N7 de la adenina. El primer efecto es reversible,

considerándose esta forma como de reserva o almacenamiento. Además, las

formas activas pueden ser degradadas por la acción de citocinin-oxidasas que

reconvierten a varias en su base adenina o sus derivados (Jordán, 2006).

4.1.3.2. Efectos fisiológicos

Jordán (2006) enuncia los siguientes efectos:

Promueven la división celular . La aplicación de citocininas estimula la

progresión del ciclo celular. En primer lugar, a nivel de la fase G1, citocininas más

otras hormonas (auxinas) inducen la acumulación de ciclinas y por tanto

promueven un nuevo ciclo celular. Citocininas también estimularían la entrada a la

fase M, probablemente por activación de una fosfatasa.

Provocan la iniciación de brotes, organogénesis y androgénesis. Las

citocininas causan una dominancia apical reducida o anulada, con brotación y

crecimiento de yemas axilares. Pueden iniciar brotes adventicios en porciones de

las hojas, venas y pecíolos intactos. Son las hormonas claves para inducir la

formación de nuevos brotes en diversos explantes in vitro (hojas, raíces, medula,


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Activan yemas laterales en dormancia. La sobreproducción de citocininas

resulta en una dominancia apical fuertemente reducida y en plantas la generación

de entrenudos más cortos.

Intensifican la expresión de “demanda” en el transporte de savia elaborada a

nivel del floema. Algunos estudios han sugerido que niveles muy bajos de

nitrógeno en el suelo (NO3 o NH4) resulta en una reducción del nivel de

citocininas.


Las citocininas son las hormonas vegetales de la cual existe menor información en

cuanto a biosíntesis, metabolismo y transducción de señales. Sin embargo,

recientemente se han descrito algunos mecanismos de acción. Las citocininas se

encuentran tanto en el apoplasto como en el simplasto, de manera que se asume

la existencia de transportadores específicos a este nivel. Se ha demostrado que

estas hormonas son primero percibidas por proteínas histidina-quinasas y que la

transducción de la señal por ellas provoca una fosforilación en su porción

conservada y con transferencia del grupo fosforilo a un regulador de respuesta

más distante, regula a su vez regula la cascada de señales río abajo (Jordán,

2006).


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organogénesis, especialmente la formación caulinar, de nuevos brotes adventicios

y de embriones somáticos. En diversas coníferas, ha sido posible masificar la

producción de brotes con aplicaciones de citocininas a cotiledones en estadios

tempranos de germinación de semillas, lo cual permite obtener plantas por vía

asexual después del enraizamiento de dichos brotes. En todas aquellas plantas

donde se manifiesta la “totipotencia celular”, ya sea en condiciones in vivo o in

vitro, las citocininas contribuyen considerablemente en la manifestación y

eficiencia de dicho proceso.

Control de la senescencia. Por otro lado, debido a que las citocininas retardan la

senescencia, proceso que implica clorosis por degradación de la clorofila, y dado

que permiten la manutención de la síntesis de proteínas, junto a carbohidratos y

otros compuestos orgánicos, es posible usar dicha hormona para dilatar y

mantener la vida de flores con hojas. Lo anterior es relevante en la producción de

flores de corte, material que con estas características implican una ganancia

comercial adicional, especialmente se considera la demandas en el mercado de

exportación.

Generación de variedades o genotipos nuevos. La inserción por transformaciónde genes que causan sobreproducción de citocininas, como el gen IPT, permite

obtener de manera más extendida las características de retardo de senescencia.


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En la AGRICULTURA tiene las siguientes aplicaciones:

Retardo de la senescencia de flores y hortalizas de hojas, manteniendo pormás tiempo el color verde

En manzanos, rosas o claveles promueve la ramificación lateral

En combinación con giberelinas controla forma y tamaño de algunos frutos

(manzano)

Inducen partenocarpia en algunos frutos Reemplazan la necesidad de luz roja en semillas de lechuga

Interrumpen dormancia en vid

Disminuyen contenido de alcaloides en plantas del género Datura.

Promueven la formación de vástagos en el cultivo in vitro.

Como derivan de una purina, se unen a la cromatina del núcleo. Además cumple

funciones como: Efecto promotor sobre el ARN y las enzimas, Estimulan el estado

de transición del estado G2 en la mitosis, Actúan en la traducción del ARN,

Incrementan la rapidez de síntesis de proteínas, División celular y formación de

órganos, Retardo de la senescencia (debido a su propiedad de generar alta

división celular son fuente de nutrientes, por lo que realizan su efecto de retardode la senescencia), Desarrollo de yemas laterales, inducen partenocarpia,

Fl ió d l t d dí t R l d l j i ió d


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4.2. ESPECIES ESTUDIADAS

La producción de plantas ornamentales en el Estado de Guerrero es una de lasactividades agrícolas con una gran importancia, cuyo destino de venta es el

mercado Local, Estatal y Nacional. La actividad ornamental en Guerrero tiene una

importancia estratégica, ya que esta se desarrolla en Acapulco de Juárez donde la

demanda que se presenta es principalmente por el sector hotelero; se producen

más de 100 especies ornamentales, que van desde pequeñas plantas de jardín,

plantas de interior, palmas y hasta árboles, de las cuales se producen alrededor

del 80% en la Región de Acapulco. De cada diez palmas que se venden en el

País, nueve se producen en viveros de productores Acapulqueños.

La actividad ornamental en Acapulco, viverismo, tiene sus inicios de hace más de

60 años con la creación del primer vivero llamado “Yamamoto”, el cual erapropiedad de un emprendedor japonés que estableció aproximadamente 60 ha

donde la producción de ornamentales era muy diversa, además de que también

tenía el servicio de diseño de jardines; el Sr. Yamamoto es considerado el primer

viverista de la zona de Acapulco y el más importante en los últimos años. Debido a

la gran aceptación que su proyecto alcanzo, dio la pauta para que esta actividadfuera adoptada por personas de la región, tanto así que años después surgieron

otros viveros con una gran importancia e historia pero los cuales debido al


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El Sistema Producto como una organización de y para productores de plantas

ornamentales del Estado de Guerrero, lleva a cabo acciones de gestión para la

adquisición de Equipamiento, Infraestructura y Material Vegetativo para que los

productores logren incrementar sus niveles de producción y con ello puedan ser

competitivos. Además de que el Sistema Producto busca una línea de acción para

Implementar y mejorar los procesos productivos de las empresas en desarrollo

con la innovación tecnológica, la búsqueda de financiamiento, el mejoramiento en

la competitividad y rentabilidad de dichas empresas.

Los viveros además de producir las plantas ornamentales demandas a nivel local,

estatal y nacional también son una fuente importante que genera empleos durante

todo el año. Se generan aproximadamente 8,640 empleos permanentes y 14,400

empleos indirectos esto es debido a que además de dedicarse a la producción de

plantas ornamentales, también brindan el servicio de diseño, construcción y

mantenimiento de jardinería. Las extensiones de los viveros varía de acuerdo

principalmente a las posibilidades socioeconómicas de los productores, estas

oscilan entre las 0.2 y 5 ha, aunque hay algunos que llegan a tener hasta 40 ha.

Las especies con mayor demanda en el mercado son: Palma Areca, Marginata,Crotos y Amoena; las cuales se comercializan en mayor cantidad por temporada.

Algunas de estas se propagan por semillas como es el caso de la palma areca


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Es una palmera de pequeño a mediano tamaño que puede superar varios metros

de altura, con ramificaciones desde la base. Regularmente mide de 1.5m a 3m de

alto, pero puede llegar a medir hasta 6m dependiendo de las ramificaciones que

tenga. Las hojas son arqueadas, miden de 2-3m de largo, y pinnadas, con 20-60

pares de foliolos (Fig. 1) (Friedman et al , 2013).

Figura 1. Vista panorámica de planta de Palma Areca.

Las flores, perfumadas y de color blanco a amarillo, son unisexuales; las

masculinas, más numerosas, se localizan en el ápice de la inflorescencia, mientras

que las femeninas, en menor cantidad, se sitúan hacia la base (Fig. 2) (Benítez ySoto, 2010).


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4.2.1.8. Usos

Fibra: Las fibras de cáscaras están compuestas predominantemente de celulosa

con proporciones variables de hemicelulosa, lignina, pectina y protopectina.

Madera: el tallo se puede utilizar como un material de construcción útil en los

pueblos, y es ampliamente utilizado en todo el sudeste de Asia para una variedad

de propósitos de construcción. La madera también puede ser utilizada en la

fabricación de una variedad de artículos de utilidad, tales como reglas, estantes y

cestas de papel de desecho.

Tanino o colorante: Mucho antes de que se determinara la naturaleza y

propiedades de los taninos, los taninos en areca estaban siendo utilizados para la

tintura de ropa, como adhesivo en la fabricación de madera contrachapada, y para

el curtido de cuero para uso doméstico en el sureste de Asia y los países delOcéano Pacífico.

Lípidos: La nuez contiene 8-12% de grasa que tiene características comparables

con aceite de coco. Contiene ácidos grasos tanto saturados como insaturados.

Alcohol: inoculado con Saccharomyces cerevisiae, las hojas de areca se pueden

utilizar como un estimulante de fermentación en la producción de alcohol


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4.2.2. CROTOS (Codiaeum v ariegatum L.)

Es una especie de planta en el género Codiaeum, que es un miembro de la familia

de las euforbiáceas. Es nativa del sur de la India, Sri Lanka, Indonesia, Malasia, y

las islas occidentales del océano Pacífico, que crece en los bosques abiertos y

matorrales (Wikipediaa, 2014).


Domin io :

Reino:División:

Clase:

Subclase:

Orden:

Famil ia:

Subfami l ia:

Tr ibu:Género :

Especie:

Eukaryota

PlantaeMagnol iophyta

Eudicoty ledoneae

Rosidae

Malpighiales

Euphorbiaceae

Crotonoideae

Codiaeae

Codiaeum

Codiaeum variegatum

Fuente: Wikipediaa (2014)

4.2.2.2. Taxonomía

Codiaeum variegatum fue descrita por (L.) Rumph. ex A.Juss. y publicado en De

Euphorbiacearum Generibus Medicisque earumdem viribus tentamen, tabulisaeneis 18 illustratum 80, 111, pl. 9, f. 30. 1824 (Wikipediaa, 2014)

Si i i


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diverso, dependiendo de la variedad (Fig. 4). Las flores son pequeñas (Infojardina,

2014).

Figura 4. Vista panorámica de plantas de Crotos.

4.2.2.4. Cultivo

En los climas tropicales, hacen setos atractivos y especímenes de patio en

macetas, valorados por su llamativo follaje. Sólo sobreviven al aire libre donde las

temperaturas no suelen bajar de los 10 ° a 13 ° C en invierno. Temperaturas más

frías pueden causar la pérdida de las hojas. En climas más fríos, las plantas se

cultivan en invernaderos o como plantas de interior. Los cultivos de jardín son

generalmente más pequeñas que la planta silvestre, rara vez de más de 1,8 m dealtura, y tienen una amplia diversidad de formas de hojas y colores (Planthogar,

2014)


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Temperatura: La temperatura debe estar siempre en torno a 15-16° C en invierno.

Trate de evitar los cambios de temperatura y las corrientes de aire que, al igual

que la ausencia de luz, podrían provocar la caída precoz de las hojas más bajas.

No resiste el frío.

Abonado: Durante el periodo de primavera- verano suministra un abono líquido

cada 15 días. Tenga cuidado de que la tierra no esté completamente seca, ya que

la absorción sería instantánea y dañaría la planta de manera irreparable.

Trasplante: Todos los años avanzada la primavera, hasta que el diámetro de la

maceta (que va aumentando en cada trasplante) alcance sus 25 cm. A partir de

cada año se añadirá mantillo nuevo en la parte superior.

Propagación: Para su multiplicación se utiliza para este fin los esquejes obtenidos

de la parte superior del tallo y también se multiplica por acodos.

4.2.2.6. Plagas y Enfermedades

Según Infojardinb (2014):

COCHINILLAS ALGODONOSAS Y CASPILLAS (Parlatoria sp.,Saissetia sp. y

Pseudococcus sp.)

Se delatan por lo siguiente:


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OTRAS ENFERMEDADES

Xanthomonas sp. (Bacteria)

4.2.2.7. Usos

Se usa como planta de ornato. Hay varios cientos de variedades, seleccionadas y

criadas por su follaje. Dependiendo del cultivar, las hojas pueden ser ovadas a

lineales, enteras a profundamente lobuladas o plisadas, y abigarrado con el color

verde, blanco, púrpura, naranja, amarillo, rojo o rosa. Los patrones de colorpueden seguir las venas, los márgenes o estar en manchas en la hoja. Cultivares

más populares son “Spirale”, que tiene hojas de color rojo y verde en espirales

torcidos; “Andreanum”, que tiene hojas amarillas ampliamente ovales con vetas de

oro; “Majesticum” que tiene sucursales pendulares, con hojas lineares de hasta 25

cm de largo con las venas de nervadura amarilla de maduración a rojo; y “Aureo-maculatum", que tiene hojas manchadas de amarillo.

4.2.2.8. Precauciones

Al igual que con muchas de las Euphorbiaceae, la savia es tóxica y puede causar

eccemas en la piel en algunas personas. También es tóxica si se ingiere, aunque

en pequeñas cantidades, se ha utilizado en la medicina herbal para tratar úlceras

gástricas (De Pöll, 2012).


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Reino:División:Clase:Orden:Familia:Subfamilia:Género:

Especie:

Plantae

Magnol iophyta

Li l iopsida

Asparagales

Asparagaceae

Nol inoideae

Dracaena

Dracaena m arginata Fuente: Wikipediab (2014)

4.2.3.2. Taxonomía

Dracaena reflexa var. angustifolia fue descrita por John Gilbert Baker y publicado

en Journal of the Linnean Society, Botany 14: 531. 1875 (Wikipediab, 2014).

Etimología

Dracaena: nombre genérico que deriva del griego drakaina="dragón" refiriéndonos

a la "Dracaena draco". Este árbol en la población local de las islas Canarias, fue

considerado un dragón y le atribuyeron propiedades mágicas. angustifolia: epíteto

latino que significa "con hojas estrechas" (Wikipediab, 2014).


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Arbustivo, con uno o varios troncos. Puede llegar hasta los 5 metros de altura.:Sus hojas son lineares a lanceoladas, de entre 30 y a 90 cm de longitud y de 2 a 7

cm de ancho con un margen rojo oscuro al que se debe su nombre (Fig. 5) (López,

2013).

Figura 5. Vista panorámica de plantas de Marginata.

D. marginata “bicolor”: Las hojas originales de la marginata tienen una estrecha

banda que va del color purpura a rojo a lo largo de los bordes, con la parte central


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D. marginata “bicolor”: Es parecida a la Marginata original, excepto que tiene

tres colores en sus hojas. Una banda de color amarillo separa el color verde de las

rayas rojas de los bordes, produciendo un efecto general de color verde-oro (Fig.

7).

Figura 7. Vista panorámica de las hojas de Marginata Bicolor.

D. marginata “Tricolor”: Esta es la variedad más moderna, con el mismo patrón

de crecimiento como el original (aunque quizás un poco más lento) con la

diferencia entre las dos que posee hojas más vistosas. Refleja el tricolor con los

tres colores excepto que las bandas rojas en los bordes exteriores son mucho másprominentes (Fig. 8).


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D. marginata grisácea: se asemeja a la marginata tricolor, lo único que cambia es

que las hojas poseen un color opaco o cenizo (Fig. 9).

Figura 9. Vista panorámica de las hojas de Marginata Grisácea.

4.2.3.4. Cultivo

Se reproduce con facilidad por esquejes terminales. Requieren suelo bien drenado

pero húmedo, con un pH entre 6 y 6,5. El exceso de acidez provoca clorosis en las

hojas, mientras que la alcalinidad induce deficiencias en la absorción de hierro. La

humedad ambiente ideal está entre el 60% y el 100%, y la temperatura óptima


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correctamente con 63 a 73% de sombra, aunque el rojo de los bordes cobra mayor

vividez con la exposición directa al sol (López, 2013).

Abonado-sustrato: Durante todo el periodo primaveral y veraniego, la Dracaena

debe ser abonado cada semana con un abono líquido suministrado junto al agua

de riego en cantidades mínimas 1/3, durante el periodo otoño-invernal se tienen

que suspender los abonos. Necesita un suelo poroso. La maceta que adquiramos

tiene que llevar sustrato vegetal, este sustrato está compuesto de turbas mezclado

con tierra de bosque (López, 2013).

Trasplante: Se trasplanta cada dos años en primavera, pero si se encuentran las

condiciones ambientales ideales es posible que sea necesario trasplanta cada año

en cuanto es una planta a rápido crecimiento (López, 2013).

Reproducción: Se multiplica con esquejes. En primavera, se cortan trozos de

tallo de unos 10 cm. En los esquejes terminales, se eliminan algunas hojas de la

base. Una vez introducido el corte en hormonas se planta el esqueje terminal en

una mezcla de turba y arena a partes iguales, se cubre con un plástico

transparente y se sitúa en un lugar cálido (temperatura optima 25 grados) (López,

2013).



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COCHINILLAS

Insectos que se perciben como manchas algodonosas de color blanco, situadasprincipalmente en la parte superior del tronco y en las uniones de tronco y hojas.

Tratar con producto acaricida cada 8 o 10 días durante un mes.

PULGÓN

Plaga provocada por insectos chupadores de color negro o verdes situados

principalmente en los brotes. Tratar con insecticida anti-pulgón preferiblemente 3

veces.

HONGOS

Dracaena marginata puede ser atacada por hongos, que se tratarán con fungicida.

4.2.3.7. Usos

Es una planta doméstica muy popular por la ornamentación de sus hojas, de

coloración entre verde intenso y verde pálido con bordes rojos según las especies

y cultivares. Es una de las plantas usadas en los estudios para la limpieza del aire

realizados por la NASA y ha demostrado que ayuda a eliminar el formaldehído.

4.2.3.8. Oportunidad de uso de los reguladores crecimiento


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V. MATERIALES Y METODOS

5.1. Área de Estudio

Los experimentos fueron realizados con ayuda del Sistema Producto de Plantas

Ornamentales de Guerrero A. C., el cual a su vez está coordinado con el Consejo

de Estatal Productores de Plantas Ornamentales de Guerrero, dirigidos por el Lic.

Biviano Gijón Vázquez. Se establecieron los diferentes experimentos a finales del

mes de marzo en el vivero llamado “Viveros y Jardinería El Chino” que tiene como

propietario al Sr. Fredy Solís Baltazar, ubicado en el ejido “El podrido” en Acapulco

de Juárez, Guerrero. Latitud 16°42´17´´, Longitud 99°39´22´´, Altitud 3 msnm

(Fig.10).


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municipios de Chilpancingo de Bravo y Juan R. Escudero, al sur con el Océano

Pacífico, al este con el municipio de San Marcos y al oeste con el municipio de

Coyuca de Benítez. Tiene una extensión de 1.882,60 km² que corresponden al

2,6% respecto al territorio total del estado y su litoral posee una longitud de 62 km

representando el 12,3% de la costa guerrerense.

Los experimentos fueron realizados con ayuda del Consejo Estatal de Productores

de Plantas Ornamentales de Guerrero, el cual a su vez está coordinado con el

Sistema Producto de Plantas Ornamentales de Guerrero A. C., dirigidos por el Lic.Biviano Gijón Vázquez.

5.1.2. Orografía

La orografía del municipio se divide en tres diferentes tipos de relieve, las zonas

accidentadas que abarcan un 40% del territorio, y se presentan principalmente enlos extremos norte, noreste y en una pequeña porción en la parte suroeste del

municipio; Al norte, destacan elevaciones como el Cerro de San Nicolás con 2,100

msnm, localizado muy cercano de los límites con el municipio de Chilpancingo de

los Bravo,4 las zonas semiplanas abarcan también un 40% del municipio, y las

zonas planas sólo un 20%. Otras elevaciones de importancia son el cerro Yerba

Santa con 1.120 msnm, el cerro El Encanto con 1.020 msnm y el cerro El Veladero

con 900 msnm, éste último rodea parte de la ciudad de Acapulco y es conservado


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5.1.4. Clima

El clima que predomina en el municipio es de tipo Cálido Subhúmedo con lluviasen verano extendiéndose prácticamente en casi toda su superficie. Sin embargo,

en zonas con mayor elevaciones, que cubren la parte noroeste del territorio,

persisten variaciones al presentarse un clima de tipo Semicálido subhúmedo con

lluvias en verano. Su temperatura media anual promedio presenta variaciones: en

gran parte de la zona norte del municipio va de los 22 a 26 °C; Esta parte posee

mayores elevaciones y por ende un clima templado, mientras que en la parte sur y

oriente del territorio que en su mayoría son partes bajas va de los 26 a 28 °C; aquí

suelen presentarse climas caliente y húmedo. Su precipitación anual promedio

también es variada, en su extremo sur, particularmente en el sureste, presenta

1,200 mm. En la zona centro y los extremos oeste y suroeste del territorio donde

se localiza la cabecera municipal se presentan precipitaciones de 1,500 mm. En

su extremo norte, en una muy pequeña porción, se llegan a presentar

precipitaciones de hasta 2,000 mm.

5.1.5. Ecosistemas

La flora del municipio en casi la mayor parte de su territorio es la Selva BajaCaducifolia, que se integra por diversos gérmenes bursera emulatos, lia y loma


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mismos producen, y las estacas tuvieron su procedencia de plantas madres

producidas en el mismo vivero.

5.3. Manejo del cultivo

El experimento consistió en realizar una serie de pruebas donde se evaluaron los

efectos de las Auxinas, Citocininas y Giberelinas (Cuadro 2), en tres diferentes

plantas ornamentales de gran importancia en la región como son: Palma Areca,

Marginata y Crotos. Estos experimentos se realizaron del 26 de marzo al 25 de

mayo, tiempo en el cual se realizó la toma de datos.

Cuadro 2. Compuestos usados para cada grupo hormonal.

GRUPO COMPUESTO

PRODUCTO

COMERCIAL EMPRESA Auxina Ácido Naftalenacético ANA FERTICHEM

Citocinina 6 Furforyl Amino Purina

6 Bencil Aminopurina

Kinetina

BAP

FERTICHEM

FERTICHEM

Giberelina AG3 Ácido Giberélico FERTICHEM

Fuente: Elaboración propia.


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Cuadro 3. Experimento de Marginata Verde y Tricolor tratadas con Kinetina.

TratamientoRegulador delCrecimiento

Concentración(ppm)

Frecuencia de aplicación1ra 2da

T1Kinetina

30 26-Mar-2014 02-Abr-2014T2 60 26-Mar-2014 02-Abr-2014T3 90 26-Mar-2014 02-Abr-2014

T4-Testigo

T5 Kinetina 30 26-Mar-2014 09-Abr-2014T6 60 26-Mar-2014 09-Abr-2014T7 90 26-Mar-2014 09-Abr-2014

Plantas de 8 meses de edad en bolsas del N° 15, ubicadas a una distancia de

60x60 cm (Fig. 11 y 12).


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Cuadro 4. Experimento de Palma Areca tratadas con ÁG3.


Concentración(ppm)


T1 AG3


T4-TestigoT5

AG3

50 26-Mar-2014 09-Abr-2014T6 100 26-Mar-2014 09-Abr-2014

T7 150 26-Mar-2014 09-Abr-2014

Plantas de 6 meses de edad en bolsas del N° 8, ubicadas a una distancia de

60x60 cm (Fig. 13).


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Cuadro 5. Experimento de enraizamiento de puntas de Marginata Tricolor, Verde, Grisácea yBicolor usando ANA.


Concentración(ppm) Aplicación

T1 ANA

500 27-Mar-2014T2 1000 27-Mar-2014T3 1500 27-Mar-2014

T4-Testigo

Puntas de Plantas madre de 8 meses (M. Verde y M. Tricolor) y 2 años de edad

(M. Bicolor y M. Grisácea). En macetas de 1 Litro. Enraizadas al aire libre (Fig. 14

y 15).


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Cuadro 7. Experimento de Marginata Verde y Tricolor despuntadas tratadas con BAP.


Concentración(ppm)


T1 SueloBAP

45 28-Mar-2014 04-Abr-2014T1 Foliar 90 28-Mar-2014 04-Abr-2014

T2-TestigoT3 Suelo

BAP45 28-Mar-2014 04-Abr-2014

T3 Foliar 90 28-Mar-2014 04-Abr-2014

Plantas de 8 meses de edad previamente despuntadas, en bolsas del N° 15,ubicadas a una distancia de 60x60 cm (Fig. 17 y 18).


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5.5. Modo de Preparación de los Reguladores de Crecimiento

Auxinas: Se puede usar 1N NaOH, etanol (95°), metanol o alcohol isopropílico

como solventes y agua como diluyente. Luego se puede disolver en la

concentración necesaria.

Citocininas: La Kinetina no se disuelve fácilmente en agua, por lo que debe

disolverse en Alcohol Etílico, Metílico, Isopropanol, 1N NaOH (Hidróxido de Sodio)

o KOH (Hidróxido de Potasio). Luego se puede disolver en la concentraciónnecesaria.

El BAP se solubiliza en agua a 60 ppm. Pero se solubiliza mejor en una solución

ácida, se pone un poco de BAP en agua y se le agrega un poco de ácido acético

(mejor que el etanol), luego se puede disolver en la concentración necesaria.

Giberelinas: El AG3 se disuelve fácilmente en Etanol. Generalmente en alcoholes

y acetonas. Luego se puede disolver en la concentración necesaria.

5.6. Variables evaluadas

El Grosor del tallo para la Palma Areca y La Marginata se tomó con un vernier y


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En los Crotos ya enraizados (1 y 2 semanas de enraizamiento) se le aplico

citocininas para acelerar el proceso de crecimiento de raíces, en este caso se

evaluó la calidad de raíces.

A continuación de muestran las variables evaluadas por cada especie ornamental

(Cuadro 8):

Cuadro 8. Variables evaluadas en cada experimento.

Especie

Reguladorde

Crecimientousado

Variables

Toma de Datos

Lapso(días)

Inicio Final

Palma Areca

AG3 Grosor de tallo 10 31-MAR-2014 07-MAY-2014

Altura de laplanta

7 26-MAR-2014 14-MAY-2014

Crotos Kinetina Desarrollo deraíces (calidad)

14 28-MAR-2014 11-ABR-2014

Marginata

BAP(M. Verde yTricolor)

Longitud delBrote

7 28-MAR-2014 13-MAY-2014

N° de brotes 46 28-MAR-2014 13-MAY-2014

Kinetina

(M. Verde yTricolor)

Grosor de tallo 10 31-MAR-2014 07-MAY-2014

Altura de laplanta

7 26-MAR-2014 14-MAY-2014

ANA


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VI. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

Una vez concluida la toma de datos de cada uno de los experimentos se

obtuvieron los resultados siguientes.

6.1. Palma Areca (Dypsis lutescens H. Wendel)

Para el caso de la palma areca (Dypsis lutescens, H. Wendel) se realizó la

aplicación de un regulador del crecimiento del tipo Giberelina (AG3), ya que esta

planta es la de mayor importancia económica, pero su proceso de crecimiento es

un tanto lento provocando que solo se tenga una temporada idónea para la venta.

Es por eso que con la aplicación de giberelinas se buscó que hubiera aumento en

crecimiento en altura de la planta y grosor del tallo, además de que las hojas

también presentaran un mejor desarrollo.

6.1.1. Resultados Aplicación de Ácido Giberélico (AG3)

Dentro de los resultados obtenidos para este experimento podemos encontrar, tal

como se muestra en el cuadro 10, que las plantas tratadas con AG3 si presentaron

una diferencia significativa, en cuanto a crecimiento en altura, durante el tiempo de

evaluación en comparación con el Testigo.

Cuadro 10. Resultados en Palma Areca a la aplicación de AG3.


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En los tratamientos en los cuales se hizo dos aplicaciones de AG3 en un lapso de

1 semana (T1, T2 y T3), el tratamiento T3 es el que presenta mejores resultados

respecto al crecimiento en altura, 20.67 cm (Fig. 19). Sin embargo no es el

tratamiento que presenta el mejor resultado respecto al crecimiento en grosor del

tallo, ya que el Testigo fue el mejor con un crecimiento en grosor de tallo de 1.69

mm.

Figura 19. Comparación de tratamientos con dos aplicaciones de AG3 en un lapso de 1 semana en Palma Areca.

En cuanto a los tratamientos en cuales se hizo dos aplicaciones de AG 3 en un

lapso de 2 semanas (T5, T6 y T7), el tratamiento T7 es el que presenta un mejorresultado respecto al crecimiento en altura, 23.50 cm (Fig. 20). Pero de igual


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De acuerdo con los 7 tratamientos desarrollados se observó que el crecimiento en

las plantas es mejor en los tratamientos en que se realizó dos aplicaciones de AG 3

en un lapso de 2 semanas (T5, T6, T7), tuvieron un mejor crecimiento tanto enaltura y grosor de tallo que los tratamientos en los que se realizó dos aplicaciones

en un lapso de 1 semana (T1, T2 y T3), pero de todos estos el que presenta mejor

resultado en altura es el tratamiento T7, con un crecimiento en altura de 23.50 cm,

seguido del T6 con una altura de 23.04 cm. En el aumento de Grosor de Tallo el

Testigo es el que presento mejor crecimiento, 1.69 mm, seguido del tratamientoT7 con 1.46 mm y el tratamiento T6 con 1.35 mm (Graf. 1 y Fig. 21).

Grafica 1. Resultados de los tratamientos en Palma Areca tratadas con AG3.

17.17

19.38

20.67

16.33

20.71

23.0423.50

1.42

1.34

1.19

1.69

1.14

1.35

1.46

1 00

1.10

1.20

1.30

1.40

1.50

1.60

1.70

1.80

15 00

16.00

17.00

18.00

19.00

20.00

21.00

22.00

23.00

24.00

Crecimiento

en altura

promedio

(cm)

Crecimiento

en Grosor

promedio(mm)


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6.2. Crotos (Codiaeum v ariegatum L.)

En Crotos (Codiaeum variegatum) se realizó la aplicación de un regulador del

crecimiento del tipo citocinina llamado Kinetina, con el fin de observar el efecto en

el crecimiento de raíces, ya que se dice que en algunos casos actúa junto con

otras hormonas auxiliares del crecimiento como el IAA (Ácido Indolacético), el cual

es una hormona que se encuentra de manera natural en la planta. Esto con el fin

de hacer que en las plantas previamente enraizadas se estimules un crecimiento

de raíces más rápido ya que llegan a tardar en enraizar hasta 5 semanas lo que

implica un coste elevado por la renta de túneles para enraizamiento.

6.2.1. Resultados Aplicación de Furforyl Amino Purina (Kinetina)

Dentro de los resultados de enraizamiento con la aplicación de Kinetina en Crotos

petra se pudo llegar a lo siguiente.

6.2.1.1. Crotos de 1 semana de enraizamiento

Los tratamientos se distribuyeron de acuerdo al cuadro 11.

Cuadro 11. Experimento de Crotos de 1 semana de enraizamiento tratadas con Kinetina.

Tratamiento Regulador delCrecimiento

Concentración(ppm)


T1 30 28-Mar-2014 04-Abr-2014


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74/121


75/121

6.2.1.2. Crotos de 2 semanas de enraizamiento

Los tratamientos se distribuyeron de cuerdo al cuadro 12.

Cuadro 12. Experimento de Crotos de 2 semanas de enraizamiento tratadas con Kinetina.


Concentración(ppm)


T1Kinetina


T4-TestigoT5

Kinetina30 28-Mar-2014 11-Abr-2014

T6 60 28-Mar-2014 11-Abr-2014T7 90 28-Mar-2014 11-Abr-2014

En el experimento con puntas con 2 semanas de enraizamiento y aplicación deKinetina en un lapso de 1 semana, los resultados obtenidos como se observa en

la figura 25, todos los tratamientos presentaron buena formación de raíces aunque

en diferente proporción, para los tratamientos T1 y T3 el desarrollo de las raíces

fue mayor que en los tratamientos T2 y Testigo donde las raíces fueron mucho

más delgadas y en menor número. En este experimento destaca el tratamiento T1

donde las raíces son más largas y uniformes.


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Para el caso de puntas con 2 semanas de enraizamiento y aplicación de Kinetina

en un lapso de 15 días como se observa en la figura 26, el desarrollo de raíces fue

un poco más diferenciado en cada uno de los tratamientos, en los tratamientos T6y T7 el desarrollo de las raíces fue en menor cantidad, además se presentar un

longitud no muy buena en relación con los otros tratamientos. El Testigo presentó

desarrollo medio de raíces, ya que la longitud y grosor de estas fue buena. Sin

embargo el tratamiento T5 fue el mejor, ya que el desarrollo de raíces fue un poco

mayor en relación al grosor y longitud, y al número de estas, además de tenerpresencia de raíces secundarias útiles para la planta para un buen desarrollo.


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Figura 27. Resultados del desarrollo de raíces en esquejes de Crotos de 2 semanas de enraizamiento tratadas conKinetina con aplicación en un lapso de 1 y 2 semanas.

Si comparamos ambos experimentos en Crotos se tiene que el mejor tratamiento

consiste en aplicar una concentración de Kinetina de 90 ppm con aplicación en un

lapso de 2 semanas, en puntas con 1 semana de enraizamiento.

Con lo anterior podemos obtener plantas con raíces con las características

necesarias para ser sacadas del túnel y llevadas a campo en 3 semanas. Lo cual

nos reduce el tiempo que generalmente se llevan las puntas de Crotos para

enraizar, 5 semanas, y por consiguiente disminuye el costo por el tiempo de

ocupación de túnel. Además de que al generarse raíces en un menor tiempo, las


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6.3. Marginata (Dracaena m arginata Lam)

En el caso de la marginata (Dracaena marginata) se desarrollaron tres

experimentos.

6.3.1. Resultados Aplicación de Furforyl Amino Purina (Kinetina)

En este experimento se aplicó un regulador de crecimiento del tipo citocinina

llamado Kinetina, con el fin de evaluar su efecto en el desarrollo en altura y en

grosor en plantas de marginata tricolor y verde, la primera es una de las

variedades de marginata mas tardada en su crecimiento ya que para que esta esté

en punto de venta comercial deben de pasar hasta 2 años, a diferencia de la verde

que tiene un tiempo de 8 meses.

6.3.1.1. Marginata tricolor

Dentro de los resultados obtenidos para este experimento podemos encontrar, tal

como se m

evaluación del efecto de reguladores del crecimiento en tres especies ornamentales crotos (codiaeum...

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