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UNIVERSIDAD NACIONAL AGRARIA DE LA SELVA
FACULTAD DE AGRONOMIA
DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE AGRONOMIA
PROYECTO DE TESIS
EFECTO DE LOS ABONOS ORGANICOS MALLKI GUANO DE ISLA Y GALLINAZA EN EL CRECIMIENTIO Y DESARROLLO DE PLANTONES DE
CACAO EN TINGO MARIA.
Ejecutor : VILLANUEVA HUAMANI LUIS O.
Asesor(es) : Ing. M.Sc. ZAVALA SOLORZANO, José Wilfredo
Lugar de ejecución : Distrito de Rupa Rupa.
Duración del trabajo : Junio 2014 – Octubre 2014
Tingo María – Perú
Mayo del 2014
I. INTRODUCCIÓN
Una de las actividades de mayor importancia para establecer
plantaciones de cacao, es obtener plantas de calidad y con buen vigor, para
asegurar buenos rendimientos y productividad; esto se logra utilizando semillas
seleccionadas recomendados, con capacidad de producción y tolerancia a las
enfermedades, aspectos que deben ser complementados con un adecuado
manejo de las plántulas en el vivero utilizando un buen sustrato con mezclas
adecuadas.
El vivero es una superficie de terreno con una infraestructura
especializada, donde se colocan en forma ordenada las bolsas de polietileno
provistas de un sustrato adecuado que para nuestro caso será los abonos
orgánicos de San Fernando como el mallqui, la Gallinaza de aves de postura y
el Guano de isla, para luego realizar la siembra de las semillas y
posteriormente el desarrollo de las plántulas, hasta que estén aptas para ser
trasplantadas al campo definitivo.
Cuando se propagan plantas en vivero, el productor tiene muchas
ventajas porque le permite manejar mayor número de plantas en espacio
pequeños; además el cuidado y mantenimiento de las plántulas se tornan más
fáciles de realizar debido a que el espacio a atender es reducido y se
encuentran localizado en un lugar privilegiado para el acceso.
La aplicación de abonos orgánicos se han utilizado ampliamente en
la agricultura, aprovechando la capacidad de las plantas de absorber agua y
nutrientes.
II. JUSTIFICACION
En la actualidad la instalación manejo y fertilización o abonamiento
del cultivo de Cacao, no se ha llevado con eficacia por parte de los agricultores
en el distrito Padre Felipe Luyando, provincia de Leoncio prado y otros, debido
a que éstos no cuentan con la suficiente información que los orienten a utilizar
técnicas para poder mejorar su producción, tomando en cuenta el tipo de cacao
que se va a sembrar, la dosificación del fertilizante y los elementos que éste
contenga, ya que de allí depende que una planta asimile los nutrientes
necesarios desde su estado inicial.
Considerando que el aspecto operativo en la propagación de
plántulas de cacao en viveros, va a incidir en la obtención de plántulas
vigorosas, originadas por semillas provenientes de árboles sanos con buena
adaptación al medio, y que éstas servirán como patrones para posteriormente
realizar el injerto, se requiere suministrarles las atenciones más convenientes
en el aspecto nutricional.
Los criterios referidos justifican este proyecto de investigación, con
el propósito de establecer el manejo adecuado de plántulas de cacao en vivero,
dándoles todos los cuidados necesarios; tomando en cuenta desde la
preparación del sustrato, obtención de la semilla, siembra, manejo de la
fertilización hasta la época del trasplante, lo cual va a garantizar una plántula
con buenas características de vigor aprovechando los abonos orgánicos para el
desarrollo radicular y su posterior crecimiento y desarrollo.
III. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
Durante los últimos años los pequeños y grandes productores del
distrito Padre Felipe Luyando, y Leoncio prado, vienen observando que la
producción del cacao se está deteriorando, lo que obedece en parte a la falta
de asistencia técnica que les permita mejorar su plantación requiriendo de un
proceso diferente a lo acostumbrado por los agricultores, dicha razón el sector
atraviesa un problema como es el alto costo de los fertilizantes lo cual ha
influido en la falta de mantenimiento de las plántulas de cacao y por
consiguiente, en una mayor propensión a ser afectadas por enfermedades.
La necesidad de disminuir la dependencia de productos químicos
artificiales en viveros de cacao, está obligando a la búsqueda de alternativas
fiables y sostenibles en la agricultura ecológica; tal es el caso de los residuos
sólidos municipales biodegradables, creando un sistema orientado en fomentar
y mejorar la salud del agro ecosistema, y de esta forma darle mayor
importancia a este tipo de abonos orgánicos.
Se estima que en la actualidad el 90% de los productores de
cacao no instalan su propio vivero o lo hacen de una manera deficiente, al
utilizar materiales que no están adaptados al medio, además de no tener
establecido un plan de fertilización que les permita aplicar el fertilizante
adecuado, provocando a la obtención de patrones pocos confiables, al no
presentar buenas características que les permita garantizar una planta de
calidad. Razones por las cuales hace que el sector cacaotero atraviese uno de
los problemas fundamentales como es la muerte de las plántulas en fase de
viveros y después del trasplante. Por los antecedentes mencionados, se
plantea la pregunta ¿Cuál será el efecto de los abonos orgánicos en forma
comparativa en el crecimiento y desarrollo de los plantones de cacao
(Teobroma caco L) en fase de vivero en Tingo María? Por lo que la ejecución
de este proyecto de investigación se enfoca en el diseño de estrategias que
están orientados en buscar alternativas para mejorar la nutrición vegetal en la
fase de vivero y plántulas de cacao con el uso de abonos Orgánicos, que por
su acción pueda incidir en la obtención de plántulas vigorosas las cuales sirven
para patrones. Frente a este contexto se plantea la hipótesis los residuos
sólidos municipales biodegradables permitirá un mejor crecimiento y desarrollo
de los plantones de cacao (Theobroma cacao L) en fase de vivero en el distrito
de Padre Felipe Luyando, planteándose los siguientes objetivos:
Objetivo general
Evaluar el efecto de tres Fuentes y Niveles de abonos orgánicos en el
crecimiento y desarrollo de plantones de cacao. (Theobroma cacao L) en
fase de vivero en el distrito Rupa Rupa – Tingo María
Objetivos específicos
Evaluar el incremento en altura, diámetro de tallo y área foliar de los
plantones de cacao (Theobroma cacao L) por el efecto de los diferentes
abonos orgánicos
Evaluar la longitud y el volumen del sistema radicular, biomasa aérea y
radicular en plantones de cacao (Theobroma cacao L) debido a la
influencia de los abonos orgánicos y determinar el nivel adecuado.
Determinar el efecto del abono Mallki frente a los demás abonos orgánicos
que influyen en el crecimiento y desarrollo de plantones de cacao.
Determinar la relación beneficio costo o análisis de rentabilidad de los
tratamientos en estudio.
IV. REVISIÓN DE LITERATURA
IV.1. Origen y distribución geográfica del cacao (Theobroma cacao L)
IV.1.1. Origen
El cultivo de cacao (Theobroma cacao L), fue iniciado por los
indígenas en México y Centroamérica, mucho antes del descubrimiento de
América. Lo consumían como una bebida llamada xocoatl, que por su sabor
amargo no agradó a los españoles; Sin embargo para el año 1550 estos
añadieron dulce y vainilla al chocolate lo que hizo que el uso y demanda de
esta PEPA se extendiera por todo el mundo.
El cacao es una especie originaria del Bosque Húmedo Tropical
(bh – T) en América del Sur, según estudios de Pound, Cheesman y otros;
debido al sistema de vida nómada que llevaron los primeros pobladores del
Continente Americano, en países Alto Amazónicos como el Brasil se ha
encontrado la mayor variabilidad de especies (ENRIQUEZ, 1985).
IV.1.2. Distribución geográfica
Geográficamente en el mundo las mayores áreas cacaoteras están
concentradas entre los 10° LN y LS del Ecuador, distribuidas en el Oeste
Africano, América Latina, y Sur Este de Asia. Si bien el cacao es originario de
América Latina, es el Oeste Africano ahora la región más creciente con 66.8%
de la producción asiática que se ha extendido rápidamente desde la mitad de la
década del 70´a 19.5% (ICCO, 2002).
IV.1.3. Clasificación taxonómica del cacao
Reino : Vegetal
División : Spermatophyta
Subdivisión : Angiosperma
Clase : Dicotiledóneas
Orden : Malvales
Familia : Sterculaceae
Género : Theobroma
Especie : Theobroma cacao L. (LEON, 1987).
La característica principal de esta planta es la de ser cauliflora, es
decir produce sus flores y frutos en el tallo y ramas; el nombre Theobroma,
significa alimento de los dioses, que se atribuye a las propiedades divinas que
los indígenas consideraban en esta planta (CNCH, 1988).
IV.1.4. Generalidades del cultivo de cacao en el Perú
En el Perú existe gran diversidad de genotipos de cacao
provenientes del cruce entre amazónicos, criollos y trinitarios que presentan
atributos agronómicos superiores, sin embargo su potencial se ve disminuido
por el manejo inadecuado, que puede corregirse mediante las técnicas de
manejo integrado.
En las diferentes zonas productoras de cacao, la selección de
material genético local es una práctica importante porque permite obtener
plantas adaptadas a las condiciones del medio. Es necesario orientar a los
productores de la instalación de sus predios evitar la promoción de plantones
monoclonales que se consideran solo características deseables con mayor
rendimiento, cantidad y calidad de semilla, tolerancia a enfermedades, mayor
contenido de grasas, entre otras; esta opción podría ser perjudicial en el futuro
por la predisposición a la ruptura de cualquier tolerancia y/o resistencia,
recomendándose establecer como mínimo una combinación de cinco clones
por hectárea, utilizando preferentemente 75% de clones productivos y 25% de
clones tolerantes, dispersos al azar. La sugerencia se justifica por experiencias
de algunos productores del Huallaga Central, caso específico las localidades
de Fray Martin (Distrito de Nuevo Progreso), Naranjal (Distrito de Pólvora), en
la provincia de Tocache, Departamento de San Martin, donde la severidad de
enfermedades y plagas es alta debido al factor monoclonal, comparada con
otras plantaciones con mezcla de clones de los mismos sectores.
IV.1.4.1. Planta
El cacao, Theobroma cacao es una planta de la familia de las
esterculiáceas, planta de hasta 20 metros de altura cuando crece libremente
bajo la sombra. (ALARCÓN, 2001).
IV.1.4.2. Raíz
La principal es pivotante o sea que penetra hacia abajo,
especialmente en los primeros meses de vida de la planta puede crecer
normalmente entre 120 a 150 cm. Luego nacen muchas raíces secundarias.
La mayoría de las raicillas funcionales del árbol, se encuentran casi en la
superficie del suelo. (ALDONA, 1995).
IV.1.4.3. Tallo
Es recto y puede desarrollar en formas muy variadas, según las
condiciones ambientales, y manejo de la plantación. Por lo general, el cacao
clonal, que proviene de una ramilla un acodo o un injerto, en cuyo caso la
planta toma otra forma, sin un tallo principal. Si se le deja crecer libremente, la
planta emite chupones. Este chupón adquiere el papel de tallo principal crece
vigorosamente, con el tiempo elimina el molinillo verticilo del piso anterior del
que sale. (ECUAQUÍMICA, 2010).
IV.1.4.4. Hojas
Son simples, enteras y pigmentadas, variando mucho el color de
esta pigmentación, la mayoría es de color verde bastante variable. Algunas
plántulas tienen hojas tiernas bien pigmentadas (coloreadas) que pueden llegar
a ser de un color marrón claro, morado o rojizo; también las hay de color verde
pálido (casi sin coloración). El tamaño de la hoja varía mucho, con una alta
respuesta al ambiente. (INIAP, 1993).
IV.1.4.5. Flores
Sus flores son pequeñas, aparecen en pequeños racimos que se
forman en el tronco y en las ramas más viejas, la flor tiene 5 sépalos, 5 pétalos,
5 estambres y un pistilo. Sólo una treintena de las aproximadamente 6.000
flores que se abren durante el año llegan a formar semillas. Éstas llamadas a
veces habas del cacao, están encerradas en una mazorca. (ENCARTA, 2006).
IV.1.4.6. Frutos
Son una drupa bastante grande, le sostiene un pedúnculo no muy
largo pero robusto, que se origina del crecimiento del pedicelo de la flor. Los
frutos tienen cinco lóculos y cada lóculo tiene dos partes formados por dos
surcos interno, lo que en algunos es evidente y en otros casi ha desaparecido.
El color de los frutos varía notablemente desde casi blancos y verdes hasta
colores morados bien fuertes, también hay combinaciones de colores morados
con verdes especialmente diferenciando lomos y surcos. (VERA, .1993).
IV.1.4.7. Semillas
Estas son de forma oblonga y pueden variar mucho en tamaño.
Algunas, en la parte más larga son redondeadas como en el caso del cacao
tipo Criollo y del Nacional de Ecuador otras son bastante aplanadas como en el
caso de los Forasteros. Tienen un recubrimiento o cutícula que protege a los
cotiledones y en la parte exterior está el mucílago que permite la fermentación
de las semillas. El color de la semilla también es muy variable desde un blanco
ceniciento, blanco puro, hasta un morado oscuro y todas las tonalidades,
(VERA, 1993).
IV.2. Vivero.
El lugar donde se realiza la producción de plantas se denomina vivero, en él se
producen las plántulas en calidad y cantidad necesaria para la plantación en el
sitio definitivo. El vivero es un área de terreno cuidadosamente seleccionada,
bien ubicada y con facilidades de acceso donde se concentrarán todas las
actividades e infraestructura para la producción de plántulas. Varias razones
que justifican el establecimiento del vivero, tales como: controlar y mejorar el
porcentaje de germinación de las semillas, producir grandes cantidades de
plántulas en espacios pequeños, seleccionar plántulas por tamaño y vigor para
programar mejor las épocas de siembra y controlar efectivamente el
aparecimiento de plagas y enfermedades. Según el tiempo de permanencia
del vivero, éste puede ser permanente o transitorio. Los viveros permanentes
son aquellos destinados a la producción de grandes cantidades de plántulas en
forma continua, los transitorios son aquellos cuyo objetivo es la producción y
abastecimiento de plántulas a proyectos transitorios. (BOSELLI, 1994).
IV.2.1. Ubicación del vivero
Es importante ubicar el vivero aledaño a una vía, donde se facilite
la entrada de insumos y materiales y el cargue directo de las plántulas al
vehículo sin tener que manipularlas demasiado y poder conservarlas en buen
estado hasta su llegada al sitio de destino. Igualmente, debe haber una fuente
de agua cercana, preferiblemente en la parte alta del vivero, con el fin de
aprovechar la gravedad para el regadío sin tener que incurrir en los altos costos
que implicaría instalar un sistema de bombeo. (CORPOICA 2007)
IV.2.2. Construcción del vivero
El tamaño del vivero depende principalmente del número de
plantas que se desee producir, así como del tamaño de los fundos que se usen
en la producción. Cada vivero tendrá un tamaño particular de acuerdo a sus
características propias y no es posible fijar una norma sobre el tamaño máximo
o mínimo, debido a las múltiples características que le son propias. (VERA,
1993).
IV.2.3. Trazado del vivero
El vivero permanente debe incluir en su diseño como mínimo las
siguientes características. Se debe construir cercas para independizar el área
de vivero y restringir la entrada de animales que puedan estropear la
producción ocasionando graves daños; caminos principales y secundarios,
para la movilización propia de las actividades de producción. Finalmente la
construcción de los cobertizos hechos de diferentes materiales, tales como,
tejas de zinc, de eternit, hojas de plátano u otros materiales, con la finalidad
principal de proteger del sol excesivo y de la lluvia que produce
encharcamiento de la tierra y dificulta su manejo. (TRUJILLO, 2002).
IV.3. Sustratos
Los sustratos son una mezcla o compuestos de materiales activos
y/o inertes, los mismos que son usados como medios de propagación de
algunas especies vegetales. Los sustratos están formados por fragmentos de
diferentes materiales, resultando en un complejo de partículas de materiales
rocosos y minerales característicos. También los sustratos pueden estar
constituidos por ciertos organismos vivientes o muertos. De la selección del
sustrato apropiado dependerá la germinación de las semillas y el desarrollo de
las plántulas. (ANSORENA, 1994).
Los sustratos, proporcionan humedad y aireación a las semillas
durante el proceso de germinación. La textura del sustrato influye directamente
en el porcentaje de semillas germinadas así como en la calidad del sistema
radicular. (MAINARDI, 1980).
IV.3.1. Mezclas de suelo
El llenado de las fundas debe ser realizado con un tipo de suelo
especialmente preparado y tratado que ofrezca una buena textura de tipo
franco y con un adecuado contenido de materia orgánica, a la vez que libre de
cualquier clase de patógenos. (CALDERÓN, 1998).
IV.3.2. Preparación del sustrato
Para la preparación de sustrato se necesita de una parte de arena
de río, una parte de materia orgánica descompuesta, una parte de humus de
lombriz y cuatro partes de suelo del lugar. Todos los materiales pueden ser
tratados con captan en dosis de 5 g., por metro cúbico mezclado bien con
ayuda de una pala sobre una superficie limpia. Esta labor se realiza con un
mes de anticipación a la siembra. (SUQUILANDA, 2001).
IV.3.3. Embolsado
Cuando el sustrato está preparado se procede al llenado del
sustrato utilizando bolsas de polietileno negro de 12 a 14 cm. de diámetro, 20 a
25 cm. de alto, dejando 2 cm. del borde de la bolsa (SUÁREZ, 1993).
IV.4. Obtención de semilla y siembra
En la plantación de cacao por ser un cultivo perenne con una vida
útil de producción promedio de 20 años, es muy importante el cuidado selectivo
del proceso para obtener las semillas que producirán los patrones. Se eligen
las mazorcas maduras y bien constituidas, ubicadas en el tercio superior del
tronco donde se encuentran las semillas más grandes para que el patrón
crezca vigoroso y sea pronto injertado.
Después de extraídas las semillas de las mazorcas y eliminado el
mucílago a través de la frotación con ceniza, aserrín, arena fina, cal apagada o
costales de yute, se dispone a orearlas bajo sombra durante 8 horas.
Transcurrido este tiempo se las desinfecta con ceniza o cal apagada estando
ya aptas para ser sembradas. Para la siembra se coloca una semilla por bolsa
en posición vertical a una profundidad aproximada de 2.5 centímetros y se la
cubre con el sustrato (ASENJO, 2003).
IV.5. Labores culturales en el vivero
Son aquellos cuidados indispensables para el buen desarrollo de
las actividades del vivero.
IV.5.1. Riego
Uno de los factores importante para el estímulo del desarrollo de
las plantas es la humedad adecuada. El riego se dosifica por lo menos tres
veces por semana, a primera hora de la mañana o al caer la tarde, pudiendo
variar de acuerdo a las condiciones climáticas de la zona. En general las
plantas deben permanecer húmedas pero sin excesos de agua, porque al
existir permite fomentar enfermedades (Salazar, 2003).
IV.5.2. Control de malezas
Las malezas o hierbas indeseables, requieren de un especial
seguimiento y control en todas las etapas de producción del vivero. Sus
desventajas consisten en: Competir con las plántulas del vivero por luz y por
los nutrientes del suelo. Pueden ser hospederas de insectos, hongos o
bacterias causantes de enfermedades. Dan aspecto antiestético y de desaseo
general. Las malezas se pueden controlar de dos maneras: por métodos
manuales y químicos.
IV.5.2.1. Métodos manuales
Son preferibles sobre los métodos químicos, por su bajo costo
debido a que se realizan deshierbas manuales y no se tiene algún riesgo en
afectar la producción del vivero, para esto se debe realizar cuando las malezas
estén pequeñas, mínimo cada 15 días o una vez por mes, hasta que la planta
se desarrolle y haya autosombreamiento, lo cual evitará el desarrollo de las
malezas.
IV.5.2.2. Métodos químicos
Existe una variada gama de herbicidas, los cuales deben ser
utilizados atendiendo exactamente las indicaciones del productor. Existen
varias formas de presentación, prevaleciendo la líquida. (VERA, 1993).
IV.6. Plagas
Los principales organismos que causan problemas sanitarios
afectando la productividad en el vivero contemplan tres grupos: invertebrados
(insectos, ácaros y babosas), microorganismos (hongos, bacterias y virus),
nemátodos y vertebrados (aves y roedores). Las plántulas deben salir al campo
libre de insecto, enfermedades y los daños ocasionados por ellos. (LARA,
2002).
IV.6.1. Ataque causado por insectos
Algunos insectos que atacan en el vivero, causan daño por corte y
se denominan cortadores de follaje, son insectos con aparato bucal masticador
y dentro de estos se ubican los cogolleros. Las larvas hacen un corte que
puede ser al nivel de la base del tallo, parte del follaje y algunos en las raíces.
Se destacan especialmente los géneros correspondientes a la familia
Noctuidae como: Agrotis, Feltia y Spodoptera. El daño es causado por el
estado inmaduro de larvas. (CORNELIUS, 2001).
IV.6.2. La hormiga arriera (Atta cephalotes)
Pertenece a la familia de las Formicidae, éstas no se alimentan
directamente de las plantas, sino que cortan sus hojas en forma semicirculares,
para luego trasladarlas a su nido, en donde las utilizarán para cultivar un hongo
del cual se alimentan. El ataque de las hormigas arrieras, se observa
principalmente por la presencia de hormigueros dentro o cerca del vivero, como
prevención se deben detectar y eliminar los nidos cercanos al vivero. (INIAP-
COSUDE. 1998).
IV.6.3. Los Afidos
Insectos pequeños de color oscuro, siempre están agrupados en
colonias, atacan los brotes, hojas, flores y también los frutos jóvenes. Hay
varias especies que atacan al cacao, sin embargo la más corriente y que ataca
más órganos es la especie Toxoptera aurantii. (ROGG, 2000).
IV.6.4. El barrenador de tallo (Steraistoma breve)
Algunas especies pueden matar las plantas cuando éstas son
jóvenes. Las hembras raspan la corteza tierna en la parte terminal y ponen sus
huevos; al desarrollarse la larva penetra en el tallo y se alimenta internamente,
formando pequeñas galerías, alcanza su estado de pupa después de varios
meses, provocando la muerte de las plantas jóvenes o de las ramas afectadas.
(INIAP- COSUDE. 1998).
IV.6.5. Los ácaros. Arañitas
Habitualmente de color rojo o marrón, se localizan en el envés de
la hoja. Atacan los brotes jóvenes, especialmente en el vivero; producen
atrofias, malformaciones y defoliación de los brotes terminales. (ROGG, 2000).
IV.6.6. Los crisomélidos
Pequeños coleópteros de colores brillantes, existen muchas
especies que son plagas nocturnas de las hojas tiernas, a las que hacen unos
pequeños orificios. (SAUNDERS, 1989).
IV.7. Enfermedades
El vivero es un medio propicio para la aparición de diferentes
agentes causales de enfermedades que pueden ocasionar problemas en la
producción. El adecuado manejo del vivero, permiten el crecimiento y
desarrollo de plántulas sanas. (LARA, 2002).
IV.7.1. Ataques causados por hongos, bacterias y virus
Los hongos son causantes de los principales problemas sanitarios
en el vivero, siendo los géneros más frecuentes: Fusarium. Phytium,
Phytoptora, Rhizoctomia, Botrytis y Sclerotium. Las enfermedades pueden
presentarse en dos situaciones:
Pre-emergentes: El ataque se presenta en el inicio del desarrollo de la
plántula; es decir, el hongo afecta la raíz recién germinada anterior a la salida
del tallo a nivel del sustrato.
Post-emergente: El ataque se presenta de 1 a 3 semanas después de que el
tallo de la plántula emerge del sustrato. El hongo al atacar el tallo tierno, al nivel
del cuello ocasiona marchitez y estrangulamiento. (DELGADO y SUÁREZ,
1993).
IV.7.2. Damping off
Este tipo de enfermedad se inicia con un amarillamiento del tallo
por encima o a nivel del suelo, con pudrición posterior de ésta parte,
volcamiento y muerte de la plántula; Puede aparecer en cualquier época del
año, factores como alta densidad de siembra, sustrato muy húmedo,
temperaturas elevadas, o demasiada sombra son condiciones especialmente
favorables para la difusión de la enfermedad. Por lo general atacan las
plántulas en la fase inicial de germinación cuando las esporas se encuentran
dispersas en el suelo o en ocasiones están presentes en la misma semilla.
(ENRÍQUEZ, 2004).
IV.8. Fertilización en el vivero
La fertilización es muy eficaz para aumentar el desarrollo de las
plántulas en menor tiempo. La aplicación del fertilizante dependerá de la
fertilidad del suelo y de los requerimientos de la planta para un buen desarrollo,
por eso su recomendación debe basarse en un análisis de suelo. Los
programas de fertilización, se proyectan con base en los 3 macro nutrientes
principales (N, P, K); los niveles de fertilización deben ajustarse a cada una de
las tres etapas de desarrollo de la plántula en vivero. Los elementos anotados
anteriormente, son los más importantes y deben tenerse en cuenta, en todos
los programas de fertilización, además de los otros elementos llamados
menores como el Boro (B), Calcio (Ca), magnesio (Mg), etc. Los fertilizantes
pueden ser de dos tipos: orgánicos y químicos. (FLORES, 1987).
La siembra de plántulas no vigorosas trae como consecuencias
crecimiento lento en campo, período prolongado para producir y susceptibilidad
al ataque de enfermedades. Por tales razones, los productores de cacao eligen
las plántulas que poseen mayor desarrollo al momento de adquirir material de
siembra (REYES y GONZÁLEZ 2003).
DOMÍNGUEZ (1984) determinó que el nitrógeno (N), fósforo (P) y
el potasio (K) juegan un papel importante para el crecimiento de las plántulas
de cacao durante el primer mes después de aplicarse. Mallona y Enríquez
(1987) trabajando sobre tamaño de fundas de polietileno y fertilización,
determinaron que en los tratamientos fertilizados, las plántulas presentan
mayor incremento de diámetro y altura que en los no fertilizados
IV.8.1. Fertilización orgánica
Uno de los principios básicos de la agricultura orgánica es ser un
sistema orientado a fomentar y mejorar la salud del agro-ecosistema, la
biodiversidad y los ciclos biológicos del suelo. Para esto, se hace necesario
implementar actividades que conduzcan a estos fines, que conllevan la
restitución de elementos minerales y vivos (microorganismos, bacterias
benéficas y hongos) y mantener la vitalidad del suelo donde se desarrollan las
plantas.
Hasta el presente, de los 16 elementos esenciales para el
desarrollo de las plantas. Los más importantes para el cacao son: nitrógeno,
fósforo, potasio, magnesio, manganeso, boro y zinc. En casos de deficiencias,
las plantas presentan sintomatología de amarillamiento, defoliación,
estancamiento en el crecimiento y baja producción, además de vulnerabilidad
al ataque de plagas y enfermedades debido al desequilibrio nutricional de las
plantas. De allí que, el manejo orgánico del suelo y un conjunto de prácticas
que propicien condiciones para un desarrollo sano, son el mejor control para
los problemas de plagas y enfermedades.
La diferencia que existe entre los fertilizantes químicos-sintéticos y
los abonos orgánicos es que los primeros son altamente solubles y son
aprovechados por las plantas en menor tiempo, pero generan un desequilibrio
del suelo (acidificación, destrucción del sustrato, etc.); mientras que los
orgánicos actúan de forma indirecta y lenta. Pero con la ventaja que mejoran la
textura y estructura del suelo y se incrementa su capacidad de retención de
nutrientes, liberándolos progresivamente en la medida que la planta los
demande. (www.fundmcch.com.ec).
LALATTA (1988), manifiesta que el humus esta también una
reserva de elementos constitutivos biológicos estimuladores de crecimiento.
Por parte de todas las plantas pueden ser absorbidas los elementos
constituyentes húmicos que ejercen acciones fisiológicas a favor de la actividad
enzimática. Se aceleran, entre otras cosas, los procesos de síntesis de los
ácidos nucleicos y se ejercen una serie de influencias positivas para la
vegetación.
MENDOZA (1991), señala que entre las tecnologías aplicadas en la
elaboración de viveros está la adición de cascarilla de arroz, que es un
subproducto de las industrias molineras, de baja tasa de descomposición dado
a su alto contenido de silice, buena aireación, baja retención de humedad
inicial. Las propiedades quimicas son: nitrogeno 0.50% a 0.60%, fosforo de
0.08% a 0.10%, potasio de 0.20% a 0.40%, calcio 0.10 a 0.15%, magnesio de
0.10% a 0.12%.
V. MATERIALES Y MÉTODOS
V.1. Lugar de ejecución
V.1.1. Ubicación política y geográfica
El proyecto se instalará en el vivero de la Facultad de Agronomía,
ubicado en las siguientes coordenadas 410645 Este y 8983244 Norte, con
una altitud de 640 msnm.
V.1.2. Características agroclimáticas
V.1.3. Características pedológicas
V.1.4. Zonas de vida
V.1.5. Accesibilidad
V.2. Materiales y equipos
V.2.1. Material biológico y abonos
Semillas de cacao (Theobroma cacao L.) variedad CCN51
Tierra Franco (Mantillo o negra de bosque) para el sustrato
Abono orgánico Mallki
Abono orgánico Guano de isla
Abono Orgánico de Gallinaza
V.2.2. Materiales de establecimiento y manejo
Palana para la limpieza y nivelamiento del vivero
Machete utilizado en la limpieza del área del vivero.
Wincha de 05 m utilizado para la evaluación de las variables
cuantitativas a excepción de la biomasa.
Vernier mecánico para la evaluación del diámetro del tallo.
Wincha de 30 m para la demarcación de la parcela experimental y
sus respectivas distribuciones.
Probeta para determinar el volumen radicular.
Tubo muestreador, para obtener muestras de suelo y su posterior
análisis respectivo.
V.2.3. Equipos
Balanza digital para determinar la biomasa de las muestras
extraídas.
GPS para ubicar las coordenadas geográficas sobre la
distribución de las plantas dentro de la parcela experimental.
Cámara fotográfica empleada en la captura de imágenes de las
labores realizadas.
V.3. Metodología
V.3.1. Ubicación de la parcela
La Parcela donde se encuentra el vivero es en el fundo de la
Facultad de agronomía de la UNAS, ubicado en una terraza baja no inundable
y una terraza media.
V.3.2. Limpieza general de la parcela experimental
Antes de la instalación del vivero se procederá a la limpieza,
nivelación y cuadrado del terreno, de manera manual para lo cual se utilizara
palas y machetes.
V.3.3. Instalación del vivero
Para la instalación del vivero se utilizara los siguientes materiales:
malla negras para sombra y cerco. Abonos orgánicos Mallqui, Gallinaza, y
guano de isla, Una vez conseguido los materiales se procederá a hacer las
mezclas de acuerdo a las proporciones que se va a utilizar y se procederá a
llenar las bolsas de 2 kg.
V.3.4. Preparación del sustrato
Para la preparación del sustrato se utilizara. Tierra vegetal obtenida
de la capa superficial del suelo o mantilo, esta se mezclara con el Mallqui a las
proporciones que fue planteado. Igual será con el guano de isla y la gallinaza.
Una vez obtenida la mezcla se procederá al llenado manual de las
bolsas.
V.3.5. Ubicación de las bolsas
Se ubicaran en las respectivas camas de repique del vivero,
colocando cuatro bolsas de ancho y doce bolsas a lo largo de la cama
haciendo un total de 48 bolsas por tratamientos de las cuales las 24 de la
parte central se utilizaran como parcela útil.
V.3.6. Siembra en las bolsas
Una vez realizado los pasos anteriores se procederá a extraer las
semillas de cacao seleccionando las mazorcas sanas y las más grandes; Se
limpiara el mucilago de las semillas frotando con arena de rio o aserrín,
posteriormente se le quitara la testa y se le dejara en reposo por una noche en
un balde con agua, para acelerar la germinación; una vez pregerminadas se
escogerá las semillas que tengan una buena radícula, después se procederá a
depositar la semilla pre germinada en cada bolsa.
V.3.7. Riegos
Se realizara cada tres días, a medida que se desarrollen las
plántulas y a medida que estas se desarrollen se realizara con frecuencia de
cada 8 días. Se realizara el deshierbo manual con una frecuencia de cada 8
días.
V.4. Tratamientos en estudio
La dosis de la mezcla para la preparación de los sustratos se
realizara con tierra negra, Mallqui, Gallinaza y Guano de Isla, con una
proporción en baldes: (Tierra-Mallqui de 1:1, 2:1, 3:1 y 4:1), (Tierra-Gallinaza
con 1:1, 2:1, 3:1 y 4:1), (Tierra-Guano de isla con 1:1, 2:1, 3:1 y 4:1) y como
testigo 1 balde de tierra negra, haciendo un total de 12 tratamientos por 20
repeticiones respectivamente más un testigo adicional.
Cuadro 1. Distribución de los tratamientos en estudio para la siembra de cacao
(Theobroma cacao L.).
Tratamientos Descripción Proporción
Tierra/Abono
T1 Testigo Sustrato Franco 1
T2 Mallki 1:1
T3 Mallki 2:1
T4 Mallki 3:1
T5 Mallki 4:1
T6 Guano de isla 1:1
T7 Guano de isla
2:1
T8 Guano de isla 3:1
T9
T10
Guano de isla
Gallinaza
4:1
1:1
T11
T12
T13
Gallinaza
2:1
Gallinaza
3:1
Gallinaza
4:1
Fuente: elaboración propia
V.5. Variables a evaluar
Las variables evaluadas estarán distribuidas en dependientes e
independientes y se realizaran en periodos mensuales, la cual al finalizar la
investigación se tendrá Cinco evaluaciones:
V.5.1. Variables independientes
- Fuentes de abonos orgánicos
- Niveles de abonos orgánicos
- Dosis de la mezcla de sustratos
- La especie cacao (Theobroma cacao L.)
V.5.2. Variables dependientes
Una de las variables dependientes a registrar será el crecimiento y
desarrollo de las plantas del cacao, cuyos indicadores serán:
V.5.2.1. Altura total mensual
Se medirá desde la base de la planta hasta la parte apical de la
planta. Como parte de la interpretación de los resultados, se considerará las
dimensiones finales menos la dimensión inicial, ya que se procesará el
incremento en esta variable de las plantas.
V.5.2.2. Diámetro del tallo
Se evaluará a nivel del cuello de la planta, en forma mensual, para
esta actividad se empleará el vernier mecánico y las orientaciones de colocar el
vernier será en orientación a las filas para no errar en las evaluaciones
posteriores.
V.5.2.3. Área foliar
Midiendo el área de la hoja
Dibujando
de tres simple se determinará el área foliar en base al peso total de la hoja.
V.5.2.4. Longitud y volumen del sistema radicular
Para registrar esta variable, se tendrá que extraer plantas teniendo
cuidado de no maltratar las raíces, éstas se cortarán y lavarán para luego
medirlas empleando una regla.
El volumen del sistema radicular se determinará en probetas con
agua de volumen conocido, a la cual se le introducirá el sistema radicular y por
diferencia del volumen incrementado menos el volumen inicial se obtendrá el
volumen de la raíz.
V.5.2.5. Biomasa aérea y radicular
Para registrar esta variable, se tendrá que extraer plantas teniendo
cuidado de no maltratar las raíces, éstas se cortarán y se pesarán por
separado y luego se extraerá una muestra de 20 g para levarlo al laboratorio y
colocarlo en la estufa a una temperatura de 73 ± 2 °C hasta alcanzar peso
constante.
V.5.2.6. Propiedades químicas de los suelos (pH, MO, N,P, K)
En la última evaluación se realizará el muestreo de las bolsas 3 a 5
bolsas por tratamiento, estas muestras se llevarán al laboratorio para su
respectivo análisis químico.
V.6. Diseño experimental y análisis estadístico
La parcela experimental, estará distribuido al azar bajo un Diseño
Completamente al Azar con Arreglo Factorial 3 x 4 más un testigo adicional.
Cada tratamiento contará con 20 plantas, distribuido al azar, haciendo un total
general de 260 plantas en la parcela experimental (Figura 6).
Figura 1. Distribución de los tratamientos en la parcela experimental.
- Ancho de la parcela : 44 m
- Largo de la parcela : 86 m
- Ancho de las calles : 5 m
- Área total de la parcela : 3784 m2
- Área neta de la parcela : 864 m2
Esquema del análisis de varianza (ANVA)
Modelo aditivo lineal
Yijk = u + αi + βj + (αβ)ij + εijk
Donde,
Yijk es el resultado del tratamiento i-ésimo, i = 1,2,...,I del factor Tα y del
tratamiento j-ésimo, j = 1,2,...,ni del factor Tβ, en la replicación t-ésima, t =
1,...,K.
u es el efecto global que mide el nivel medio de todos los resultados,
αi es el efecto (positivo o negativo) sobre la respuesta debido a que se observa
el nivel i del factor Tα. Se verifica que Ʃi = 1Iαi = 0,
βj es el efecto (positivo o negativo) sobre la respuesta debido a que se observa
el nivel j del factor Tβ. Se verifica que Ʃj = 1Jβ i = 0,
(αβ)ij representa la interacción y es el efecto extra (positivo o negativo) sobre la
respuesta debido a que se observan conjuntamente los niveles i y j de los
factores Tα y Tβ respectivamente. Mide la desviación de las medias de la
hipótesis de aditividad de los efectos.
εijk es el error experimental o perturbación, son variables aleatorias
independientes idénticamente distribuidas (i.i.d.) con distribución N (0,δ2).
V.7. Fase de gabinete
De los datos colectados de las evaluaciones, que será durante los
seis meses, se ordenará y realizará el proceso para la obtención del promedio
de los datos y los gráficos.
La variación total de los resultados experimentales del diseño en
Bloque Completo al Azar (DBCA) con arreglo factorial, serán analizados
mediante el análisis de varianza (ANVA), a un nivel de significancia o riesgo de
0.05 en el programa el SAS v. 10. También se realizará la comparación de
promedios mediante la prueba de comparación de promedio de Duncan.
VI. PLAN DE EJECUCIÓN
Cuadro 2. Actividades generales a realizar durante la investigación.
Actividades a realizar en la
investigación
Meses del año 2014
May Jun JulAg
oSet Oct Nov
1. Reconocimiento del Vivero X
2. Limpieza del Vivero X
3. Instalacion de la Cama del vivero X
4. Siembra y repique X
5. Muestreo de suelos X
6. Evaluaciones a registrar X X X X
7. Codificación de unidad experimental X
8. Limpieza de la parcela experimental X X X X X X X
9. Visita de los miembros del jurado X
10. Proceso de datos recopilados X X
11. Redacción del informe de tesis X X X
PRESUPUESTO
Cuadro 3. Presupuesto de las actividades a realizar durante la investigación.
RUBROSUnidad
de medida
Cantidad
Costo unitario (S/.)
Costo total
Personal obrero eventual 1195
Limpieza del terreno Jornal 3 30 90
Demarcación del terreno Jornal 4 30 120
Apertura de hoyos Jornal 2 30 60
Plantación Jornal 4 30 120
Evaluaciones de variables Jornal 6 50 300
Mantenimiento de la parcela Contrata 5 100 500
Colocación de letreros Jornal 0.5 30 15
Fertilizantes y pesticidas 160
Mezcla de fertilizantes Saco 2 80 160
Suministros materiales 257
Jabas de plástico Unidad 1 20 20
Wincha 5 m Unidad 1 17 17
Vernier Unidad 1 35 35
Wincha 30 m Unidad 1 30 30
GPS Alquiler 1 10 10
Plumón indeleble Unidad 2 2.5 5
Útiles de escritorio General 1 80 80
Panel informativo Unidad 1 60 60
Herramientas 75
Palana recta Unidad 1 35 35
Machetes Unidad 2 10 20
Lima triangular Unidad 2 10 20
Pasajes y gastos de transporte 300
Pasajes hasta la parcela Unidad 30 10 300
Viajes y fletes 60
Flete por transporte plantones Unidad 1 50 50
Flete por transporte del fertilizante Unidad 1 10 10
Servicios de internet 30
Conexión a la red de información Mes 1 30 30
Servicio de impresiones y empastado 350
Impresión y empastado del informe de tesis Unidad 7 50 350
Servicio de estudio e investigaciones 960
Análisis de suelos Unidad 10 60 600
Datos meteorológicos Mes 6 60 360
Semillas y almácigos 240
Plantones de cacao Unidad 400 0.6 240
Imprevistos (10 %) 353.3
Costo total de la investigación (Nuevos soles)3911.
3
VII. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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