análisis cualitativo por espectrofotometría uv de fármacos de abuso en plasma
DESCRIPTION
Determinación cualitativaTRANSCRIPT
• 1
espectrofotometría UV
Análisis cualitativo por Espectrofotometría UV de fármacos de abuso en plasma.
Cepeda, A.; Paseiro, P. y Simal, J.
Palabras clave: Sep Pak C18, espectroscopía UV, barbitúricos, ácido salicílico, cafeína, teofilina.
Se propone un método rápido y sencillo para la determinación cualitativa en plasma de barbitúricos (amobarbital, aprobarbital, barbital, butabarbital, butalbital, dial, fenobarbital, pentobarbital y secobarbital), ácido salicílico, cafeína y teofilina, basado en un proceso de purificación de la muestra mediante la utilización de las minocolumnas Sep PakR C18 y el examen del residuo al UV.
A quick and simple method is proposed for the qualitative determination of sorne Barbiturates in plas- · ma (Aprobarbitone, Amylobarbitone, Barbitone, Dial, Pentobarbitone, Phenobarbitone, Qinalbarbitone, Secbutotabarbitone and Talbutal), Salicylic acid, Cafeine and Theophylline. This method is based on the purification process of the example by the use of the cartridge Sep Pak™ C18 and the examination of the purified at the spectroscopy UV.
Introducción
El incesante incremento del uso de medicamentos ha hecho que a parte de los beneficios obtenidos por su utilización se produzcan envenenamientos e intoxicaciones, siendo los barbitúricos los fármacos más frecuentemente implicados en sobredosis agudas tal y como lo demuestran Frati y colabs. (1983) en un estudio en España durante los años
Departamento de Química Analitica, Nutrición y Bromatología. Universidad de Santiago de Compostela.
38
1974-1980. Otros fármacos, como los salicilatos, han sido causantes de intoxicaciones accidentales principalmente en niños menores de 5 años (Levine, 1982).
La necesidad de procedimientos analíticos rápidos para la identificación de fármacos a niveles tóxicos ha hecho que se apliquen numerosas técnicas analíticas en el campo de la Toxicología Forense, entre ellas, la espectrofotometría UV, descrita ampliamente en la bibliografía. Clarke (1969); Corner (Fiorey, 1972); Jain y Cravey (1974) la aplican para determinar barbitúricos en materiales biológicos mediante el desplazamiento del máximo de absorción a diferentes valores de pH. Gupta y Lundberg (1973) determinan teofilina en sangre en presencia y ausen-
técnicas de LABORATORIO • no 141
espectrofotometría UV
cía de. barbitúricos. Routh (Sunshine, 1983) analiza cafeína en suero midiendo la absorbancia a 273 nm.
Así mismo, los procesos de purificación del plasma son muy variados, White y Graves (1974) extraen con cloroformo y reextraen con hidróxido sódico para separar fármacos áci9os y neutros. Otros autores utilizan columnas de purificación basadas en principios cromatográficos como son las resinas XAD-2 (Eiahi, 1980); columnas Extrelut (Breiter y colabs, 1976) y las más recientes como son las minicolumnas de fase «reversa» Sep Pak C18 (AIIan y colabs, 1980).
Para la realización de este trabajo hemos combinado la purificación de la muestra con minicolumnas Sep Pak C18 y la determinación cualitativa en plasma de varios fármacos de abuso mediante espectrofotometría UV.
Parte experimental
Material y aparatos
- Minicolumnas de fase «reversa•• Sep Pak C18. (Watters, art. 51910)
- Jeringa de vidrio de capacidad 5 mi con aguja hipodérmica de 8.5 cm de longitud y 0,5 mm de diámetro interno.
-Centrífuga que alcance 4000 rpm. - Baño María. -Tubos de centrífugas de fondo conico graduados
de 10 mi. - Bomba de vacío. -Balanza analítica que aprecie hasta 0,1 mg. -Indicador de pH universal Merck art. 9535. - Espectrofotómetro UV Hitachi modelo 100-60 y re-
gistrador Hitachi de doble canal modelo 561 . -Cubetas apareadas de cuarzo de 1 cm. de
espesor. - Material de uso común en el laboratorio.
Reactivos
Los reactivos utilizados son de calidad analítica y todos los fármacos empleados cumplen las normas USP XIX/BP proporcionados por Analar (ácido salicílico); Serva (teofilina); Merck (cafeína); Sandoz (butalbital); Barcia (barbital, aprobarbital, butabarbital, secobarbital, pentobarbital, dial, amobarbital, fenobarbital). - Soluciones patrón concentradas de cada fárma
co en hidróxido sódico 0,1N.- Se preparan de manera que cada mi contenga el nivel tóxico del fármaco correspondiente para 2,5 mi de plasma
técnicas de LABORATORIO • n• 141
0,7
190 220 250 280 310 340
nm
Figura 1. Espectro de absorción al UV de un "blanco de plasma».
39
¡
l r 1
espectrofotometría UV
0,7 0,,1
0,6 _____ ,p H= 1 0,6- ------ pH= 1
- r H= 10 1 _ pH = 10 ' 1 1
o ,51
1 1 \
0,5 1 1
A240 1 1 1 1 1 1 1
0,4 l
0,4 1 1
\\ 1 1
cr. patrón cr. 1 muestr2 .e .e 1
< < 1 ::; ~ 1
0,3 i. 0,3 1
1 1
1 1
l 1 1
A240 1
1 1
1 ' 1 1 1 1 ' 0,2 1 0,2 1 1 1 1 1 1 1 1
0,1 o, 1
190 220 250 280 310 340 190 220 250 280 310 34 0
nm nm
Figura 2. Espectro de absorción al UV del grupo de Jos barbitúricos obtenido de muestras de plasma sobrecargadas con 125 p.g comparado con su espectro patrón para cada componente.
40 técnicas de LABORATORIO • n° 141
:¡ ¡
1
; .
espectrofotometría UV
('
:\ A270 A270 1' ,.,
o, 7_ '1 A274 0,7. .. • 1 1
A274 1 ' 1 ~~~ • ____ _pH= 1 1 ____ .pH= 1 1 1
-pH= 10 1 -pH= 10 1
0,6 0,6 1 1 1
' ! 1
~ 1 1 1 1 1
1 1 1 ~~ 1
1 1 1
0,5.. 1 1
0,5 1 1 1 1 1 1 t
1 1 1 1 1 1 1
1 1
1 1 1 1 1 1 1
1 J 1 i 1 1 1 1 1 .
1 1 1 1 1 0,4 1 patrón 0,4 ' 1 muestre.. 1 1 1 \ 1 1 1 1
1 1 1 1
1 ' 1 1 1 cr. cr. 1 1 ..!J 1
1 1 ..0 1 1 1 1
< 1 1 < 1 1 1 :::::> 1 1 1
::::> 1 1 1 1 1 1 1 1
0,3 1 1 1 0,3 1 1 1 1 1
1 1 1 1 1 1 1
1 1 1 1 1 1 1 1
1 1 1 1 1 1 1
1 1 1 1 0,2.... 1 1 0,2 1 1
1 1 1 1 1
1 1 1 1 1 1
1 1 1 1 1 1 1 1 11 l \' 1 1!
1 1 1
0,1 1 0,1 \ 1 1 1 1
1 1 1 1 1
l~~ \~ f 1 1 1 1 1 1 1 1 1
190 220 250 2 80 310 340 190 220 250 280 310 340 nm nm
Figura 3. Espectro de absorción al UV de una muestra de plasma sobrecargada con 37,5 p.g de cafeína comparado con su espectro patrón.
técnicas de LABORATORIO • n° 141 41
espectrofotometría UV
0,7 0,7 1 1 1 1 1 1 1
1 1
0,6 ----- pH= 1 0,6 1 ----- pH= 1 1
-pH=10 1
-p~!= 10 1 1 1 1 A273 o,s 0,5 1 1
Az73 1
' 1
0,4 0,4 1 patrón muestra 1 1 1 1 1
Cll 1 Cll ' .e 1 .o 1 1 1 < ' 1 < -. ::::> 1 1 1 1
0,3 1 0,3 1 1 1 1 1 1 1 1
1 1 1
1 ' 1 1 ' 1 0,2 ' 0,2 1 1 1
1 1 1 1
' 1
' 1 1 1 1 l 1 1 \ 1
' 1
' 1 1 l 1
0,1 1 1 o, 1
190 220 250 280 310 340 190 220 250 280 310 340
nm nm
Figura 4. Espectro de absorción al UV de una muestra de plasma sobrecargada con 50 pg de teofilina comparado con su espectro patrón.
(Stead y Moffat, 1983). barbitúricos .................................. 125 ¡.¡g/ml cafeína . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .. 37,5 ¡.¡g/ mi salicílico, ácido .... ...... ..... ............. 500 ¡.¡g/ mi teofilina ... .. ..................... ...... ..... ... 50 ¡.¡g/ mi
- Soluciones patrón de trabajo de cada fármaco.Se preparan por dilución 1 a 10 de las anteriores
42
y ajustadas a pH 10. -Metano! -Etanol -Hidróxido sódico 0,1N y 0,01N. - Plasma humano fresco congelado de donante
único proporcionado por el Hospital General de: Galicia. El plasma se descongela en baño de
técnicas de LABORATORIO • n° 141
1 l 1 f 1 i
t
(/)
.e <
O - i • 1 ....
1
: \
(:, 61 ; 1 1
1 1
____ _pH=
-pH= 10
r, 5 1 -, -A235
' r \ 1 ~
1 0,4 ..L
1 i 1 1
1 1 1 1 1 1 1 1 1
1 1 patrón 1 1 1 1 1 1 1 1 l \ : 1 '.J 1 0,3
1
0,2
o' 1
190 220 250 280 310 340
nm
0.7
0,6
0,5
0,4
0,3
0,2
o, 1
____ pH= 1
-pH= 10
muestra
190 220 250 280 310 340
nm
Figura 5. Espectro de absorción al UV de una muestra de plasma sobrecargada con 500 pg de ácido salicílico comparado con su espectro patrón.
agua a 30 °C. - Preparación de las muestras de plasma tipo.
Para cada fármaco se añade 1 mi de solución patrón concentrada a 2,5 mi de plasma y se diluye hasta 5 mi con agua destilada.
Procedimiento
Con la muestra de plasma. -Acondicionamiento de las minicolumnas de fa
se «reserva» Sep Pak C18: Se pasa a través de la minicolumna 5 mi de me
tano! seguidos de 5 mi de agua destilada y 5 mi de
técnicas de LABORATORIO - n• 141
agua acidulada a pH 3 con ácido clorhídrico. -Purificación con las minicolumnas Sep Pak
C18. La solución de plasma se acidifica con 4-5 go
tas de ácido clorhídrico 1N hasta pH aproximadamente de 3, se centrifuga a 4000 rpm durante 5 m in, se recoge el sobrenadante con la jeringa, se lava el tubo con 5 mi de agua acidulada a pH 3. La muestra y las aguas de lavado se pasan a través de la minicolumna Sep Pak C18 a razón de 2 ml/min. ·Al objeto de eliminar el agua contenida en el volumen muerto de la minicolumna se realiza una pequeña succión a vacío. Posteriormente se eluye con 2 mi
43
espectrofotometría UV
de etanol y la solución alcohólica se evapora a sequedad en un Baño María. El residuo obtenido se disuelve en 0,1 mi de hidróxido sódico 0,01N y se diluye a 10 mi ajustando el valor de pH a 10.
-Obtención de los espectros. Con la solución anterior se consiguen los espec
tros a pH 10 y a pH 1 (acidificando con ácido clorhídrico 1N) entre 340 y 190 nm.
Con los patrones. Se obtienen directamente los espectros a pH 10
y pH 1 con las soluciones patrón de trabajo. Por último se comparan los espectros obtenidos
para la muestra con los patrones respectivos.
Resultados
Las Figuras -1 a 5- representan los espectros de absorción al UV obtenidos a pH=10 (línea continua) y pH=1 (línea punteada).
En la Figura -1- se recogen los correspondientes a un ··blanco de plasma ... En las Figuras restantes se recogen los espectros obtenidos de las soluciones patrón diluidas de cada uno de los fármacos estudiados así como los espectros de absorción a que han dado lugar las muestras de plasma tipo.
Discusión
El ccblanco de plasma" da lugar a una interferencia plasmática con un máximo de absorción a 273 nm que no depende del pH del medio.
En los barbitúricos, se observa que en los patrones desaparecen el máximo de absorción al cambiar la solución de pH 10 a pH 1, este mismo efecto se produce en las muestras de plasma tipo.
La cafeína y teofilina presentan máximos de absorción en la zona en la que absorbe la interferencia plasmática. Se puede detectar la presencia de estas sustancias (a sus niveles tóxicos) por el incremento cuantitativo que se produce en los valores de absorbancia con relación al ccblanco de plasma ... Además en el caso de la teofilina se produce un desplazamiento del máximo de absorción de 274 nm (pH 10) a 270 nm (pH 1).
El ácido salicílico da un máximo de absorción a 300 nm a pH 10 y pH 1, lo que hace posible su detección, sin embargo no se ha observado el máximo de absorción a 235 nm a pH ácido como aparece en el patrón, debido a la presencia de fondo interferente plasmático.
A la vista de los resultados obtenidos, concluí-
44
mas que la utilización de las minicolumnas Sep Pak C18 dan lugar a una purificación satisfactoria de las muestras de plasma, lo que permite detectar de una manera rápida y sencilla los componentes estudiados.
Agradecimientos ·
Nuestro reconocimiento al Hospital General de Galicia por habernos facilitado de forma gratuita el plasma para realizar las muestras; así mismo, agradecemos a la firma comercial Sandoz por suministrarnos también de forma gratuita el fármaco butalbital.
Bibliografía
1.- Allan, R.s.; Goodman, H.T. (1980&: ccTwo HPLC determinations for Mebendazole and its metabolites in human plasma using a rápid Sep Pak C18 extraction••, J. chromat., 183, 311-319.
2.- Breiter, J.; Helger, R.; Lang, H (1976): ccEvaluation of column extraction: A new procedure for analysis of drugs in blody fluids», J. Forensic Sci., 7, 131-140.
3.- Clarke, E. (1969): cclsolation and identification of drugs", Ed, The Pharmaceutical Press, London, páginas 98-100.
4.- Corner, l. (1972): ccSecobarbital sódiCO», en Analitical Profiles of Drugs Sustances. Ed. K. Florey (Academic Press, USA), Páginas 343-345.
5.- Elahi, N. (1980): ccEncapsulated XAD-2 extraction procedure technique for a rápid screening of drugs of abuse in urine», J. Anal. Toxico!., 4, 26-30.
6.- Frati, M.E.; Marruecos, L.; Porta, M.; Martin, M.L.; Laporte, J.R. (1983): ccAcute severe poisoning in Spain: Clinical outcome related to implicated drugs», Human Toxico!., 2, 625-632.
7.- Gupta, R.N. y Lundberg, D.C. (1973): ccQuantitative determination of Theophylline in blood by dipherential spectrophotometry .. , Anal. Chem., 45, (14), 2403-2405.
8.- Jain, N.C.; Cravey, R. H. (1974): «The identification of barbiturates from biological specimens», J. of Chromat, Sci., 12, 228-231.
9.- Levine, R. (1982): .. Farmacología: acciones y reacciones medicamentosas», Ed. Salva!, Barcelona, página 323.
10.- Routh, J. (1983): ccCaffeíne .. , en Methodology for Analytical Toxicology. Ed. 1, Sunshine (CRC Press, Florida), páginas 57-60.
11.- Stead, A. H. y Moffat, A.C. (1983): ceA collection of therapeutic toxic and fatal blood drugs concentration in man .. , Human Toxico!., 3, 437-464.
12.- White, J. y Graves, M.H. (1976) ccThe detection of sedative/hypnotics drugs in the impaired driver», J. of Chromat. Sci., 12, 219-224.
técnicas de LABORATORIO • no 141