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185 Control transcripcional de la diferenciación celular JAVIER LEÓN SERRANO RESUMEN La diferenciación de una célula animal consiste en la reprogramación genética de una célula madre, y supone la activación y represión de miles de genes en un pro- ceso secuencial, hasta dar una célula terminalmente diferenciada. Los factores de transcripción controlan la expresión de los genes uniéndose a secuencias específicas en su promotor, pero la activación correcta del gen requiere la combinación de va- rios factores de transcripción que cooperan para remodelar la cromatina y permitir el acceso y activación de la RNA polimerasa. Esta revisión se centrará en la diferen- ciación de las células embrionarias pluripotentes y de las células madre hematopo- yéticas. Gracias al establecimiento de líneas de células madre embrionarias murinas y humanas se han identificado genes responsables del mantenimiento de la pluripo- tencia, codificando la mayoría para factores de transcripción. La combinación de va- rios de estos factores (Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc, Nanog, Lin28) es capaz de conver- tir fibroblastos de adultos en células madre pluripotentes. Las nuevas tecnologías de análisis masivo del genoma han evidenciado que estos factores forman redes que ac- túan coordinadamente para mantener el estado indiferenciado y pluripotente. La di- ferenciación de la células madre hematopoyéticas hasta los distintos tipos celulares maduros de la sangre es también controlada por factores de transcripción, algunos actuando a nivel de la célula madre y otros en progenitores comprometidos a los dis- tintos linajes (linfoide, mieloide). Es revelador que la mayoría de los oncogenes iden- tificados en leucemias son versiones mutadas de genes de factores de transcripción que han demostrado ser necesarios para la correcta hematopoyesis en ratones altera- dos genéticamente. Esto confirma los genes del cáncer no sólo operan en el control de la proliferación sino también en el de la diferenciación celular.

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Control transcripcional de la diferenciacióncelular

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RESUMEN

La diferenciación de una célula animal consiste en la reprogramación genéticade una célula madre, y supone la activación y represión de miles de genes en un pro-ceso secuencial, hasta dar una célula terminalmente diferenciada. Los factores detranscripción controlan la expresión de los genes uniéndose a secuencias específicasen su promotor, pero la activación correcta del gen requiere la combinación de va-rios factores de transcripción que cooperan para remodelar la cromatina y permitir elacceso y activación de la RNA polimerasa. Esta revisión se centrará en la diferen-ciación de las células embrionarias pluripotentes y de las células madre hematopo-yéticas. Gracias al establecimiento de líneas de células madre embrionarias murinasy humanas se han identificado genes responsables del mantenimiento de la pluripo-tencia, codificando la mayoría para factores de transcripción. La combinación de va-rios de estos factores (Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc, Nanog, Lin28) es capaz de conver-tir fibroblastos de adultos en células madre pluripotentes. Las nuevas tecnologías deanálisis masivo del genoma han evidenciado que estos factores forman redes que ac-túan coordinadamente para mantener el estado indiferenciado y pluripotente. La di-ferenciación de la células madre hematopoyéticas hasta los distintos tipos celularesmaduros de la sangre es también controlada por factores de transcripción, algunosactuando a nivel de la célula madre y otros en progenitores comprometidos a los dis-tintos linajes (linfoide, mieloide). Es revelador que la mayoría de los oncogenes iden-tificados en leucemias son versiones mutadas de genes de factores de transcripciónque han demostrado ser necesarios para la correcta hematopoyesis en ratones altera-dos genéticamente. Esto confirma los genes del cáncer no sólo operan en el controlde la proliferación sino también en el de la diferenciación celular.

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SUMMARY

Animal cell differentiation means a genetic reprogramming of a stem cell,involving activation and repression of thousands of genes en a sequential pro-cess to give a terminally differentiated cell. Transcription factors control geneexpression by binding to specific sequences in their promoters, but the propergene activation requires the combination of several transcription factors thatcooperate to remodelate the chromatin and allow the access and activation ofthe RNA polymerase. This review will focus in the differentiation of embr-yonic stem cells and hematopoietic stem cells. After the establishment of mu-rine and human embryonic stem cells we have identified genes responsible forthe maintenance of the pluripotency, most of them encoding for transcriptionfactors. A combination of some of these factors (Oct4, Sox2, Klf4, c-Myc, Na-nog, Lin28) is capable to convert adult fibroblasts in pluripotent stem cells re-program. The new technologies of genome-wide analysis have revealed thatthese factors are organized in networks that act coordinately to maintain thepluripotent and undifferentiated state. The differentiation of hematopoieticstem cells to the different blood mature cell types is also controlled by trans-cription factors. Interestingly, most of the of the oncogenes identified in leu-kemia are mutated versions of genes encoding transcription factors requiredfor the proper hematopoiesis in genetically altered mice. This confirms thatcancer genes not only operate in the control of proliferation but also in thecontrol of cell differentiation.

1. INTRODUCCIÓN

La expresión de los genes se puede regular a nivel de su transcripción ytambién a nivel postranscripcional. Los mecanismos de regulación postrans-cripcional incluyen los que controlan la estabilidad de los mRNAs, su tasa detraducción por los ribosomas o la estabilidad de la proteína codificada por elmRNA, siendo este último el mecanismo de regulación postranscripcional másimportante. Sin embargo, el mecanismo prevalente por el que se regula la ex-presión de los genes es a nivel de su transcripción, pues los niveles de proteí-na, para una mayoría de genes, se correlacionan con los niveles de mRNA. Latranscripción de un gen silente es activada por factores de transcripción, deno-minación muy imprecisa. En un sentido amplio se pueden definir como proteí-nas con capacidad de interaccionar con secuencias específicas de DNA y regu-lar su actividad transcripcional por uno u otro mecanismo. Estos mecanismos

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son diversos, como se repasan luego. Para unirse al DNA se dispone de una co-lección limitada de dominios proteicos de interacción con DNA (dedos de zinc,hélice-lazo-hélice, homeodominio, etc). Además de los factores de transcripción«bona fide» hay una serie de co-represores y co-activadores que, si bien no inter-accionan con el DNA o no o hacen de manera específica de secuencia, se unena los factores de transcripción modificando su actividad en un sentido positivoo negativo.

La diferenciación celular supone un profundo cambio de expresión genéti-ca. El proceso biológico que convierte un zigoto en un recién nacido o una oru-ga en una mariposa es en realidad una reprogramación genética ordenada en eltiempo y en el espacio (específica de tejido) por el que miles de genes se vanactivando y miles silenciando. Este proceso de desarrollo y diferenciación ce-lular viene controlado por un numeroso conjunto de genes que codifican facto-res de transcripción que a su vez responden a factores extracelulares y contac-tos célula-célula. Estos genes se han ido identificando a partir de las nuevastecnologías de análisis de la expresión génica a nivel genómico y porque en tu-mores se han encontrado de manera recurrente versiones mutadas de esos ge-nes. En las siguientes secciones se repasaran los mecanismos básicos de la trans-cripción y la actividad de los genes implicados en el control de la diferenciaciónde células madre pluripotentes y tisulares, tomando en este último caso la he-matopoyesis como modelo.

2. PRINCIPIOS DE LA REGULACIÓN DE LA TRANSCRIPCIÓN EN CÉLULAS ANIMALES

Todos los genes que codifican proteína, así como los de microRNA (miR-NA), son transcritos por la RNA polimerasa II (RNAPII), que en realidad es uncomplejo multiproteico llamado holoenzima RNAPII. La tasa de transcripcióndepende sobre todo de la tasa de inicio de la transcripción, es decir, de la tasade unión de la holoenzima RNAPII al sitio de iniciación para arrancar la trans-cripción del gen. Esta unión depende a su vez de la actividad combinada de fac-tores de transcripción que se unen a regiones cercanas al inicio de la transcrip-ción, normalmente hacia el 5’ del inicio de transcripción, pero también en elprimer exón, y a distancias muy variables según el factor y el gen. La forma enque estas proteínas activan o reprimen la transcripción está relacionada con cam-bios en la topología del DNA, con modificaciones de histonas (acetilación/dea-cetilación y metilación de histonas), remodelación de la cromatina y metilaciónde citosinas del DNA.

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Aunque no hay reglas generales y la nomenclatura es confusa en la litera-tura, pueden identificarse cuatro tipos fundamentales de regiones a las que seunen los factores de transcripción: el promotor básico, el promotor proximal,el distal y regiones estimuladoras de la transcripción (enhancers), silenciadoras(silencers) y aislantes (insulators). El «promotor básico» (core promoter) sonlas secuencias adyacentes al inicio de transcripción donde se une el complejode la RNAPII. El resto de lo que se denomina promotor viene definido por si-tios de unión a factores de transcripción distintos de la RNA polimerasa II y susproteínas asociadas (1). El promotor proximal, incluye el básico y regiones ha-cia 5’ (regiones upstream) de longitud variable pero raramente más de 2 kb, queincluyen los sitios de unión uno o varios factores de transcripción. El promotorproximal se define operativamente como las secuencias capaces de conferir ex-presión al gen de manera autónoma y regulada. Por ejemplo, un ratón transgé-nico puede expresar cualquier gen, si está bajo el control del promotor básicode un gen específico de ese tejido o tipo celular.

El promotor distal incluye una serie de secuencias de unión a factores detranscripción que pueden situarse a varios kb del inicio de transcripción. Ade-más del promotor, la expresión de los genes está regulada por proteínas quese unen a secuencias llamadas intensificadores o enhancers (que aumentan laexpresión del gen), silenciadores (que lo reprimen) o aislantes (insulators).Los intensificadores típicos en animales son secuencias de 200 a 1000 pb y aellos pueden unirse varios (a veces una docena) de proteínas que interaccio-nan directamente con el DNA (1). Se distinguen de otros elementos del pro-motor en que pueden encontrarse bastante lejos del inicio de la transcripción

FIGURA 1. Esquema de las regiones reguladoras de un gen de eucariotas superiores codificantede proteínas (transcrito por la RNA polimerasa II). Los distintos elementos (promotor básico,proximal y distal) se describen en el texto. Dependiendo del gen en concreto, el número y situaciónde lo sitios de unión a los factores de transcripción en el promotor proximal y distal, así comode los intensificadores o silenciadores (estos no indicados en el esquema por simplicidad) puedenvariar de un gen a otro. Por convenio, los genes se numeran a partir del inicio de la transcripción,

es decir, el primer nucleótido del primer exón.

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(a veces 50 kb o más) y son activos tanto en 5’ como en posición 3’ del gen.Al igual que los elementos del promotor proximal, la mayoría de Intensifica-dores son específicos de un tipo celular y de un estadío de diferenciación deese tejido (2).

FIGURA 2. Esquema de la activación de un gen. El proceso se inica por la unión de un factor detranscripción activador (ACT) a su secuencia de unión (SU) que recluta un complejo deremodelación de cromatina (REM) y complejos histonas acetil transferasa (HAT). La actividad deestos complejos hace accesible la cromatina al complejo TFIID, que incluye la proteína de unióna TATA y otras proteínas accesorias (proteínas TAF). Luego, el complejo Mediador (MED) formaun puente que conecta el activador con la RNA polimerasa II (Pol II) para formar el complejo depreiniciación junto con los llamados factores de transcripción generales (TFIIA, B, D, E, F y H).Cuando el complejo es ensamblado sobre el inicio de la transcripción, la RNA polimerasa II esfosforilada y la transcripción comienza. Las diferentes proteínas no están dibujadas a escala.

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Los aislantes son secuencias de DNA que hacen de límite al efecto regula-dor de secuencias vecinas, bien bloqueando la acción de intensificadores o bienbloqueando el efecto represor de la heterocromatina. El ejemplo mejor conoci-do es la proteína de unión a secuencias aislantes CTCF, que actúa sobre todopor mecanismos de modificación de cromatina y que es tratado en otro capítu-lo de este libro. En la Figura 1 se muestran los principales elementos de los pro-motores de los genes de las células animales.

La transcripción se inicia por la unión de factores de transcripción a secuenciasdel promotor proximal y distal. Normalmente se requiere la cooperación de dos omás factores para activar un gen. La unión de estas proteínas al DNA provoca unaapertura de la cromatina y reclutamiento de factores de transcripción llamados ge-néricamente co-activadores. Estos actúan acetilando histonas y demetilando citosi-nas del DNA. Por tanto, el estado transcripcional de cada gen viene regulado por elconjunto de factores de transcripción y proteínas que modifican el estado de com-pactación de la cromatina. A continuación un complejo proteica llamado Medidoractúa de puente entre los factores de transcripción y la holoenzima RNAPII (3). Porúltimo se ensambla un complejo de preiniciación que incluye la RNAPII y los lla-mados factores generales de transcripción: TFIID (un complejo de varias proteínasque hace el contacto inicial con el DNA), TFIIA, TFFIIB, TFIIE, TFIIF y TFIIH.Estos factores posicionan a la RNAPII en el sitio de inicio de la transcripción delgen, separan las dos cadenas de DNA lo que permite el comienzo de la transcrip-ción (4). Este proceso está esquematizado en la Figura 2.

3. REDES REGULADORAS DE FACTORES DE TRANSCRIPCIÓNEN DIFERENCIACIÓN CELULAR

El mantenimiento del estado indiferenciado (o de la pluripotencia cuandose trata de células madre), así como el proceso de diferenciación, es productode la acción de muchos factores de transcripción que intervienen de manera co-ordinada en el tiempo formando distintos complejos sobre los promotores de losgenes diana que son así activados secuencialmente. Como se ha dicho en el Pun-to 2, los genes se controlan mediante combinaciones de factores de transcrip-ción que se unen a sus promotores. Este control combinatorial permite activarsecuencialmente los genes necesarios para mantener la célula madre en su es-tado de autorrenovación e indiferenciada o bien para disparar el proceso de di-ferenciación hacia un linaje celular determinado. Las interrelaciones funciona-les entre factores de transcripción se ha podido evidenciar mejor en los últimosaños gracias a las técnicas de inmunoprecipitación de cromatina (ChIP) segui-

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da de hibridación de microarrays o «chips» con las secuencias de los promoto-res de miles de genes (método conocido como ChIP-on-chip). De esta manera,disponiendo de anticuerpos para un factores de transcripción se puede conocerde manera relativamente rápida a qué promotores se unen y por tanto son pro-bablemente regulados por el factor.

Gracias a estos abordajes se han podido demostrar circuitos de retroali-mentación positiva que tienen lugar tanto en diferenciación como en el mante-nimiento del estado indiferenciado (ver Punto 4). En este circuito, un factor detranscripción activa la expresión de un segundo factor y los dos forman un com-plejo que activan otros genes diana (Figura 3A). Sólo cuando los dos primerosfactores (A y B en la Figura 3A) alcanzan un nivel crítico pueden activar coor-dinadamente la expresión de otros genes siguientes en el proceso.

FIGURA 3. (A) Esquema de un circuito de regulación positiva de factores de transcripción duranteun proceso de diferenciación. (B) Esquema de una red de factores de transcripción que activa

genes secuencialmente en diferenciación celular. Ver texto para detalles.

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La otra situación interactiva de factores de transcripción en diferenciaciónfue descrita hace años (originalmente aplicada a la hematopoyesis) como un«transcription factor party». En este modelo se van formando distintos com-plejos de factores de transcripción que van activando y silenciando distintos ge-nes durante la diferenciación a un linaje determinado. La analogía son los gru-pos de personas que se forman en un cocktail en los que el tema de conversa-ción va cambiando según se retiran o añaden nuevas personas al grupo (5)(Figura 3B). Este tipo de red se ha demostrado recientemente de manera claraen las células pluripotentes con varios factores de transcripción (Oct4, Sox2 yNanog, ver Punto 4).

4. CONTROL TRANSCRIPCIONAL DEL ESTADO PLURIPOTENTE

Clásicamente se ha establecido una jerarquía de células troncales, distin-guiendo entre células totipotentes (que sería el cigoto, capaz de generar todo elorganismo), pluripotentes, multipotentes y las precursoras de un solo tipo celu-lar o unipotentes. Las células pluripotentes son capaces de generar tejidos de lastres capas embrionarias (ectodermo, mesodermo y endodermo) y son las célu-las derivadas de la masa celular interna (ICM) del blastocisto. A partir de ellasse han derivado líneas de células troncales embrionarias o (nombre más acep-tado) células madre embrionarias (ES, por Embryonic Stem) de las que ya haymás de 60 líneas a disposición de los investigadores (6). Estas células pluripo-tentes han sido de gran utilidad para conocer sobre el control transcripcional dela diferenciación. Aunque no sean capaces de generar todos los tejidos, las cé-lulas ES pueden dar lugar a distintos tipos celulares dentro de la misma hojaembrionaria. Un ejemplo clásico al que nos volveremos a referir luego son lascélulas madre hematopoyéticas.

El proceso de diferenciación implica una intensa reprogramación génica:miles de genes son activados y miles reprimidos. Por ejemplo, cuando se hancomparado los transcriptomas de células ES humanas se ha encontrado que, deunos 32.000 genes estudiados, había diferencias de expresión significativas (>4veces) en unos 5.000 genes (7). Se puede generalizar diciendo que el balancefinal es de represión porque el número de genes que se expresan en una célulaterminalmente diferenciada suele ser menor que en la célula madre del tejido.Durante la diferenciación celular, se silencian los genes encargados de mante-ner la célula indiferenciada y en un estado proliferativo o de autorrenovación,mientras que se van induciendo los genes que codifican para las proteínas es-pecíficas del tejido correspondiente que dictan el tipo celular maduro.

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La diferenciación depende de factores de transcripción que mantienen lascélulas precursoras en un estado indiferenciado. Para que la renovación de untejido tenga lugar, es necesario que las células madre del mismo, o células pre-cursoras que aún no están terminalmente diferenciadas, se dividan para dar otracélula precursora y una célula más diferenciada o comprometida hacia la dife-renciación. Aunque esto está controlado genéticamente, poco se sabe de los me-canismos que controlan esta división asimétrica.

Una vez que la célula esta comprometida a ser diferenciada, es decir queya no es una célula madre, entran en acción factores de transcripción que diri-gen la diferenciación hacia un tipo celular determinado. Por tanto, en relacióna la diferenciación celular se pueden distinguir dos tipos de factores: los quemantienen la pluripotencia y los que determinan la diferenciación.

5. REPROGRAMACIÓN GENÉTICA DE CÉLULAS MADURAS HACIA CÉLULAS PLURIPOTENTES

El clonaje de la oveja Dolly demostró que factores de transcripción de los oo-citos de mamífero eran capaces de reprogramar el núcleo de una célula diferen-ciada adulta para dar lugar a una célula totipotente capaz de generar un animal(8). Por otra parte, haciendo uso de la tecnología de microrarrays se ha compara-do el transcriptoma de células diferenciadas con el de células madres embriona-rias, así como el de líneas de células ES no diferenciadas y diferenciadas en cul-tivo (normalmente con ácido retinoico). Como resultado de estos estudios se hanencontrado una serie de factores de transcripción que están regulados durante elproceso de diferenciación de estas células, como Oct4, Sox 2, Nanog, Tdgf1, Utf1,Lin28, etc. La importancia de algunos de ellos como Oct2, Sox2 y Nanog paramantener el estado pluripotente y la autorrenovación de células madre se ha po-dido demostrar en estudios de sobrexpresión tras transfección de los correspon-dientes genes y de silenciamiento con siRNA [revisado en (9, 10)]. Para la ma-yoría de estos factores ya se había descrito una mayor expresión en células madrede varios tejidos, y muchos de sus genes-diana estaban relacionados con funcio-nes de relacionadas con autorrenovación y con la represión de genes de diferen-ciación. Por tanto parecían buenos candidatos para ser factores de transcripcióncapaces de no solo mantener sino inducir el estado pluripotente.

Esta hipótesis se vio confirmada gracias a los trabajos del grupo de Yama-naka, que hizo una análisis sistemático de sobreexpresión de una serie de fac-tores de transcripción mediante transducción retroviral en fibroblastos murinos,

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hasta encontrar una mezcla de cuatro capaces de reprogramar un fibroblasto enuna célula madre pluripotente: Oct2, Sox2, c-Myc y Klf4 (7, 11). Con los mis-mos factores se ha podido también reprogramar fibroblastos humanos (7, 12,13) (Figura 4). Las células iPS humanas son morfológicamente indistinguiblesde las células ES derivadas de las ICM y las diferencias en el perfil de expre-sión genética son pequeñas (7, 13)

Dado que uno de los factores usados (c-Myc, ver más abajo) es oncogénico,se ensayaron nuevas combinaciones de factores de transcripción y se pudo repro-ducir la reprogramación de células humanas usando otra combinación de factoresque no incluían c-Myc, como la mezcla de Oct4, Sox2, Nanog y Lin28 (14) y lade Oct4, Sox y Klf4 (15), aunque en ambos casos con menor eficiencia que cuan-do se usa c-Myc [revisado en (9, 16)]. Algunos de estos factores como Myc, Klf4y Lin28 habían sido previamente identificados como posibles candidatos a ser ge-nes «reprogramadores» comparando transcriptomas (17-19) y otros como Oct4 ySox2 lo fueron a partir de rastreos de genotecas de siRNA para identificar genesque anulaban la capacidad de autorrenovación de células ES murinas (20).

Las células adultas diferenciadas reprogramadas a células pluripotentes con al-guna de estas combinaciones de genes reciben el nombre de células iPS (InducedPluripotent Stem). Esta pluripotencia se puede evidenciar de manera inequívoca

FIGURA 4. Método de reprogramación genética de una células diferenciada adulta (fibroblasto)para dar una células pluripotente inducida (iPS), capaz de diferenciarse a células de las tres

hojas embrionarias. A la izquierda se indican en cajas los diversas mezclas de factores detranscripción que se han usado para reprogramar. Ver texto para detalles y referencias.

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por la expresión de una serie de marcadores típicos de células ES y, sobre todo, enel caso de las células iPS murinas, por su capacidad de generar ratones tras inyec-ción en blastocistos y subsiguientes cruces de la progenie. Cuando se comparan lostranscriptomas de estas células iPS humanas con el de los fibroblastos de partida,se encuentran diferencias significativas en la expresión de más de 5000 genes, loque da idea de la profunda reprogramación genética conseguida (7).

TABLA 1. Factores de transcripción implicados en la generación de células iPS [modificado de (9)] B-HLH-LZ: dominio basico-hélice-lazo-hélice-cremallera de leucina

Proteína Dominio de unión a DNA Expresión Otras características

Oct4 POU Oocitos, ICM, células ES Necesario para la pluripotencia de las células ES.Imprescindible para para la reprogramación

Sox2 HMG Expresión en oocitos y Necesario para la pluripotencia de las células blastocistos y otros tejidos ES. Imprescindible para la reprogramaciónembrionarios. pero puede ser sustituido por otros genes

de la familia Sox con menor eficiencia

Nanog Homeodominio Expresión en mórula, ICN Necesario para la pluripotencia de las célulasy células ES. No ES. No imprescindible para la reprogramaciónimprescindible para la reprogramación.

Klf4 Krüppel En casi todos los tejidos, Implicado en la diferenciación, apoptosissiendo mayor en médula y ciclo celular. No imprescindible paraósea, intestino, piel la reprogramación. Puede ser sustituidoy células ES por Klf2

Lin28 Dominio de Oocitos, blastocisto, Regula miRNAs. No imprescindible para unión a RNA hueso, hígado y gónadas la reprogramación

del adulto

Myc B-HLH-LZ Casi todos los tejidos, Multiples actividades biológicas. sobre todo en las células Regula miles de genes. No en proliferación. imprescindible para la reprogramación

Las principales características de estos factores de transcripción se resumenen la Tabla 1. Además de los seis genes usados en reprogramación y que anali-zaremos con más detalle, se han identificado otros factores implicados en plu-ripotencia aunque no son capaces de reprogramar células diferenciadas: Sall4,

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Dax1, Essrb, Tbx3, Tcl1, Rif1, Nac1, Zfp281, Stat3, etc. Es esperable que enlos próximos años se descubran otros factores de transcripción capaces de re-programar. A continuación se repasan las principales características de estos seisfactores de transcripción usados (hasta ahora) en la obtención de células pluri-potentes, y que por tanto son responsables del mantenimiento del estado de plu-ripotencia y autorrenovación de células madre.

6. FACTORES DE TRANSCRIPCIÓN IMPLICADOS EN ELMANTENIMIENTO DEL ESTADO INDIFERENCIADO

El factor Klf4 (Kruppel-like factor 4, tambien llamado Gklf o Gut-enrichedKruppel-like factor) pertenece a una familia de factores de transcripción con undominio de tres dedos de zinc del tipo Cys2/His2. El nombre proviene de su or-tólogo en Drosophila. Otro miembro de la familia ensayado (Klf2) es igual-mente eficiente en la función de reprogramación. El mecanismo por el que Klf4participa en la reprogramación no está aclarado. Puesto que el supresor tumo-ral p53 reprime Nanog, se ha postulado que Klf4 podría bloquear la parada pro-liferativa debida a p53 durante la reprogramación a células pluripotentes (21,22). Al igual que Nanog, c-Myc y Lin28, el factor Klf4 no es imprescindiblepara la reprogramación de células humanas y puede ser sustituido por otros ge-nes de la familia como Klf2 y Klf5 (23).

EL factor Lin28 no es un factor de transcripción, sino que es una proteínacon un dominio de unión a RNA. Recientemente se ha demostrado que Lin28es un regulador negativo de la expresión de los miRNA al bloquear el procesa-miento de pre-miRNAs. Los miRNAs (micro-RNAs) son cortos RNAs no co-dificantes (de aproximadamente 22 nt) que reprimen la expresión de otros ge-nes mediante un mecanismo antisentido a nivel de las regiones no traducidas 3’de los mRNA (24). Cada miRNA en el genoma humano es capaz de silenciarun conjunto de genes diana, y entre ellos hay genes importantes para el des-arrollo y la diferenciación (25). Se estima que hay 500-1000 miRNAs en el ge-noma humano y por tanto una buena parte de los genes está sometida a regula-ción negativa por algún miRNA. Por tanto se cree que Lin28 revierte el efectodiferenciador de los miRNAs

El factor Oct4 (abreviación de Octamer 4 y también llamado Oct3/4 yPou5f1) es un factor de transcripción con homeodominio que pertenece a la fa-milia de proteínas POU. Oct4, junto con Sox2, es el único factor necesario parala reprogramación de células adultas en pluripotentes, y también se ha demos-

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trado su importancia para mantener la capacidad de pluripotencia y autorreno-vación de las células ES. El primer evento de diferenciación ocurre cuando lascélulas de la capa externa de la mórula se diferencian hacia trofoectodermo for-mando un blastocisto. El trofoectodermo formará luego la placenta, mientras quelas células del interior del blastocisto (ICM) dan lugar a todas las células deladulto. La importancia de Oct4 en la diferenciación celular se hace evidente enlos embriones de ratón Oct4-/-, que no pueden formar siquiera la ICM y el em-brión se diferencia a trofoectodermo (26)

Oct4 se encuentra unido a un gran número de genes diana implicados en elmantenimiento de la pluripotencia. La actividad biológica de Oct4 depende engran medida de sus niveles de expresión. Así, una reducción de Oct4 en célulasES humanas conduce a la inducción de marcadores de mesoderno y endodermo,mientras que niveles altos de Oct4 inducen marcadores de endodermo (27). Estoilustra la complejidad transcripcional del proceso, sugiriendo que a partir de undeterminado nivel Oct4 forma parte de nuevos complejos que regulan nuevos genes. Por tanto la situación evoca de nuevo la “fiesta de cocktail” de los facto-res de transcripción (5).

Nanog es un factor de transcripción cuyo dominio de unión a DNA es unhomeodominio, al igual que Oct4. Nanog fue identificado por su capacidad demantener células ES en la ausencia del factor de crecimiento LIF (Leukemia In-hibitory Factor, que de otra manera es necesario para mantener estas células cre-ciendo) (28). La sobreexpresión de Nanog aumenta la capacidad de autorreno-vación y del mantenimiento de un estado indiferenciado de la célula.Consistentemente células ES deficientes en Nanog se diferencian hacia endo-dermo (18, 28).

El factor Sox2 es un miembro de la familia de factores de transcripción Sox(SRY-related HMG box), caracterizados por tener un dominio de unión a DNAdel tipo HMG (High Mobility Group). Experimentos de inactivación génica enratones demuestran que Sox2 es necesario para el desarrollo embrionario y paraprevenir la diferenciación de ESC (29). La reducción de la expresión de Sox2en células ES humanas conduce a la pérdida del estado pluripotente.

El factor c-Myc fue el primer factor de transcripción descubierto (en 1979)y está activado en un 30-50% de tumores humanos (30). c-Myc es una prote-ína con dominio B-HLH-LZ (región básica-hélice lazo hélice-cremallera de leu-cina). La cremallera de leucinas en la segunda hélice le sirve para dimerizarcon la proteína Max. Este heterodímero es la forma transcripcionalmente acti-va de c-Myc y se une a una secuencia de seis bases que recibe el nombre de

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Secuencia E (E Box), presente en muchos genes. Estudios de expresión a ni-vel genómico y de ChIP-on-chip han revelado que c-Myc regula la expresiónde más de mil genes y que aparece unido al promotor del 10% de los geneshumanos, murinos y de Drosophila, lo que supone cerca de 3000 genes en elgenoma humano (31-33). Esto incluye también células ES, en las que se evi-dencia que Myc tiene un perfil diferente al de Nango, Sox y Kfl4 (34). Ade-más regula la expresión de varios miRNAs (35, 36). Este masivo efecto trans-cripcional es debido, al menos en parte, a la capacidad que tiene c-Myc deinducir algunas histona acetil transferasas y demetilasas, induciendo cambios

FIGURA 5. (A) La expresión de c-Myc suele reprimirse cuando la célula se diferenciaterminalmente, y la expresión forzada de c-Myc bloquea la diferenciación celular inducida porcitoquinas y agentes químicos en células en cultivo. (B) Regresión tumoral al silenciar o desactivarc-Myc en varios modelos de tumorogénesis. La regresión es debida a la re-diferenciación de la

célula tumoral.

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globales en la estructura de la cromatina (37, 38). c-Myc tiene variados efec-tos biológicos, que incluyen la estimulación del ciclo celular y replicación, in-mortalización y un aumento en la síntesis de ribosomas, proteínas y mitocon-drias (con el consiguiente aumento del tamaño celular), inmortalización, etc.Uno de sus efectos es la inhibición de la diferenciación celular en líneas celu-lares de distintos linajes que pueden ser diferenciadas en cultivo (Figura 5A)[revisado en (39, 40)]. Por ejemplo, nuestro laboratorio lo ha demostrado en elcaso de diferenciación eritroide (41, 42) y neuronal (43). c-Myc es a su vez ungen de expresión muy regulada en diferenciación, siendo sus niveles altos encélulas proliferantes y baja en células diferenciadas terminalmente, lo que esconsistente con su efecto inhibidor de la diferenciación en modelos celularesen cultivo. En vivo, c-Myc parece tener el paradójico efecto de aumentar la di-ferenciación de algunos tejidos, como el epitelial o el linfoide, pero esto es de-bido a que induce una amplificación de la población de células precursoras [re-visado en (44)]. Aunque c-Myc forma parte del conjunto de cuatro factores detranscripción usados en la reprogramación de células maduras a células iPS, noes imprescindible para ello, aunque aumenta la eficiencia de formación de cé-lulas iPS de dos a diez veces (7, 11, 45, 46).

La importancia de la inhibición de la diferenciación como mecanismos on-cogénico de c-Myc viene ilustrado por los experimentos en ratones transgéni-cos con genes c-Myc inducible por tetraciclina o activable con tamoxifeno. De-pendiendo del promotor proximal usado (ver Punto 2) el c-Myc se puedeexpresar en distintos tejidos y así se obtienen linfomas, hepatomas, osteosarco-mas, leucemias mieloides y papilomas/hiperplasia de piel. Cuando se inactiva osilencia c-Myc estos tumores remiten, y esta remisión en una mayoría de tu-mores se debe a la re-diferenciación de las células previamente indiferenciadasy con altos niveles de c-Myc (47) (Figura 5B). Esta función de c-Myc como an-tidiferenciador encaja con su capacidad de inducir células iPS, aunque los me-canismos por los que colabora tan eficientemente con Oct4, Sox2 y Klf4 no es-tán aclarados.

7. INTERACCIÓN FUNCIONAL ENTRE FACTORES DE TRANSCRIPCIÓN RESPONSABLES DE LA PLURIPOTENCIA

En las células ES de ratón y humanas se han hecho estudios de ChIP-on-chip (17, 48) o bien de secuenciación directa del DNA precipitado (49) para es-tudiar las dianas transcripcionales de los factores de transcripción «reprogra-madores» descritos arriba. Estos estudios han revelado en primer lugar que los

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tres factores (Oct4, Sox2 y Nanog) se encuentran unidos en un complejo a suspropios promotores, formando un circuito de autorregulación positiva que man-tiene la pluripotencia de la célula (18, 50). Además se ha demostrado que estostres factores o combinaciones de dos de ellos se unen a los promotores de otroscientos de genes. Por tanto, esos factores de transcripción no controlan sus ge-nes diana independientemente sino que trabajan de manera coordinada para man-tener el programa transcripcional requerido para la pluripotencia. Además, cuan-do se analiza la expresión de mRNA de los genes a los que se unen Oct4, Soxy Nanog, se encuentra que aproximadamente la mitad son genes transcripcio-nalmente activos. Sin embargo la otra mitad son genes inactivos y la mayoríade ellos son genes también regulados por proteínas del grupo Polycomb (prote-ínas PcG) (51). Las proteínas PcG forman varios tipos de complejos que repri-men la expresión génica (PRC, Polycomb Repressive Complexes). Estos com-plejos son responsables del silenciamiento de genes a través de mecanismosepigenéticos, y principalmente la metilación de histonas, que llevan a la cro-matina aun estado silente (52). La metilación y acetilación de histonas se abor-

FIGURA 6. La reprogramacion por factores de transcripción para generar iPSC es un procesosecuencial. En la parte superior se ilustra el cambio fenotípico desde fibroblastos maduros a célulaspluripotentes inducidas (iPSC), que ocurre en una plazo de tres semanas y con una frecuencia muybaja En la parte inferior se muestra los cambios a nivel de cromatina, desde un estado silente,con alto grado de compactación de histonas y metilación de citosinas, hasta un estado de cromatinamenos compactada y que ha perdido la metilación en citosinas, mientras que muestra metilacióny acetilación de algunas histonas, que permite la transcripción de los genes de mantenimiento del

estado pluripotente, entre ellos los genes endógenos para Oct4, Sox2 y Nanog.

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da en detalle en otro capítulo de este libro. Típicamente, los complejos de PcGson responsables de la trimetilación de la lisina 27 de la histona H3(H3K27me3), y esta metilación está ausente en fibroblastos y reaparece en cé-lulas iPS (46, 53) (Figura 6).

Todos los estudios realizados hasta ahora coinciden en concluir que la re-programación con estos factores de transcripción es un proceso gradual, que re-quiere la expresión de dichos factores durante dos semanas y finalmente ocurrecon una frecuencia baja: menos del 0.1% de los fibroblastos adultos. Esto indi-ca que los genes han de irse silenciado o activando en un proceso que implicacambios a nivel de cromatina: acetilación/deacetilación de histonas, metila-cion/demetilación de histonas y metilación/demetilación de citosinas del DNA

8. CONTROL TRANSCRIPCIONAL DE LA HEMATOPOIESIS

Uno de los modelos más estudiados y más interesantes por su diversidad ysu impacto en la enfermedad es la hematopoyesis. Es un complejo proceso con-trolado por mecanismos de señalización extracelular e intracelular en el que unsolo tipo de células madre hematopoyéticas (HSC, Hematopoietic Stem Cells)es capaz de generar hasta 10 tipos de células diferenciadas, muy diferentes en-tre ellas en tamaño, morfología número y funciones (54). Estos mecanismos nor-malmente activan reguladores transcripcionales que a su vez establecen un pro-grama de diferenciación (55-57). Las HSC van generando una serie deprecursores intermedios hacia cada uno de los linajes hematopoyéticos. Aunqueaún se debate sobre la identidad de los precursores tempranos, un modelo muyaceptado describe que la HSC se diferencia a un progenitor de linfocitos (CLP,Common Lymphoid Progenitor) o a una célula madre del linaje mieloide (CMP,Common Myeloid Progenitor) que se diferencia a su vez da lugar a progenito-res megacariocítico-eritroide y granulocitos-macrófagos (57). Todas estas célu-las progenitoras intermedias normalmente tienen una vida corta y sufren una rá-pida proliferación antes de dar las formas terminalmente diferenciadas. Estebalance entre proliferación y diferenciación está finamente regulado por facto-res de transcripción específicos de cada linaje y estadío. Toda leucemia agudasupone la acumulación de células que tienen la diferenciación detenida en unou otro estadío (este es el criterio usado para la clasificación de leucemias mie-loides). Es revelador que la mayoría de los factores de transcripción que han de-mostrado ser cruciales para la hematopoyesis han sido previamente identifica-dos como oncogenes en leucemias y linfomas [revisado en (58-60) ]. El papelde estos genes en la hematopoyesis viene confirmado experimentalmente en mo-

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delos de ratones deficientes en los correspondientes genes. En estos modelos seha comprobado que la deficiencia en estos genes resulta en bloqueo en la dife-renciación de distintos linajes hematopoyéticos o incluso en la deficiencia dehematopoyesis aberraciones de la hematopoyesis. Los linajes que resultan afec-tados por la mutación en los distintos factores se resumen en la Figura 7.

No es por tanto sorprendente el dato de que la deregulación y/o mutaciónde estos factores de transcripción conduce a leucemias y linfomas. En efecto,muchos de ellos se han encontrado alterados (mutados, translocados) con ma-

FIGURA 7. Esquema de la hematopoyesis indicando los genes de factores de transcripción queaparecen alterados en leucemias y que son necesarios para la correcta diferenciación hacia loslinajes celulares indicados, según los resultados observados en ratones deficientes para elcorrespondiente factor. Los distintos tipos celulares se indican en cursivas: CLP. Progenitor comunlinfoide; CMP, progenitor común mieloide; MEP: progenitor megacariocítico-eritroide; GMP:

precursor granulocito-monocito.

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yor o menor frecuencia en leucemias tanto de estirpe mieloide como linfoide.El mecanismo más frecuente de activación es el de la translocación cromosó-mica, dando lugar a proteína de fusión con nuevas propiedades. Particularmen-te frecuente es la translocación de RUNX1/AML1 en leucemia mieloide. La ma-yor parte de ellos son reguladores negativos de la transcripción mientras que susversiones mutadas pierden su capacidad de reprimir genes (por ej., AML1 yMLL). En otros casos como PML-RARα, la proteína de fusión, aunque sí uneal DNA, pierde su actividad transactivadora y no es capaz de activar genes dediferenciación (de la estirpe granulocítica en este caso).

TABLA 2. Factores de transcripción y coactivadores transcripcionales implicados enhematopoyesis y leucemia. Se relacionan sólo los factores de transcripción implicados enhematopoyesis y que aparecen mutados en leucemias o linfomas humanos. LMA, leucemiamieloide aguda; LLA-B, leucemia linfoide aguda de células B; LLA-T, leucemia linfoide aguda de

células T; HAT, histona acetiltransferasa

Factor Dominio de Leucemia o linfomaunión a DNA prevalente Mecanismo de activación

C/EBPα B-LZ LMA Mutación

c-Myc B-HLH-LZ Linfoma de Burkitt Translocación, mutación y sobreexpresión

E2A/TCF3 B-HLH LLA-B Translocación

EVI1 Dedos de Zn LMA Translocación

ERG Dedos de Zn LMA, LLA Translocación

GATA1 Dedos de Zn Síndrome mieloproliferativo Mutacióntransitorio, leucemia megacarioblástica aguda

MLL Ganchos AT LMA, LLA-B Translocación

PAX5 Paired box LLA Mutación

PU.1/SPI-1 Dominio ETS LMA Silenciamiento

RARα Dedos de Zn LMA (tipo M3) Translocación

RUNX1/AML1 Runt homology LMA Translocación y mutación

SCL/TAL1 B-HLH LLA-T Translocación

CBP No tiene (HAT) LMA Translocación

P300 No tiene (HAT) LMA Translocación

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En la Tabla 2 se indican algunos de los factores de transcripción que apa-recen implicados a la vez en leucemia y en el control de la hematopoyesis y dehecho muchos fueron originalmente identificados como oncogenes en leucemiasy linfomas. En ella se incluyen dos histona acetil transferasas (CBP y p300),también activadas en algunas leucemias.

Los factores de transcripción hematopoyéticos también ofrecen ejemplos decambio de linaje o «transdiferenciación». Así por ejemplo a) la sobreexpresión deC/EBPα induce la transdiferenciación de precursores linfoides B y T en macrófa-gos (61, 62); b) la coexpresión de PU.1 y C/EBPα es capaz de diferenciar célulasno hematopoyéticas como fibroblastos en macrófagos (63); c) GATA1 convierte pro-genitores linfoides y mielomonocíticos en células megacariocíticas/eritroides (64);y d) la supresión de Pax5 en células pro-B (precursoras de linfocitos B) las hace di-ferenciarse hacia osteoclastos y granulocitos (65). La diferenciación de precursoreshematopoyéticos también ha permitido demostrar en un sistema complejo de dife-renciación, la importancia de los niveles relativos de los distintos factores de trans-cripción y de su expresión en el tiempo. Así, la sobreexpresión de GATA1 conviertecélulas mielomonocíticas en células megacariocíticas/eritroides, mientras que la so-breexpresión de PU.1 convierte estas células en mieloides (66). Por otra parte, lasobreexpresión secuencial de C/EBPα y luego de GATA2 en precursores linfoidesen cultivo hace que cambien e linaje se diferencien exclusivamente a eosinófilos,pero si se invierte el orden el que se induce la sobreexpresión de estos factores detranscripción (primero GATA2 y luego C/EBPα) los precursores linfoides se dife-rencian a precursores de basófilos y de mastocitos (67).

La diferenciación de las células precursoras hematopoyéticas demuestra, aligual que en el caso de las células pluripotentes embrionarias, que una serie re-lativamente pequeña de factores de transcripción puede disparar el proceso. Porotra parte, ilustra bien la relación entre diferenciación y cáncer. En efecto, en elcáncer se ve alterado no sólo el control de la proliferación sino también el dela diferenciación, y el papel fisiológico relevante de muchos proto-oncogenes esprecisamente el control de la diferenciación celular.

AGRADECIMIENTOS

La investigación en el laboratorio del autor se ha llevado a cabo gracias alos proyectos CICYT SAF05-00461, SAF08-01581 e ISCIII-RETICRD06/0020. Agradezco a la Dra. M. Dolores Delgado los comentarios sobre elmanuscrito.

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ABREVIATURAS

ES, Embryonic Stem; HSC, Hematopietic Stem Cell; ICM, Internal Cell Mass;iPS, Induced Pluripotent; ChIP, chromatin Immunoprecipitation.

BIBLIOGRAFÍA

1. Szutorisz, H., Dillon, N., y Tora, L. (2005) The role of enhancers as centres for ge-neral transcription factor recruitment. Trends Biochem Sci 30, 593-599.

2. West, A. G., y Fraser, P. (2005) Remote control of gene transcription. Human mo-lecular genetics 14, R101-111.

3. Kornberg, R. D. (2005) Mediator and the mechanism of transcriptional activation.Trends in biochemical sciences 30, 235-239.

4. Asturias, F. J. (2004) RNA polymerase II structure, and organization of the preini-tiation complex. Curr Op Genet Dev 14, 121-129.

5. Sieweke, M. H., y Graf, T. (1998) A transcription factor party during blood celldifferentiation. Current opinion in genetics & development 8, 545-551.

6. Adewumi, O., et al.. Nature Biotechnology 25, 803-816.

7. Takahashi, K., Tanabe, K., Ohnuki, M., Narita, M., Ichisaka, T., Tomoda, K., y Ya-manaka, S. (2007) Induction of pluripotent stem cells from adult human fibroblastsby defined factors. Cell 131, 861-872.

8. Wilmut, I., Schnieke, A. E., McWhir, J., Kind, A. J., y Campbell, K. H. (1997) Via-ble offspring derived from fetal and adult mammalian cells. Nature 385, 810-813.

9. Welstead, G. G., Schorderet, P., y Boyer, L. A. (2008) The reprogramming languageof pluripotency. Curr Op Genet Dev 18, 123-129.

10. Lewitzky, M., y Yamanaka, S. (2007) Reprogramming somatic cells towards plu-ripotency by defined factors. Curr Op Biotech 18, 467-473.

11. Okita, K., Ichisaka, T., y Yamanaka, S. (2007) Generation of germline-competentinduced pluripotent stem cells. Nature 448, 313-317.

12. Park, I. H., Zhao, R., West, J. A., Yabuuchi, A., Huo, H., Ince, T. A., Lerou, P. H.,Lensch, M. W., y Daley, G. Q. (2008) Reprogramming of human somatic cells topluripotency with defined factors. Nature 451, 141-146.

13. Lowry, W. E., Richter, L., Yachechko, R., Pyle, A. D., Tchieu, J., Sridharan, R.,Clark, A. T., y Plath, K. (2008) Generation of human induced pluripotent stem cellsfrom dermal fibroblasts. Proc Natl Acad. Sci USA 105, 2883-2888.

205

CONTROL TRANSCRIPCIONAL DE LA DIFERENCIACIÓN CELULAR

Page 22: Control transcripcional de la diferenciación celular · 2019. 10. 29. · 189 CONTROL TRANSCRIPCIONAL DE LA DIFERENCIACIÓN CELULAR (a veces 50 kb o más) y son activos tanto en

14. Yu, J., Vodyanik, M. A., Smuga-Otto, K., Antosiewicz-Bourget, J., Frane, J. L.,Tian, S., Nie, J., Jonsdottir, G. A., Ruotti, V., Stewart, R., Slukvin, II, y Thomson,J. A. (2007) Induced pluripotent stem cell lines derived from human somatic cells.Science (New York, N.Y 318, 1917-1920.

15. Nakagawa, M., Koyanagi, M., Tanabe, K., Takahashi, K., Ichisaka, T., Aoi, T., Oki-ta, K., Mochiduki, Y., Takizawa, N., y Yamanaka, S. (2008) Generation of inducedpluripotent stem cells without Myc from mouse and human fibroblasts. Nature Bio-tech 26, 101-106.

16. Jaenisch, R., y Young, R. (2008) Stem cells, the molecular circuitry of pluripotencyand nuclear reprogramming. Cell 132, 567-582.

17. Boyer, L. A., Lee, T. I., Cole, M. F., Johnstone, S. E., Levine, S. S., Zucker, J. P.,Guenther, M. G., Kumar, R. M., Murray, H. L., Jenner, R. G., Gifford, D. K., Mel-ton, D. A., Jaenisch, R., y Young, R. A. (2005) Core transcriptional regulatory cir-cuitry in human embryonic stem cells. Cell 122, 947-956.

18. Loh, Y. H., Wu, Q., Chew, J. L., Vega, V. B., Zhang, W., Chen, X., Bourque, G.,George, J., Leong, B., Liu, J., Wong, K. Y., Sung, K. W., Lee, C. W., Zhao, X. D.,Chiu, K. P., Lipovich, L., Kuznetsov, V. A., Robson, P., Stanton, L. W., Wei, C. L.,Ruan, Y., Lim, B., y Ng, H. H. (2006) The Oct4 and Nanog transcription networkregulates pluripotency in mouse embryonic stem cells. Nature Genet 38, 431-440.

19. Richards, M., Tan, S. P., Tan, J. H., Chan, W. K., y Bongso, A. (2004) The trans-criptome profile of human embryonic stem cells as defined by SAGE. Stem cells(Dayton, Ohio) 22, 51-64.

20. Ivanova, N., Dobrin, R., Lu, R., Kotenko, I., Levorse, J., DeCoste, C., Schafer, X.,Lun, Y., y Lemischka, I. R. (2006) Dissecting self-renewal in stem cells with RNAinterference. Nature 442, 533-538.

21. Lin, T., Chao, C., Saito, S., Mazur, S. J., Murphy, M. E., Appella, E., y Xu, Y.(2005) p53 induces differentiation of mouse embryonic stem cells by suppressingNanog expression. Nature Cell Biol 7, 165-171.

22. Rowland, B. D., Bernards, R., y Peeper, D. S. (2005) The KLF4 tumour suppres-sor is a transcriptional repressor of p53 that acts as a context-dependent oncogene.Nature Cell Biol 7, 1074-1082.

23. Jiang, J., Chan, Y. S., Loh, Y. H., Cai, J., Tong, G. Q., Lim, C. A., Robson, P.,Zhong, S., y Ng, H. H. (2008) A core Klf circuitry regulates self-renewal of embr-yonic stem cells. Nature Cell Biol 10, 353-360.

24. Pillai, R. S., Bhattacharyya, S. N., y Filipowicz, W. (2007) Repression of proteinsynthesis by miRNAs: how many mechanisms? Trends Cell Biol 17, 118-126.

25. Kedde, M., y Agami, R. (2008) Interplay between microRNAs and RNA-bindingproteins determines developmental processes. Cell Cycle (7, 899-903.

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206

Page 23: Control transcripcional de la diferenciación celular · 2019. 10. 29. · 189 CONTROL TRANSCRIPCIONAL DE LA DIFERENCIACIÓN CELULAR (a veces 50 kb o más) y son activos tanto en

26. Nichols, J., Zevnik, B., Anastassiadis, K., Niwa, H., Klewe-Nebenius, D., Chambers,I., Scholer, H., y Smith, A. (1998) Formation of pluripotent stem cells in the mam-malian embryo depends on the POU transcription factor Oct4. Cell 95, 379-391.

27. Rodriguez, R. T., Velkey, J. M., Lutzko, C., Seerke, R., Kohn, D. B., O’Shea, K.S., y Firpo, M. T. (2007) Manipulation of OCT4 levels in human embryonic stemcells results in induction of differential cell types. Exp Biol Med 232, 1368-1380.

28. Mitsui, K., Tokuzawa, Y., Itoh, H., Segawa, K., Murakami, M., Takahashi, K., Maru-yama, M., Maeda, M., y Yamanaka, S. (2003) The homeoprotein Nanog is required formaintenance of pluripotency in mouse epiblast and ES cells. Cell 113, 631-642.

29. Avilion, A. A., Nicolis, S. K., Pevny, L. H., Perez, L., Vivian, N., y Lovell-Badge,R. (2003) Multipotent cell lineages in early mouse development depend on SOX2function. Genes Dev 17, 126-140.

30. Nesbit, C. E., Tersak, J. M., y Prochownik, E. V. (1999) MYC oncogenes and hu-man neoplastic disease. Oncogene 18, 3004-3016.

31. Orian, A., van Steensel, B., Delrow, J., Bussemaker, H. J., Li, L., Sawado, T., Wi-lliams, E., Loo, L. W., Cowley, S. M., Yost, C., Pierce, S., Edgar, B. A., Parkhurst,S. M., y Eisenman, R. N. (2003) Genomic binding by the Drosophila Myc, Max,Mad/Mnt transcription factor network. Genes & development 17, 1101-1114.

32. Zeller, K. I., Zhao, X., Lee, C. W., Chiu, K. P., Yao, F., Yustein, J. T., Ooi, H. S.,Orlov, Y. L., Shahab, A., Yong, H. C., Fu, Y., Weng, Z., Kuznetsov, V. A., Sung,W. K., Ruan, Y., Dang, C. V., y Wei, C. L. (2006) Global mapping of c-Myc bin-ding sites and target gene networks in human B cells. Proc Natl Acad. Sci USA103, 17834-17839.

33. Dang, C. V., O’Donnell K, A., Zeller, K. I., Nguyen, T., Osthus, R. C., y Li, F.(2006) The c-Myc target gene network. Semin Cancer Biol 16, 253-264.

34. Kim, J., Chu, J., Shen, X., Wang, J., y Orkin, S. H. (2008) An extended transcrip-tional network for pluripotency of embryonic stem cells. Cell 132, 1049-1061.

35. Dews, M., Homayouni, A., Yu, D., Murphy, D., Sevignani, C., Wentzel, E., Furth,E. E., Lee, W. M., Enders, G. H., Mendell, J. T., y Thomas-Tikhonenko, A. (2006)Augmentation of tumor angiogenesis by a Myc-activated microRNA cluster. Natu-re Genet 38, 1060-1065.

36. O’Donnell, K. A., Wentzel, E. A., Zeller, K. I., Dang, C. V., y Mendell, J. T.(2005) c-Myc-regulated microRNAs modulate E2F1 expression. Nature 435,839-843.

37. Secombe, J., Li, L., Carlos, L., y Eisenman, R. N. (2007) The Trithorax group pro-tein Lid is a trimethyl histone H3K4 demethylase required for dMyc-induced cellgrowth. Genes Dev 21, 537-551.

207

CONTROL TRANSCRIPCIONAL DE LA DIFERENCIACIÓN CELULAR

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38. Knoepfler, P. S., Zhang, X. Y., Cheng, P. F., Gafken, P. R., McMahon, S. B., y Ei-senman, R. N. (2006) Myc influences global chromatin structure. The EMBO J 25,2723-2734.

39. Grandori, C., Cowley, S. M., James, L. P., y Eisenman, R. N. (2000) TheMyc/Max/Mad network and the transcriptional control of cell behavior. Annu RevCell Dev Biol 16, 653-699.

40. Lutz, W., Leon, J., y Eilers, M. (2002) Contributions of Myc to tumorigenesis. Bio-chim Biophys Acta 1602, 61-71.

41. Delgado, M. D., Lerga, A., Canelles, M., Gomez-Casares, M. T., y Leon, J. (1995)Differential regulation of Max and role of c-Myc during erythroid and myelomo-nocytic differentiation of K562 cells. Oncogene 10, 1659-1665.

42. Acosta, J. C., Ferrándiz, N., Gabriel Bretones, G., Verónica Torrano, V., Rosa Blanco, R.,Richard, C., O’Conell, B., Sedivy, J., Delgado, M. D., y León, J. (2008) Myc inhibitsp27-induced erythroid differentiation of leukemia cells by repressing erythroid master ge-nes without reversing the p27-mediated cell cycle arrest. Mol Cell Biol. In press.

43. Vaque, J. P., Fernandez-Garcia, B., Garcia-Sanz, P., Ferrandiz, N., Bretones, G.,Calvo, F., Crespo, P., Marin, M. C., y Leon, J. (2008) c-Myc inhibits Ras-media-ted differentiation of pheochromocytoma cells by blocking c-Jun up-regulation. MolCancer Res 6, 325-339.

44. Murphy, M. J., Wilson, A., y Trumpp, A. (2005) More than just proliferation: Mycfunction in stem cells. Trends Cell Biol 15, 128-137.

45. Hanna, J., Markoulaki, S., Schorderet, P., Carey, B. W., Beard, C., Wernig, M.,Creyghton, M. P., Steine, E. J., Cassady, J. P., Foreman, R., Lengner, C. J., Daus-man, J. A., y Jaenisch, R. (2008) Direct reprogramming of terminally differentia-ted mature B lymphocytes to pluripotency. Cell 133, 250-264.

46. Wernig, M., Meissner, A., Foreman, R., Brambrink, T., Ku, M., Hochedlinger, K.,Bernstein, B. E., y Jaenisch, R. (2007) In vitro reprogramming of fibroblasts intoa pluripotent ES-cell-like state. Nature 448, 318-324.

47. Arvanitis, C., y Felsher, D. W. (2005) Conditionally MYC: insights from noveltransgenic models. Cancer Lett 226, 95-99.

48. Loh, Y. H., Ng, J. H., y Ng, H. H. (2008) Molecular framework underlying pluri-potency. Cell Cycle 7, 885-891.

49. Chen, X., Xu, H., Yuan, P., Fang, F., Huss, M., Vega, V. B., Wong, E., Orlov, Y.L., Zhang, W., Jiang, J., Loh, Y. H., Yeo, H. C., Yeo, Z. X., Narang, V., Govinda-rajan, K. R., Leong, B., Shahab, A., Ruan, Y., Bourque, G., Sung, W. K., Clarke,N. D., Wei, C. L., y Ng, H. H. (2008) Integration of external signaling pathwayswith the core transcriptional network in embryonic stem cells. Cell 133, 1106-1117.

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208

Page 25: Control transcripcional de la diferenciación celular · 2019. 10. 29. · 189 CONTROL TRANSCRIPCIONAL DE LA DIFERENCIACIÓN CELULAR (a veces 50 kb o más) y son activos tanto en

50. Chew, J. L., Loh, Y. H., Zhang, W., Chen, X., Tam, W. L., Yeap, L. S., Li, P., Ang,Y. S., Lim, B., Robson, P., y Ng, H. H. (2005) Reciprocal transcriptional regula-tion of Pou5f1 and Sox2 via the Oct4/Sox2 complex in embryonic stem cells. MolCell Biol 25, 6031-6046.

51. Boyer, L. A., Plath, K., Zeitlinger, J., Brambrink, T., Medeiros, L. A., Lee, T. I., Le-vine, S. S., Wernig, M., Tajonar, A., Ray, M. K., Bell, G. W., Otte, A. P., Vidal, M.,Gifford, D. K., Young, R. A., y Jaenisch, R. (2006) Polycomb complexes repressdevelopmental regulators in murine embryonic stem cells. Nature 441, 349-353.

52. Schwartz, Y. B., y Pirrotta, V. (2008) Polycomb complexes and epigenetic states.Curr Op. Gent Dev 20, 266-273.

53. Maherali, N., Sridharan, R., Xie, W., Utikal, J., Eminli, S., Arnold, K., Stadtfeld,M., Yachechko, R., Tchieu, J., Jaenisch, R., Plath, K., y Hochedlinger, K. (2007)Directly reprogrammed fibroblasts show global epigenetic remodeling and wides-pread tissue contribution. Cell Stem Cell 1, 55-70.

54. Mikkola, H. K., y Orkin, S. H. (2006) The journey of developing hematopoieticstem cells. Development 133, 3733-3744.

55. Pina, C., y Enver, T. (2007) Differential contributions of haematopoietic stem cellsto foetal and adult haematopoiesis: insights from functional analysis of transcrip-tional regulators. Oncogene 26, 6750-6765.

56. Friedman, A. D. (2007) Transcriptional control of granulocyte and monocyte de-velopment. Oncogene 26, 6816-6828.

57. Rosenbauer, F., y Tenen, D. G. (2007) Transcription factors in myeloid development:balancing differentiation with transformation. Nature Rev Immunol 7, 105-117.

58. Camos, M., y Colomer, D. (2006) Molecular biology in acute leukemia. Clin TranslOncol 8, 550-559.

59. Delgado, M. D., y Leon, J. (2006) Gene expression regulation and cancer. ClinTransl Oncol 8, 780-787.

60. Jude, C. D., Gaudet, J. J., Speck, N. A., y Ernst, P. (2008) Leukemia and hemato-poietic stem cells: balancing proliferation and quiescence. Cell Cycle 7, 586-591.

61. Laiosa, C. V., Stadtfeld, M., Xie, H., de Andres-Aguayo, L., y Graf, T. (2006) Re-programming of committed T cell progenitors to macrophages and dendritic cellsby C/EBP alpha and PU.1 transcription factors. Immunity 25, 731-744.

62. Xie, H., Ye, M., Feng, R., y Graf, T. (2004) Stepwise reprogramming of B cellsinto macrophages. Cell 117, 663-676.

63. Feng, R., Desbordes, S. C., Xie, H., Tillo, E. S., Pixley, F., Stanley, E. R., y Graf,T. (2008) PU.1 and C/EBPalpha/beta convert fibroblasts into macrophage-like cells.Proc Natl Acad. Sci USA 105, 6057-6062.

209

CONTROL TRANSCRIPCIONAL DE LA DIFERENCIACIÓN CELULAR

Page 26: Control transcripcional de la diferenciación celular · 2019. 10. 29. · 189 CONTROL TRANSCRIPCIONAL DE LA DIFERENCIACIÓN CELULAR (a veces 50 kb o más) y son activos tanto en

64. Iwasaki, H., Mizuno, S., Wells, R. A., Cantor, A. B., Watanabe, S., y Akashi, K.(2003) GATA-1 converts lymphoid and myelomonocytic progenitors into the me-gakaryocyte/erythrocyte lineages. Immunity 19, 451-462.

65. Nutt, S. L., Heavey, B., Rolink, A. G., y Busslinger, M. (1999) Commitment to theB-lymphoid lineage depends on the transcription factor Pax5. Nature 401, 556-562.

66. Graf, T. (2002) Differentiation plasticity of hematopoietic cells. Blood 99, 3089-3101.

67. Iwasaki, H., Mizuno, S., Arinobu, Y., Ozawa, H., Mori, Y., Shigematsu, H., Takat-su, K., Tenen, D. G., y Akashi, K. (2006) The order of expression of transcriptionfactors directs hierarchical specification of hematopoietic lineages. Genes Devt 20,3010-3021.

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