red latinoamericana de reproduccion asistida fecundacion asistida: inyeccion intracitoplasmatica de

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  • Red Latinoamericana de Reproducción Asistida

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  • Red Latinoamericana de Reproducción Asistida

    Este documento fue preparado por:

    • Dr. Ariel Ahumada (Chile) • Dra. Mónica Jimenez (Colombia) • Dra. Ana Lucia Mauri (Brasil) • Dr. Luis Roblero (Chile) • Dra. María Soledad Sepúlveda (Chile)

    Revisado por: • Dra. Alejandra Bernal (Colombia) • Dr. Roberto Coco (Argentina) • T.M. Teresa López (Chile)

    Santiago de Chile, Agosto, 1998.

  • EDITORIAL

    En abril de 1997, durante el II Taller Latinoamericano de Reproducción Asistida, los biólogos y tecnólogos representantes de centros pertenecientes a la RED, iniciaron un proyecto para realizar un manual de procedimientos de laboratorio de reproducción asistida. Reunidos en la ciudad de Cozumel, México, grupos de trabajo se responsabilizaron en diseñar y desarrollar algunos contenidos de lo que sería un manual que hiciera posible describir y estandarizar procedimientos de laboratorio, criterios de clasificación de óvulos y embriones, etc. A continuación de ese primer esfuerzo, la RED reunió en Chile a un grupo de trabajo que tuvo como misión redactar este documento.

    Este manual de Laboratorio esta destinado a educar a centros que se inician, y mediante la estandarización de procedimientos, hacer posible el desarrollo de estudios multicéntricos y multinacionales. Esperamos con ello, seguir contribuyendo al desarrollo de nuestra región.

    En representación de todos los miembros de la Red Latinoamericana de Reproducción Asistida deseo expresar mi más sincero agradecimiento al Dr. Richard Rawlins, PhD., que, con espíritu de altruista y desinteresado contribuyó al inicio de esta tarea y ha destinado un enorme esfuerzo y dedicación a entrenar y capacitar científicos pertenecientes a la RED.

    Dr. Fernando Zegers-Hochschild Director Ejecutivo Red Latinoamericana de Reproducción Asistida

  • INDICE

    • Maduración meiótica del ovocito • Fecundación en mamíferos • Desarrollo preimplantacional

    I . PREPARACION DE UN LABORATORIO PARA REPRODUCCION ASISTIDA

    1. NORMAS DE TRABAJO PARA UN LABORATORIO DE REPRODUCCION ASISTIDA

    A. Lavado quirúrgico de manos e indumentaria B. Consideraciones generales

    2. ACONDICIONAMIENTO FISICO DE UN LABORATORIO DE REPRODUCCION ASISTIDA

    A. Aseo del laboratorio i) antes de un programa ii) durante un programa iii) después de un programa

    3. OTRAS NORMAS DE TRABAJO

    4. CERTIFICACION DE EQUIPOS

    A. Campana de flujo laminar B. Equipos ópticos y accesorios

    (i) elementos ópticos (ii) elementos mecánicos y pinturas de recubrimiento (iii) accesorios

    C. Incubadoras i) control de temperatura y nivel de CO2 ii) limpieza interna iii) calibración y reemplazo de componentes

    5. CONTROLES BIOLOGICOS

    A. Cultivo para hongos i) control laboratorio y equipos

  • ii) control de los medios de cultivo B. Cultivo para bacterias

    i) control del laboratorio y equipos ii) control de los medios de cultivo

    C. Control de Calidad de los Medios de Cultivo i) Sobrevida espermática ii) Desarrollo de embriones de ratón

    II. PROCEDIMIENTOS DE REPRODUCCION ASISTIDA

    1. TIPOS DE PROCEDIMIENTO

    A. Transferencia de gametos a la trompa (GIFT) B. Fecundación in vitro (FIV)

    i) con transferencia embrionaria al útero (TIU) ii) con transferencia embrionaria a la trompa (TET)

    C. PROST

    2. MEDIOS DE CULTIVO

    A. FORMULACION DE LOS MEDIOS DE CULTIVO Medios simples

    i) Human tubal fluid (HTF) ii) HTF modificado iii) Earle's balanced salt solution (EBSS) iv) iv) P1 (preimplantation stage one)

    Medios compuestos i) Ham's F-10 ii) Minimal essential medium (MEM) iii) Menezzo B2

    B. PREPARACION DE LOS MEDIOS DE CULTIVO i) Ham's F-10 o MEM

    C. MEDIOS PREPARADOS DE FABRICA

    D. NUEVOS MEDIOS DE CULTIVO PARA SUSTENTAR EL DESARROLLO IN VITRO DE CONCEPTI

    E. PREPARACION DE LOS MEDIOS DE CULTIVOS PARA LAS DISTINTAS ETAPAS DE UN PROCEDIMIENTO DE REPRODUCCION ASISTIDA.

    i) aspiración

  • ii) inseminación iii) crecimiento iv) transferencia

    3. METODOS DE PREPARACION Y SELECCIÓN DE ESPERMATOZOIDES

    A. SEPARACION POR SWIM UP i) Materiales ii) Procedimiento iii) Procedimiento swim up modificado

    B. SEPARACION POR GRADIENTES DE DENSIDAD i) Materiales

    ii) Procedimiento iii) Procedimiento minigradientes de Percoll

    4. RECEPCION DE OVOCITOS DURANTE ASPIRACION FOLICULAR

    A. Materiales B. Procedimiento de recepción de ovocitos aspirados C. Clasificación de la madurez somática del complejo cúmulo-corona-ovocito

    5. INSEMINACION

    A. EN CAPSULA ABIERTA i) Materiales ii) Procedimiento

    B. BAJO ACEITE MINERAL i) Materiales ii) Procedimiento

    6. EVALUACION DE LA FECUNDACION

    A. Materiales B. Procedimiento C. Anormalidades de la fecundación

    i) pronúcleo único ii) poliploidía

    7. DESARROLLO PREIMPLANTACIONAL IN VITRO

  • A. DESARROLLO EN CAPSULA ABIERTA i) Materiales ii) Procedimiento

    B. DESARROLLO BAJO ACEITE MINERAL i) Materiales ii) Procedimiento

    C. EVALUACION DEL DESARROLLO EMBRIONARIO

    8. TRANSFERENCIA DE EMBRIONES

    A. Materiales B. Procedimiento C. Clasificación de la Transferencia

    III. FECUNDACION ASISTIDA: INYECCION INTRACITOPLASMATICA DE ESPERMATOZOIDES (ICSI).

    1. PREPARACION DE ESPERMATOZOIDES PARA ICSI

    A. Materiales B. Procedimiento

    2. OBTENCION DE ESPERMATOZOIDES DESDE BIOPSIA TESTICULAR

    3. PREPARACION DE LOS OVOCITOS PARA ICSI

    A. Materiales B. Procedimiento

    4. PROCEDIMIENTO DE MICROINYECCION INTRACITOPLASMATICA

    A. Materiales B. Procedimiento

    5. NUEVAS TECNICAS DE MICROMANIPULACION EN CONCEPTI HUMANOS

    A. Hatching Asistido B. Remoción de Fragmentos

    IV. CRIOPRESERVACION DE GAMETOS, CIGOTOS Y CONCEPTI

  • 1. CRIOPRESERVACION DE ESPERMATOZOIDES A. Aplicaciones de la congelación de semen B. Crioprotectores C. Técnica

    2. CRIOPRESERVACION DE OVOCITOS

    3. CRIOPRESERVACION DE CELULAS EN ESTADO DE PRONUCLEO O EMBRIONES

    A. Materiales B. Preparación de los medios de descongelación C. Protocolo de congelación y almacenamiento D. Protocolo de descongelación

    4. PROTOCOLO DE CRIOPRESERVACION ULTRARAPIDO (VITRIFICACIÓN)

    A. Materiales i) Solución de Criopreservación ii) Soluciones de descongelación

    B. Procedimiento i) Congelación ii) Descongelación

    V. REFERENCIAS

    VI. PROVEEDORES

  • MADURACIÓN MEIÓTICA DEL OVOCITO HUMANO

    En los mamíferos, los ovocitos permanecen detenidos en la profase de la primera división meiótica, hasta que la hembra experimenta la madurez sexual. Con el estímulo hormonal apropiado, el ovocito adquiere gradualmente la competencia para entrar en la etapa final de la primera división meiótica, a medida que aumenta de tamaño durante la maduración folicular. La estimulación por la hormona luteinizante (LH), ocasiona la maduración nuclear del ovocito, el que experimenta ruptura de la vesícula germinativa. Los cromosomas se ensamblan en el huso meiótico I y ocurre la primera división meiótica: un set de cromosomas homólogos rodeado por una peque a cantidad de citoplasma es extruido como primer corpúsculo polar. En este estado cada cromosoma está compuesto por cromátidas hermanas las que no se separan hasta la anafase de la segunda división meiótica.

    Figura: Meiosis en el Ovocito

    La meiosis II prosigue y el ovocito entra en arresto de división, con los cromosomas alineados en la placa ecuatorial del segundo huso meiótico. En este estado el ovocito es liberado del folículo y ocurre la ovulación, en respuesta al pico de LH.

    FECUNDACIÓN EN MAMÍFEROS

    La fecundación de un ovocito comprende una serie de eventos que ocurren en un orden cronológico y que llevan a la incorporación del material genético del espermatozoide en el citoplasma del huevo, dando origen a la formación de un zigoto.

    Durante el tránsito por el tracto genital hasta las trompas de Falopio, el espermatozoide se capacita, es decir, le ocurren cambios fisiológicos y estructurales que le permiten hiperactivarse y luego experimentar la reacción acrosómica. La cabeza del espermatozoide hiperactivo se une a la zona pelúcida del ovocito (unión primaria), mediante la interacción de residuos carbohidrato de un componente de la zona pelúcida ZP3 con moléculas ligando en la superficie del espermatozoide. Esta unión provoca la reacción acrosómica, en que se fusiona la membrana acrosomal externa con la membrana plasmática del espermatozoide, liberando el contenido acrosomal, cuyo componente principal es la serina proteasa, acrosina.

    La unión primaria progresa a una unión denominada unión secundaria que corresponde a una interacción especie-específica entre otro componente de la zona pelúcida ZP2 y acrosina. Mediante la acción proteásica de acrosina el espermatozoide se suelta y vuelve a interactuar con la zona pelúcida, penetrándola luego de ciclos alternados de unión y lisis. El espermatozoide

  • alcanza así el espacio perivitelino, toma contacto con la membrana plasmática del ovocito y la cola cesa de batir. Se fusiona la membrana plasmática postacrosomal con la membrana plasmática del ovocito, incorporándose el espermatozoide al citoplasma