etude de l’activité antibactérienne de quelques isolats
TRANSCRIPT
REPUBLIQUE ALGERIENNE DEMOCRATIQUE ET POPULAIRE
MINISTERE DE L’ENSEIGNEMENT SUPERIEUR ET DE LA
RECHERCHE SCIENTIFIQUE
UNIVERSITE LARBI BEN M’HIDI– OUM EL-BOUAGHI
FACULTE DES SCIENCES EXACTES ET DES SCIENCES DE LA NATURE ET DE
LA VIE
DEPARTEMENT DES SCIENCES DE LA NATURE ET DE LA VIE
Mémoire présenté pour l’obtention du diplôme de Master en Sciences biologiques
Option : Microbiologie Appliquée
N° d’ordre :…………
N° de série :…………
Thème
Présenté par :
ANANOU Amira
Devant le jury :
Président : Mr DEROUICHE. M.C.B Université Larbi Ben M’hidi Oum El-Bouaghi.
Rapporteur : Mr HAMAMES M. M.A.A Université Larbi Ben M’hidi Oum El-Bouaghi.
Examinateur : Mr DJABALLAH C. M.A.A Université Larbi Ben M’hidi Oum El-Bouaghi.
Année Universitaire: 2017 - 2018
Etude de l’activité antibactérienne de quelques
isolats actinomycétales
Remerciements
Avant tous je remercie ALLAH le tout puissant de m'avoir aidé à
surmonter toute les difficultés lors de mes études et ce ne sont pas ces quelques
mots qui exprime mes sentiments les plus sincères. Je tiens en premier lieu à
exprimer mes sincères remerciements à mon encadreur Mr HAMAMES M
maitre assistante à l’Université LARBI BEN M’HIDI pour avoir dirigé ce travail,
pour son aide, ses précieux conseils, sa compréhension et son soutien moral
lors de la rédaction de ce manuscrit; et mon examinateur Mr DJABALLAH
Maitre assistante à l’Université LARBI BEN M’HIDI pour son aide, ses
orientations et ses corrections sérieuses pour ce travail.
J’exprime à monsieur le Docteur DEROUICH K, maitre de conférence Les toutes
mes reconnaissances, d’avoir accepté précédé ce jury. Je le remercie infiniment
et sincèrement. Ainsi j'adresse mes sincères remerciements aux tous les
enseignants du département des Sciences Biologique; les chefs et les
techniciennes de laboratoire Microbiologique de l'Université LARBI BEN
M’HIDI. Enfin je remercie ma famille : mes parents pour leurs soutiens sans
faille, parfois inquiets mais toujours compréhensifs, tout au long de ces années,
ainsi que mon frère, mes sœurs, oncles, et tantes pour leurs soutiens affectifs et
moraux. Pour tous ceux qui ont contribué à la réalisation de ce mémoire, d’une
manière directe ou indirecte.
Dédicace
Dédicace
Je Dédie ce mémoire
A mes cher parent ma mère et mon père
Pour leur patience, leur amour, leur soutien et leur
Encouragement
A mon cher fiancé nadhir
A mes sœurs chaima, ritadj, arwa
A mon frère amir
A tous mes amies et amie qui sont chers : ilhem,
chahrazed
Sommaire
Liste des figures
Liste des tableaux
Liste des photographiques
Table des matières
Page
Introduction 01
Chapitre 1 : Généralités sur les actinomycètes
1. Généralités 02
2. Caractéristiques 02
2 .1. Caractéristiques morphologiques 02
2.2. Caractéristiques physiologiques 03
3. Ecologie 03
4. Classification 03
5. Cycle de développement 04
6. Formation du mycélium 04
7. Formation des spores 05
7.1. Endospores 05
7.2. Exospores 05
Chapitre 2 : Matériel et méthodes
1. Origine des souches actinomycétales 06
2. La recherche de l’activité antibactérienne (technique des cylindres d’agar) 06
2.1. Repiquage des souches actinomycétales 06
2.2. Préparation des souches tests 06
Chapitre 3 : Résultats et discussion
1. Résultats de la technique des cylindres d’agar 08
Conclusion et perspectives 12
Références bibliographiques 13
Annexes
Résumé
Abstract
Liste des figures
N° Titre Page
01 Cycle de développement des Streptomyces sur milieu solide. 04
02 Schéma représentatif de la technique des cylindres d’agar. 07
03 Représentation graphique des pourcentages des isolats actinomycétales
ayant une activité antibactérienne vis-à-vis des souches tests utilisées. 09
04 Représentation graphique de l’activité des isolats actinomycétales vis-à-vis
de chaque souche test utilisée. 10
Liste des tableaux
N° Titre Page
01 Classification de la classe des Actinobacteria. 03
02 Souches bactériennes utilisées pour le test d’activité. 06
03 Les diamètres des zones d’inhibitions obtenus dans la technique des
cylindres d’agar. 08
Liste des photographiques
N° Titre Page
01 et 02 Activités des souches B7, D1 II et B3 vis-à-vis de Citrobacter freundii
(ATCC 8090). 11
03 et 04 Activités des souches SA2 III et E10 vis-à-vis de Staphylococcus aureus
(ATCC 25923). 11
05 et 06 Activités des souches D1 II, ZC7, A9 et C1 vis-à-vis de Escherichia coli
(ATCC 25922). 11
Introduction
Introduction
1
Le sol héberge différents types de microorganismes. Les actinomycètes sont l'un
des grands groupes de la population du sol. Ils représentent presque 10 à 50% de la
communauté microbienne totale. Numériquement, ils sont moins dominants que les
bactéries et plus dominants que les champignons (Silini, 2012).
Ce sont des bactéries filamenteuses et ramifiées. Ces aspects morphologiques
fondamentaux ont constitué durant de nombreuses années les critères essentiels de
reconnaissance. Ils sont actuellement insuffisants pour définir le groupe des actinomycètes,
très largement diversifié dans ses nombreux genres et espèces (Leclerc et al., 1977).
Les actinomycètes apparaissent comme de précieux auxiliaires de l'environnement
grâce à la variété des biodégradations qu'ils effectuent (Pelmont, 1993). Ils sont aussi la
source de la plupart des antibiotiques utilisés en médecine aujourd’hui (Prescott et al.,
2011).
Dans ce cadre, notre objectif est de déterminer l’activité antibactérienne de
certaines souches d’actinomycètes isolées à partir du sol de la retenue collinaire d’Ourkis.
Généralité sur les
actinomycètes
Généralité sur les actinomycètes
2
1. Généralités
Waksman divise en quatre grandes catégories l’histoire des actinomycètes
(Boudmaghe, 2007) :
La première période de (1874-1890) est celle de la découverte de leur rôle dans la
pathologie ;
La seconde période (1900-1919) se rapporte à la mise en évidence et à l’étude des
actinomycètes du sol, avec les travaux de Kraisky, de Cohn, de Waksman et de
Curtis ;
La troisième période (1919-1940) au cours de laquelle une meilleure connaissance des
germes a été acquise grâce aux recherches de Waksman, de Lieske, de Krassilnikov ;
La dernière époque historique, enfin, est celle des antibiotiques produits par les
actinomycètes. Elle commence en 1940 et le nom de Selman Waksman lui est
indissolublement lié.
Les actinomycètes sont des bactéries à Gram positif qui tendent à former des filaments
ramifiés jusqu’à un véritable mycélium. Les filaments peuvent être très courts ou très
développés. Le diamètre varie de 0,5 µm à 2 µm. La fragmentation des filaments donne
parfois des formes coccoïdes. Les spores peuvent être isolées ou en chainettes. Dans le cas
des Actinoplanaceae les spores mobiles ou non sont dans un sporange (Larpent et Larpent,
1985).
Ils ont une vraie importance pour le domaine de la biotechnologie en tant que
producteurs d'une pléthore de métabolites secondaires bioactifs ayant de vastes applications
industrielles, médicales et agricoles. Les actinomycètes produisent la majorité des
antibiotiques naturels (Barka et al., 2016).
2. Caractéristiques
2 .1. Caractéristiques morphologiques
Les caractères morphologiques principalement utilisés dans la classification des
actinomycètes sont (Silini, 2012):
La présence de l’importance et la disposition des hyphes du mycélium du substrat ou
du mycélium aérien ;
La présence de spores, leur mobilité, leur disposition sur les hyphes et leurs formes.
Généralité sur les actinomycètes
3
La présence des structures particulières comme les sporanges, les sclérotes ou
synnemata.
2.2. Caractéristiques physiologiques
Les principaux caractères physiologiques utilisés en taxonomie des actinomycètes sont
(Zerizer, 2014) :
Les optimales du pH et de la température de croissance ;
La sensibilité au chlorure de sodium et aux antibiotiques ainsi qu’à certains agents
chimiques; L'utilisation de sources carbonées et azotées ainsi que la dégradation de
certains polymères tels que l'amidon, la caséine et la gélatine ;
La production de mélanine.
3. Ecologie
Les actinomycètes sont des microorganismes ubiquitaires que l’on rencontre dans la
plupart des niches écologiques. La grande majorité est d’origine tellurique et c’est à partir du
sol que ces bactéries peuvent coloniser de nombreux biotopes: air, composts, eaux, fourrages,
fumiers, grains de céréales, systèmes d’air climatisé, poussière de maison, foin et pailles,
résidus fibreux de canne à sucre, pollen des plantes et bien d’autres substrats (Boudjelal,
2012).
4. Classification
Les actinomycètes appartiennent au règne des Procaryotes, à la division des Firmicutes
et à la classe des Actinobacteria, contenant l’ordre des Actinomycetales. La classe des
Actinobacteria se présente dans ce tableau suivant (Loucif, 2011) :
Tableau 01 : Classification de la classe des Actinobacteria.
Sous-classe Ordre Famille
Acidimicrobidae Acidimicrobiales Acidimicrobiaceae
Rubrobacteridae Rubrobacteriales Rubrobacteraceae
Coriobacteridae Coriobacteriales Coriobacteriaceae
Sphaerobacteridae Sphaerobacteriales Sphaerobacteraceae
Actinobacteridae Actinobacteriales
Généralité sur les actinomycètes
4
5. Cycle de développement
Les actinomycètes ont un cycle de développement complexe (figure 1), il débute par la
germination d’une spore, qui donne naissance à un mycélium primaire formé d’hyphes qui se
ramifie. Le développement du mycélium du substrat vers la partie superficielle donne le
mycélium "secondaire" ou aérien, les extrémités des hyphes aériens se différencient pour
former des spores, qui sont des agents de dissémination (Boudjelal, 2012).
Figure 1: Cycle de développement des Streptomyces sur milieu solide (Boudjelal, 2012).
6. Formation du mycélium
Le mycélium de substrat des actinomycètes varie en taille, en forme et en épaisseur, sa
couleur varie du blanc ou pratiquement incolore au jaune, brun, rouge, rose, orange, vert ou
noir. Généralement, le mycélium aérien est plus épais que le mycélium du substrat.
(Dhanasekaran et Jiang, 2016).
Généralité sur les actinomycètes
5
7. Formation des spores
Il y’a deux types principales de spores des actinomycètes :
7.1. Endospores
C’est une réorganisation du cytoplasme avec la formation d’une nouvelle paroi dans
l’hyphe. Elles sont caractéristiques du genre Thermoactinomyces (Kitouni, 2007).
7.2. Exospores
Elles naissent de la formation de parois transversales à partir des hyphes existantes.
Une subdivision supplémentaire est également réalisée selon la présence.
Ainsi, la formation d’exospores par fragmentation d’hyphes avec enveloppe est la plus
fréquente et se retrouve notamment chez Actinoplanes et Streptomyces.
La formation d’exospores par fragmentation d’hyphes du substrat sans enveloppe se
rencontre avec Micromonospora. Les conidies peuvent, suivant les groupes, être produites
isolément (Micromonospora), deux à deux longitudinalement (Microbispora), en courtes
chaines (Actinomadura), et en longues chainettes (Streptomyces). Les chainettes de spores
peuvent être ramifiées ou non, droites, sinuées ou en spirales de plus, elles peuvent être
rayonnantes autour d’hyphes sporophores (Streptoverticillium) (Kitouni, 2007).
Matériel et méthodes
Matériel et méthodes
6
1. Origine des souches actinomycétales
19 souches d’actinomycètes isolées à partir du sol de la retenue collinaire d’Ourkis ont
été sélectionnées pour le test de l’activité antibactérienne vis-à-vis de 5 souches tests en
utilisant la technique des cylindres d’Agar.
2. La recherche de l’activité antibactérienne (technique des cylindres d’agar)
2.1. Repiquage des souches actinomycétales
Les 19 souches d’actinomycètes ont été repiquées à la surface du milieu ISP5 à 5% de
NaCl par des stries serrés afin d’obtenir un tapis microbien. Les boites sont par la suite
incubées pendant 14 jours à 30°C.
2.2. Préparation des souches tests
L’activité antibactérienne des isolats actinomycétales est recherchée contre les
bactéries tests suivantes (Tableau 02):
Tableau 02 : Souches bactériennes utilisées pour le test d’activité.
Souches bactériennes Gram des souches Code des souches
Salmonella typhimurium Négatif (ATCC 1331101)
Citrobacter freundii Négatif (ATCC 8090)
Pseudomonas aeruginosa Négatif (ATCC 27853)
Escherichia coli Négatif (ATCC 25922)
Staphylococcus aureus Positif (ATCC 25923)
Pour chaque bactérie test, un inoculum est réalisé à partir d’une culture de 24 heures.
Une suspension bactérienne est préparée dans l’eau physiologique stérile puis comparée au
standard (0,5 McFarland) et en fin ensemencée sur une gélose Mueller Hinton par un
écouvillon stérile trempé dans la suspension bactérienne.
La technique des cylindres d’agar consiste à déposer, sur les boites contenant de la
gélose Mueller Hinton déjà ensemencée par les souches tests, des cylindres de gélose de 6mm
de diamètre prélevés à partir des cultures jeunes des souches d’actinomycètes.
Les boites préparées sont placées par la suite au réfrigérateur à 4°C pendant 4 heures
pour permettre une bonne diffusion des substances actives. Les boites sont ensuite incubées à
37°C pendant 24 (Boughachiche et al., 2012).
Matériel et méthodes
7
Après l’incubation, un résultat positif ; c’est-à-dire présence d’une activité
antibactérienne, se traduit par l’apparition d’une zone de lyse au tour des cylindre d’Agar. Le
diamètre de la zone d’inhibition est mesuré à l’aide d’une règle graduée.
Figure 02 : Schéma représentatif de la technique des cylindres d’agar.
Zone où la croissance des
bactéries est inhibée Zone où les bactéries se
développent normalement
Boite de
Pétri
Cylindre
d’agar
Culture de la
souche test
sur Muller-
Hinton
Mesure du diamètre de
la zone d’inhibition
Résultats et
discussion
Résultats et discussion
8
1. Résultats de la technique des cylindres d’agar
Les diamètres des zones d’inhibitions vis-à-vis des différentes souches tests sont
regroupés dans le tableau 03 :
Tableau 03 : Les diamètres des zones d’inhibitions obtenus dans la technique des
cylindres d’agar.
Isola
ts
acti
nom
ycéta
les
Souches tests
Cit
robacte
r
freu
ndii
AT
CC
8090
Salm
on
ell
a
typh
imu
riu
m
AT
CC
13311
Pse
udom
on
as
aeru
gin
osa
AT
CC
27853
Esc
heri
ch
ia
coli
AT
CC
25922
Sta
ph
ylo
coccu
s
au
reu
s
AT
CC
25923
Sa2 III - - - - 30mm
A9 15mm - - 35mm -
E9 17mm - - - -
C1 - - - 16mm -
C3 - - - - -
B4 - - - - -
E6 - - - 20mm -
D1 I 35mm - - 55mm -
SA2 II - - - - 30mm
B3 24mm - - - -
B2 - - - - -
C8 - - - - -
E8 - - - 30mm -
B7 14mm - - - -
E10 - - - - 16mm
A10 - - - - -
ZC7 17mm - - 25mm -
D3 - - - - -
D1 II 0,2mm - - 30mm -
À partir de l’ensemble des résultats mentionnés dans le tableau 03, on peut conclure
que :
Résultats et discussion
9
Sur l’ensemble des 19 isolats actinomycétales testés, 13 isolats présentent au moins
une activité antibactérienne vis-à-vis des souches tests utilisées ; soit un taux de
64,42% ;
Parmi les isolats actinomycétales ayant une activité antibactérienne, 4 ont une
double activité ; c’est-à-dire vis-à-vis de deux souches tests utilisé. Ceux sont A9,
D1 I, ZC7 et D1 II ;
Figure 03 : Représentation graphique des pourcentages des isolats actinomycétales ayant
une activité antibactérienne vis-à-vis des souches tests utilisées.
Les souches A9, E9, D1 I, B3, B7, ZC7, D1II présentent une activité
antibactérienne vis-à-vis de la souche Citrobacter freundii (ATCC 8090) dont le
diamètre le plus grand est donné par la souche D1 I (35mm);
Les souches A9, C1, E6, D1 I, E8, ZC7, D1 II présentent une activité
antibactérienne vis-à-vis de la souche Escherichia coli (ATCC 25922) dont le
diamètre le plus important est donné par la souche D1 I (55mm);
Les souches SA2 II, SA2 III et E10 présentent une activité antibactérienne vis-à-vis
de la souche Staphylococcus aureus (ATCC 25923) dont le diamètre le plus
important est donné par les deux souches SA2 II et SA2 III (30mm) ;
64,42%
35,58%
Isolats ayant une activité
antibactérienne
Isolats n'ayant pas une
activité antibactérienne
Résultats et discussion
10
Aucune activité antibactérienne n’a été déterminée vis-à-vis des deux souches
Salmonella typhimurium (ATCC 13311) et Pseudomonas aeruginosa (ATCC
27853).
Figure 04 : Représentation graphique de l’activité des isolats actinomycétales vis-à-vis de
chaque souche test utilisée.
En comparant les diamètres d’inhibition donnés par les 4 souches actinomycétales
ayant une double activité, on peut dire que les molécules antibactériennes produites
par ces souches sont plus efficaces sur la souche Escherichia coli (ATCC 25922)
par rapport à la souche Citrobacter freundii (ATCC 8090). En d’autre terme, ce
résultat montre que la souche Citrobacter freundii (ATCC 8090) résiste mieux aux
molécules antibactériennes produites par rapport à la souche Escherichia coli
(ATCC 25922) ;
Parmi les 19 souches d’actinomycètes testées, 10 montrent une activité vis-à-vis
des bactéries tests à Gram négatif alors que 3 uniquement montrent une activité
vis-à-vis de la souche test à Gram positif. Autrement dit, les isolats actinomycétales
ayant une activité vis-à-vis de la souche Staphylococcus aureus (ATCC 25923) ne
montrent aucune activité vis-à-vis des 4 souches tests Gram négatif utilisées.
0
5
10
15
20
25
30
35
40
Pou
rcen
tage
%
Isolats actinomycétales
Résultats et discussion
11
Photographies 01 et 02 : Activités des souches B7, D1 II et B3 vis-à-vis de Citrobacter
freundii (ATCC 8090).
Photographies 03 et 04 : Activités des souches SA2 III et E10 vis-à-vis de Staphylococcus
aureus (ATCC 25923).
Photographies 05 et 06 : Activités des souches D1 II, ZC7, A9 et C1 vis-à-vis de
Escherichia coli (ATCC 25922).
Conclusion
et
perspectives
Conclusion et perspectives
12
L’étude de l’activité antibactérienne de 19 isolats actinomycétales vis-à-vis de 5
souches tests (Citrobacter freundii (ATCC 8090), Escherichia coli (ATCC 25922),
Salmonella typhimurium (ATCC 13311), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853)
et Staphylococcus aureus (ATCC 25923)) nous a permis de conclure que :
64,42% des isolats présentent au moins une activité antibactérienne vis-à-vis des
souches tests utilisées. Parmi ces isolats, 4 ont une double activité ; c’est-à-dire vis-à-
vis de deux souches tests utilisé. Ceux sont A9, D1 I, ZC7 et D1 II ;
36,84% des isolats présentent une activité antibactérienne vis-à-vis de la souche
Citrobacter freundii (ATCC 8090);
36,84% des isolats présentent une activité antibactérienne vis-à-vis de la souche
Escherichia coli (ATCC 25922);
15,78% des isolats présentent une activité antibactérienne vis-à-vis de la souche
Staphylococcus aureus (ATCC 25923);
Aucune activité antibactérienne n’a été déterminée vis-à-vis des deux souches
Salmonella typhimurium (ATCC 13311) et Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853).
A partir de ces résultats, nous pouvons proposer comme perspectives les points suivants :
Des études supplémentaires pour l’identification des molécules bioactives secrétées
par les souches isolées.
Identification des souches actinomycètes isolées par techniques de biologie
moléculaire.
Optimiser la production des molécules à intérêt.
Références
bibliographiques
Références bibliographiques
13
B
Barka E A, Vasta P, Sanchez l, Gaveau –Vaillant N, Jacquard C, Meier-Kolthoff JP,
Klenk HP, Clément C, Ouhdouch Y, Van Wezel GP. (2015). Taxonomy, physiology and
natural products of Actinobacteria. Microbiol Mol Biol Rev ; 80(1):1-43.
Boucheffa K. (2011). Criblage de souches d’actinomycètes productrices d’antifongiques non
polyèniques : identification des souches productrices et essai de caractérisation des
antifongiques produits. Mémoire de magister en microbiologie appliquée. Université
Abderrahmane mira Bejaia. Algérie. P : 12-13
Boudemagh A. (2007). Isolement, à partir des sols sahariens, de bactéries actinomycétales
antifongiques, identification moléculaire de souches actives. Thèse de doctorat en
microbiologie appliquée. Université Mentouri de constantine. Algérie. P : 22
Boudjellal-bencheikh F. (2012). Taxonomie et antagonisme des actinomycètes halophiles
d’origine saharienne et caractérisation des composés bioactifs sécrétés par Actinoalloteichus
sp. AH97. Thèse de doctorat en sciences agronomiques, Ecole nationale supérieure
agronomiques El-harrach, Alger. P:26
Boughachiche F., Reghioua S., Zerizer H, Boulahrouf A. (2012). Activité antibactérienne
d’espèces rares de Streptomyces contre des isolats cliniques multirésistants. Ann Biol Clin ;
70 (2) : 169-74.
D
Dharumadurai D. (2016). Actinobacteria, Basic and biotechnological applications.
IntechOpen. pp 3-37
K
Kitouni M. (2007). Isolement de bactéries actinomycétales productrices d’antibiotiques à
partir d’écosystèmes extrêmes. Identification moléculaires des souches actives et
caractérisation préliminaires des substances élaborées. Thèse de Doctorat. Université
Mentouri de Constantine. Algérie. p:16-17
Références bibliographiques
14
L
Larpent J-P, Larpent-Gourgaud M. (1985). Eléments de microbiologie. Des sciences et des
arts. p 264
Leclerc H, Buttiaux R., Guillaume. J., Wattre. P. (1977). Microbiologie appliquée. Doin-
paris VI. P:67
Loucif K. (2011) :Recherche de substances antimicrobiennes à partir d’une collection de
souches d’actinomycètes. Caractérisation préliminaire de molécules bioactives. Mémoire de
magistère en microbiologie. Université Mentouri-Constantine. P10-12.
P
Pelmont J. (1993). Bactéries et environnement adaptations physiologiques, press
universitaires de grenoble. P 100
Prescott, Willey, Sherwood, Woolverton. (2011). Microbiologie. Debook, 4e édition. P 568
S
Silini S. (2012). Contribution à l’étude de la biodégradation de méthyléthyl cétone en réacteur
bath par les actinomycètes isolés à partit des boues activées de la station d’épuration d’El
Atmania. Mémoire de Magister en Ecologie. Université Mentouri -Constantine, Algérie. P 23-
34-39.
Z
Zerizer H. (2014). Les genres d’actinomycètes (hors mycobactéries) impliqués dans les
infections dans la région de Constantine. Thèse de Doctorat en Sciences en Biochimie et
Microbiologie Appliquées. Université Constantine 1.p 11.
Annexe
Annexes
Annexes :
Les composants des milieux de culture :
Milieu ISP5
Glycérol 10g
L-Asparagine 1g
K2HPO4 1g
Solution saline 1ml
Eau distillée 1000ml
Agar 20g
pH= 7.4
Eau physiologique
Chlorure de sodium 9g
Eau distillée 1000ml
Milieu Muller Hinton
Extrait de viande 38g
Hydrolysat acide de caséine 17,5g
Amidon 1,5g
Agar 16g
Eau distillée 1000ml
pH=7.3
Résumés
Résumé
19 isolats d’actinomycètes ont été utilisées pour étudier leur activité antibactérienne,
vis-à-vis de 5 souches tests (Citrobacter freundii (ATCC 8090), Escherichia coli (ATCC
25922), Salmonella typhimurium (ATCC 13311), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853)
et Staphylococcus aureus (ATCC 25923)) par la technique des cylindres d’agar. Les résultats
montrent que 64,42% des isolats présentent au moins une activité antibactérienne vis-à-vis
des souches tests utilisées. 36,84% des isolats présentent une activité antibactérienne vis-à-vis
de la souche Citrobacter freundii (ATCC 8090) tandis que 36,84% présentent une activité
antibactérienne vis-à-vis de la souche Escherichia coli (ATCC 25922). Seulement 15,78% des
isolats présentent une activité antibactérienne vis-à-vis de la souche Staphylococcus aureus
(ATCC 25923) alors qu’aucune activité antibactérienne n’a été déterminée vis-à-vis des deux
souches Salmonella typhimurium (ATCC 13311) et Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853).
Mots clés : actinomycètes, activité antibactérienne, molécules bioactives, souches tests.
Abstract
19 isolates of actinomycetes were used to study their antibacterial activity against 5
test strains (Citrobacter freundii (ATCC 8090), Escherichia coli (ATCC 25922), Salmonella
typhimurium (ATCC 13311), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853) and Staphylococcus
aureus (ATCC 25923)) by the agar roll technique. The results show that 64.42% of the
isolates have at least one antibacterial activity to the test strains used. 36.84% of the isolates
showed antibacterial activity against the strain Citrobacter freundii (ATCC 8090) while
36.84% exhibited antibacterial activity against the strain Escherichia coli (ATCC 25922).
Only 15.78% of the isolates showed antibacterial activity against the Staphylococcus aureus
strain (ATCC 25923) whereas no antibacterial activity was determined for both strains
Salmonella typhimurium (ATCC 13311) and Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853).
Key words: actinomycetes, antibacterial activity, bioactive molecules, test strains.
Nom: Ananou
Prénom: Amira Date de soutenance : 18 / 06 / 2018
Etude de l’activité antibactérienne de quelques isolats actinomycétales
Résumé
19 isolats d’actinomycètes ont été utilisées pour étudier leur activité antibactérienne, vis-à-vis
de 5 souches tests (Citrobacter freundii (ATCC 8090), Escherichia coli (ATCC 25922), Salmonella
typhimurium (ATCC 13311), Pseudomonas aeruginosa (ATCC 27853) et Staphylococcus
aureus (ATCC 25923)) par la technique des cylindres d’agar. Les résultats montrent que 64,42% des
isolats présentent au moins une activité antibactérienne vis-à-vis des souches tests utilisées. 36,84%
des isolats présentent une activité antibactérienne vis-à-vis de la souche Citrobacter freundii (ATCC
8090) tandis que 36,84% présentent une activité antibactérienne vis-à-vis de la souche Escherichia coli
(ATCC 25922). Seulement 15,78% des isolats présentent une activité antibactérienne vis-à-vis de la
souche Staphylococcus aureus (ATCC 25923) alors qu’aucune activité antibactérienne n’a été
déterminée vis-à-vis des deux souches Salmonella typhimurium (ATCC 13311) et Pseudomonas
aeruginosa (ATCC 27853).
Mots clés : actinomycètes, activité antibactérienne, molécules bioactives, souches tests.
Président : Mr DEROUICHE K. M.C.B Université Larbi Ben M’hidi Oum El-Bouaghi.
Rapporteur : Mr HAMAMES M. M.A.A Université Larbi Ben M’hidi Oum El-Bouaghi.
Examinateur : Mr DJABALLAH C. M.A.A Université Larbi Ben M’hidi Oum El-Bouaghi.