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ACCELERATED IDENTIFICATION OF PROTEINS BY MASS SPECTROMETRY BY EMPLOYING COVALENT PRE-GEL STAINING WITH UNIBLUE A Marco A. Mata-Gómez,Matthew T. Yasui,Armando Guerrero-Rangel,Silvia Valdés-Rodríguez, Robert Winkler

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Page 1: Accelerated identification of proteins by mass spectrometry by

ACCELERATED IDENTIFICATION OF

PROTEINS BY MASS SPECTROMETRY

BY EMPLOYING COVALENT PRE-GEL

STAINING WITH UNIBLUE A

Marco A. Mata-Gómez,Matthew T.

Yasui,Armando Guerrero-Rangel,Silvia

Valdés-Rodríguez, Robert Winkler

Page 2: Accelerated identification of proteins by mass spectrometry by

ABSTRACT

La identificación de proteínas por espectrometría de

masas es un método estándar de control de calidad

biofarmacéutica y la investigación bioquímica.

Antes de la identificación por espectrometría de

masas, las proteínas por lo general se pre-separaron

por electroforesis.

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Posterior a esto se procede con los protocolos de

tinción de proteínas y debido a que estos consumen

mucho tiempo se debe prolongar el tiempo de

preparación de muestras para espectrometría de

masas.

Se investigaron las propiedades electroforéticas de

proteínas y péptidos derivatizados y se estudio su

comportamiento en la espectrometría de masas.

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INTRODUCCIÓN

los medicamentos falsos amenazan la salud de los

pacientes, Esto hace que se genere una necesidad

sobre la confirmación de la identidad de las

moléculas.

Especialmente para los laboratorios que trabajan con

las proteínas, ya que éstas están generalmente

purificadas a partir de mezclas complejas y difíciles

de distinguir por sus propiedades bioquímicas.

Page 5: Accelerated identification of proteins by mass spectrometry by

Hoy en día, las proteínas en la mayoría de los casos

se identifican con base en datos de espectrometría de

masas (MS), ya que los métodos actuales de la EM

ofrecen alta sensibilidad, velocidad y precisión y por lo

tanto permiten conclusiones fiables sobre la

naturaleza de una proteína en un plazo razonable.

Page 6: Accelerated identification of proteins by mass spectrometry by

Por lo general, las proteínas tienen que ser separadas

previamente, antes de que puedan ser sometidos a

análisis de MS. Esto se hace de manera eficiente por

electroforesis en gel, que tiene la ventaja adicional

para eliminar los contaminantes de bajo peso

molecular tales como sales.

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la tinción con Coomassie

coloidal es actualmente el

método de elección , si las

muestras están destinados

para su posterior análisis

mediante espectrometría de

masas . Sin embargo

, teniendo en cuenta los

protocolos más rápidos , a tres

horas son necesarias para la

tinción de Coomassie

coloidal, y otras cuatro horas

para la preparación de piezas

de gel seleccionados para MS

Page 8: Accelerated identification of proteins by mass spectrometry by

Los requisitos para tal método de tinción serían:

la rapidez

la visibilidad de las proteínas teñidas a la luz

natural

la compatibilidad con la electroforesis en gel

la compatibilidad con la espectrometría de masas

y de procesamiento de datos de los flujos de

trabajo actuales

adopción simple de los procedimientos de

laboratorio existentes.

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RESULTADOS

595 nm

Es necesario remover

el colorante de las

proteínas después de

la tinción

Tres horas son

necesarias para la

tinción de Coomassie

coloidal

593.5 nm

No es necesario remover el colorante de las proteínas después de la tinción

El tiempo requerido para el análisis de proteínas puede ser reducido sustancialmente

Coomassie Uniblue A

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PROCEDIMIENTO DE TINCIÓN

COVALENTE Y LAS PROPIEDADES

ELECTROFORÉTICAS DE PROTEÍNAS

DERIVATIZADAS

Uniblue A

solubilidad en agua

disponibilidad comercial con la pureza adecuada

bajo precio

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SEPARACIÓN DE LAS PROTEÍNAS EN GELES DE

POLIACRILAMIDA CON DODECIL SULFATO DE SODIO

(SDS-PAGE)

Permite separar proteínas haciéndolas pasar por un

gel o resina: poliacrilamida de sodio Dodecil

Sulfato, la cual es un agente entrecruzador que

genera un polímero sobre el cual se adherirán las

proteínas.

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sólo por TAMAÑO

SDS-PAGE

Al aplicar un campo eléctrico

a la muestra inmersa en el

tampón de carga, el

complejo proteína-SDS

migrará hacia el polo

positivo y se separará según

su tamaño.

Los polipéptidos de menor

peso molecular migrarán

más rápido. Los de alto peso

lo harán más lentamente.

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RITUXIMABEs un quimérico anticuerpo

monoclonal contra la

proteínaCD20 , que se

encuentra principalmente en

la superficie del sistema

inmune células B .

son proteínas creadas a

través de la unión de dos o

más genes que

originalmente codificaban

proteínas diferentes.

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LA SEPARACIÓN DE LAS PROTEÍNAS EN GELES DE

POLIACRILAMIDA CON DODECIL SULFATO DE SODIO

(SDS-PAGE)

Figura A. Visualización de

un gel de SDS-PAGE

teñido con Uniblue A.

Muestra de Rituximab, un

anticuerpo recombinante.

Figura B. Visualización de

un gel de SDS-PAGE

teñido con azul de

Coomassie. Muestra

Rituximab, un anticuerpo

recombinante.

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VENTAJAS DEL UNIBLUE A

La movilidad electroforética de las proteínas no se

cambia de manera significativa por su tinción

covalente

Por SDS-PAGE la intensidad de la tinción y la

resolución son perfectamente adecuadas.

La carga negativa de Uniblue A no influye

fuertemente en el punto isoeléctrico de las

proteínas derivatizados.

requieren unos pocos minutos para la preparación

de la muestra.

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