1 收集檢體的

注意事項

王嘉莉 編著

1-1 受檢者的準備

1-2 檢體的種類

血液檢體的採集

尿液檢體的採集

糞便檢體的採集

痰液檢體的採集

精液檢體的採集

腦脊髓液檢體的採集

其他體液的採集

細菌培養檢體的採檢

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醫學檢驗室提供檢驗生物、細菌、免疫、生化、血液、細胞、病理或其他取

自人體的檢體，其目的是提供人類疾病之診斷、預防、治療或人體之健康評估等

資訊，檢驗品質攸關臨床醫療品質，檢驗作業流程大致可分為檢驗前程序 (pre-

examination procedures)、檢驗程序 (examination procedures)及檢驗後程序 (post-

examination procedures)。檢驗前程序為採檢流程及檢體運送過程，檢驗程序為執

行儀器分析階段，檢驗後程序為執行核發報告部分，整個流程環環相扣，而檢驗

結果之不正確最常發生的問題，大都源自於檢驗前程序的作業部分，如病人辨識

與採檢過程相關的專業知識，有好的開始就是成功的一半。正確採檢才會有正確

的檢驗結果，有正確的檢驗結果，醫師才能有正確的臨床判斷，也可以確保病人

的醫療品質與安全，也因此如何預防前端作業的失誤，是正確報告的一個重要環

節。所謂分析前期(pre-analytical phase)為按時間順序，開始於醫師需求，結束於

分析檢驗程序，逐步完成包括提出檢驗申請、病人準備、原始檢體採集、檢體運

送與實驗室內之傳送。為確保各項檢驗結果之正確性，各檢驗室對於各項檢驗之

作業流程皆應有正式之標準規範。為使所有採檢及送檢單位之相關人員能依循標

準程序執行檢體採檢，以確保檢驗品質，檢驗室需制定並提供採檢手冊。

1-1 受檢者的準備

檢查前的準備與患者及檢體有關的因素都極為重要，對優良的檢驗品質而

言，最關鍵的因素就是採集適當的檢體。採集檢體之前必須先讓受檢者瞭解所需

要注意及配合之事項，例如：要量測最佳的血糖值或三酸甘油酯 (triglyceride)需

要空腹；或是要測量飯後 2 小時之血糖值時，需要在吃第一口食物開始算起；精

蟲檢查需配合禁慾時間。有些檢驗項目需配合服藥時間或生理時間抽血，例如：

藥物濃度或激素（hormone，又稱為荷爾蒙）之檢測，若未依時間點採集檢體，

導致檢驗數據的高低不符合醫師的預期，可能會讓醫師調整藥量，導致危害病人

生命安全。因此配合時間採檢非常重要，在檢驗單上需註明採檢時間，方便臨床

藥師評估療效和建議藥量。測量腎素 (renin)及醛固酮 (aldosterone)時需要嚴格控

制體位與鈉的攝取；採取肌酸激酶(creatine kinase)檢體前應避免劇烈運動，因為

大量肌肉活動會導致假性異常結果 (Nicoll et al., 2004/2006)。

Chapter 1|收集檢體的注意事項 3

1-2 檢體的種類

血液檢體的採集 (Collection of Blood Specimen)

採血應有計畫，避免次數過多，造成病患不適及血液浪費，也必須注意病患

的身分確認，以及檢體的標籤。瞭解檢體採檢的時間也十分重要，例如檢體採檢

時間是在用藥前或用藥後，若是不知道抽血的時間點，就很難提供正確的訊息給

臨床醫師做正確之判斷，血中藥物濃度（如口服 Digoxin 後 6 小時內的濃度）的

解讀分析，物質若有 24 小時變化週期（如 Cortisol），則其採取檢體的時間對於

結果的判讀就極為重要 (Nicoll et al., 2004/2006)。

在檢體採集時不可從靜脈輸注之手臂採血，因為可能會使檢體被靜脈輸注的

液體所污染。所需血量盡量一次採足，若有檢體不足時，不可將不同種類（含不

同抗凝劑）的試管內的血液相互混合（會干擾實驗結果，造成檢驗結果錯誤），

應重新採血。也不可從洗腎患者之動靜脈瘻管(AV shunt)採血。止血帶不可綁太

久，最好不要超過 2 分鐘，止血帶若使用時間過長，可能導致血液濃縮並增加與

蛋白質結合物質的濃度，如：鈣(calcium, Ca) (Nicoll et al., 2004/2006)。所有血液檢體應

避免溶血，血液檢體採檢時若細胞破裂造成檢體溶血，對下列檢驗之結果會造成

較嚴重的影響：鉀離子 (potassium, K)、鎂離子 (magnesium, Mg)、肝功能指數

（GOT 及 GPT）、黃疸指數 (bilirubin)、肌酸磷酸激酶 (creatine phosphokinase,

CPK)、肌酸磷酸激酶同功酶(CPK-isoenzyme)、乳酸脫氫酶(lactic dehydrogenase,

LDH)、乳酸脫氫酶同功酶 (LDH-isoenzyme)、鹼性磷酸酶 (ALP)、酸性磷酸酶

(acid-Ptase)、蛋白質電泳分析(protein electrophoresis, protein-EP)、伽馬麩胺醯轉

移酶(gamma-GT, γ-GT)。

一、血液檢體的採集方法

病人一次採血做多項檢查時，建議使用真空採血針及自動退針器（圖 1-1、

圖 1-2），以利一次採取足夠血液量，可縮短採血時間，並減少針扎機會。

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圖 1-1 靜脈採血用具。

圖 1-2 (A)真空採血針及自動退針器； (B)靜脈採血（前臂靜脈），使用真空採血針。

多管採血時，採血試管使用順序的原則及建議順序如下：

1. 採檢試管使用順序的原則：

(1) 無菌採檢（血液培養瓶，圖 1-3）。

(2) 不含抗凝劑採血試管。

(3) 含抗凝劑採血試管，且須適時溫和上下倒轉，混合均勻。

2. 採集血液之試管建議使用順序：

(1) 血液培養瓶（厭氧瓶優先，再嗜氧瓶）（見圖 1-3）。

(2) 不加抗凝劑試管（圖 1-4A）。

(3) 藍頭試管：含 3.2%檸檬酸鈉(sodium citrate)抗凝劑（圖 1-4B）。

(4) 紅頭有膠試管：含促凝劑（圖 1-4C）。

(5) 綠頭試管：含肝素(heparin)抗凝劑（圖 1-4D）。

(6) 紫頭試管：含 EDTA 抗凝劑（圖 1-4E）。

(7) 灰頭試管：含 NaF 抗凝劑（圖 1-4H）。

Chapter 1|收集檢體的注意事項 5

圖 1-3 血液培養瓶： (A)嗜氧（藍）及厭氧（紫）， (B)小兒專用血液培養瓶。

圖 1-4 常用採血試管。

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表 1-1 | 常用採血試管的種類

名稱 內容物質 用途

紅頭試管（圖 1-4A） 無添加 (no additive) 生化、血清、藥物

紅灰迷彩頭試管 促凝劑與分離膠 生化、血清

藍頭試管（圖 1-4B） 3.2%檸檬酸鈉抗凝劑 血液凝固學檢驗，如：各項凝

血因子、凝血時間 (PT, aPTT)

深藍頭藍標試管 EDTA 抗凝劑 鋅 (Zn)、鎘 (Cd)、汞 (Hg)、砷

(As)、鉛 (Pb)等重金屬檢驗

深藍頭紅標試管

（圖 1-4F）

不含抗凝劑 鋰 (Li)、鎂 (Mg)、銅 (Cu)、鋁

(Al)等重金屬檢驗

深綠頭試管（圖 1-4D） 肝素鈉 (sodium heparin)抗

凝劑

生化、藥物、染色體分析、病

毒培養

淺 綠 頭 試 管 (plasma

separation tube, PST)

（圖 1-4G）

肝素鋰 (lithium heparin)抗

凝劑

生化、氨 (ammonia)檢驗

紫頭試管（圖 1-4E） EDTA 抗凝劑 血液學、醣化血色素、同半胱

胺酸檢驗及血庫應用

灰頭試管（圖 1-4H） Sodium fluoride (NaF) /

Potassium oxalate 抗凝劑

生化、血糖檢驗

黑頭試管（圖 1-4I） 3.8%檸檬酸鈉抗凝劑 紅血球沉澱速率 (ESR)檢驗

黃頭試管 ACD (acid citrate dextrose)

抗凝劑

用於組織型鑑別、白血病抗原

(HLA)檢驗及親子鑑定等特殊

血庫檢驗

金黃頭試管（血清分離管

(serum separation tube,

SST)，圖 1-4J）

促凝劑與分離膠 生化、血清免疫、藥物

靜脈穿刺 (Venous Puncture) 1. 採血前步驟：

(1) 核對醫囑或檢驗單。

(2) 依檢驗項目備妥正確的採血試管或容器，貼上標籤。

(3) 備妥採檢相關用物，如針頭、抽血枕、止血帶、棉球、鑷子等。

Chapter 1|收集檢體的注意事項 7

(3) 採檢者洗淨雙手，戴上手套。

(4) 識別病人，包括：稱呼病人全名、核對床頭卡或手圈等。

(5) 協助病患採舒適姿勢，露出合宜之採血部位。

2. 靜脈採血步驟：

(1) 選擇適當穿刺部位，最常選擇的靜脈為肘正中靜脈、貴要靜脈及頭靜脈。

若手臂無適合穿刺之部位，亦可考慮手背及腳踝處。

(2) 在採血部位上方 6~8 公分處綁上止血帶，不可太緊或太鬆，時間不可超過

1 分鐘。請病人握緊拳頭。

(3) 以無菌棉枝沾取 75%酒精，或用 75%酒精棉球，由內往外環狀消毒，直

徑約 3吋。

(4) 使用空針、真空採血器或蝴蝶針採血，針頭斜面朝上，以 15~30 度角刺入

靜脈，抽取所需血量（見圖 1-2B）。

(5) 請病人鬆開拳頭，然後先鬆開止血帶，以無菌乾棉球壓住穿刺部位，再拔

出針頭，局部加壓止血至少 5分鐘，並告知病人手臂伸直且不可揉。

(6) 若以空針採血，將血液沿管壁徐徐注入試管，不可強壓針筒以避免溶血。

注射器或真空採血針丟棄於廢針頭收集盒內。

3. 靜脈穿刺的禁忌部位：

(1) 乳房切除同側手臂。

(2) 水腫、血腫部位。

(3) 疤痕部位。

(4) 輸血、點滴輸入、瘻管或任何導管之同側手臂。

動脈穿刺 (Arterial Puncture) 有時候需要動脈血來瞭解病人血中含氧量，進而評估肺臟功能的狀態，就

需要做動脈穿刺。動脈穿刺的建議部位包括橈動脈、肱動脈、足背動脈及股動

脈。若擬穿刺橈動脈，則需先施行艾倫試驗(Allen test)，陽性者才可於橈動脈進

行穿刺。

1. 艾倫試驗(Allen test)：

(1) 請受檢者手部用力握拳。

(2) 施檢者以手指同時按壓受檢者手腕橈側及尺側脈動處，使其橈動脈與尺動

脈血流同時阻斷（圖 1-5A）。

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(3) 請受檢者鬆開拳頭，此時受檢者手掌與手指呈現蒼白。

(4) 施檢者放鬆對尺動脈之壓迫（橈動脈仍受壓迫，圖 1-5B），若受檢者手掌

於 15 秒內發紅，則是艾倫試驗陽性，反之則為陰性。

圖 1-5 艾倫試驗 (Allen test)。

2. 動脈穿刺步驟如下：

(1) 選擇適當穿刺部位，最常選擇的部

位為橈動脈。

(2) 皮膚消毒：做動脈穿刺時，穿刺部

位之消毒，須以 1%酒精性優碘由內

往外環形消毒，消毒範圍約直徑 3

吋，待 30 秒優碘完全乾燥後，再使

用 75%酒精重複消毒。

(3) 準備 3 mL 或 5 mL 空針，以空針抽

取肝素 (heparin 1:1000 units/mL)，

先潤濕整支空針，排出多餘的空氣及肝素，再做動脈穿刺。

(4) 進行動脈穿刺，若於橈動脈和足背動脈，針頭以 45°~60°刺入皮膚（圖 1-

6）；若於股動脈，針頭與皮膚垂直。抽取所需血量。

(5) 採血完成針頭拔出後，須以無菌紗布加壓穿刺部位，壓迫止血較長的時間

（定點加壓至少 15分鐘）。

(6) 將針筒中的氣體排除後，針直接插入橡皮塞中以防堵空氣進入，並放入裝

有冰塊水之容器中，盡快送檢。

圖 1-6 動脈穿刺。

Chapter 1|收集檢體的注意事項 9

皮膚穿刺 (Skin Puncture)

當只需取得少量周邊血液時，或嬰兒不易採檢時，可利用毛細管進行採血

（圖 1-7）。步驟如下：

1. 選擇適當穿刺部位，適合採血的部位包括指尖、耳垂及足跟側面部位（不可

穿刺足跟中央部位，以避免骨髓炎）。採血前，先輕輕按摩穿刺部位約 5~10

秒，使其充血。

2. 以 75%酒精棉球以穿刺部位為中心，由內往外環狀消毒，直徑約 3 吋，待酒

精自然風乾。

3. 以穿刺針或採血筆針做一快且深（約 2 mm）的扎刺，針頭以垂直方向刺入

（圖 1-7B）。然後以無菌乾棉球拭除第一滴血液（因可能含有體液、皮膚碎片

及殘餘酒精而影響檢驗結果）。

4. 以毛細管接取血液，讓血液自然吸入毛細管內，勿接觸傷口（圖 1-7C及 D）。

5. 採血完畢後，以無菌乾棉球壓住穿刺部位，加壓止血，直到出血停止。

圖 1-7 毛細管採血。 (A)採血用具，由左至右：傳統穿刺針 (lancet)、黏土、毛細管

(capillaries)、採血針及採血筆； (B)嬰兒足跟皮膚穿刺； (C)嬰兒足跟毛細管採血； (D)成人手指

毛細管採血。

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二、其他注意事項

有些檢驗項目需要特別注意，如凝血功能檢查使用藍頭試管（見圖 1-4B），

主要做凝血酶原時間 (prothrombin time, PT)及活化部分凝血活酶時間 (activated

partial thromboplastin time, aPTT)檢驗。當病人由仰臥變成直立站姿時，因為水

分自血管中移到細胞間質中平均達 12%，可以明顯讓血液變得較濃稠而使得凝血

因子濃度增加，PT、aPTT 時間縮短；直立的姿勢也會使作用於血管活性的激素

釋放，影響血小板功能，因此病人在採血時應採取一致的姿勢。止血帶綁紮的時

間超過 1 分鐘以上時，水分及小分子物質會因靜水壓增加，移動到細胞間質中，

也會造成類似前述的結果。另外，採血時若過度傷害血管壁及周圍組織，也會因

為活化了凝血功能，使得 PT、aPTT 時間縮短；採血時間若拖越長，對組織傷害

越大，因為凝血功能活化，消耗凝血因子及血小板，會使相關檢驗結果偏低。從

點滴輸入位置附近採血也可能因稀釋作用或肝素(heparin)影響檢驗結果。檢體量

過多或不足，會使抗凝劑比例不正確，也會影響結果（全血：抗凝劑＝9：1 的

原則，抽血量達到採血管指示刻度±10%內為可接受範圍）。採血應盡量使用真

空採血管直接採取，若用空針採取再打入採血管中，因為在分裝等候的時間變

長，有可能因延遲加入抗凝劑而影響結果，容易造成血小板進一步活化，使凝血

酶原時間(PT)及部分凝血活酶時間(aPTT)縮短。

常見的檢體溶血原因

1. 在執行抽血前的消毒時，若酒精未乾，使殘留在皮膚上的酒精藉由針頭與血

液接觸可能會導致溶血。

2. 血液打入採檢試管時，直接加壓注入試管內的壓力及速度太快時，使血球互

相擠壓造成破裂。

3. 血液檢體在試管中未經離心處理，在高溫或低溫環境的時間過久。

4. 使用採血針頭太小，血液在狹小的空間進出容易擠壓破裂。

5. 抽血不足、抽血時間過久造成止血帶綁太久使血管中之血液壓力過大。

6. 檢體試管在運送過程中劇烈搖晃，造成血球增加撞擊機會。

7. 混合含抗凝劑試管之檢體應上下輕輕搖晃，若用力搖動也容易造成血球破損。

8. 特殊病患檢體，以上都可能是造成檢體溶血的因素。

Chapter 1|收集檢體的注意事項 11

造成血液凝固的原因

血液凝固可分內因和外因性原因，內因性：可能病人有特殊抗體導致。外因

性：抽血時間過長，使血液離開身體外時間過長，會漸漸凝集後形成凝固，若檢

體進入試管後未立即混合或混合不均勻，檢體未與抗凝劑充分混合而導致血液凝

固。有時血液凝固現象的發生，若未仔細觀察，肉眼很難發現，有時候檢測之儀

器管路會被細小的凝集所阻塞，但血液一旦有凝集現象產生，血小板數據會有很

大變異。

有些檢體需要冰浴送檢，針對室溫不穩定的檢查項目通常都會有特殊規定，

如降低保存溫度、加溫保存、加保存劑、加酸或特殊試管等。冰浴送檢項目大多

是在運送過程中，以降溫的方式來降低代謝率。例如：促腎上腺皮質素

(adrenocorticotropic hormone, ACTH)、同半胱胺酸 (homocysteine)、血中氨

(ammonia, NH3)及血液氣體分析(blood gas analysis)等。

尿液檢體的採集 (Collection of Urine Specimen)

尿液的採集分為：

1. 可以自行排尿：要先將前段尿液排掉，取中段尿液，若要做細菌培養則需要

做尿道口之局部消毒。

2. 麻醉或中風之病患無法自行排尿時：則需要導尿，由醫師或護理人員執行。

3. 利用針筒由恥骨上方透過腹壁穿刺近入膀胱中抽取尿液。

為了要得到正確的尿液分析結果，適當的尿液檢體採集是很重要的。在尿液

檢體採集過程中，應小心避免因污染而造成錯誤的結果。一般常規尿液分析（物

理性質、化學性質及尿沉渣檢查）可用乾淨拋棄式紙杯或塑膠杯（容量 50~100

毫升）。若尿液檢體需要運送時，則必須使用有加蓋且密封的容器（圖 1-8）；細

菌培養的尿液檢體，則必須使用無菌、有蓋的容器（圖 1-9）；收集 24 小時尿液

檢體，須使用 3~4 公升（3000~4000 毫升）、廣口、有蓋、乾淨、透明且有刻度

的容器收集檢體（圖 1-10）。

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圖 1-8 尿液試管。

圖 1-9 無菌廣口盒（60 mL 或 40 mL）。

圖 1-10 24 小時收集尿液袋（3~4 公升）。

通常尿液檢體可以提供病患泌尿系統狀況與功能之評估，同時也可以作為評

估人體維持平衡及代謝過程之依據。尿液檢體的種類有隨機尿液檢體、早晨第一

次尿液檢體及 24 小時尿液檢體等。

一、隨機尿液檢體

隨機尿液檢體 (random urine specimen)是門診病人最常採集也是最方便的檢

體，一般而言適合做尿液分析，主要缺點是尿液成分的濃度差異性較大，對於較

稀的尿液檢體中具有病理意義的成分，有可能無法檢查出來。

Chapter 1|收集檢體的注意事項 13

二、早晨第一次尿液檢體

早晨第一次尿液檢體(first morning urine specimen)，指早晨起床後立即採集

的第一次尿液檢體。尿液在膀胱中經過一夜睡眠約 6~8 小時，人在睡眠中水分的

攝取及活動較少，尿液較為濃縮，尿液中的成分濃度較高，較容易檢出。此類之

尿液檢體比白天尿液的酸鹼度低，滲透壓(osmolality)較高；酸鹼度低有助於保存

尿液中的圓柱體(casts)及其他有形成分，高的滲透壓反映腎臟濃縮之能力。尿液

在膀胱內，細菌經一夜繁殖後也有助於診斷尿道感染。

三、24小時尿液檢體

通常採集 24 小時尿液檢體(24-hour urine specimen)，是用來評估尿液中某些

特定物質時所採用的方式，可以藉由分析這些物質來評估人體循環、代謝、運動

及水合作用(hydration)等。某些尿液中的成分在一天之中會有變化，所以藉由收

集 24 小時的尿液分析，可以提供臨床醫師更正確、更有價值的診斷，例如：電

解質 (electrolyte)、激素 (hormone)、蛋白質 (protein)、尿膽素原 (urobilinogen)、兒

茶酚胺(catecholamine)、5-羥吲哚醋酸(5-hydroxyindoleacetic acid, 5-HIAA)、香草

扁桃酸(vanillylmandelic acid, VMA)及 17-羥類固醇(17-hydroxysteroid)等。

24 小時尿液收集步驟：

1. 假設自上午 8 點開始收集，在上午 8 點將膀胱中的尿液排掉丟棄。

2. 開始收集 24 小時之尿液檢體，每一次的尿液全部收集至有加保存劑的容器中

（3~4 公升之容器）（見圖 1-10），若有遺漏則應重新收集。

3. 直到第二天早上 8 點的尿液全部收集完成後，在檢驗單上記錄總尿量，並充

分混合後取 10 mL 於尿液試管中（見圖 1-8），連同檢驗單一起送至檢驗室。

四、懷孕試驗尿液檢體的採集

懷孕試驗(pregnancy test)一般使用尿液檢體，可使用隨機尿液檢體，但因早

晨第一次尿液較為濃縮，人類絨毛膜促性腺素 (human chorionic gonadotropin,

hCG)之濃度較高，病人可以將尿液檢體採集於乾淨容器後，若未能及時檢驗，

可儲存於 2~8°C 中 48 小時，尿液檢體若置於冰箱，檢體須回復至室溫後再執行

懷孕試驗，以免影響結果報告。

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糞便檢體的採集 (Collection of Stool Specimen)

糞便的成分通常由 4~5 天前未消化的食物殘渣、飲食中的纖維素

(cellulose)、膽汁（膽鹼(choline)含有色素及膽鹽）等幾種成分所組成。糞便的顏

色，正常係由腸道內細菌與膽紅素 (bilirubin)作用所造成。腸道分泌物含有黏

液、血液中轉移而來的白血球（正常情況下很少），以及脫落的上皮細胞（如鱗

狀上皮細胞來自大腸）。大量細菌可以佔糞便固體物質的 30%，無機物質約佔

10~20%，主要是鈣、磷以及水分等。檢查糞便中的寄生蟲及蟲卵，可以診斷寄

生蟲感染；檢查糞便中的潛血，可以幫助診斷腸道出血及篩檢結腸直腸癌；檢查

糞便中是否有無脂肪及肉類纖維之存在，可以幫助診斷吸收不良症；糞便的分析

更可以幫助臨床醫師診斷腹瀉(diarrhea)、痢疾(dysentery)、乙狀結腸阻塞、潰瘍

性結腸炎及阻塞性黃疸等疾病。

為避免檢驗結果受到干擾，在糞便採集時需特別注意，糞便量大約小指大小

（約 10 克），糞便檢體不能受到水、尿液或經血的污染（原蟲的滋養體會受尿液

破壞），檢體需置於乾淨容器中，並盡快送檢，若無法立刻送檢可以放置在 4°C

冰箱中，但液體糞便檢體須在一小時內送檢，避免原蟲滋養體在低溫時運動性減

少，而造成檢出率降低。

一、糞便潛血檢查 (Occult Blood Test)

糞便檢體檢查結果要做為臨床診斷之輔助，病人對於採集的注意與配合事項

就很重要。若要檢查糞便潛血反應，採檢前三天應禁食肉類食物、鐵劑、含鐵劑

藥物及 Aspirin 類藥物，否則會造成潛血反應的偽陽性。大量維生素 C 或其他抗

氧化物可能會造成偽陰性反應，採檢前亦應禁食。盡量以便盆或坐式馬桶採檢，

解便時應盡可能解在馬桶前端（避免污水及尿液的污染）；若為蹲式馬桶則盡可

能取未沾水部分之糞便。採用化學法檢驗時，檢體量取約花生米大小的糞便，不

可使用衛生紙包覆檢體，因為會影響潛血反應的檢驗結果。最好使用從檢驗室所

領取的檢體盒（圖 1-11A），並盡快連同檢驗單送至檢驗室。許多消化道潰瘍或

腸道癌症，可以在病患未有明顯症狀時，就由糞便潛血檢查先偵測出來，所以常

用來作為篩檢之用。

糞便潛血檢查的原理因方法而有不同。較為常用的是用化學法測試原理，因

不受血紅素抗原性被細菌破壞的影響，適合檢測上消化道出血；但此方法會受動

物血液及飲食或藥物的干擾，因此檢驗前應禁食上述物品。

Chapter 1|收集檢體的注意事項 15

糞便潛血免疫法因不會受到食物中的過氧化酶、含動物血之食品及維生素 C

之影響，專一性高，此法也有較高的敏感度，因此適合糞便中低濃度的潛血檢

測，採集檢體的容器（圖 1-11B）中，通常含有檢體保存液，保存糞便中的紅血

球以避免遭受細菌破壞而產生偽陰性，若無法立即送檢，需保存在 4°C 冰箱中；

因為此法之原理為抗原抗體反應，所以也必須注意勿採集過多之糞便檢體量（導

致紅血球量過多），反而造成高濃度之勾狀效應(hook effect)而產生偽陰性。

圖 1-11 糞便檢體採集盒： (A)一般糞便檢體採集盒（潛血化學法）； (B)糞便潛血檢體採集盒

（免疫法）。

二、腸內寄生蟲及寄生蟲卵檢查

肉眼可以看到的寄生蟲有蛔蟲(Ascaris lumbricoides)、絛蟲(tapeworm)及薑片

蟲 (Fasciolopsis buski)等。檢查寄生於人體中的寄生蟲，可以從糞便檢體中檢查

出的有原蟲(protozoa)及蠕蟲(helminths)。

腸道原蟲對人體有致病性者，包括痢疾阿米巴(Entamoeba histolytica)、梨形

鞭毛蟲 (Giardia lamblia)、貝氏球蟲 (Isospora belli)、隱孢子蟲 (Cryptosporidium

species)及大腸纖毛蟲(balantidium)等，感染阿米巴寄生蟲的病人，可以在糞便中

見到 Charcot-Leyden 結晶，外觀呈菱形狀，為嗜酸性球(eosinophils)分解後之產

物。藉由成形糞便 (formed stool)或軟便 (semiformed)或液態之糞便中，可以看到

原蟲的囊體或滋養體，檢驗人員可以依據囊體的形狀及大小或滋養體的核仁大

小、位置及形狀等來加以鑑定。

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腸道蠕蟲對人體均有致病性，包括線蟲 (nematodes)、吸蟲 (trematodes)及絛

蟲 (tapeworm)等三大類，最常見的線蟲有蟯蟲 (Enterobius vermicularis)、蛔蟲

(Ascaris lumbricoides)、鞭蟲(Trichuris trichiura)、鉤蟲(hookworm)、糞小桿線蟲

(Strongyloides stercoralis)及菲律賓毛線蟲 (Capillaria philippinesis)等。蠕蟲感染

可以藉由糞便或肛門周圍檢體中的蟲卵、幼蟲或成蟲來加以鑑定。蟯蟲通常於晚

間從肛門爬出，在肛門周圍產卵，故須以透明膠紙（Scotch tape 或 collophane）

於清晨起床時黏拭肛門口來採集檢體；絛蟲更可以藉由糞便中的體節或蟲卵來加

以鑑定。

糞 便 寄 生蟲 檢 查 有直 接 塗 抹法

(direct smear) 及 糞 便 濃 縮 法

(concentration methed)。使用糞便濃縮法

可以提高檢出率。糞便濃縮法之採便容

器，通常使用張氏糞便濃縮集卵瓶（圖

1-12），採便量約小指大小。一般實驗室

的濃縮法是採用硫汞—碘—甲醛(merthiolate iodine formaldehyde, MIF)沉澱染色

法。染色試劑中硫汞 (merthiolate)為一種芳香殺菌劑，可殺死糞便內雜菌；碘

(iodine)則利用阿米巴細胞核嗜碘性原理，可將阿米巴細胞核染色，使細胞核特

別明顯、易於鑑別；甲醛(formalin)則為固定檢體蟲卵之用。由於使用 MIF 染色

時，在紅色背景下能襯托出蟲卵，使蟲卵更容易被發現及辨識，因此在蠕蟲與原

蟲執行檢驗時，以 MIF 為最常用且效果最好之方法。採集後須盡快將檢體送到

檢驗室，以提升檢出率。

痰液檢體的採集 (Collection of Sputum Specimen)

痰液主要是由氣管與支氣管分泌物及黏膜微血管滲出的血漿滲出液 (plasma

transudate)所組成。氣管與支氣管分泌物主要由表面上皮分泌細胞及黏膜下腺體

分泌；在正常情況下，血漿由黏膜微血管滲出（血漿滲出液）的量很少。氣管與

支氣管分泌物具黏滯性，而唾液酸(sialic acid)為造成痰液黏滯性的最重要成分。

在嚴重發炎時，氣管內液體可能幾乎全為血漿滲出液，白血球、巨噬細胞

(macrophages)及支氣管上皮細胞也會增加。

圖 1-12 寄生蟲檢查糞便濃縮法通常使用

張氏糞便濃縮集卵瓶。

Chapter 1|收集檢體的注意事項 17

想要取得適當的痰液，需要病人的瞭

解與配合。早晨第一口痰，因為其累積整

夜呼吸道的分泌液，是為最佳之檢體。在

咳痰前要先用清水漱口（不能用市售潄口

水或是用牙膏刷牙），再咳出深部的痰液

送檢。若病患無法自行咳出時，則須使用

氣管分泌物抽取裝置（圖 1-13）來抽取痰

液，並盡快送檢。

精液檢體的採集 (Collection of Semen Specimen)

精液分析主要評估男性之不孕症(infertility)或是否適合做人工受孕等。精液

分析包括精蟲計數(sperm count)、精子形態檢查(sperm morphology)及精子活動力

檢查 (sperm motility)等。一般採集精液檢體前，需要禁慾 3 天，但不能超過 5

天，禁慾太久會造成精液體積過多而精子之活動力降低。以手淫方式將精液採集

在乾淨廣口容器內（見圖 1-9），不可使用潤滑劑或是保險套，須記錄採集時

間，並於 1 小時之內送至檢驗室，運送檢體過程中避免極端低溫或高溫。

腦脊髓液檢體的採集

腦脊髓液(cerebrospinal fluid, CSF)的檢查分析可以提供臨床某些疾病重要的

診斷訊息，如細菌性、病毒性、結核性、黴菌性及阿米巴性腦膜炎 (meningitis)

等，以及出血性疾病如蜘蛛網膜下出血 (subarachnoid hemorrhage)、腦內出血

(intercerebral hemorrhage)及腦梗塞(cerebral infarct)等。鑑定感染性腦膜炎，特別

是細菌性腦膜炎，為腦脊髓液分析最重要的目的。

一般採集腦脊髓液(CSF)檢體須由醫師

執行，以腰椎穿刺(lumbar puncture)採集，

通常至少需採集 3 支檢體（每支 3~5

mL)，以無菌試管（圖 1-14）收集。試管

上須以標籤標示出送檢項目，如微生物、

細胞計數及生化檢查等；或是臨床需要更

圖 1-13 氣管分泌物抽取裝置。

圖 1-14 無菌試管。

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多項目檢查，如細胞學檢查，則另外增加採集試管。採集後應盡快送檢，細胞計

數及生化項目如葡萄糖之測定，易受延遲檢查之影響，因為細胞在檢體採檢後 1

小時會開始溶解，葡萄糖也很快會開始產生醣解作用(glycolysis)，若未能及時送

檢，會影響檢驗報告之結果。此外，標示微生物之 CSF 檢體試管，應保存在室

溫（約 25°C）中，因為微生物生長受溫度之影響甚鉅，其餘試管則需冷藏

(2~8°C)。

其他體液的採集

其他體液檢查包含有滑膜液、胸膜液及腹膜液、心包液等。

1. 滑膜液 (synovial fluid)：又稱關節液 (joint fluid)，分析主要目的為診斷感染

性關節炎及關節液結晶。感染性關節炎可以白血球計數、革蘭氏染色(Gram’s

stain)或是細菌培養之報告提供臨床醫師做診斷；關節液結晶的鑑定則須以偏

光顯微鏡 (polarizing microscope)觀察，以區分尿酸鈉結晶 (monosodium urate

crystals, MSU)或是雙水焦磷酸鈣結晶(calcium pyrophosphate dihydrate crystals,

CPPD)，以提供臨床醫師診斷尿酸性痛風或是假性痛風。

2. 胸膜液(pleural fluid)及腹膜液(peritoneal fluid)：人體中漿液的蓄積稱為積

水(effusions)，是一種病理狀況。積水採集出來通常需要區分出是屬於濾出液

(transudate)或是滲出液(exudate)，可以提供臨床醫師重要的診斷依據。濾出液

主要是由全身性疾病造成壁膜微血管液體靜脈壓增加，或血漿膠體滲透壓減

少而形成，這些屬於非發炎性，且經常與充血性心臟衰竭、肝硬化及低蛋白

血症（腎病症候群）有關。積水一旦被鑑定為濾出液時，通常不需要進一步

做檢驗。滲出液是由發炎造成壁膜微血管內皮通透性增加，或淋巴管吸收減

少而形成，許多疾病如感染、腫瘤、全身性疾病、創傷或發炎等狀況，都會

形成滲出液。

3. 心包液(pericardial fluid)：目前尚未建立檢驗值，但大部分狀況而言，心包

積水由壁膜的病理變化（如感染及受損）造成微血管通透性增加而形成，因

此大部分心包積水可被視為滲出液。

體液之檢體採集通常由醫師執行，係在無菌狀態下以針頭插入體腔中抽取。

在採集體液檢體時須以肝素抗凝劑分別分裝於無菌試管（見圖 1-14），視臨床檢

查項目需求，增加分裝無菌試管之數目。但不可以草酸鹽 (oxalate)、粉末狀

Chapter 1|收集檢體的注意事項 19

EDTA 及肝素鋰為抗凝劑，尤其是滑膜液（關節液），因檢體可能會形成草酸鈣

或其他結晶，而干擾檢驗報告之結果造成誤判。

細菌培養檢體的採檢

檢體經由微生物之分離與鑑定之後，可以做為臨床醫師診斷疾病之重要依

據。檢體種類的採集，由不同專業人員負責，如腦脊髓液、胸腔液、腹膜液、深

部傷口檢體及手術檢體等，由醫師負責採集；而尿液、糞便及痰液等，由護理人

員負責採集。想要成功的分離出病原菌，除了醫檢人員的微生物專業知識之外，

醫師及護理人員檢體採集之技術與檢體之運送過程等，也都是極重要的關鍵。

做細菌培養時，應避免污染，採集檢體應執行無菌操作技術，採檢最適當之

時間以早晨起床後第一次的檢體最好，例如尿液培養及痰液培養，特別是痰液之

培養以早晨第一口痰最好，且須特別注意應在開始使用藥物之前採集檢體，才不

會影響檢驗結果。

所有檢體均須收集於適當的無菌容器內，若容器已被污染或有破損，則不可

再使用。若容器內含培養液者，不可外溢。一般體液、膿汁、或由身體深部採集

的檢體，可做厭氧培養；但糞便、尿液、喉頭拭子做厭氧菌培養則無意義。眼、

耳或各種器官等取出之檢體，須註明採取部位，並盡快送檢，且註明疾病之診斷

讓實驗室工作人員能特別注意，可以增加病原菌之分離率，以利病患之治療。

一、血液培養檢體的採集

血液培養 (blood culture)採集時間須視病人情況而定。除非急性菌血症，其

他情況均不需於半小時內抽兩次血。若懷疑為心內膜炎，則於 24 小時內抽 3 次

血液，每次間隔 1 小時為原則，其中應有 2 次在正要開始發熱時抽血，此種血液

培養頻率，已足夠診斷是否為菌血症 (bacteremia)。抽取之血量，一次抽 10 mL

血液，分別加入厭氧及嗜氧兩支血液培養瓶中（厭氧瓶先）（見圖 1-3A），每瓶

加入 5 mL 血量。若是小孩或嬰兒不容易抽出多量血者，則使用小兒專用血液培

養瓶（見圖 1-3B），每瓶 1~2 mL。

亞急性心內膜炎、傷寒熱、布氏桿菌病及其他無法控制的感染症，則採取血

液檢體的時間非常重要。急性發燒期，左右手分別靜脈抽血各 10 mL；需先抽完

血再對病患投以藥物治療。若 24 小時內再有突然高燒現象，則需再抽一次血液

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培養，可增加病原菌培養陽性率。疑為菌血症而已做治療之病人，若無法停止治

療，應在 48 小時內送檢 3~5 次。

血液培養檢體的採集步驟：

1. 抽血前，將穿刺靜脈上的皮膚及血液培養瓶橡皮塞，依序以酒精、碘酒、酒

精，分別以三道手續加以消毒，等酒精自然風乾後，再執行培養檢體之採

集。

2. 繫上止血帶，抽取 6~10 mL 血液，將血液平分到厭氧及嗜氧血液培養瓶中；

若為疑似黴菌感染患者，則抽取 5 mL 打入黴菌專用培養瓶中；嬰兒或小孩則

抽取 1~3 mL，打入小兒專用血液培養瓶中。

3. 盡速送檢。如檢體無法立刻送檢，應置於室溫保存，不可冷藏。

二、尿液培養檢體的採檢

一般尿液檢體可依採集方式之不同，分成中段尿 (clean-catched midstream

urine)、單次導尿液(catheterized specimen)、留置導尿管(foley indwelling urine)或

膀胱穿刺尿(bladder aspirated urine)等方式採集檢體，檢驗單上應註明清楚採檢方

式。尿液培養(urine culture)一般採檢，大都是採取中段尿液。

尿液採集前應指導病人先以消毒水或中性肥皂清洗尿道口及其附近，女性以

沾有消毒水之棉棒，由前往後，輕擦會陰部做消毒，每支棉棒清潔一次即丟，連

續 3~4 次後，以乾淨之棉棒拭去消毒水，先排棄前段尿液再收集檢體。男性以乾

淨之棉棒輕擦尿道口，先排棄前段尿液，以無菌廣口容器（見圖 1-9）收集中段

尿液（約 5 mL），蓋緊蓋子盡快送檢。容器在未使用前須避免打開封蓋或接觸

容器內部。

若病人無法自己解出尿液，如神經性膀胱或尿道阻塞的病患，則使用導尿管

或膀胱穿刺來取得尿液檢體，除非必要之情況再採取導尿方式送檢（女性患者導

尿易造成尿道感染），若懷疑厭氧菌感染，必須用膀胱穿刺方式送檢。採檢方式

應在檢驗單上註明清楚，以利結果之判讀。若為幼兒，可以使用集尿袋，但以收

集一次尿液為限，不可以用儲尿。如尿液檢體無法立刻送檢，應置於 4~8°C 保

存，但以不超過 4小時為限。