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S. Analisis Clínicos Revisión Enero 2015 Página 1 de 29
GUÍA DOCENTE
PROGRAMA DE FORMACIÓN ESPECIALIZADA
ANALISIS CLINICOS
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INDICE 1. OBJETO Y ALCANCE 3 2. INTRODUCCIÓN 3 3. DATOS GENERALES 3 4. PROGRAMA DOCENTE: ITINERARIO FORMATIVO 5 5. OBJETIVOS ESPECÍFICOS: 18 6. ACTIVIDAD/TÉCNICA 24 7. DOCUMENTOS ASOCIADOS 27 8. REGISTROS ASOCIADOS 27 9. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS 27 10. REGISTRO DE APROBACIÓN DEL DOCUMENTO 28
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1. OBJETO Y ALCANCE
Establecer el itinerario formativo del residente en la especialidad de Análisis Clínicos en
nuestro hospital según los requisitos establecidos por la Comisión Nacional de la
Especialidad.
Los registros que evidencian el nivel de cumplimiento de los requisitos docentes
establecidos deben estar correctamente cumplimentados por los profesionales implicados
en el programa docente del Hospital.
2. INTRODUCCIÓN
Los residentes de la Especialidad de Análisis Clínicos están adscritos al Servicio de
Análisis Clínicos, el cual fue creado en el año 1964. La formación de residentes comenzó en
el año 1976.
Actualmente tiene una capacidad docente de 2 residentes por año, según la resolución
del Ministerio de Educación, Deporte y Cultura.
La formación del residente del servicio de Análisis Clínicos se fundamenta en la
actualidad en las directrices recogidas en la Orden SCO/3369/2006, 9 de Octubre, del BOE
nº 262 del 2 de noviembre de 2006, que aprueba y publica el plan formativo de la
especialidad de Análisis Clínicos y en el Real Decreto 183/2008 de 8 de Febrero del BOE nº
45 del 21 de Febrero de 2008, donde se determinan y clasifican las especialidades en
Ciencias de la Salud y en el que se desarrollan determinados aspectos del sistema de
formación sanitaria especializada.
3. DATOS GENERALES
Ubicación El Servicio de análisis Clínicos está ubicado en el nivel 5 del bloque central del Hospital
Universitario de Gran Canaria Doctor Negrín.
Recursos humanos Jefe de Servicio: Dra. Casimira Domínguez Cabrera FACULTATIVOS adjuntos y F.E.As.:
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Dr. José Ángel Aguilar Dra. Inmaculada Alarcón Dr. Antonio Losada Dra. Teresa Guada Dra. Mercedes Lorenzo Dra. Pino Afonso Dra. Ruth Martín Dra. Lucía Quintana Dra. Lidia Ruiz. Dra. Adys Martín Dra. Patricia Nogueira Responsable de la Unidad Central de Laboratorios (Preanalítica y postanalítica): Dr. Gregorio Muelas Tutora de residentes: Dra. Pino Afonso Medina Residentes: Taiomara Fernández García (FIR4)
Javier Touris Noriega (MIR4)
José Antonio Castellano del Toro (FIR2)
María Reyes Rodríguez Vega (MIR1)
Supervisora: 1 Enfermería: 4 Técnicos de Laboratorio (TEL): 29 Personal administrativo: 1
Organización del Servicio
El servicio está estructurado en diferentes secciones o áreas de conocimiento, por las que
el residente debe ir rotando durante los cuatro años de su formación, con el objetivo de
adquirir las habilidades y conocimientos necesarios que le capaciten para obtener su
titulación. Se distribuyen de la siguiente manera:
• Urgencias
• Automatización y Bioquímica
• Orinas y función renal
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• Unidad Central de Laboratorios
• Hormonas
• Fármacos y Drogas de Abuso
• Alergias
• Farmacogenética
• Marcadores Tumorales
• Proteínas
• Autoinmunidad
La formación se completará con rotaciones en otros Servicios del propio Hospital:
Inmunología, Hematología, Unidad de Investigación, Microbiología y Parasitología, y
Nefrología. Se realizarán también rotaciones por unidades específicas del Complejo
Hospitalario Universitario Materno-Insular: Genética, Citogenética y Fertilidad; y por el
Laboratorio de Toxicología de la Universidad de Las Palmas de Gran Canaria para la
formación en técnicas de HPLC y espectrometría de masas.
4. PROGRAMA DOCENTE: ITINERARIO FORMATIVO
A la formación especializada en Análisis Clínicos acceden postgraduados con diferentes
titulaciones académicas y diferente base de conocimientos, que requieren una estrategia
diferencial en su formación. Por consiguiente, el presente programa intenta alcanzar, como
resultado final, una formación homogénea de los residentes en formación, independiente de
su titulación académica inicial.
URGENCIAS DE LABORATORIO (1 mes y guardias durante toda la residencia).
Conocer y manejar todos los aspectos relacionados con las fases preanalítica, analítica
y postanalítica de la sección de urgencias. Entre los conocimientos y habilidades a adquirir
se encuentran los siguientes:
• Conocer y aplicar las normas de funcionamiento del área, los protocolos
normalizados de trabajo y las instrucciones de trabajo.
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• Conocer y manejar utensilios básicos de laboratorio: microscopio óptico, cámaras de
recuento, métodos de tinción, pipetas, diluciones.
• Conocer el catálogo de pruebas que se realizan con carácter urgente. Valorar
aquellas determinaciones que no estando incluidas en el catálogo de urgencias
puedan tener indicación de realización urgente.
• Conocer los tubos y contenedores necesarios para la recogida de las diferentes
muestras biológicas. Conocimiento del manejo y priorización de muestras en el área
de recepción de muestras del laboratorio de urgencias.
• Conocer y preparar calibradores y controles. Concepto de control de calidad interno y
externo, y valoración de resultados obtenidos en calibraciones y controles.
• Conocer la metodología empleada para realizar todas las determinaciones del
catálogo de urgencias y manejar los autoanalizadores necesarios para su
realización.
• Valores de referencia de las determinaciones analíticas que se realizan en esta
sección.
• Conocer y manejar los sistemas informáticos necesarios: sistema informático de
laboratorio, intranet del hospital, sistemas de información del hospital.
• Conocer, realizar e interpretar el análisis microscópico y bioquímico de los distintos
líquidos biológicos: orina, líquido cefalorraquídeo, ascítico, pleural, pericárdico,
sinovial, colecciones quísticas, lavados peritoneales, drenajes, etc.
• Conocer, realizar e interpretar los análisis de orina: elementos anormales, sedimento,
bioquímica, test de embarazo y drogas de abuso (cocaína, cannabis, opiáceos,
benzodiacepinas y anfetaminas)
• Conocer, realizar e interpretar los parámetros bioquímicos sanguíneos, marcadores
cardíacos y hormonas realizados en el área de urgencias.
• Conocer, realizar e interpretar todo lo relacionado con la monitorización de drogas
terapéuticas: antiepilépticos, inmunosupresores, antibióticos, agentes cardíacos,
teofilina, litio.
• Conocer, realizar e interpretar todo lo relacionado con el estudio del equilibro ácido-
base y de los gases en sangre. Mecanismos de compensación (renales y
respiratorios). Pruebas analíticas para su estudio.
• Conocer, realizar e interpretar todo lo relacionado con el equilibrio hidroelectrolítico.
Principales iones. Métodos de determinación.
• Conocer, aplicar e interpretar la fisiopatología y los algoritmos diagnósticos de la
patología más prevalente que se recibe en la sección: cardiopatía isquémica,
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insuficiencia cardíaca, insuficiencia respiratoria, descompensaciones diabéticas,
trastornos hidro-electrolíticos, trastornos del equilibrio ácido-base, dolor abdominal,
sepsis, etc.
• Conocer y aplicar los protocolos de actuación del laboratorio en las muestras
custodiadas.
• Interpretación de los resultados obtenidos y validación: valores normales, patológicos
y de pánico.
• Conocer y aplicar las vías de comunicación de resultados críticos.
• Resolver interconsultas relacionadas con pruebas de laboratorio de ayuda en el
diagnóstico de la patología urgente.
BIOQUÍMICA (4-5 meses)
Objetivos generales:
• Conocer y aplicar las normas de funcionamiento del área, los protocolos
normalizados de trabajo y las instrucciones de trabajo.
• Preparación de reactivos, disoluciones, tampones, controles, calibradores.
• Concepto de control de calidad interno y externo, y valoración de resultados
obtenidos en calibraciones y controles.
• Conocer la metodología empleada para realizar todas las determinaciones del
catálogo de bioquímica y manejar los autoanalizadores necesarios para su
realización. Estudio de interferencias metodológicas.
• Automatización. Evaluación, mantenimiento e incidencias. Criterios de selección de
autoanalizadores. Robotización.
• Valores de referencia de las determinaciones analíticas que se realizan en esta
sección.
• Conocer y manejar los sistemas informáticos necesarios: sistema informático de
laboratorio, intranet del hospital, sistemas de información del hospital.
• Conocer, aplicar e interpretar la fisiopatología y los algoritmos diagnósticos de la
patología más prevalente que se recibe en la sección.
• Interpretación de los resultados obtenidos y validación: valores normales, patológicos
y de pánico.
• Conocer y aplicar las vías de comunicación de resultados críticos.
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Objetivos específicos:
• Comprender los principios y características de técnicas bioquímicas, incluyendo
fotometría, fotometría de llama, osmometría, electroquímica, enzimática, electroforesis,
radioinmunoanálisis (RIA), cromatografía, espectrometría de masa y métodos
inmunológicos.
• Conocer diferentes tipos de autoanalizadores y los principios de medida empleados
en estos sistemas, incluyendo espectrofotometría, electrodo ión-selectivo, métodos
electroquímicos, inmunológicos, que incluyan técnica de inmunoensayo enzimático de
micropartículas, inmunoensayo de fluorescencia polarizada, electroquimioluminiscencia,
ELISA, turbidimetría y nefelometría.
• Comprender y conocer la biología básica y métodos analíticos para determinación de
cambios cuantitativos y cualitativos de las proteínas en sangre y fluidos biológicos
(enzimas, biomarcadores, hormonas y citokinas), carbohidratos, lípidos y lipoproteínas,
y pequeñas moléculas clínicamente importantes (incluyendo metales, elementos traza y
vitaminas).
• Manejar los principios de la robótica de laboratorio y estrategias de automatización.
• Comprender los principios generales de calibración de técnicas y control de calidad.
• Comprender las causas de interferencias, tanto positivas como negativas, detectarlas
y manejarlas.
Valoración de la función pulmonar: gases sanguíneos y saturación de oxígeno
• Comprender los principios de presión parcial y ser capaces de describir el gradiente
alveolo-arterial de oxígenos y el anio gap.
• Conocer la patofisiología de la cetoacidosis y acidosis láctica.
• Comprender el significado de P50, contenido de oxígeno, capacidad de oxígeno,
saturación de oxígeno y distinguir entre saturación de pO2 y pCO2.
• Describir la curva de disociación hemoglobina-oxígeno y los factores que afectan la
curva y P50.
• Comprender los principios de la gasometría sanguínea, electrolitos y sistemas de
CO-oximetría.
Química ácido-base, electrolitos y desórdenes relevantes
• Definir la ecuación de Henderson-Hasselbach. Familiarizarse con los sistemas
buffer fisiológicos y el papel de la compensación renal y respiratoria. Identificar los
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desórdenes asociados (acidosis metabólica y respiratoria, alcalosis metabólica y respiratoria
y desórdenes mixtos).
• Diagnóstico diferencial entre desórdenes electrolíticos comunes.
• Conocimiento de los métodos de determinación de iones.
• Comprender la definición de osmolalidad, moléculas en suero que contribuyen a
ella, y cálculo de anion gap osmolal y el principio del osmómetro. Comprender las fuentes de
error durante la estimación del gap osmolal (ej: hiperproteinemia, hiperlipidemia,
hipermagnesiemia). Conocer el diagnóstico diferencial de un inexplicable gap osmolal
aumentado, incluyendo ingestión de alcohol o glycol, cetosis alcohólica o cetoácidos
diabética, y osmoterapia (ej administración de manitol o glicerol), entre otros. Conocer los
principios de balance de fluidos.
• Valoración de los pacientes en situación de prediálisis. Conocimiento de las
pruebas para control y seguimiento de las mismas.
• Valoración de la Calidad de Diálisis: Conocimiento de las distintas pruebas
empleadas para valorar la calidad de la diálisis en pacientes sometidos a HD (KTV, test de
recirculación, aclaramiento residual) y a DP (estudio de la calidad de diálisis en cicladota y
cinética peritoneal).
• Valoración del paciente trasplantado renal. Conocimiento de las pruebas para
control y seguimiento del órgano trasplantado.
Biomarcadores cardíacos para la valoración de enfermedades coronarias
• Conocer la definición actual de infarto de miocardio, las diferentes herramientas
diagnósticas (ECG, test de laboratorio e imagen).
• Conocer los significados diagnósticos y pronósticos así como las limitaciones de los
biomarcadores de la enfermedad coronaria (troponinas I y T, CK, CK-MB, y mioglobina).
• Conocer la patofisiología y evaluación de fallo cardíaco congestivo (BNP y
fragmento N terminal de la prohormona BNP) y sus limitaciones técnicas y biológicas.
• Comprender la utilidad de los marcadores de inflamación en la evaluación de riesgo
cardíaco (ej homocisteína y PCR).
Evaluación del hígado y del tracto biliar
• Comprender la dinámica y mecanismos de liberación de enzimas por el hígado y la
utilidad clínica de las enzimas hepáticas (ej aspartatoaminotransferasam alanina
aminotransferasa, gammaglutamiltransferasa, fosfatasa alcalina y lactato deshidrogenasa).
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• Valoración bioquímica de la función hepática por analitos no enzimáticos como
albúmina, amonio, ácidos biliares, bilirrubina, BUN, colesterol, proteinas totales y
triglicéridos.
• Conocer el metabolismo de la bilirrubina, fracciones de la misma (conjugada, no
conjugada, directa vs indirecta) y aspectos de la bilirrubina neonatal.
Conocer las condiciones y defectos genéticos que afectan al metabolismo de la bilirrubina,
transporte y aclaramiento (ej enf. Gilbert y sdme de Dubin-Johnson).
Evaluación de las alteraciones de los hidratos de carbono:
• Pruebas diagnósticas de diabetes, realización de SOG (sobrecarga oral de glucosa
para el diagnóstico de diabetes gestacional, diabetes del adulto e intolerancia a la glucosa.
Evaluación de la función pancreática exocrina:
• Comprender los mecanismos de liberación de enzimas pancreáticas (amilasa y
lipasa) y su metabolismo.
Evaluación bioquímica de las anemias:
• Comprender el metabolismo del hierro, absorción, transporte y almacenamiento,
incluyendo conocimiento del manejo de parámetros como transferrina, ferritina, receptor
soluble de transferrina.
• Conocimiento de los índices de valoración IST y TIBC.
• Conocimiento del metabolismo del ácido fólico y vitamina B12.
Metabolismo lipídico:
• Estudio fisiopatológico de las alteraciones de los lípidos y las lipoproteínas
plasmáticas. Significado clínico. Dislipemias. Pruebas para su diagnóstico.
Metabolismo mineral.
• Desórdenes del metabolismo del cobre, las purinas y enfermedades relacionadas.
Otros oligoelementos. Pruebas para su diagnóstico.
• Comprensión y conocimiento del metabolismo mineral óseo y parámetros de
valoración: calcio, fósforo, osteocalcina, PINP (propéptido amino terminal), cross-lap
(telopéptido carboxiterminal).
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ORINAS, FUNCIÓN RENAL, ESTUDIOS EN HECES (3 meses)
Objetivos generales:
• Conocer y aplicar las normas de funcionamiento del área, los protocolos
normalizados de trabajo y las instrucciones de trabajo.
• Preparación de reactivos, disoluciones, tampones, controles, calibradores.
• Concepto de control de calidad interno y externo, y valoración de resultados
obtenidos en calibraciones y controles.
• Conocer la metodología empleada para realizar todas las determinaciones del
catálogo de orinas y manejar los autoanalizadores necesarios para su realización.
• Valores de referencia de las determinaciones analíticas que se realizan en esta
sección.
• Conocer y manejar los sistemas informáticos necesarios: sistema informático de
laboratorio, intranet del hospital, sistemas de información del hospital.
• Conocer, aplicar e interpretar la fisiopatología y los algoritmos diagnósticos de la
patología más prevalente que se recibe en la sección.
• Interpretación de los resultados obtenidos y validación: valores normales, patológicos
y de pánico.
• Conocer y aplicar las vías de comunicación de resultados críticos.
Objetivos específicos:
Estudios de urianálisis y sedimentos:
• Valoración del sedimento urinario y de las tiras reactivas para el urianálisis.
Elementos formes: hematíes, leucocitos, gérmenes, otras células, cilindros, cristales.
• Realización de test de embarazo, interpretación y valoración de posibles
interferentes.
Función Renal
• Conocer la base fisiológica de la función renal. Comprender las categorías básicas
de las enfermedades renales (ej, azoemia prerrenal, obstructiva, glomerulonefritis,
fallo renal agudo y crónico, síndrome urémico) y familiarizarse con las guías
prácticas de estas patologías.
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• Conocer los métodos analíticos para la valoración de la función renal (creatinina,
urea, BUN, tasa de filtrado glomerular) y proteinuria. Conocer los conceptos de
aclaramiento de creatinina, cómo puede ser usado para estimar la tasa de filtrado
glomerular y los diversos métodos empleados para medirlo. Manejo renal de
electrolitos y metabolitos y la interpretación de la medida de los electrolitos en orina.
• Estudio de la función renal. Alteraciones tubulares y glomerulares. Pruebas de
estudio.
• El filtrado glomerular como índice de función renal. Aclaración de creatinina.
Ecuaciones para la estimación del filtrado glomerular (ecuación de Cockroft-Gault,
CKD-EPI y ecuación MDRD).
• Evaluación del cociente albuminuria/creatinina. Algoritmos de interpretación.
• Orina de 24 horas: sodio, potasio, calcio, fósforo, creatinina, proteínas, magnesio,
uratos, oxalato y citrato.
• Técnicas para el estudio de cálculos urinarios. Protocolos y guías de estudio de la
litiasis renal.
Estudios en heces:
• Sangre oculta en heces: métodos de determinación, valoración de interferentes,
interpretación de resultados.
• Estudios de grasa en heces: métodos de determinación, valoración de interferentes,
interpretación de resultados.
• Calprotectina: métodos de determinación, valoración de interferentes, interpretación
de resultados.
• Otras determinaciones: elastasa pancreática, ph fecal, etc.
UNIDAD CENTRAL DE LABORATORIOS (1 mes).
El objetivo en esta rotación es aprender todo lo relativo a la fase preanalítica y postanalítica
del Laboratorio clínico:
• extracción de muestras y seguridad del paciente.
• etiquetado y manejo preanalítico de los diferentes tipos de muestras.
• manejo del programa informático de laboratorio (SIL) y de la plataforma automática
que clasifica las muestras.
• Gestión de incidencias: conocer y manejar las incidencias y no conformidades
diarias sobre las peticiones y muestras recibidas.
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• Conocer la cartera de servicios del Laboratorio y aquellas muestras que se envían a
laboratorios externos y condiciones de preparación para el envío.
• Elaboración y edición de informes. Gestión de incidencias postanalíticas.
HORMONAS-ALERGIA-MONITORIZACIÓN FÁRMACOS Y DROGAS-
FARMACOGENÉTICA (4 meses)
Objetivos generales:
• Conocer y aplicar las normas de funcionamiento del área, los protocolos
normalizados de trabajo y las instrucciones de trabajo.
• Preparación de reactivos, disoluciones, tampones, controles, calibradores.
• Concepto de control de calidad interno y externo, y valoración de resultados
obtenidos en calibraciones y controles.
• Conocer la metodología empleada para realizar todas las determinaciones del
catálogo de la sección y manejar los autoanalizadores necesarios para su
realización. Estudio de interferencias metodológicas.
• Valores de referencia de las determinaciones analíticas que se realizan en esta
sección.
• Conocer y manejar los sistemas informáticos necesarios: sistema informático de
laboratorio, intranet del hospital, sistemas de información del hospital.
• Conocer, aplicar e interpretar la fisiopatología y los algoritmos diagnósticos de la
patología más prevalente que se recibe en la sección.
• Interpretación de los resultados obtenidos y validación: valores normales, patológicos
y de pánico.
• Conocer y aplicar las vías de comunicación de resultados críticos.
Objetivos específicos: Valoración de la función hormonal:
• Estudio de la función hipotalámica e hipofisiaria. Pruebas diagnósticas (basales y
funcionales).
• Estudio de la función tiroidea y paratiroidea. Pruebas simples y funcionales.
• Estudio de la funcionalidad de la corteza suprarrenal. Métodos de exploración.
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• Estudio de la función gonadal. Pruebas analíticas (basales y funcionales).
• Utilidad de los procedimientos de laboratorio como soporte para el estudio de la
fertilidad, esterilidad y los procedimientos de reproducción asistida.
Aportación del laboratorio de Análisis Clínicos a la monitorización de fármacos y
drogas de abuso.
• Antibióticos: vancomicina, tobramicina, gentamicina, amikacina.
• Antiepilépticos: valproato, fenitoína, carbamacepina.
• Agentes cardíacos: digoxina.
• Teofilina
• Litio.
• Valoración de monitorización de otros fármacos: amiodarona, clozapina, risperidona,
oxcarbacepina, levetiracetam, etc.
• Inmunosupresores: ciclosporina, tacrolimus, everolimus, sirolimus.
• Metotrexato.
• Drogas de abuso: pruebas de detección. Sustancias interferentes. Interpretación de
resultados.
Diagnóstico alérgológico: pruebas de laboratorio:
• Diagnóstico alergológico in Vitro: IgE total y específica, extractos alergénicos y
técnicas de laboratorio, RAST-inhibición.
• Enfermedades alérgicas. Anafilaxia.
• Monitorización de la respuesta inflamatoria. Marcadores de inflamación.
• Estudio molecular por componentes alergénicos: ISAC.
Farmacogenética:
• Adquisición de conocimientos sobre las diferentes técnicas que permiten determinar
y conocer la variabilidad individual en la eficacia y toxicidad de los fármacos, debido
a los cambios existentes en la secuencia de DNA de los genes que codifican
enzimas metabolizadoras, receptores y transportadores de los diferentes fármacos,
especialmente de aplicación en terapias antitumorales.
• Conocimientos básicos de genética. El consentimiento informado.
• Técnicas de extracción de DNA en tejido.
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• Técnicas de extracción de DNA en sangre total.
• Técnicas de extracción de DNA circulante.
• Detección de mutaciones o polimorfismos mediante análisis con enzimas de
restricción específicos de alelo y con sondas de hibridización marcadas con
fluorógenos empleando metodologías de PCR en tiempo real.
• Estudio de biomarcadores oncológicos: KRAS, EGFR, BRAF. Interpretación de
resultados.
• Estudios de polimorfismos UGT1A y DPyD. Interpretación de resultados.
• Estudio de polimorfismos del citocromo P450 y su aplicación en terapia
personalizada.
MARCADORES TUMORALES (2 meses)
Objetivos generales:
• Conocer y aplicar las normas de funcionamiento del área, los protocolos
normalizados de trabajo y las instrucciones de trabajo.
• Preparación de reactivos, disoluciones, tampones, controles, calibradores.
• Concepto de control de calidad interno y externo, y valoración de resultados
obtenidos en calibraciones y controles.
• Conocer la metodología empleada para realizar todas las determinaciones del
catálogo de marcadores tunorales y manejar los autoanalizadores necesarios para
su realización.
• Valores de referencia de las determinaciones que se realizan en esta sección.
• Conocer y manejar los sistemas informáticos necesarios: sistema informático de
laboratorio, intranet del hospital, sistemas de información del hospital.
• Conocer, aplicar e interpretar la fisiopatología y los algoritmos diagnósticos de la
patología más prevalente que se recibe en la sección.
• Interpretación de los resultados obtenidos y validación: valores normales, patológicos
y de pánico.
• Conocer y aplicar las vías de comunicación de resultados críticos.
Objetivos específicos:
• Bioquímica del cáncer. Clasificación de los marcadores tumorales y su utilidad
clínica.
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• Guías de práctica clínica y protocolos de laboratorio para el uso de los marcadores
tumorales.
• Requerimientos preanalíticos, analíticos y postanalíticos de particular relevancia en
marcadores tumorales.
• Causa potencial de error en los resultados de marcadores tumorales. Interferencias.
• Utilización racional de los marcadores tumorales.
• Estudio específico por localizaciones:
1. Cáncer de mama
2. Cáncer ginecológico
3. Cáncer hepatobiliar
4. Cáncer colorrectal y ano
5. Otros cánceres digestivos: estómago, páncreas
6. Cáncer de próstata
7. Tumores neuroendocrinos
8. Tumores germinales
9. Cáncer de pulmón
10. Cáncer de cabeza y cuello
11. Cáncer de tiroides
12. Melanoma
13. Tumor Primario oculto
PROTEÍNAS e INMUNIDAD HUMORAL (3 meses)
Objetivos generales:
.- Realizar las diferentes técnicas y manejar correctamente los equipos y
analizadores utilizados en la sección de proteínas, así como conocer el tipo de muestra
idónea y las condiciones de obtención de la misma.
.- Aprender a interpretar los datos generados tras la realización de las diferentes
pruebas, poniéndolos en el contexto clínico y siendo capaces de contribuir eficazmente con
esta interpretación al asesoramiento en el diagnóstico clínico, así como en las decisiones
terapéuticas.
.- Realizar cuando sea necesario la puesta a punto de técnicas o aparataje nuevos,
siempre bajo la supervisión del tutor y/o facultativo especialista. Colaborar en la realización
de procedimientos normalizados de trabajo para una correcta estandarización de las
técnicas.
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.- Participar activamente en los programas de calidad interno y externos propios de la
sección de proteínas.
Objetivos específicos:
• Métodos fundamentados en reacciónes antígeno-anticuerpo en sistemas
automatizados:
Inmunonefelometría, inmunoturbidimetría
• Métodos fundamentados en reacciones antígeno-anticuerpo en técnicas manuales:
Inmunodifusión radial.
• Métodos fundamentados en la reacción antígeno-anticuerpo en sistemas
semiautomáticos
: Inmunofijación
• Métodos de separación electroforética: electroforesis en gel de agarosa,
electroforésis capilar.
• Automatización. Robotización.
• Conocimiento en Electroforesis de proteínas:
- Estructura de las proteínas y electroforesis.
- Técnicas de electroforesis de proteínas.
- Técnicas de Inmunofijación, Inmunosustracción, Inmunotipado.
- Aproximación a la interpretación de patrones electroforéticos en suero.
- Condiciones asociadas con las Gammapatías Monoclonales: linfomas, mielomas,
gammapatías monoclonales, crioglobulinas, etc.
- Estudio de orina en la proteinuria.
- Estudio del LCR: aproximación a la interpretación de patrones en LCR.
- Estrategia del laboratorio para el estudio de gammapatías Monoclonales.
• Conocimientos de Inmunología
- Conceptos básicos de Inmunología: el sistema inmunitario en condiciones de salud.
Componentes del sistema inmunitario. El tejido linfoide. Células implicadas en la respuesta
inmune, proliferación celular y maduración, interacción celular, componentes moleculares de
la respuesta inmune.
- Inmunidad Innata. Fagocitos, citocinas y respuesta inflamatoria. El complemento y
sistemas intermediarios en la respuesta inmune.
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- Estructura molecular de los anticuerpos, interacción antígeno- anticuerpos.Superfamilia de
las inmunoglobulinas, distribución y funciones de sus isotipos,diversidad.
- Sistema inmunitario adaptativo, características. Respuesta inmunitaria Humoral.
- Respuesta inmunitaria adquirida y frente a la infección.
- Inmunopatología I: Inmunodeficiencias congénitas de linfocitos T y B. Abordaje por el
laboratorio del estudio de inmunodeficiencias.
El complemento en la enfermedad: deficiencia hereditaria y adquirida.
• Conocimiento de los Trastornos del metabolismo intermediario: aminoacidopatías,
acidurias orgánicas y enfermedades mitocondriales. Enfermedades lisosomales y
peroxisomales. Diagnóstico bioquímico.
• Conocimientos de las Enfermedades crónicas relacionadas con la nutrición y la
dieta. Estudio del laboratorio de los trastornos de la conducta alimentaria y, de la evaluación
pre y postoperatoria de la cirugía bariátrica. Valoración del laboratorio del soporte
nutricional, vitaminas hidrosolubles y liposolubles.
AUTOINMUNIDAD (3 meses) La formación en Autoinmunidad para los residentes del Servicio de Análisis Clínicos tiene
por objetivos fundamentales facilitar la adquisición de conocimientos, habilidades y actitudes
que le capaciten para realizar eficazmente el diagnóstico y seguimiento de las
enfermedades de base inmunológica y asegurar su autoformación continuada y desarrollar
investigación clínica y/o básica.
Objetivos generales:
• Adquisición de conocimientos teóricos y prácticos para realizar las técnicas
diagnósticas.
• Adquisición de conocimientos teóricos sobre los principios básicos de la patología de
base inmunológica.
• Aplicación de los conocimientos adquiridos para la interpretación de los resultados
obtenidos en el laboratorio dentro de un contexto clínico, contribuyendo al
diagnóstico clínico.
Objetivos específicos:
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• Realizar las técnicas de laboratorio que permiten el estudio de patologías de base
inmunológica: métodos de precipitación (Inmunodifusión doble,
contrainmunoelectroforesis), inmunotransferencia o inmunoblot, aglutinación, fijación
de complemento, inmunofluorescencia, inmunoensayos, electroforesis, citometría de
flujo para Inmunofenotipado celular.
• Manejar correctamente los distintos aparatos utilizados en el área de Inmunología.
• Interpretar correctamente los resultados obtenidos de las diferentes pruebas
inmunológicas dentro del contexto clínico de la enfermedad.
• Asesorar al clínico sobre las pruebas que han de realizarse ante una determinada
sospecha clínica, así como el tipo de muestra necesaria y las condiciones de
obtención.
• Participar en los programas de control de calidad internos y externos para las
distintas las determinaciones inmunológicas.
• Redactar protocolos de trabajo para una correcta estandarización de las técnicas.
• Implantación de nuevas técnicas en el laboratorio.
• Manejar correctamente la bibliografía sobre Inmunología clínica
• Inmunopatología II: Respuestas inmunitarias inapropiadas. Equilibrio TH1/TH2.
Fisiopatología y fundamentos efectores de la respuesta alérgica. Tipos de reacciones
de hipersensibilidad. Respuesta inflamatoria. Morfología de las reacciones alérgicas.
• Inmunopatología III: Tolerancia y autoinmunidad. Autoanticuerpos y su relevancia
clínica. Autoanticuerpos en enfermedades autoinmunes sistémicas (LES, Artritis
reumatoide, Sjögren, vasculitis, síndrome antifosfólipido, EMTC…). Autoanticuerpos
específicos de órgano (enfermedades de la piel, hepáticas, renales, endocrinas,
sistema nervioso, hematológicas…).
• Aportaciones del laboratorio en las enfermedades autoinmunes. Estudio diagnóstico
inicial. Algoritmos diagnósticos.
• Inmunidad antitumoral. Respuesta inmunitaria frente a los tumores. Antígenos tumor-
específicos.
• Estudio de poblaciones linfocitarias. Citometría de flujo.
Rotaciones Externas al Servicio de Análisis Clínicos a realizar en el propio
hospital:
SERVICIO DE NEFROLOGÍA (1 mes)
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• Introducción a la diálisis peritoneal. Estudios de calidad de diálisis.
• Introducción a la hemodiálisis. Estudios de KTV, test de recirculación, etc.
• Conocimientos de trasplante renal para conocer manejo de inmunosupresores.
MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA (5meses)
• Agentes infecciosos. Flora saprofita habitual
• Epidemiología de las enfermedades infecciosas
• Sistemas de aislamiento, cultivo e identificación en Microbiología
• Bacterias: urocultivos y coprocultivos
• Cultivos generales: microorganismos G(+) y G(-) de interés clínico
• Técnicas para el estudio de la sensibilidad a los quimioterápicos.
• Parásitos
• Micobacterias y hongos.
• Virus: DNA, RNA
• Serología infecciosa: protocolos y automatización.
HEMATOLOGÍA Y HEMOTERAPIA (5 meses)
• Estructura y función de la médula ósea y del tejido linfoide.
• Frotis sangre periférica
• Serie roja:
1. Estudio diferencial de las causas de anemia
2. Desórdenes del metabolismo del hierro
3. Desórdenes del eritrocito: poliglobulias, hemoglobinopatías y talasemias
Serie blanca:
1. Leucocitos: morfología-citoquímica
2. Estudio de neutropenias
3. Leucemias: diagnóstico
4. Síndrome mieloproliferativo
5. Linfomas: Hodgkin y no Hodgkin
6. Mieloma múltiple y gammapatías monoclonales
• Coagulación:
1. Bioquímica y factores de coagulación
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2. Mecanismo de la coagulación, fibrinolisis y trombosis
3. Control del laboratorio de la terapia anticoagulante y antitrombótica
4. Hemoterapia: grupos de sangre e inmunohematología
• Conceptos para la práctica de la transfusión: sensibilización, aglutinación y prueba de
la antiglobulina. Pruebas cruzadas. Derivados del plasma.
• Aspectos clínicos de la terapéutica transfusional: principios de la terapéutica
sustitutiva con hemoderivados. Reacciones transfusionales. Hemólisis
inmune.Transfusión de plaquetas y granulocitos.
UNIDAD DE INVESTIGACIÓN (1 mes)
• Introducción al método científico
• Metodología de la investigación
• Bases de datos bibliográficas
• Diseño de experimentos científicos
• Desarrollo de proyecto de investigación
SERVICIO DE INMUNOLOGÍA (1 mes)
• Sistema de histocompatibilidad. Técnicas de estudio de HLA.
• Estudio de inmunodeficiencias.
• Citometría de flujo.
Rotaciones Externas al Sº de Análisis Clínicos a realizar en diferentes centros:
COMPLEJO HOSPITALARIO UNIVERSITARIO MATERNO-INSULAR: unidad de
GENÉTICA y BIOLOGÍA MOLECULAR (3 meses): 1. Genética Humana: Bases moleculares de la Genética; Dogma central de la Biología
Molecular; Alteraciones genéticas; Mutaciones y su traducción clínica; Tecnología
molecular para estudios genéticos.
2. Citogenética Humana: Anomalías cromosómicas estructurales y numéricas;
Diagnóstico prenatal.
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3. Técnicas de estudio de cariotipos.
4. Extracción de ácidos nucleicos.
5. Cuantificación de ADN y ARN
6. Amplificación génica (PCR)
7. Manejo de enzimas de restricción
8. Técnicas de hibridación
9. Transferencias a membranas
10. PCR a tiempo real
11. Secuenciación
12. Cultivo celular
13. Consejo genético
COMPLEJO HOSPITALARIO UNIVERSITARIO MATERNO-INSULAR:
Unidad de Fertilidad (2 meses)
• Utilidad de los procedimientos de laboratorio como soporte para el estudio de la
fertilidad, esterilidad y los procedimientos de reproducción asistida: seminogramas,
capacitación espermática y estudio hormonal.
• Técnicas de reproducción asistida: inseminación artificial, FIV, ICSI.
COMPLEJO HOSPITALARIO UNIVERSITARIO MATERNO-INSULAR:
Sº Análisis Clínicos (1 mes)
• RIA (radioinmunoensayos).
• Valores de normalidad en determinaciones bioquímicas en neonatos y prematuros
• Pruebas funcionales en niños.
• Estudios en heces de 72 horas.
• Diagnóstico prenatal: marcadores de riesgo.
• Estudio del embarazo y función fetal. Madurez pulmonar: estudio del líquido
amniótico.
LABORATORIO DE TOXICOLOGÍA DEL DEPARTAMENTO DE CIENCIAS
CLÍNICAS DE LA UNIVERSIDAD DE LAS PALMAS DE GRAN CANARIA (1 mes)
• Técnicas cromatográficas de alta resolución:
1. cromatografía líquida (HPLC) y de gases (GC)
2. espectrometría de masas (HPLC-MS y GC-MS)
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Rotación externa a elegir por el residente : Se definirán según las inquietudes formativas y profesionales de cada residente.
METODOLOGÍA DOCENTE
Dado el carácter multidisciplinar de la especialidad y que la formación final debe ser
idéntica, los distintos titulados incidirán en mayor medida en aquellos aspectos formativos
que sean más deficitarios de forma que los biólogos, bioquímicos, farmacéuticos y químicos
adquieran una mayor formación en aspectos clínicos y de la organización sanitaria y los
médicos en ciencias básicas y técnicas analíticas.
La metodología docente durante este período se basa, fundamentalmente, en la
autoformación. La formación se adquiere con el trabajo diario que el postgraduado
desarrolla en cada una de las actividades asistenciales, colaborando con otros profesionales
del servicio, de los que va aprendiendo sistemas de trabajo, habilidades o destrezas y
actitudes.
1) AUTOAPRENDIZAJE
• Estudio cotidiano a iniciativa del propio residente.
• Aprendizaje dirigido: lecturas o visualizaciones recomendadas (CD-ROOM, videos,
páginas Web); encargo de tareas: aprendizaje basado en la resolución de problemas,
discusión de casos y problemas prácticos; participación en la elaboración de protocolos
consensuados o guías diagnósticas.
• Preparación de sesiones: clínicas, bibliográficas. Durante la rotación, el residente
deberá presentar, al menos, una sesión clínica y una sesión bibliográfica supervisada por un
facultativo.
2) APRENDIZAJE DE CAMPO • Observación directa (el residente ve lo que hace el tutor).
• Intervenciones autorizadas (el residente realiza sus actividades ante la presencia
del tutor).
• Intervención directa: el residente realizará sin la presencia del tutor (aunque
supervisado por él/ella) las actividades propias de la sección por donde rota, a partir de la
4ª-8ª semana de rotación.
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3) CLASES TEÓRICAS • Clase unidireccional clásica, semanal.
• Sesión de casos clínicos, diaria/semanal.
Actividades científicas e Investigación
Sería aconsejable que durante su período de formación, el residente se inicie en la
investigación. Reconocemos que la faceta es complicada en un hospital como el Dr. Negrín
con una elevada carga asistencial. Aún así es importante que comience con la elaboración y
presentación de pósters y comunicaciones en Congresos de la especialidad.
Posteriormente debería realizar los cursos de doctorado y conectar con una línea de
investigación que le permitiera la publicación de trabajos y de una posible tesis doctoral, sin
menoscabo de su formación en la especialidad.
El residente durante su período de formación, además de adquirir los conocimientos
del programa relativos a la “Metodología de la Investigación”, deberá colaborar en un
proyecto de investigación evaluado por el responsable del mismo, teniendo en cuenta el
tiempo que el residente le dedique. El informe de evaluación constará en el expediente del
residente.
Niveles de Responsabilidad
Protocolo de Supervisión progresiva de la actividad de los Residentes de Análisis Clínicos en guardias de Análisis Clínicos
Este protocolo se ha hecho de acuerdo al Real Decreto 183/2008 y al Protocolo general del Servicio de Urgencias del Hospital Universitario de Gran Canaria Dr. Negrín.
Actividad/Técnica R1 R2 R3 R4
Procesamiento muestras biológicas (plasma, suero, orina, LCR, etc.) y conocer material de recogida adecuado.
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Conocer protocolo de detección de muestras contaminadas.
Conocer y manejar criterios de adecuación de solicitudes de pruebas analíticas en base a la orientación clínica
Realización e interpretación del examen microscópico de los diferentes líquidos biológicos : recuento y diferenciación celular
Realización e interpretación de los parámetros bioquímicos de los diferentes líquidos biológicos (pH, proteínas, glucosa, LDH…)
Realización e interpretación del examen microscópico y del estudio bioquímico de la orina
Realización e interpretación del estudio del equilibrio ácido-base e hidroelectrolítico. Métodos de determinación.
Conocer y manejar programa informático de gestión de Análisis Clínicos
Conocer y manejar analizadores utilizados en la determinación de parámetros bioquímicos e interpretación de los mismos.
Conocer programa de gestión de la calidad: manejo y valoración de los controles de calidad.
Conocer y manejar criterios de validación deresultados normales y /o críticos
Información verbal y por escrito de resultados críticos y/o clínicamente relevantes
Realización e interpretación de drogas de abuso y monitorización de drogas terapéuticas. Muestras custodiadas
Conocer y manejar analizadores de inmunoensayos y nefelométricos e interpretación de los diferentes parámetros (Cortisol, βHCG, IgA, etc.)
Verlo hacer Hacerlo con ayuda Hacerlo sin ayuda pero supervisado Hacerlo de manera independiente, sin necesidad de supervisión
Guardias médicas
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Los residentes de Análisis Clínicos hacen 6 guardias de 24 horas de presencia física
siempre tutelados por un adjunto responsable de presencia física.
Evaluación del residente
Las directrices para la formación y evaluación de los residentes son las recomendadas por
la Comisión Nacional de la Especialidad.
La evaluación de los residentes se realiza al final de cada rotación por el facultativo
responsable de cada una de las secciones. En la evaluación anual, se calcula la media.
Después de cada rotación se rellena una ficha de evaluación por el responsable de esa
rotación y por el jefe de servicio, y se enviará a la Comisión de Docencia al finalizar la
misma.
La escala de los aspectos a valorar son: 0=Insuficiente; 1=Suficiente; 2=Destacado;
3=Excelente.
A.- Conocimientos y habilidades
• Nivel de conocimientos teóricos adquiridos
• Nivel de habilidades adquiridas
• Habilidades en el enfoque diagnóstico o de los problemas
• Capacidad para tomar decisiones
• Utilización racional de los recursos
B.- Actitudes
• Motivación
• Dedicación
• Iniciativa
• Puntualidad/asistencia
• Nivel de responsabilidad
• Relaciones paciente/familia
• Relaciones con el equipo de trabajo
En otra ficha de evaluación se refleja la nota final del Residente, y es la recopilación
de la media de todas las fichas. En caso de ser favorable, el Residente pasa de año o
finaliza su período de Formación, según corresponda.
El residente deberá elaborar una memoria anual obligatoria según un modelo
estándar proporcionado por la Comisión de Docencia del Hospital, que será por el Tutor, por
el Jefe de Servicio y por el Presidente de la Comisión de Docencia. Al finalizar su periodo de
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residencia, se entregará al residente una encuadernación de todas sus memorias anuales
para su Currículum Vitae.
La evaluación del médico residente es un proceso continuo en el que se tienen en
cuenta diversos aspectos: 1) la actitud del residente hacía el enfermo (comunicación y trato
de los pacientes, relaciones con los familiares); 2) actitud del residente con relación al resto
de médicos y resto del personal (enfermeras, auxiliares, celadores, administrativos); interés
del residente por el aprendizaje; 4) nivel de conocimientos asimilados y puesta en práctica
de las habilidades aprendidas. Es importante para la evaluación final cumplimentar
debidamente el libro del residente.
Los encargados de realizar las evaluaciones son los tutores de cada especialidad. Se
evaluará al residente en cada una de las diferentes rotaciones externas y una vez en el
servicio la evaluación será anual, por el tutor de Análisis Clínicos, en acuerdo con el Jefe de
Servicio y el Presidente de la Comisión de Docencia del hospital.
5. DOCUMENTOS ASOCIADOS
- Planes individuales de Formación
- Modelo de Evaluación
6. REGISTROS ASOCIADOS
- Planificación de Sesiones
- Rotaciones Internas
- Rotaciones Externas
- Registros de asistencia sesiones, cursos, talleres….
7. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
1. Orden SCO/3369/2006, 9 de Octubre, del BOE nº 262 del 2 de noviembre de 2006, que aprueba y publica el plan formativo de la especialidad de Análisis Clínicos.
2. Real Decreto 183/2008 de 8 de Febrero del BOE nº 45 del 21 de Febrero de 2008,
donde se determinan y clasifican las especialidades en Ciencias de la Salud y en el que se desarrollan determinados aspectos del sistema de formación sanitaria especializada.
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8. REGISTRO DE APROBACIÓN DEL DOCUMENTO
RESPONSABLE Elaborado Revisado Aprobado
Subdirección de Docencia
Jefe de estudios Formación Especializada
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Jefe del Servicio / Unidad
Tutor/res Docentes
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