Download - Chagas Nov 2015
Mayo 2013
Laboratorio de ChagasInDRE
Agenda
• Etiología
• Diagnóstico
• Experiencia1. Pruebas serológicas utilizadas en México para
identificación de anticuerpos anti-T. cruzi
2. Tiras reactivas, eficiencia diagnóstica en suero o plasma
Algoritmo de Diagnóstico Serológico
Enfermedad de Chagas
• Enfermedad de Chagas
Enfermedad parasitaria, crónica, causada por el protozoario flagelado:
Carlos Chagas1879 – 1934
Rodnius prolixus
Triatoma dimidiata
ReservorioVector
Trypanosoma cruzi
Agente causalVectorReservorioEnfermedad
Ciclo de vida: Trypanosoma cruzi
Formas en el intestino del vector
Fuente: José Rodrigues Coura. CURSO DE CAPACITAÇÃO DOS MICROSCOPISTAS DE MALÁRIA E
DOS LABORATORISTAS DA REDE PÚBLICA PARA DETECÇÃO DO Trypanosoma cruzi. Laboratório de Doenças
Parasitárias Medicina Tropical IOC-FIOCRUZ. 2008.
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2Enfermedad de Chagas: ciclo de vida
• De cada 10 casos:
– 1-2 agudos (menores de edad,
ancianos, mortal)
– 3-4 indeterminados
(seropositivos)
– 3-4 desarrollan lesiones
crónicas (megas cardíacos 95%
y digestivos 5%)
Enfermedad de Chagas
Agenda
• Importancia Global
• Etiología
• Diagnóstico
• Experiencia1. Pruebas serológicas utilizadas en México para
identificación de anticuerpos anti-T. cruzi
2. Tiras reactivas, eficiencia diagnóstica en suero o plasma de población mexicana
• Algoritmo de Diagnóstico Serológico
Diagnóstico de la enfermedad
Historia de exposición (estancia en zona endémica,
hijos de madre con infección por Chagas), clínica
(ausente en la mayoría de los casos) y pruebas de
laboratorio.
Diagnóstico de laboratorio
Caso clínico
Producto clínico
Identificación directa
-Morfología microscópica
-Aislamiento e identificación
-Identificación de antígenos
-Identificación de genes
Identificación indirecta
Anticuerpos IgG
CASO
CONF.
EPIDEMIOLOGICO
CLINICO
LABORATORIO
Historia Natural de la Enfermedad
AnticuerposParasitemia
Meses Años
Fase aguda Fase crónica
Freilij, WHO 2007
Selección de pruebas
• Fase aguda• Transmisión vectorial
• Transfusión sanguínea
• Accidente de laboratorio
• Transmisión oral
• Reactivación por inmunosupresión
• Transmisión congénita
• Fase crónica
– Asintomática
– Sintomática• Cardiaca
• Digestiva
Presencia de parásitos en
el 100% de los casos
Presencia de anticuerpos en
el 95% a 98% de los casos
Diagnóstico de laboratorio
• Existen diversos métodos – Xenodiagnóstico
– Hemocultivo
– Frotis sanguíneo
– Microstrout
– PCR
– Detección de anticuerpos
La sensibilidad
incrementa
La especificidad
decrece
La facilidad de uso
incrementa
1913 RFC Guerreiro y Machado
1960 HAI Cerisola, 1962
IFI IgG Camargo, 1966
IFI IgM Camargo, 1974
HAI-RFC Almeida y Fife 1974
1975 ELISA Voller, 1975
1978 ANTÍGENOS 2ª. gen Autores diversos
1985 MULTICÉNTRICOS Camargo 1987
Moncayo, 1989
1998 PRUEBAS RÁPIDAS Bealy, 1998
Pruebas de diagnóstico serológico
PRUEBAS
CONVENCIONALES
Selección de pruebas
Normatividad
• OMS 1991: Par serológico (sensibilidad 98-99.5%)
• Normas MT Mercosur (Res 42/00): Par serológico
• OMS 2002 (WHO-TRS 905; 2002: pp30):
– Tamizaje: 1 método de alta sensibilidad (>99%)
– Diagnóstico: Par serológico
• Argentina:
– Tamizaje y diagnóstico por Par serológico
• Brasil:
– Hasta 2002: Tamizaje y diagnóstico por Par serológico
– Desde 2003: Tamizaje por 1 ELISA
– 2005: Diagnóstico con Par serológico
• México:
– NOM-032-SSA2-2010: Confirmación del diagnóstico por laboratorio. “…al menos dos pruebas serológicas diferentes positivas.” Par serológico
Practicas
Sensibilidad y Especificidad
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Se= 0.90 (0.89 – 0.91) Ep= 0.98 (0.98 – 0.98)
• Importancia Global
• Etiología
• Epidemiología
• Diagnóstico
• Experiencia1. Pruebas serológicas utilizadas en México para
identificación de anticuerpos anti-T. cruzi
2. Tiras reactivas, eficiencia diagnóstica en suero o plasma
• Algoritmo de Diagnóstico Serológico
Agenda
Reactivos utilizados por la Red Nacional de Laboratorios de Salud Pública
reactivos distintos
Fuente: Laboratorio de Chagas, InDRE.
La especificidad de las pruebas es alta durante la fase crónica (s&a)
Fuente: Laboratorio de Chagas, InDRE.
Sensibilidad en asintomáticos y en sintomáticos
La sensibilidad de las
pruebas en la fase
crónica asintomática
es variable
Fuente: Laboratorio de Chagas, InDRE.
• Etiología
• Diagnóstico
• Experiencia1. Pruebas serológicas utilizadas en México para
identificación de anticuerpos anti-T. cruzi
Tiras reactivas, eficiencia diagnóstica en suero o plasma
• Algoritmo de Diagnóstico Serológico
Agenda
• No demanda reactivos externos, equipo e instrumentos.
• No requieren refrigeración.
• Pueden ser almacenadas a temperatura ambiente por varios años.
• Fácil de usar en campo y en unidades médicas rurales.
• Se pueden utilizar con diferentes tipos de muestra en volúmenes pequeños.
• Se pueden realizar por personal sin destreza en el laboratorio con un entrenamiento menor.
• Presentadas en estuches especiales (Tira o cartucho).
• Presentación en empaques individuales.
• Aceptación científica, local o internacional.
Ventajas del uso de RDTs
Laboratorio de Chagas, InDRE.
Una prueba bajo control estadístico
y operación óptima
Requerimientos
Requerimientos
Laboratorio de Chagas, InDRE.
Pruebas rápidas para ECh
Desempeño
Laboratorio de Chagas, InDRE.
Ep
Se
• Importancia Global
• Etiología
• Epidemiología
• Diagnóstico
• Experiencia1. Pruebas serológicas utilizadas en México para
identificación de anticuerpos anti-T. cruzi
2. Tiras reactivas, eficiencia diagnóstica en suero o plasma
• Algoritmo de Diagnóstico Serológico
Agenda
a
b
MARCO ANALÍTICO EXISTENTE EN 2012 EN LA RNLSP PARA EL PARA EL DIAGNÓSTICO SEROLÓGICO DE CHAGAS
Fuente: Archivo LECH-InDRE
ALGORITMO DE REFERENCIA DIAGNÓSTICO SEROLÓGICO DE CHAGAS
1)
2)
3)
4)
5)
6)
ALGORITMO DE DIAGNÓSTICO
Se=98 a 99.5
Hay que considerar:
— Los anticuerpos IgG tienen valor si persisten después de los 8 meses de vida.
— La IgM y la IgA no son útiles para el diagnóstico.
— Todo niño hijo de madre con enfermedad de Chagas está infectado si el examen
parasitológico es positivo o se detectan anticuerpos después de los 8-9 meses de
edad, independiente si es sintomático o no.
Técnica del microhematocrito
Variantes de visualización
Torrico et al. Rev Soc Bras Med Trop.
2005;38 Suppl 2:58-61.
Schneider et al. An Pediatr
Contin. 2008;6(6):369-74.
Freilij et al. J Clin Microbiol.
1983;18:327-30.
Mayo 2013
Laboratorio de ChagasInDRE