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TOMA DE MUESTRA DE SECRECIONES
TOMA DE MUESTRAS
Definición: Obtención de especimenes biológicos
para el apoyo al diagnóstico clínico.
Especimenes: * Líquidos * Secreciones * Otros materiales como tejidos.
QUIEN LA REALIZA?
1. Personal Profesional: * Médicos * Enfermeros * Microbiólogos * Personal Capacitado
2. Paciente Previa instrucción.
CONCEPTOS
Espécimen Material
extraído del paciente .
*Liquido *Secreción *Tejidos
Muestra
Parte del espécimen debidamente tratada que se emplea para el análisis.
* Sangre total * Plasma * Suero
Transporte y conservación de muestras para diagnóstico microbiológico
Muestra Determinación Envases
TRANSPORTE Tiempo y
temperatura
CONSERVACIÓN
Tiempo y temperatura
Abscesos/heridas
quemaduras/mordeduras
Bacterias
Envase para anaerobios (pref.) o jeringa sin aguja
(pref.). Una para Gram, otra para
cultivo (Amies/Stuart)
<2 h, TA <24 h, TA
Hongos Estéril (pref.)/Torunda.
Una torunda para tinción, otra para cultivo (Amies/Stuart)
<2 h, TA <24 h, TA
Virus Torunda seca¹Transferir a TV,
<24 h, 2- +24 h, -60/-
Catéter/material
protésico
Bacterias/Hongos Estéril <15 min, TA <24 h, 2-
Catéter urinario
No es aceptable
Catéter drenaje
No se recomienda
Enviar líquido drenaje/ abscesos/aspirados
Genital (Secreción
prostática) Bacterias/Hongos Estéril <2 h, TA <24 h, TA
Genital (cervical/ure
tral/rectal) Chlamydia trachomatis
Medio transporte clamidia (cultivo).
Torunda seca (fluorescencia) Inoculación inmediata
Transporte y conservación de muestras para diagnóstico microbiológico
Muestra Determinación Envases
TRANSPORTE Tiempo y
temperatura
CONSERVACIÓN
Tiempo y temperatura
Muestra Determinación EnvasesTRANSPORTE
Tiempo y temperatura
CONSERVACIÓN
Tiempo y temperatura
Genital (cervical/rectal/uretr
al)
Bacterias (gonococo)
Inoculación directa sobre medios de cultivo
Torunda con medio transporte <2 h, TA <24 h, TA
Genital (líq. amniótico)
Bacterias/Hongos
Transporte de anaerobios <15 min, TA <24 h, TA
Genital (úlcera)
(cualquier localiz) Virus Torunda seca¹ Transferir a TV,
<24 h, 2- +24 h, -60/-
Genital (semen) No se recomienda
Genital (úlcera) (cualquier
localización)
Treponema pallidum
Campo oscuro Inmediata visualización
Genital (Uretral) Mycoplasma hominis Ureaplasma
urealyticum
Torunda de dacrón Inocular en medio transporte de
micoplasmas
<8 h, TA
<36 h, 2-
Genital (vaginal) Bacterias/Hongos
Torunda con medio transporte (cultivo)
Torunda seca para Gram
<2 h, TA <24 h, TA
SECRECION
Secreción (del latín secretio) proceso por el que una célula o un ser vivo vierte al exterior sustancias de cualquier clase.
También se llama secreción a la sustancia liberada.
El acto de verter una secreción se llama secretar.
Tipos de secreciones
Secreción exocrina: Si las sustancias son enviadas al exterior del cuerpo o de las mucosas.
Secreción endocrina: (S. interior o increción) , quedan dentro del cuerpo (por ejemplo, la sangre).
CULTIVO SECRECION
Se recomienda la toma de muestra sin antibioticoterapia por 3 días salvo indicación médica.
Para secreción faríngea requiere ayuno y sin aseo bucal.
Para la secreción vaginal no aplicación de ovulos ( min. 3 días ), no aseo de genitales. La muestra debe procesarse antes de las 2 horas de lo contrario colocar en medio de transporte (Amies o Stuart)
Días/inicio de proceso: Diario/continuo. Importante: Anotar en el rotulo de la muestra si el paciente está o no con antibioticoterapia.
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TOMA DE MUESTRAS EN LAS UNIDADES PRIMARIAS GENERADORAS DE DATOS
(UPGD)
Frotis faríngeo
Frotis Nasal
Frotis Nasofaríngeo
Lavado Nasofaríngeo/ Aspirado
Aspirado transtraqueal
Lavado broncoalveolar
Biopsia de pulmón
Tejido de traquea o pulmón post- morten
Tracto Respiratorio Superior
Tracto Respiratorio Inferior
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TOMA DE MUESTRAS EN LAS UNIDADES PRIMARIAS GENERADORAS DE DATOS
(UPGD)
HISOPADOS
MEDIDAS DE BIOSEGURIDAD
1 vial por paciente
2 viales por paciente
solicitud de análisis
1. Nombre completo y número de identificación del paciente.2. Localización del paciente (servicio, salón, piso, etc.).3. Descripción de la muestra, indicando el sitio de recolección
según corresponda.4. Fecha y hora de la recolección de la muestra.5. Diagnóstico -presuntivo o definitivo- del paciente.6. Indicación si el paciente está recibiendo o no tratamiento
con antimicrobianos.7. Otra información pertinente (si la muestra forma parte de
una serie de muestras, evaluación de tratamiento, etc.).8. Nombre completo, código y número de teléfono del médico
tratante.9. Firma del médico tratante.
Tipo de infección Muestra Comentarios
Bacteriemia Hemocultivos Infecciones cardiovasculares y asociadas a dispositivos intravasculares (IV)
EndocarditisHemocultivos/Válvula/
Verrugas
Infección del catéterCatéter IV, piel
pericatéter, conexión del catéter
Pericarditis Líquido pericárdico
Sistema nervioso central
Meningitis LCR
Abscesos cerebrales Aspirados de abscesos
Tracto respiratorio
Faringoamigdalitis Exudado faríngeo
Sinusitis Aspirado sinusal No válidos los exudados nasales
Otitis media Timpanocentesis
Otitis externa Exudado oído externo
Neumonia
Esputo, muestras obtenidas por fibrobroncoscopia, punción transtorácica
aspirativa, punción transtraqueal,
broncoaspirado
Empiema y abscesos pulmonares
Líquido pleural, aspirados de abscesos
Nasofaríngeo Diagnóstico tosferina/Infecc. víricas
Nasal Detección de S. aureus
Tipo de infección Muestra Comentarios
Infecciones oculares
ConjuntivitisExudado
conjuntival/raspado
Queratitis Raspado corneal
Endoftalmitis Líquido intraocular
Infecciones gastrointestinales
Diarrea Heces/Biopsia intestinal/ Aspirado duodenal
Infecciones intraabdominales
Peritonitis Líquido peritoneal
Abscesos intraperitoneales y abscesos viscerales
Aspirados de abscesos
Colecistitis Líquido biliar
Tipo de infección Muestra Comentarios
Tracto urinario
Infección urinariaOrina (micción media,
sonda) Orina obtenida mediante
punción suprapúbica
Diagnóstico de bacteriuria por anaerobios y de ITU en
niños
Tracto genital
Úlceras genitales Raspado de la úlcera
Nódulos genitales Aspirado del nódulo
Uretritis Exudado uretral
Vulvovaginitis Exudado vaginalDetección de S.agalactiae (también exudado rectal )
Cervicitis Exudado endocervical
Prostatitis Secreción prostáticaAcompañada de orina pre y
post masaje prostático
Tipo de infección Muestra Comentarios
Piel y tejidos blandos
Impétigo, foliculitis, erisipela, celulitis, úlceras, infecciones gangrenosas,
abscesos cutáneos, heridas y quemaduras
Preferiblemente aspirados tomados con
jeringa y biopsias de tejido. Son menos recomendables las
muestras tomadas con torundas
Hueso y articulaciones
Artritis Líquido sinovial
Osteomielitis Biopsia ósea o exudado
Tipo de infección Muestra Comentarios
Cultivo Faringeo
1. El día de la toma de muestra presentarse en ayunas al laboratorio.
2. No utilice enjuague bucal el día de la toma de la muestra.
Material Características
Algodón
Los ácidos grasos residuales presentes en algunos tipos de algodón pueden inhibir algunas bacterias, particularmente Chlamydia
DacronAdecuado para la recuperación de Streptococcus pyogenes
Alginato de calcio
Adecuado para la recuperación de Chlamydia, pero puede ser tóxico para algunas cepas de Neisseria gonorrhoeae, Ureaplasma urealiticum.
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1. Pida al paciente que abra la boca y saque la lengua, repitiendo reiteradamente la letra “a” con el fin de exponer mejor la faringe.
2. Con la ayuda de un baja-lenguas, presione la lengua. La manipulación en este momento de la toma de muestra es de gran importancia para evitar la lengua y la contaminación que de ella se derive.
3. Tome el hisopo, colóquelo en la parte posterior y superior de la faringe, lo más cercano a la nasofaringe.
4. Luego rote el hisopo por la parte posterior de las amígdalas, mediante movimiento enérgico rotatorio y a la vez de arriba hacia abajo, con el fin de lograr obtener el mayor número de células.
5. Coloque el hisopo con la muestra en el vial medio de transporte viral y marque el recipiente (nombre, apellidos, fecha).
FROTIS FARÍNGEO
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1. Insertar el escobillón en la ventana nasal paralela al paladar. Deslizar por la mucosa del piso de la fosa nasal hasta tocar la pared posterior de la faringe, asegurándose que se encuentra en el área de la nasofaringe.
2. Frotar la zona de la nasofaringe haciendo girar el escobillón para obtener una buena cantidad de células epiteliales.
3. Retirar lentamente el escobillón con movimiento giratorio para absorber las secreciones.
4. Repetir el procedimiento en la otra ventana nasal utilizando otro hisopo.
5. Colocar los escobillones en el vial que contiene el medio de transporte viral, corte el resto del escobillón y tape el vial.
6. Marcar el recipiente de la muestra en el vial medio de transporte viral y marque el recipiente (nombre, apellidos, fecha).
FROTIS NASOFARÍNGEO
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1. Insertar un escobillón en la ventana nasal, paralelo al paladar, y deslizar por el piso de la mucosa permaneciendo en el lugar por unos segundos.
2. Rotar el escobillón lentamente
3.Colocar el escobillón en el vial que contiene el medio de transporte viral, cortar el resto del escobillón y tapar el vial.
4.Marcar el recipiente de la muestra en el vial medio de transporte viral y marque el recipiente (nombre, apellidos, fecha).
FROTIS NASAL
Tomado del manual: Ministerio de la Protección Social,Instituto Nacional de Salud,Subdirección Red Nacional de Laboratorios
(RNL)Vigilancia por Laboratorio de Influenza y otrosVirus
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1. Introduzca 1 ml de solución salina estéril (pH: 7.0) en una de las ventanas nasales utilizando una jeringa unida a una pieza pequeña de tubo plástico (sonda).
2. Aspire todo el material de la secreción nasofaríngea que sea posible. Si la muestra se ve con moco o turbia se considera adecuada. Si no lo es repita el procedimiento con la otra ventana nasal.
3. Agregue la muestra al vial estéril
4. Enjuague la jeringa en el vial estéril utilizando para ello el medio de transporte viral.
5. Coloque la muestra en el vial medio de transporte viraly marque el recipiente
LAVADO NASOFARÍNGEO (ASPIRADO)
Paciente hospitalizado
http://www.facmed.unam.mx/deptos/salud/periodico/rsv/img/cuatro.jpg
1-Secreción conjuntival
Se recomienda la toma de ambos ojos Material utilizado Hisopos secos :cuando hay secreción. Hisopos húmedos en caldo –tripticase-soya o BHI: cuando no hay
secreción. Cantidad de hisopos 4(cuatro) :2(dos) por cada ojo, uno para cultivo y
otro para coloración. Medio de trasporte: Se sugiere la siembra directa sin medio, en caso de
no poder efectuarse, utilizar Cary –Blair , no Stuart. Técnica Pasar el hisopo sobre la conjuntiva inferior,2 ó 3 veces en la misma
dirección (y no hacia delante y atrás),desde el ángulo interno, evitando tocar el mismo, hacia el otro extremo absorbiendo el material sin frotar. No tocar el borde del párpado.
NOTA: En todos los casos la muestra en el medio de trasporte, deberá remitirse
acompañada de los 2(dos) frotis preparados en el momento de la toma de muestra.
2-Secreción del borde de párpado
Diagnóstico presuntivo: Blefaritis Técnica del raspado: Tirar el párpado hacia el costado y
manteniendo tirante ,raspar desde la raíz de las pestañas a lo largo del borde del párpado (en la blefaritis ulcerosa remover primero las crostras). Sembrar directamente.
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MEDIO DE TRANSPORTE VIRAL
INCORRECTO CORRECTO
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Conservación de muestras
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Si la muestra es de aspirado nasofaríngeo, aspirado bronquial olavado broncoalveolar los cuales se obtienen con solución salina estéril en ausencia del medio de transporte viral bajo losparámetros del INS, deben refrigerarse inmediatamente ytransportarse al LSP a la mayor brevedad (antes de 24 h).
UNA VEZ TOMADA LA MUESTRA
Tomado del manual: Ministerio de la Protección Social,Instituto Nacional de Salud,Subdirección Red Nacional de Laboratorios (RNL)Vigilancia por Laboratorio de Influenza y otrosVirus
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• Conservar la cadena de frío.
TRANSPORTE DE MUESTRAS AL LABORATORIO
Características y componentes del embalaje
Los embalajes deben ser:
- De buena calidad, lo suficientemente fuerte para soportar los golpes y cargas que normalmente se presentan durante el transporte.
- Cerrados para prevenir cualquier pérdida de contenido causado bajo las condiciones normales del transporte, por la vibración, o por los cambios en la temperatura, la humedad o la presión
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TRANSPORTE DE MUESTRAS AL LABORATORIO
Recipiente principal o primario hermético
Embalaje secundario contenedor secundario hermético
Embalaje exterior o terciario
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TRANSPORTE DE MUESTRAS AL LABORATORIO DE SALUD PÚBLICA
LABORATORIO
TRANSPORTE DE MUESTRAS AL LABORATORIO
Secreción Vaginal
MUESTRAS GENITALES
Como se trata de muestras que provienen de sitios que tienen gran cantidad y variedad de flora comensal, la selección de la misma y el método de recolección es crítico.
Muchos agentes de infección genital en las mujeres, están limitados a sitios específicos, por ejemplo:
Condiciones generales para la toma de muestra de secreción vaginal
NO debe aplicarse óvulos ni medicamentos intravaginales 8 días antes de la toma de la muestra.
NO debe hacerse baño con ducha vaginal el día de la toma de la muestra.
NO tenga relaciones sexuales 3 días antes de la toma de la muestra.
NO realizar la toma de la muestra durante el período menstrual. Espere 8 días.
Si usted desea repetirse una Citología para verificar tratamiento se debe esperar 3 meses entre cada muestra.
MUESTRAS GENITALES
Vulva: Trepomema pallidum, Haemophilus ducreyi, Herpesvirus, Levaduras.
Vagina: Trichomonas vaginalis, Candida albicans, Bacterias de vaginosis bacteriana.
Cervix: Neisseria gonorrhoeae, Chamydia sp., Herpesvirus, Actinomyces spp.
Uretra: Neisseria gonorrhoeae, Chlamydia spp
Bacterias aerobias y anaerobias: La investigación de anaerobios esta limitada a ciertos especímenes, por ejemplo:
Mujeres: No Aptos Aptos Endocervix Placenta ( por cesárea ) Vagina Utero Uretra Trompa de Falopio Placenta Aspirado cervical Vulva Ovario Loquios Glándula de Bartholino Perineo
Hombres: Uretra Liquido prostático
Consideraciones generales para la toma de Secreción Vaginal
1. Evitar el uso de óvulos, medicamentos intravaginales 8 días antes de la toma de la muestra.
2. No aplicar duchas vaginales días previos a la toma de muestra.
3. Abstinencia sexual por 3 días antes de la toma de la muestra.
4. No realizar la toma de la muestra durante el período menstrual, se recomienda esperar 8 días.
PROCEDIMIENTO:
Generalidades:
En todos los casos:a) lavado de manos.b) colocación de guantes
Secreción vaginal
Retirar las secreciones de la membrana mucosa con un Hisopo o pipeta.
Con otro: realizar extendido para coloración de Gram.
Colocar en medio de transporte semisólido.
Remitir al Laboratorio o conservar a Temperatura Ambiente.
Secreción vaginal
Para investigación de Ureaplasma urealyticum y Mycoplasma hominis: tomar la muestra con hisopo, colocarlo en un tubo sin medio de transporte. Remitir INMEDIATAMENTE al Laboratorio.
Consultar con los profesionales del sector por variantes, relacionadas con la metodología de diagnóstico en uso.
Muestra cervical/endocervical:
• Colocar el espéculo. NO usar lubricante.• Remover moco o secreciones.• Comprimir el cuello con los bordes del espéculo y
recolectar la descarga o insertar el hisopo en el cuello, rotarlo 30" para obtener el material.
• Repetir la operación para: extendidos, cultivos especiales.
• Colocarlos en los medios de transporte adecuados.
• Remitir al Lab. o conservar a Temperatura Ambiente.
• NO refrigerar.
Toma de muestra
Muestras uretrales:
De elección para el estudio de las E.T.S. en el hombre.
• Retención urinaria de 6 hs.• Remover la flora externa, retrayendo el prepucio y
lavando la zona con agua hervida enfriada y jabón.• Recoger el exudado de la uretra con hisopo y
colocarlo en medio de transporte adecuado.• Con otro hisopo, recolectar más exudado para
realizar un extendido haciéndolo rodar 2 o 3 veces sobre un portaobjeto.
• Si no hubiera secreción, insertar un hisopo 2-3 cm. en la uretra y repetir la operación.
• Remitirlo INMEDIATAMENTE al Laboratorio.
FUERA DEL HORARIO DE RECEPCIÓN: Dejarlo a Temperatura ambiente
NUNCA REFRIGERAR.
d) Endometrio: Las muestra deben ser extraídas
evitando contaminación vaginal y cervical, con hisopo transcatéter.
e) Investigación de Chlamydia:
Generalidades Como se trata de parásitos obligados
intracelulares de células del epitelio cúbico, debe obtenerse material útil.
NUNCA enviar secreciones vaginales. ANTES de tomar la muestra, retirar el
moco o las secreciones si las hubiera y luego proceder a tomar la muestra con las indicaciones especificas del equipo de diagnóstico en uso en cada Laboratorio.
f) Enfermedad pélvica inflamatoria:
Las muestras se obtienen por métodos invasivos (de ovarios de Trompas de Falopio, etc.)
g) Dispositivos Intrauterinos: Cuando son retirados y se sospecha
infección, transportarlo al Laboratorio en un frasco estéril en forma INMEDIATA.
h) Colonización por Streptococcus grupo B:• Utilizar 1 o 2 hisopos (vaginal o anorecto).• NO usar espéculo.• Remitir al Laboratorio INMEDIATAMENTE
con medio de transporte semisólido.
i) Lesiones Genitales:
1) Ulceras2) Vesículas• Limpiarla con solución fisiológica y remover
la superficie con una lanceta estéril.• Dejar que se acumule el transudado.• Presionar la base de la lesión y tomar la
muestra obtenida con hisopo.• Enviar al Laboratorio INMEDIATAMENTE.FUERA DEL HORARIO DE RECEPCIÓN: Consultar por el medio de transporte
adecuado.
Recolección de Esputo 1. La limpieza bucal debe hacerse
únicamente con agua, evite el uso de enjuagues bucales.
2. La muestra debe ser recogida en ayunas.
3. La muestra debe ser obtenida por expectoración, evitando contaminarla con saliva o secreción nasofaríngea.