enfermedades de las musáceas: aspectos generales con ... · cavendish en subtrópicos mal de...
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12/10/2013
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Enfermedades de las musáceas: aspectos generales con énfasis en
patógenos cuarentenarios.
Luis Pérez VicenteInstituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal (INISAV)Investigador Honorario Bioversity International
Luis Pérez VicenteInstituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal (INISAV)Investigador Honorario Bioversity International
Curso de Capacitación sobre Diagnóstico y Manejo del Mal de Panamá de las Musáceas (Fusarium oxysporum f. sp. cubense): Creando Capacidades para
la Prevención de la Entrada y Detección Temprana de la Raza 4 TropicalQuevedo, Ecuador Diciembre 10-14, 2013
Curso de Capacitación sobre Diagnóstico y Manejo del Mal de Panamá de las Musáceas (Fusarium oxysporum f. sp. cubense): Creando Capacidades para
la Prevención de la Entrada y Detección Temprana de la Raza 4 TropicalQuevedo, Ecuador Diciembre 10-14, 2013
Principales limitantes a la producción en AL&CSistemas de producción Principales limitantes.
Cavendish intensivo tropical para exportación
Sigatoka negra , nematodos, marchitez bacteriana o moko (R. solanacearum); regulaciones ambientales y de seguridad laboral; estreses abióticos (huracanes, inundaciones/sequía)
Producción orgánica de Cavendish Sigatoka negra, nematodos; trips de los frutos; BSVCavendish en subtrópicos Mal de Panamá (Fusarium oxysporum sp. cubense);
estreses abióticos (temperaturas bajas)Monocultivo de plátanos Sigatoka negra, nematodos, Cosmopolites sordidus,
Banana streak badnavirus (BSV), pudriciones del pseudotallo y rizoma por Dickeya spp., pudrición suave del rizoma por Pectobacterium carotovorum, marchitez bacteriana o moko (R. solanacearum)
Cultivos mixtos de musáceas con cacao, cocoteros, forestales , café, etc.
Sigatoka negra, Mal de Panamá
Cultivos mixtos/ monocultivo de bananos y plátanos en pequeñas parcelas (para consumo del hogar o mercado local)
Sigatoka negra; Mal de Panamá; Marchitez bacteriana o moko.
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LAS MANCHAS TIPO SIGATOKA EN Musa spp.
Mycosphaerella musicola Leach ex Mulder (Sigatoka amarilla).Pseudocercospora musae (Zimm). Deighton
Mycosphaerella fijiensis Morelet (Sigatoka negra / Raya negra).Pseudocercospora fijiensis (Morelet) Deighton
Mycosphaerella eumusae (Mancha tipo Sigatoka eumusae) *Pseudocercospora eumusae
Mycosphaerella musae Speg. (Peca de la hoja).Stenella sp..
Mycosphaerella minima Stahel. (Peca de la hoja).
* No presente en América
ESPECIES DE Mycosphaerella ASOCIADAS a Musa spp.
Sigatoka amarilla - Mycosphaerella musicola(Pseudocercospora musae)
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Sigatoka Mycosphaerella musicola(Pseudocercospora musae)
Sigatoka Mycosphaerella musicola(Pseudocercospora musae)
IV V
I y II III
Foto L. Pérez-Vicente
Sigatoka Mycosphaerella musicola(Pseudocercospora musae)
Sigatoka Mycosphaerella musicola(Pseudocercospora musae)
Foto Liberato et al. (2009)
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Característica de las epidemias y factores de distribución e impacto.Característica de las epidemias y factores de distribución e impacto.
9 En el Caribe y Centro América, un gran número de informes de primera presencia en los años 30.
9 La epidemias en el Caribe y la mayoría de los países ocurrieron dos años después de la entrada del patógeno.
9 Ausencia de regulaciones cuarentenarias. Los estudios con marcadores moleculares han permitido establecer que la dispersión ha sido debida a introducciones de material vegetativo infectado (Hayden, 2005).
9 Gran uniformidad genética debido a grandes superficies de cultivo de los clones Gros Michel y Cavendish (AAA) susceptibles
9 Se inició el uso de fungicidas y las inversiones en equipos de aspersión en la producción bananera
9 En el Caribe y Centro América, un gran número de informes de primera presencia en los años 30.
9 La epidemias en el Caribe y la mayoría de los países ocurrieron dos años después de la entrada del patógeno.
9 Ausencia de regulaciones cuarentenarias. Los estudios con marcadores moleculares han permitido establecer que la dispersión ha sido debida a introducciones de material vegetativo infectado (Hayden, 2005).
9 Gran uniformidad genética debido a grandes superficies de cultivo de los clones Gros Michel y Cavendish (AAA) susceptibles
9 Se inició el uso de fungicidas y las inversiones en equipos de aspersión en la producción bananera
Sigatoka negra Mycosphaerella fijiensis(Pseudocercospora fijiensis)
Sigatoka negra Mycosphaerella fijiensis(Pseudocercospora fijiensis)
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Historia de la pandemia de Sigatoka negra en América
Bo, 1996
Estados de evolución de los síntomas de Sigatoka negra y efectos sobre la maduración
Foto L. Perez Vicente
Foto: L. Perez Vicente
Foto: L. Perez Vicente
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Matrix de correlaciones entre variables climáticas y el estado de evolución de SN en bananos y plátanos. Empresa La Cuba
Ciego de Avila Province.Variabledepend.
Estado de evolución (semanas)Gran enano (AAA) CEMSA 3/4 (AAB)
3 4 5 6 4 5 6 7Ll 7
(mm)0.56**
* 0.61*** 0.74*** 0.41* 0.48** 0.60*** 0.58*** 0.55*
DLl 7 (min.) 0.45** 0.48** 0.77*** 0.52** 0.39 * 0.64 *** 0.55** 0.54*
LL 10 (mm)
0.54*** 0.80*** 0.71*** n.s. 0.59*** 0.74*** 0.62*** 0.40*
DLl 10 (min.) 0.39 * 0.74*** 0.73*** n.s. 0.50** 0.74*** 0.57*** 0.38*
LL14 (mm)
0.64*** 0.77*** 0.69*** n.s. 0.65*** 0.74*** 0.64*** 0.39*
DLl14 (min.) 0.51** 0.75*** 0.73*** n.s. 0.58*** 0.72*** 0.62*** 0.38*
H7 (mm) n.s. 0.72** 0.71** 0.53* 0.66* 0.54* 0.54* n.s.
H 10 (mm) n.s. 0.79 ** 0.70 ** n.s. 0.81*** 0.55* n.s. n.s
H14 (mm) n.s. 0.83 ** 0.68 * n.s. n.s. 0.81*** 0.55* n.s.
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Relación entre la lluvia acumulada durante 14 días y la velocidad de evolution de Sigatoka negra en diferentes
plantaciones de Cuba, Costa Rica y Ecuador
050
100150
200250300350400450
1 6 11 16 21 26 31 36 41 46 51weeks
Rai
nfal
l
0
200
400
600
800
1000
1200
SE
Daily rainfall accumulated 14 days SE
0
500
1000
1500
2 000
2 500
47 50 1 4 7 10 13 16 19 22 25 28 31 34 37 50Weeks
Rai
nfal
l
020 040 060 080 010 0012 0014 0016 0018 0020 00
SE
D aily ra infa ll a cum ula te d 14 days SE
El Colono, Costa Rica 2000
020406080
100120140160180
1 6 11 16 21 26 31 36 41 46 51Weeks
Rai
nfal
l
0
100
200
300
400
500
600
700
Daily accumulated rainfall SE
Primo BananoEl Guayas, Ecuador, 1998
0
50
100
150
200
250
1 6 11 16 21 26 31 36 41 46 51 4 9 14Weeks
Ra
infa
ll
0200400600800100012001400160018002000
Daily rainfall accumulated for 14 days SE
ECV La Cuba, Ciego de Avila, Cuba, 1995
Probanano, El Oro, Ecuador, 2001- 2002
Manejo de Sigatoka negra con aviso bioclimáticos en dos fincas plantadas de Gran enano; 1992 y 1993
14 cyclesYLS threshold
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Comparación del número de aplicaciones por avisos bioclimáticos y por ciclos programados y costos de la protección contra Sigatoka negra en
diferentes plantaciones de bananos Cavendish en CubaPLANTACION APLICACIONES POR PROGRAMA APLICACIONES POR AVISOS
AÑ0 NUMERO DE COSTO AÑO NUMERO DE COSTO CICLOS TOTAL/HA CICLOS TOTAL/HA
LA CUBA 1991 21 801.241992 23 619.66 1993 15 568.74
1994 13 303.291995 12 299.331996 12 269.52
LIMONCITO 1994 22 476.19 1995 13 246.481996 13 288.72
QUEMADO 1994 SN NO PRESENTE 1995 8 172.39DE GUINES 1996 9 193.21
MENENDEZ 1994 18 412.09 1995 23 518.49
SOLA 1994 11 221.561995 12 282.781996 11 237.31
NUEVA PAZ 1994 23 599.66 1996 13 326.56
GUINES 1994 SN NO PRESENTE 1995 13 308.961996 10 (HURACÁN) 219.78
Grupos químicos utilizados en el manejo de Sigatoka negra: lanzamiento al mercado, pérdida de sensibilidad, resistencia
Lanzamiento Pérdida sensibilidad Resistencia1965 1970 1975 1980 1985 1990 1995 2000 2005
AminasAminas
DMI’s azolesDMI’s azoles
EstrobilurinasEstrobilurinas
Anilino-pyrimidinasAnilino-pyrimidinas
5 modos de acción Frecuencia de resistencia : 60% (3 de 5) Lag fase media: 9± 7 años5 modos de acción Frecuencia de resistencia : 60% (3 de 5) Lag fase media: 9± 7 años
BenzimidazolesBenzimidazoles
Pyrazole- carboxamidesPyrazole- carboxamides
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Manejo integrado de Sigatoka negra
Eliminación de fuentes de
inóculo (campos abandonados)
Saneamiento cirugía, despuntes, deshoje temprano,
Uso de clones resistentes.
Mejoramiento convencional y transgénesis
Monitoreo de la evolución y
sistemas de aviso bioclimático
Control químico. Fungicidas y monitoreo de sensibilidad a
fungicidas
Generalización del control a nivel regional Prácticas culturales que
potencien tasas altas de emergencia de hojas y creen condiciones desfavorables a
la enfermedadTecnologías
de aplicación y aspersión
¿Biocontrol? .Otros métodos
alternativos al control químico
Mancha , tizón foliar y punta negra de los frutos(Deightoniella torulosa)
L. P
erez
Vice
nte
Afecta hojas y frutos
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Punta negra de plátanos AAB y moteado de frutos (D. torulosa)
L. Perez Vicente
Pudrición de la corona y antracnosis
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Punta de cigarro por Verticillium theobromae y Trachysphaeria fructigena
Trachysphaeria fructigena
Manejo de enfermedades de los frutos
Cosecha
Pre-cosecha
Post-cosecha
9 Eliminación de bellotas, brácteas, hojas viejas y flores.
9 Destrucción de residuos
9 Embolse temprano y uso de almohadillas para separación de manos.
9 Eliminación de bellotas, brácteas, hojas viejas y flores.
9 Destrucción de residuos
9 Embolse temprano y uso de almohadillas para separación de manos.
9 Manipulación cuidadosa
9 Manipulación cuidadosa
9 Inhibidores de maduración9 Enfriar la fruta a 14ͼC en el
menor tiempo posible9 Atmosfera controlada
9 Inhibidores de maduración9 Enfriar la fruta a 14ͼC en el
menor tiempo posible9 Atmosfera controlada
9 Lavado con agua corriente y cloro9 Uso de fungicidas (benzimidazoles,
imidazoles, estrobilurinas, productos orgánicos)
9 Lavado con agua corriente y cloro9 Uso de fungicidas (benzimidazoles,
imidazoles, estrobilurinas, productos orgánicos)
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Estructura de las poblaciones de Fusarium oxysporum f.sp. cubense.
ClonesRazas Gros Michel Bluggoe Cavendish
1 + - -2 - + -4 + + +
(Ploetz y Pegg, 2000)
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No existen diferencias de síntomas de diferentes “razas” de la marchitez por Fusarium
Marchitez o Mal de Panamá por Fusarium oxysporum f. sp. cubense. Transmisión.
• La principal vía de dispersión es la semilla infectada
• El patógeno sobrevive en los suelos como clamidosporas y en residuos infectados por más de 20 años.
• Tiene un largo período de latencia
• Las variedades susceptibles plantadas en estos suelos presentan invariablemente el ataque de la enfermedad.
• Los suelos de mal drenaje interno predisponen a la infección aún en variedades con resistencia.
Ciclo adaptado de Hwang, (2002)
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Factores de impacto 9 Síntomas similares a los de las demás razas y largo período de
latencia; 9 Pobre conocimiento y conciencia entre los productores del impacto
de la enfermedad, su ciclo infectivo y las tácticas de manejo; falta de programas de vigilancia en muchos países a pesar de estar incluido en listas de plagas reguladas.
9 Falta de acceso de los productores a semilla limpia certificada, 9 Desconocimiento de la estructura de las poblaciones de Foc a nivel
de países, 9 Posibilidades relativamente limitadas de medidas de control en áreas
infectadas, salvo el uso de clones con resistencia a Foc.9 Insuficientes fondos para investigación y extensión sobre biocontrol y
manejo integrado de la enfermedad.
Foc RT4: preparación y prevención; impedir el ingreso a LA&C de Foc RT4
9 Actividades de alerta en eventos científicos– Acorbat 2004 , México; Acorbat 2010 Ecuador, Reunión de Grupos
de Interés sobre la raza 4 tropical de Foc en OIRSA, El Salvador, Reuniónes de MUSALAC en David, Panamá y en Perú
9 Cursos de capacitación en identificación de la enfermedad y diagnóstico:– Costa Rica, Cuba, México, Ecuador, Venezuela, Colombia.
9 Documentos técnicos normativos:
– Programa de erradicación de un brote de Foc RT 4 en la región del OIRSA
9 Desarrollo de sistemas diagnóstico moleculares
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Marchitez bacteriana (Moko) Ralstonia solanacearum
L. Perez Vicente C.R .2009
Marchitez bacteriana (Moko) Ralstonia solanacearum
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Características de aislamientos de R. solanacearumasociados con la enfermedad del Moko (Jones, 2000)
Aislamiento/ Distribución Rango de hospederos y ecología
B (rápido marchitamiento) Centro y Sur América AAA/AAB/ABB: HHeliconia: M /Insectos: L-M/ Suelo: M
D (Distorsión) Costa Rica, Surinam, Guyana
AAA/AAB/ABB: L-MHeliconia: L/Insectos: ND/ Suelo: L
H (Heliconia) Costa Rica AAA/AAB: LHeliconia: L/Insectos:H?/suelo: L?
R (Colonias rojas) Costa Rica AAA/AAB: L /ABB: NDHeliconia: ND/ Insectos:ND/ Suelo:ND
SFR/ SFR-C (pequeña, fluida y redondeada)
C. América, Sur del Caribe, Venezuela, Colombia
AAA/ABB: H/ ABB: M-HHeliconia: ND/Insectos:H/ Suelo: ND
A (Amazónico)Selva amazónica (Brasil, Colombia, Perú)
AAA/AAB/ABB: HHeliconia: ND/ Insectos: H/ Suelo: ND
AFV (afluido avirulento) Honduras AAA: L/ AAB/ABB: L?Insectos: ND/ Suelo: ND
T (Tomate, raza 1, biovar 1) AméricaPatogénico en algunas especies de Musa, no patogénico en banano y HeliconiaInsectos: ND/ Suelo: H
Los�aislamientos��relacionados�con�el�Moko��pertenecen�al�
filotipo 2�sequevares III,�IV��y�VI(Fegan y�Prior,�2005�,�2006)
Los�aislamientos��relacionados�con�el�Moko��pertenecen�al�
filotipo 2�sequevares III,�IV��y�VI(Fegan y�Prior,�2005�,�2006)
OmnipresenteOmnipresente
PapaPapa
Bananos�plátanos�yheliconiasBananos�plátanos�yheliconias
Omnipresente
Papa
Bananos�plátanos�yheliconias
Filotipo 1�“Asiáticum”BV:�3,�4�y�5
Filotipo 1�“Asiáticum”BV:�3,�4�y�5
Filotipo�4�“Tropical”BV�:�1,�2A�y�2TFilotipo�4�“Tropical”BV�:�1,�2A�y�2T
Filotipo 3�“Africano”BV:�1�y�2T�
Filotipo 3�“Africano”BV:�1�y�2T�
Diferentes�cepasP.�syzygii
BDB�(Ralstonia��spp.)
Filotipo 2�“Americanum”BV1,�2A�y�2T
Filotipo 2�“Americanum”BV1,�2A�y�2T
Raza�3�papa
Moko�SFR/A�
Moko�H/B
Bv 1�americano
Filotipos de R. solanacearum (Fegan y Prior, 2005)Secuenciación de genes egl (endoglucanasas) y mutS (harp)
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Marchitez bacteriana (Matooke) por Xanthomonas campestris pv. musacearum
Marchitez bacteriana (Matooke) por Xanthomonas campestris pv. musacearum
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Transmisión por abejasDr. W. Tushemereirwe
Dr. W. Tushemereirwe
Dr. R.C. Ploetz
Marchitez bacteriana (Matooke) por Xanthomonas campestris pv. musacearum
Marchitez bacteriana (Matooke) por Xanthomonas campestris pv. musacearum
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Marchitez bacteriana (Matooke) por Xanthomonas campestris pv. musacearum
Manejo de las marchiteces bacterianas9 Exclusión y cuarentena evitar que ingrese a zonas libres.9 Erradicación: la única medida efectiva cuando la enfermedad
aparece.9 Limitación de accesos a áreas infectadas y regulación de
movimiento de aguas superficiales y drenajes9 Prácticas culturales: se ha determinado que, sin suficientes
precauciones fitosanitarias, el 97 % de los casos de moko se debena esta causa (Wardlaw 1972).
9 Eliminación de las flores masculinas del raquis con horquetas paraevitar diseminación con insectos.
9 Desinfección herramientas y equipos9 Uso de Tagetes patula y frijol de terciopelo (Moko)9 Variedades resistentes transgénesis .
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Síntomas en Ensete ventricosumDr. S. Eden -Green
Marchitez bacteriana (Matooke) por Xanthomonas campestris pv. musacearum.
Síntomas en Ensete ventricosum
Distribución global de la marchitez bacteriana por Xanthomonas campestris pv. musacearum
EnseteCamerún
Ensete Etiopía
Musa spp.El Congo
Musa spp., Uganda,
Musa spp., Tanzania,
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La secuenciación del ADN viral ha permitido diferenciar secuencias que han coevolucionado desde el origen de las musáceas en el genoma de Musa. Algunas tienen suficientes diferencias en su genoma como para que se consideren especies de virus diferentes:
BS Obino l’Ewai virus (BSOEV) * BS Cavendish virus (BSCavV) BS Goldfinger virus (BSGFV) * BS Mysore virus (BSMysV) *BS Imove virus (BSImV) * BS acuminata Viet Nam virus (BSAcVNV)BS Uganda A virus (BSUgAV) BS Uganda I virus (BSUgIV),BS Uganda J virus (BSUgJV) BS Uganda K virus (BSUgKV),BS Uganda L virus (BSUgLV)* = Presencia confirmada en Cuba (Javer et al., 2008)
Banana streak badnavirus (BSV). Variabilidad
Diversidad molecular y prevalencia de las especies de BSVDiversidad molecular y prevalencia de las especies de BSV
Análisis de Southern blot reveló falsos positivos en genotipos híbridos Análisis de Southern blot reveló falsos positivos en genotipos híbridos
L 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10111213141 516171819 20
Southern Blot of Musa DNA.Probe Im127: RT/RNaseH fragment of BSIMVL:1Kb;1-16 accessions ABB positives to BSIMV in M-IC-PCR;17-18 : uninfected ABB 19-20: UninfectedGrand enano.
Position of Viral DNA
BSGFV> BSOLV >Mixed infections >BSMYV >BVSIMV
25,2%
38,7%12,4%
3,6%20,1%Global�prevalence
BSOLV
BSGFV
BSMYV
BSIMV
Mixed�Infections
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Activación de BSV integrado(Adaptado de Thomas, 2013)
EJ.:• cultivo. de
tejidos• hibridación• frío• seca
PaPlantas libres de virus Salida
AAAA c/s eBSV
Híbrido AAA con eBSV
Plantas infectadas de novo
No virus
Bb (PKW) con eBSV
Híbrido AAA con eBSV
Ensayos de detección de BSVANÁLISIS VENTAJAS DESVENTAJASSíntomas Fácil No confiable
ELISA Fácil Baja sensibilidadAmplia diversidad serológica
Antisueros escazos PCR Fácil
Mayor sensibilidadFalsos positivos con BSV integrado
Diversidad genómicaLos primers degenerados no tienen
sensibilidad IC-PCR (DNase) Fácil
Mayor sensibilidadEvita el BSV integrado
Amplia diversidad genómica Los primers degenerados no tienen
sensibilidad
Miniprep/ISEM Evita el BSV integradoAmplia especificidad
Resultados inequívocos
Consume mucho tiempoPuede perder sensibilidad
Se requiere ME y ultracentriífugaRCA Evita el BSV integrado Consume tiempo
Non-specific amplificationAmplificaciones no específicas
Complicado por infecciones mixtas
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(Teycheney, 2013)
El áfido adquiere el virus en las primeras 4 horas de alimentación y lo transmite por 20 días
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Epidemiology of BBTVTrabajos importantes de Magee (1920s – 1940s) y Allen
(1970s-1980s)
9 No hay hospedantes fuera de las Musaceae9 Transmisión persistente por áfidos9 Distancia de dispersión por áfidos (av. 15.2m, 99% < 86m)9 Período latente de la enfermedad (3.7 hojas nuevas)9 El plantón completo se infecta sistémicamente 9 Se desarrollaron simulaciones para modelar las epidemias
por Allen
Programa de Erradicación y Control en Australia(Thomas, 2013)
9 Control basado en Cuarentena, legislación, inspección y erradicación
9 El Programa de Control que incluye 4 semanas (4 hojas) inspecciones, dirigido a reducción de las áreas afectadas y los focos calientes
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¿Latencia?
Los áfidos del banano pueden alimentarse alrededor del nivel del suelo en el pseudotallo/cormo.
¿Se alimentan e infectan puntos de crecimiento en dormancia que se vuelven activos meses/años después y solamente entonces exhiben los síntomas de virus?
¿Infecciones prolongadas?
Método antiguo de erradicación
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¿Infecciones prolongadas?
Planta de banano 4 semanas después de la inyección con Glyphosato/ Imidacloprid en invierno en el Sudeste de Queensland
¾ Verano – Transmisión 1 día después de la inyección; tejido verde por 28 días
¾ Invierno- Transmisión por 7 días después de la inyección, tejido verde durante 57 days
Conclusions - BBTV
9 Sigue siendo una amenaza internacional
9 La exclusión es el mejor control
9 La erradicación requiere un esfuerzo intenso y soporte legislativo
9 Las estrategias de erradicación y las técnicas para realizarlas son aspectos críticos
9 La latencia puede causar problemas
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Mosaico de la bráctea del banano por el Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV)
Mosaico de la bráctea del banano por el Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV)
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Mosaico de la bráctea del banano por el Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV)
CPC 2004; Jones et al., 2000
Distribución global del Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV).
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Mosaico de la bráctea del banano por el Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV).
Transmisión y control
• El BBrMV pertenece al grupo de los potyvirus
• La enfermedad ha causado pérdidas severas de rendimiento.
• Los estudios indican que lo transmite Rophalosiphum maydis de forma no persistente.
• Se transmite a través de material de plantación enfermo.
• Hay antecedentes de su transmisión en vitroplantas y que se encuentra presente en colecciones in vitro internacionales
• El control se refiere al uso de material libre del virus y la eliminación de plantas enfermas.
Clima 25%Clima 25%
Técnicas Agrícolas
9%
Técnicas Agrícolas
9%
Introducciones56%
Introducciones56%
Perturbaciones del hábitat 1%Perturbaciones del hábitat 1%
Recombinaciones 2%Recombinaciones 2%
Cambios de poblaciones de vectores 7%Cambios de poblaciones de vectores 7%
Factores que determinan las EIE en plantas según encuesta realizada de informes de ProMED.
(modificado de Anderson et al., 2004)
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Patógenos de musáceas transmitidos en material de propagación
9 Fusarium oxysporum f. sp. cubense 9 Ralstonia solanacearum (Marchitez bacteriana o
Moko)9 Dickeya paradisiaca9 Xanthomonas campestris pv. musacearum
(Marchitez por Xanthomonas)9 Cucumis mosaic cucumovirus (CMV)9 Banana streak badnavirus (BSV)9 Banana bunchy top nanovirus (BBTV)9 Banana mild mosaic virus (BMMV)9 Banana bract mosaic potyvirus (BBrMV).
Procedimiento completo para la producción de vitroplantas certificadas libres de virus