laboratorio de biologia 2011

UNIVERSIDAD NACIONAL ABIERTA Y A DISTANCIA

ESCUELA DE CIENCIAS BASICAS TECNOLOGIA E INGENIERIA

GUÍA COMPONENTE PRÁCTICO

201101– BIOLOGIA

CARMEN EUGENIA PIÑA LOPEZ Director Nacional

BIBIANA AVILA Acreditador

BOGOTA Julio 2011

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2. ASPECTOS DE PROPIEDAD INTELECTUAL Y VERSIONAMIEN TO

La presente guía fue diseñada en el año 2005 por Carmen Eugenia Piña López, MSc. Ciencias Biológicas; MSc. Docencia Universitaria; Especialista en Nutrición Animal Sostenible; Especialista en Informática y Multimedia. Docente de la UNAD desde 1986

La presente guía ha tenido cuatro actualizaciones, con la participación de las tutoras Yurby Salazar, Bibiana Ávila, y la coordinadora de laboratorios Angélica Yara durante las cuales se han realizado mejoramientos académico-pedagógicos y didácticos con la incorporación de Objetos Virtuales de Aprendizaje.

Con el fin de que el estudiante tenga una preparación previa del material a utilizar y de los procedimientos a seguir se incorporaron links a videos demostrativos donde se muestra paso a paso cada uno de los procedimientos que el estudiante debe realizar en la práctica presencial. Cada video cuenta con su respectivo formato de observación lo cual le facilitará la comprensión y el desarrollo de la práctica.

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/multimedia.htm

Se diseñó una simulación de microscopía en donde el estudiante puede manipular el microscopio de manera virtual y de esta manera realizar un entrenamiento previo al desarrollo de los laboratorios. El link donde está publicado el simulador:

http://canal.unad.edu.co/laboratorio/index/main.html

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3. INDICE DE CONTENIDO

Pág.

INTRODUCCIÓN 5

CARACTERISTICAS GENERALES 5

FORMATO PARA OBSERVACIÓN DE VIDEOS SOBRE LOS LABORATORIOS 6

DESCRIPCIÓN DE PRÁCTICAS 8

PRACTICA No. 01 NORMAS DE SEGURIDAD EN EL LABORATORIO 8

PRÁCTICA No. 02 MICROSCOPÍA 12

PRACTICA No. 03 LA CÈLULA 20

PRACTICA No. 04 DIVERSIDAD MICROBIANA 29

PRACTICA No. 05 MITOSIS Y MEIOSIS 38

PRACTICA No. 06 TEJIDOS VEGETALES 43

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4. LISTADO DE TABLAS

Microscopía observaciones realizadas 17

Célula observaciones realizadas 25

Diversidad Microbiana observaciones realizadas 31

Mitosis Meiosis observaciones realizadas 41

Tejidos Vegetales observaciones realizadas 46

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5. CARACTERÍSTICAS GENERALES

Introducción

Las guías para las prácticas de biología, son un importante dispositivo de ayuda pedagógica y didáctica en el proceso de formación profesional que inician los estudiantes de los programas de pregrado de Ingeniería de Alimentos, Regencia de Farmacia, Zootecnia, Agronomía, Ingeniería Agroforestal y Psicología. Estas guías están descritas de manera clara y sencilla con el fin de que la ejecución práctica pueda hacerse completamente. Antes de realizar la parte práctica se recomienda ver cada uno de los videos presentados en el curso de Biología en el link Multimedia, http://www.unad.edu.co/curso_biologia/multimedia.htm para hacerse una idea del material a utilizar y procedimiento a seguir lo cual le facilitará la comprensión y el desarrollo de la práctica Quienes deseen descargar los videos en su computador pueden hacerlo ver orientaciones al final de la guía.

Justificación

Un aspecto importante de la formación profesional en los campos de Ciencias Agrarias, Psicología, Ingeniería de Alimentos, Regencia de Farmacia, corresponde al saber hacer, evidenciado en competencias psicomotoras que facilitan el ejercicio profesional, por representar un dominio de procesos complejos necesarios para la realización cotidiana de actividades sistémicas y la resolución de problemas, en las cuales se integran la aplicación de procedimientos y estrategias (saber hacer) con la comprensión del contexto (saber conocer) y con el despliegue de iniciativa y creatividad (saber ser). Un ejemplo específico de este tipo de competencia es el aprendizaje procedimental del manejo del microscopio, ya que en todo lo relacionado con la observación de componentes o muestras microbiológicas como base para diagnósticos y toma de decisiones, es fundamental poseer la competencia de manipulación del microscopio en un nivel de automatización o de experticia.

Una manera efectiva de alcanzar esta experticia en el manejo del microscopio es el desarrollo de laboratorios para una ejercitación personal.

Intencionalidades formativas

Propósitos

Integrar al perfil de formación profesional del estudiante la capacidad de desempeñarse con seguridad y con experticia en los procedimientos propios de un laboratorio de biología.

Objetivos

Identificar y aplicar las normas de bioseguridad, identificar los componentes del microscopio óptico y los procedimientos correctos de manipulación del microscopio para observación de muestras biológicas, así como la identificación de componentes celulares y microorganismos.

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Metas

Que cada estudiante al terminar la práctica pueda desarrollar el cuestionario evaluativo y presentar un informe correcto de los procedimientos aplicados.

Competencias

• Comportamiento bio seguro en el laboratorio

• Manipulación correcta del microscopio óptico

• Identificación correcta de componentes celulares, microorganismos

Denominación de prácticas

Práctica 1: Normas de seguridad en el laboratorio

Practica 2: Microscopía

Practica 3: La célula

Práctica 4 : Diversidad Microbiana

Práctica 5: Mitosis y Meiosis

Práctica 6. Los tejidos Vegetales

Número de horas 12

Porcentaje 20 % del valor total del curso 100 puntos /500 puntos

Curso Evaluado por proyecto

SI___ NO __X__

Bioseguridad y Manejo de Residuos

La primera práctica hace referencia a las Normas de seguridad en el laboratorio y al manejo de los residuos generados en las prácticas. La bioseguridad debe ser transversal para el desarrollo de todas las prácticas y se exige en todos los informes, como requisito antes de iniciar el laboratorio. Igualmente se evaluará el comportamiento el comportamiento de aplicación de las normas de bioseguridad y manejo de residuos.

FORMATO PARA OBSERVACIÓN DE VIDEOS SOBRE LOS LABORATORIO S

Objetivos :

Identificar los temas, materiales, habilidades que podemos desarrollar con la observación de los videos y prácticas de laboratorio.

Instrucciones :

Observe detenidamente cada uno de los videos de laboratorio relacionados en el material didáctico del curso de Biología.

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Responda para cada video las preguntas que se realizan en este formato

Recursos : Videos de las experiencias:

1. Video

Normas generales de Uso del Laboratorio

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/videoseguridad.htm

2. Video

El Microscopio Parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_microscopio1.htm

El Microscopio Parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_microscopio2.htm

3. Video

Célula parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_celula-1.htm

Célula parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_celula_2.htm

4. Video

Mitosis y Meiosis parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis1.htm

Mitosis y Meiosis parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis2.htm

5. Video

Biodiversidad microbiana parte 1

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad1.htm

Biodiversidad Microbiana parte 2

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad_2.htm

6. Video

Tejidos vegetales http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_Tej_vegetales.htm

RESPONDA PARA CADA VIDEO:

1. ¿Cuál es el objetivo de esta práctica?

2. ¿Qué materiales necesita? ¿Los conoce todos? ¿Cuáles desconoce?

3. ¿Qué temas del módulo puede relacionar con esta experiencia? Justifique su respuesta.

4. ¿Qué habilidades cree que se pueden desarrollar al realizar ésta práctica de laboratorio?

5. ¿Qué utilidad o aplicaciones prácticas puede derivar del conocimiento que se desarrolla con estos laboratorios?

6. Después de observar el video ¿Cuál es la conclusión a la que llega?

Formato elaborado por:

Esp. Bibiana Ávila García.

Punto de contacto: [email protected] Tutora CEAD Barranquilla.

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6. DESCRIPCIÓN DE PRÁCTICAS

PRACTICA No. 01 Normas de seguridad en el laborato rio (Para desarrollar en el Primer Encuentro)

Tipo de practica

Presencial Autodirigida X Remota

Porcentaje de evaluación 3 % Horas de la pr áctica 0.15

Temáticas de la práctica Bioseguridad e higiene en el laboratorio, manejo de residuos


Propósito(s)

Desarrollar en el estudiante la competencia de comportamiento bioseguro en el laboratorio de biología.

Objetivo(s)

Conocer y cumplir las principales normas de seguridad e higiene que se deben seguir en el laboratorio, con el fin de evitar posibles riesgos, tanto para las personas como para el medio ambiente.

Meta(s)

Observar el video normas de seguridad en el laboratorio y contestar las preguntas presentadas en el formato de observación del video

Competencia(s) Se basan en el dominio la relación cognitivo-procedimental orientada a:

1. Argumentar el concepto de bioseguridad aplicado al uso del laboratorio de biología.

2 .Transferir a situaciones concretas las normas básicas de bioseguridad en el laboratorio de biología

3. Aplicar la capacidad de evitar en el laboratorio daños a su salud

Descripción de la prá ctica

La práctica Normas de Seguridad en el laboratorio, se basa en la observación del video sobre este tema, y el análisis del folleto de bioseguridad y de manejo de residuos.

Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instrumentos)

Observación del video sobre normas de bioseguridad http://www.unad.edu.co/curso_biologia/videoseguridad.htm

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Folleto de Bioseguridad y Manejo de residuos

Software a utilizar en la práctica u otro tipo de requerimiento para el desarrollo de la práctica.

Computador y observación del video.

Metodología

Conocimiento previo para el desarrollo de la práctica de la fundamentación teórica sobre normas de bioseguridad. Forma de trabajo: El estudiante puede observar sólo o en grupo el video desde su computador personal o desde un computador institucional bajo la guía de tutores regionales si tiene esa facilidad. Procedimiento:

Para el desarrollo de esta práctica el estudiante debe observar el video normas de seguridad en el laboratorio y leer el folleto de Bioseguridad y Manejo de residuos, contestar las preguntas presentadas en el formato de observación del video, responder las preguntas de los cuestionarios (preinforme e informe) para la práctica 1: Normas de seguridad en el laboratorio.

Sistema de Evaluació n

La evaluación se llevará a cabo por medio de las siguientes actividades

1. Presentación del pre-informe sobre el laboratorio, el cual incluye las respuestas a las preguntas sobre observación de videos y las respuestas al cuestionario de la práctica. (El preinforme se debe llevar resuelto antes de iniciar la práctica).

2. Evaluación parcial presencial al iniciar la práctica

3.Asistencia , participación acorde con las normas de bioseguiridad y manejo de residuos durante todas las prácticas y presentación del informe de la práctica realizada durante el laboratorio, el cual incluye también el pre-informe

4. Resolución de cuestionario para medir el rendimiento después de las prácticas

Informe o productos a entregar

PRE INFORME: Debe contener los siguientes puntos:

• Titulo de la práctica • Objetivos • Resumen de la información teórica relacionada con la práctica. • Respuesta a las preguntas del formato para observación de videos. • Respuestas al cuestionario del pre-informe.

Preguntas del formato para observación de video Nor mas de Seguridad en el laboratorio :

1. ¿Cuál es el objetivo de esta práctica? 2. ¿Qué materiales necesita? ¿Los conoce todos? ¿Cuáles desconoce? 3. ¿Qué habilidades cree que se pueden desarrollar al realizar ésta práctica de laboratorio?

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4. ¿Qué utilidad o aplicaciones prácticas puede derivar del conocimiento que se desarrolla con este laboratorio? 5. Después de observar el video ¿Cuál es la conclusión a la que llega?

Cuestionario pre-informe 6. ¿Que es bioseguridad? 7. ¿Cuáles serían para usted las normas básicas de bioseguridad en el laboratorio de biología? 8. ¿Cómo puede usted evitar en el laboratorio daños a su salud? 9. ¿Qué desechos se generan en el laboratorio de Biología y como se descartan adecuadamente? INFORME Debe contener los siguientes puntos:

• Preinforme completo • Respuesta a cuestionario del informe • Conclusiones • Referencias bibliográficas

Cuestionario del informe

10. Defina:

a. Riesgo biológico b. Barrera protectora c. Agente infeccioso d. Nivel de bioseguridad 1,2 y 3

11. Qué procedimiento debe seguir si se produce un derrame de material biológico contaminado. Describa paso a paso.

Rúbrica de evaluación

ÍTEM EVALUA DO VALORACIÓN BAJA VALORACIÓN MEDIA VAL ORACIÓN ALTA MÁXIMO PUNTAJE

APRESTAMIENTO El estudiante no participa de la realización del preinforme del laboratorio y de los aportes del aprestamiento – Materiales para llevar y guía impresa (0 puntos)

El estudiante no participa de la elaboración del preinforme o no lleva los materiales necesarios para el desarrollo de la práctica o el grupo no tiene la guía impresa del laboratorio (2 puntos)

El estudiante participa de la realización del preinforme, manifiesta conocimiento sobre el desarrollo del laboratorio y lleva los materiales para la práctica y lleva la guía del laboratorio impresa (3 puntos)

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REALIZACIÓN DEL LABORA

TORIO

El estudiante no tiene en cuenta las normas de bioseguridad o presenta comportamientos no adecuados durante el desarrollo de las prácticas (0 puntos)

El estudiante no tiene en cuenta lo indicado en la guía de trabajo para el desarrollo del laboratorio (4 puntos)

El estudiante demuestra conocimiento e interés en el desarrollo de las prácticas y sigue las instrucciones dadas, para llegar a los resultados de aprendizaje (8 puntos)

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PRESENTACIÓN DE LOS INFOR

MES

El estudiante no presenta informe (0 puntos)

El informe presentado carece de al menos uno de los ítems solicitados o no contiene evidencias suficientes de lo realizado en la sesión de laboratorio (2 puntos)

El informe presentado contiene: Preinforme completo, Respuesta a cuestionario del informe, Conclusiones y Referencias bibliográficas y evidencia lo realizado en la sesión de laboratorio y el aprendizaje alcanzado. (6 puntos)

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Retro alimentación

A cargo del tutor regional

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PRACTICA No. 02 Microscopía (Para desarrollar en el Primer Encuentro)

Tipo de práctica

Presencial x Autodirigida Remota

Porcentaje de evaluación 3,5% Horas de la prá ctica 2,20

Temáticas de la práctica Identificación de componentes y manipulación del microscopio para observación de muestras previamente preparadas.


Propósito : Comprender el funcionamiento del microscopio y el procedimiento para su manipulación correcta.

Objetivos • Señalar los componentes mecánicos y ópticos que constituyen el

microscopio. • Realizar montajes húmedos • Comprobar las propiedades que posee el microscopio. • Realizar correctamente el manejo del microscopio óptico • Calcular el diámetro del campo de visión • Comprobar los principios en que se basa la microscopía óptica. • Desarrollar en trabajo colaborativo el informe de laboratorio

Metas El estudiante debe explicar con fluidez los tipos de microscopio existentes, los componentes del microscopio óptico, sus poderes y los principios generales de la microscopía.

Competencias Son competencias con énfasis procedimental, referidas a:

• Capacidad de identificar y manipular los componentes del microscopio. Realizar montajes húmedos

• Preparar y observar muestras biológicas. • Comprobar las propiedades que posee el microscopio.

Fundamentación Teórica

Video: El microscopio parte 1 Video: EL microscopio parte 2

Leer del módulo: http://www.unad.edu.co/curso_biologia/........

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Descripción de la prá ctica

En esta práctica el estudiante aprenderá a manipular el microscopio óptico y a comprender los principios de microscopía.


MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR

Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente Jabón Tapabocas. Papel y lápiz para tomar apuntes Resueltas las preguntas sobre la observación de videos y las que se soliciten en el Pre-informe Agua estancada Papel milimetrado Hilos de colores Tela de cuadros 2 centímetros Recorte de periódico con la letra asimétrica: Pude ser la letra e o la letra a Láminas portaobjetos, Laminillas

MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORAT ORIO

Lamina con extendido coloreada,

Microscopio,

Aceite de inmersión,

Papel de Arroz o de óptica,

Alcohol isopropílico.

Software a utilizar en la prá ctic a

Simulador de Microscopía para preparación previa. http://canal.unad.edu.co/laboratorio/index/main.html

Observación de los videos sobre microscopía

video: El microscopio parte 1

video: EL microscopio parte 2

Metodología

Procedimiento

Antes de la práctica, cada estudiante debe:

• Haber leído el capítulo correspondiente en el curso de biología, • Observado los videos de preparación previa y resuelto las preguntas sobre la observación de videos • Desarrollado el preinforme

1. Realización de Montaje húmedo

1.1. Tome con un gotero una muestra de1.2. Coloque la gota de agua estancada sobre una lámina porta1.3. Tome una laminilla cubreobjetos, en posición oblicua, (45 grados) y apoyando una arista slado de la gota, déjela caer suavemente. 1.4. Retire el exceso de agua por los bordes usando papel absorbente

2. Manejo del microscopio

2.1. Encienda el microscopio 2.2. Coloque el objetivo de menor aumento 4X 2.3. Baje la platina completamente girando el tornillo macrométrico.2.4. Tome la lámina con la preparación fíjese que esté completamente seca en la parte inferior 2.5. Coloque la lámina con la preparación de agua estancada sobre la platina sujetándola con las pinzas. 2.6. Procure que la preparación quede centrada, girando el tornillo para desplazamiento del carro móvil

Tome una gota de la muestra de agua

estancada


Haber leído el capítulo correspondiente en el curso de biología, Observado los videos de preparación previa y resuelto las preguntas sobre la observación de videos

Uso del microscopio

Organización del proceso paso a paso

1. Realización de Montaje húmedo

una muestra de agua estancada. 1.2. Coloque la gota de agua estancada sobre una lámina porta-objeto 1.3. Tome una laminilla cubreobjetos, en posición oblicua, (45 grados) y apoyando una arista slado de la gota, déjela caer suavemente. 1.4. Retire el exceso de agua por los bordes usando papel absorbente

2.2. Coloque el objetivo de menor aumento 4X completamente girando el tornillo macrométrico.

2.4. Tome la lámina con la preparación fíjese que esté completamente seca en la parte inferior 2.5. Coloque la lámina con la preparación de agua estancada sobre la platina sujetándola con las pinzas.

. Procure que la preparación quede centrada, girando el tornillo para desplazamiento del carro móvil

Colóquela sobre una lámina

portaobjetos, y cúbrala con una

laminilla

Retire el exceso de agua por los

bordes, usando papel absorbente

Observe el montaje realizado al

microscopio en 4x, 10x y 40x

Dibuje o tome fotos de sus

observaciones anotando el

aumento utilizado

la muestra de agua

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Observado los videos de preparación previa y resuelto las preguntas sobre la observación de videos

1.3. Tome una laminilla cubreobjetos, en posición oblicua, (45 grados) y apoyando una arista sobre la lámina al

2.4. Tome la lámina con la preparación fíjese que esté completamente seca en la parte inferior 2.5. Coloque la lámina con la preparación de agua estancada sobre la platina sujetándola con las pinzas.

. Procure que la preparación quede centrada, girando el tornillo para desplazamiento del carro móvil

Retire el exceso de agua por los

bordes, usando papel absorbente.

Observe el montaje realizado al

microscopio en 4x, 10x y 40x

2.7. Gire el tornillo macrométrico en sentido contrario a las agujas del reloj2.8. Debe hacerlo mirando directameobjetivo en la preparación. 2.9. Cierre o abra el diafragma hasta una posición intermedia, accionando su perilla en sentido contrario a las agujas del reloj para que la luz no sea 2.10. Inicie la observación con el objetivo de 4X. 2.11. Mirando a través de los oculares, separe lentamente el objetivo de la preparación con el tornillo macrométrico en sentido de las agujas del reloj hasta lograr 2.12. Cuando se observe algo nítida la muestra, gire el tornillo micrométrico hasta obtener un enfoque fino2.13. Gire el revolver 2.14. Coloque el objetivo de 10X 2.15. Visualice con el objetivo de 10X y detalle las estructuras2.16. Gire el revólver y visualice con el objetivo de 40X enfoque con el tornillo micrométrico y detalle las estructuras 2.17. Detalle como el campo se reduce y el alga y el protozoo se observan mejor. 3. Observación con el objetivo de inmersión 100X

3.1. Se utiliza para la observación de muestras fijadas, no para muestras frescas3.2. Coloque el objetivo de inmersión de manera que el orificio de la platina quede entre el objetivo de 100X y el de 40X 3.3. Suba totalmente el condensador para ver claramente evisualizar y donde habrá que aplicar el aceite3.4. Coloque una gota de aceite de inmersión sobre la preparación en el círculo de luz3.5. Coloque una lámina coloreada sobre la platina3.6. Ubique el objetivo el objetivo de 100x 3.7. Suba la platina lentamente hasta que la lente toque la gota de aceite3.8. Observe la imagen con aumento de 100X3.9. En esta preparación se muestran los glóbulos blancos, glóbulos rojos y plaquetas colorede Wright 3.10. Limpie el objetivo de inmersión con un papel especial para óptica y alcohol isopropílico3.11. Deje el objetivo de menor aumento en posición de trabajo

4. Comprobación de los poderes o capacidades del m icroscopio ópti

4.1 Realice un montaje húmedo con la letra asimétrica y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos anteriores. 4.2 Calcule el aumento del tamaño del objeto observado para cada objetivo del microscopio con el cual le correspondió trabajar.

4.3 Realice un montaje húmedo con una hebra de hilo y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos anteriores.

5. Cálculo del diámetro del campo de visión

5. Realice un montaje húmedo con un centímetro cuadrado de papel milimetrado y obsérvelo al microscopio 5.1 Calcule el diámetro del campo de visión para un aumento de 4x en un cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado.

2.7. Gire el tornillo macrométrico en sentido contrario a las agujas del reloj para subir la platina hasta el tope. 2.8. Debe hacerlo mirando directamente y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de incrustar el

2.9. Cierre o abra el diafragma hasta una posición intermedia, accionando su perilla en sentido contrario a las agujas del reloj para que la luz no sea ni muy brillante ni demasiado tenue. 2.10. Inicie la observación con el objetivo de 4X. 2.11. Mirando a través de los oculares, separe lentamente el objetivo de la preparación con el tornillo

las agujas del reloj hasta lograr observar la imagen 2.12. Cuando se observe algo nítida la muestra, gire el tornillo micrométrico hasta obtener un enfoque fino

2.15. Visualice con el objetivo de 10X y detalle las estructuras Gire el revólver y visualice con el objetivo de 40X enfoque con el tornillo micrométrico y detalle las

2.17. Detalle como el campo se reduce y el alga y el protozoo se observan mejor.

3. Observación con el objetivo de inmersión 100X

utiliza para la observación de muestras fijadas, no para muestras frescas 3.2. Coloque el objetivo de inmersión de manera que el orificio de la platina quede entre el objetivo de 100X y

3.3. Suba totalmente el condensador para ver claramente el círculo de luz que nos indica la zona que se va a visualizar y donde habrá que aplicar el aceite 3.4. Coloque una gota de aceite de inmersión sobre la preparación en el círculo de luz3.5. Coloque una lámina coloreada sobre la platina 3.6. Ubique el objetivo el objetivo de 100x 3.7. Suba la platina lentamente hasta que la lente toque la gota de aceite 3.8. Observe la imagen con aumento de 100X 3.9. En esta preparación se muestran los glóbulos blancos, glóbulos rojos y plaquetas colore

3.10. Limpie el objetivo de inmersión con un papel especial para óptica y alcohol isopropílico3.11. Deje el objetivo de menor aumento en posición de trabajo

4. Comprobación de los poderes o capacidades del m icroscopio ópti co

4.1 Realice un montaje húmedo con la letra asimétrica y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos

4.2 Calcule el aumento del tamaño del objeto observado para cada objetivo del microscopio con el cual le

ce un montaje húmedo con una hebra de hilo y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos

5. Cálculo del diámetro del campo de visión

5. Realice un montaje húmedo con un centímetro cuadrado de papel milimetrado y obsérvelo al microscopio Calcule el diámetro del campo de visión para un aumento de 4x en un cuadrado de 1 cm de lado de papel

15

para subir la platina hasta el tope. nte y no a través del ocular, ya que se corre el riesgo de incrustar el

2.9. Cierre o abra el diafragma hasta una posición intermedia, accionando su perilla en sentido contrario a las

2.11. Mirando a través de los oculares, separe lentamente el objetivo de la preparación con el tornillo

2.12. Cuando se observe algo nítida la muestra, gire el tornillo micrométrico hasta obtener un enfoque fino

Gire el revólver y visualice con el objetivo de 40X enfoque con el tornillo micrométrico y detalle las

3.2. Coloque el objetivo de inmersión de manera que el orificio de la platina quede entre el objetivo de 100X y

l círculo de luz que nos indica la zona que se va a

3.4. Coloque una gota de aceite de inmersión sobre la preparación en el círculo de luz

3.9. En esta preparación se muestran los glóbulos blancos, glóbulos rojos y plaquetas coloreados con colorante

3.10. Limpie el objetivo de inmersión con un papel especial para óptica y alcohol isopropílico

4.1 Realice un montaje húmedo con la letra asimétrica y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos

4.2 Calcule el aumento del tamaño del objeto observado para cada objetivo del microscopio con el cual le

ce un montaje húmedo con una hebra de hilo y obsérvela al microscopio siguiendo los pasos

5. Realice un montaje húmedo con un centímetro cuadrado de papel milimetrado y obsérvelo al microscopio Calcule el diámetro del campo de visión para un aumento de 4x en un cuadrado de 1 cm de lado de papel

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Sistema de Evaluación


1. Presentación del pre-informe sobre la práctica, el cual incluye las respuestas a las preguntas sobre observación de videos y las respuestas a los cuestionarios de la práctica.

2. Evaluaciones parciales presenciales al iniciar la práctica

3. Presentación de informe de la práctica realizada durante el laboratorio, el cual incluye también el pre-informe.




Cuestionario Pre-informe

• Observar los videos microscopía parte 1 y parte 2 y contestar las preguntas presentadas en el formato de observación del video.

• Desarrollar la siguiente consulta bibliográfica:

1. Mencione y explique brevemente los tipos de microscopios que existen. 2. Defina los siguientes poderes o capacidades del microscopio

a) Poder de Aumento b) Poder de definición c) Poder de Resolución d) Poder de Penetración de Foco o Campo

3. Mencione las partes del microscopio y explique la función que cumplen. 4. Defina los tipos de montaje que pueden hacer en el laboratorio. 5. Describa los pasos para la elaboración de un montaje húmedo. 6. Realice en forma de diagrama de flujo los procedimientos a realizar durante la práctica

INFORME

Debe contener los siguientes puntos:

• Pre-informe completo • Respuesta a cuestionario del informe final • Conclusiones • Referencias bibliográficas

En el informe debe incluirse el siguiente cuadro y las respuestas a las preguntas del informe final.

OBJETO OBSERVADO

Agua estancada

OBJETO OBSERVADO

Hebra de hilo

OBJETO OBSERVADO

Lamina coloreada de Gota de sangre

Preguntas para el informe final 7. ¿Qué organismos pueden observarse en la gota de agua estancada?8. ¿Son todos de igual tamaño y forma?9. ¿Se observan organismos móviles o estáticos?10. ¿Cómo se manifiesta el poder de aumento al observar la letra?11. Para las muestras de la letra, la hebra de hilo observada

a. ¿Cómo se manifiesta el poder de resolución?b. ¿Cómo se manifiesta el poder de aumento?c. ¿Cómo se manifiesta el poder de definición?d. ¿Cómo se manifiesta el poder de penetración o profundidad?

12. ¿Cuál es la utilidad del microscopio?13. ¿En qué montaje se observó mejor el poder de penetración?14. Calcule el diámetro del campo de visión para aumentos de 10X, 40X del mismo cuadrado de 1 cm de lado de papel milimetrado.

AUMENTO FOTOGRAFIA O

DIBUJO ANÁLISIS Y CONCLUSIONES

4X

10X

40X



4X

10X

40X



100X

observarse en la gota de agua estancada? ¿Son todos de igual tamaño y forma? ¿Se observan organismos móviles o estáticos?

¿Cómo se manifiesta el poder de aumento al observar la letra? Para las muestras de la letra, la hebra de hilo observadas determine:

¿Cómo se manifiesta el poder de resolución? ¿Cómo se manifiesta el poder de aumento? ¿Cómo se manifiesta el poder de definición? ¿Cómo se manifiesta el poder de penetración o profundidad?

es la utilidad del microscopio? montaje se observó mejor el poder de penetración?

Calcule el diámetro del campo de visión para aumentos de 10X, 40X del mismo cuadrado de 1 cm de lado

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ANÁLISIS Y CONCLUSIONES



Calcule el diámetro del campo de visión para aumentos de 10X, 40X del mismo cuadrado de 1 cm de lado

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15. Compare la anchura del campo visual con cada uno de los tres objetivos 16. ¿Con cuál objetivo el campo de visión es mayor con el de mayor o menor aumento? 17. ¿Al observar la letra asimétrica: ¿Se ve invertida, o en la misma posición en que estaría si se viera a simple vista? ¿Parece como si se viera por un espejo? 18. Al mover la preparación hacia la derecha. ¿Hacia dónde se mueve la imagen? 19. ¿Al alejara el portaobjeto o la muestra de usted hacia donde se nueve la imagen? 20. ¿Si la distancia focal es mayor el tamaño del objeto es mayor o menor? 21. Observe cuál es el valor de los oculares_________________ 22. Observe cual es el valor de cada uno de los objetivos_____,______,________,______ 23. Calcule el aumento logrado para cada objeto observado en su práctica de Laboratorio. Rúbrica de evaluación

ÍTEM EVALUA DO VALORACIÓN BAJA VALORACIÓN MEDIA VAL ORACIÓN ALTA MÁXIMO PUNTAJE




3

REALIZA CIÓN DEL LABORA

TORIO




8

PRESEN TACIÓN DE LOS INFOR

MES




6

17

19

Retroalimentación

El tutor le entregará oportunamente tanto la calificación como la retroalimentación sobre logros y errores del informe.

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PRACTICA No. 03 – LA CÉLULA (Para desarrollar en el Primer Encuentro)

Tipo de practica

Presencial X Autodirigida Remota Otra ¿Cuál

Porcentaje de evaluación 3,5% Horas de la practica 2, 20

Temáticas de la práctica

Célula vegetal y animal.


Propósitos

Al terminar el laboratorio sobre la célula, el estudiante estará capacitado para:

• Elaborar montajes de células • Diferenciar células vegetales de células animales a través

del microscopio • Identificar orgánulos celulares con base en la capacidad de

ampliación del microscopio. • Describir las diferentes formas y tamaños de las células • Determinar la relación que existe entre estructura y función • Observar la ciclosis o movimiento del citoplasma •

Objetivos

• Describir las diferentes formas y tamaños de las células • Identificar las diferentes estructuras y organelos que posee

una célula, con base en la capacidad de ampliación del microscopio óptico.

• Describir las diferentes formas y tamaños de una célula • Señalar las diferencias fundamentales entre una célula

animal y una vegetal • Reconocer que una célula puede constituir un organismo. • Describir la ciclosis o movimiento del citoplasma

Metas

Dominio del procedimiento para observación celular al microscopio e identificación precisa de organelos celulares. Competencias

• Capacidad de manejo procedimental del microscopio para la observación celular

• Capacidad de identificar, dibujar y explicar el rol de los organelos celulares observados al microscopio

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Observar los siguientes videos: Video: Célula parte 1 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_celula-1.htm Vídeo: Célula parte 2 http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_celula_2.htm Leer del módulo: http://www.unad.edu.co/curso_biologia/tcelular.htm http://www.unad.edu.co/curso_biologia/esfunorganeuc.htm http://www.unad.edu.co/curso_biologia/tejorgsist.htm#ancla2 Descri pción de la prá ctica

En ésta práctica el estudiante aprenderá las similitudes y diferencias entre las células animales y vegetales.

Recursos a utilizar en la práctica (Equipos / instr umentos)

MATERIALES QUE DEBEN LLEVAR:

Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente, Jabón, Láminas y laminillas Tapabocas. Papel y lápiz para tomar apuntes

Bulbo de cebolla Allium cepa, Papa, Tomate, Hojas de Elodea, Laminas portaobjetos y Laminillas, Cuchilla o bisturí, Pinza, Tijeras pequeñas, hisopos

MATERIALES QUE LE SERÁN SUMINISTRADOS EN EL LABORAT ORIO:

1 Caja de petri, Aguja o asa recta, Algodón, Alcohol, Lancetas, Lugol, Solución salina, Acetocarmín, Azul de metileno, Fucsina, Colorante de Wright. Microscopio

Software a utilizar en la práctica u otro tipo de r equerimiento para el desarrollo de la práctica.

Observación de los videos sobre Célula parte 1 y 2.

Metodología


• Haber leído el capítulo correspondiente en el curso de biología, • Observado los videos de preparación previa y resuelto las preguntas sobre la observación de videos • Desarrollado el pre-informe y la consulta bibliográfica:

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PROCEDIMIENTO

Observación de tejido epidermal de cebolla

1. Separar con el bisturí una de las capas internas de la cebolla y desprender la tenue membrana que está adherida por su cara interior cóncava.

2. Deposite el fragmento de membrana en un portaobjetos con unas gotas de agua. 3. Si es necesario, estire el trozo de epidermis. 4. Realice otro montaje pero coloque el tejido en unas gotas de lugol 5. Colocar sobre la preparación un cubreobjetos evitando que se formen burbujas y llevarla al

microscopio. 6. Observa la preparación a 4x, 10X y 40X. 7. Escriba sus observaciones.

Observación de tejido parenquimatoso en un corte tr ansversal de papa

Elabore un montaje para observación del tejido parenquimatoso en un corte transversal de papa: 1. Tome el bisturí y realice un corte transversal de la papa , obtenga una porción pequeña y delgada casi transparente, 2. Colóquelo en un portaobjetos limpio con unas gotas de agua 3. Colocar sobre la preparación un cubreobjetos evitando que se formen burbujas y llevarla al microscopio. 4. Observe esta preparación en el microscopio con el objetivo de 4 X, 10X y 40X. 5. Localice las células algo hexagonales y en su interior los amiloplastos. 6. Realice un montaje de la forma descrita anteriormente pero coloque lugol en el portaobjetos 7. Examine ahora y compare lo observado antes y después de haber teñido con lugol. 8. Escriba sus observaciones.

Observación de tejido epidermal y parénquima clorof ílico en hoja de Elodea

Para observación de tejido epidermal y parénquima clorofílico utilice una hoja de Elodea , planta acuática común en lagos y acuarios 1. Con la ayuda de las pinzas tome de una ramita de Elodea una de sus hojas jóvenes y colóquela sobre un portaobjetos. 2. Adicione una gota de agua encima y cubrir con un cubreobjetos (dejándolo caer de forma inclinada para evitar la formación de burbujas). 3. Observe la preparación con los objetivos de 4X, 10X y 40X. 4. Identifique la pared celular y los cloroplastos ovalados o esféricos de color verde por la presencia de la clorofila. 5. Al cabo de 10 minutos de exposición a la luz del microscopio observar la ciclosis, movimiento circular del citoplasma y sus componentes. 6. Escriba sus observaciones

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Observación de cromoplastos en pulpa de t omate

Para continuar realice un montaje con pulpa de tomate e identifique los cromoplastos:

1. Con el bisturí corte una porción de la pulpa el tomate. 2. Con ayuda de unas pinzas tome el corte de pulpa de tomate de unos 2mm de grosor. 3. Deposite el corte en el centro de un portaobjetos sin poner agua. 4. Coloque encima un cubreobjetos y comprime suavemente con los dedos hasta obtener un completo aplastamiento del fragmento de pulpa de tomate. 5. Lleva la preparación a la platina del microscopio y realiza una observación con los objetivos de 4X, 10X y 40X. 6. Identifique los cromoplastos. 7. Escriba sus observaciones.

Observación de células escamosas epiteliales

1. Con un palillo de dientes frote con suavidad la cara interna de la mejilla. 2. Deposite la sustancia extraída en el centro de un portaobjetos. Adicione una gota de solución salina y una gota de azul de metileno, mezcle cuidadosamente. 3. Coloque el cubreobjetos procurando que no queden burbujas de aire. 4. Observe la preparación al microscopio moviéndola para visualizarla correctamente utilizando los aumentos de 4X, 10X y 40X. 5. Escriba sus observaciones.

Observación de células sanguíneas

A continuación realice un extendido para observación de células sanguíneas:

1. Desinfecte con un algodón humedecido en alcohol la punta del dedo anular o índice, deje secar el alcohol; y con la lanceta realice una punción en la yema del dedo.

2. Coloque una pequeña gota en una lámina portaobjetos. 3. Coloque otra lámina en ángulo de 45 grados sobre la primera, acérquela a la sangre luego deslice

suavemente en forma continua hasta formar una capa o frotis delgado. 4. Deje secar la preparación en posición horizontal al medio ambiente. 5. Una vez seca la lamina aplique sobre el frotis el colorante de Wright y déjelo actuar durante tres

minutos. 6. Luego adicione sobre la lámina sin retirar el colorante tres gotas de Buffer Giordano durante tres

minutos. Con este procedimiento el colorante fijará la preparación. 7. Luego lave la lámina con agua y deje secar la lámina verticalmente. 8. Observe al microscopio con el objetivo de pequeño y mediano aumento e identifique los glóbulos rojos, leucocitos y plaquetas. 9. Posteriormente observe la preparación con el objetivo de 100X y describa la forma de los glóbulos rojos o eritrocitos; de los glóbulos blancos o leucocitos y sus clases: neutrófilos, eosinófilos, basófilos, monocitos y linfocitos; y de las plaquetas. 10. Escriba sus observaciones. Sistema de Evaluación


24

1. Presentación del pre-informe sobre el laboratorio, el cual incluye las respuestas a las preguntas sobre observación de videos y las respuestas al cuestionario de la práctica. (El pre-informe se debe llevar resuelto antes de iniciar la práctica).


3.Asistencia , participación y presentación del informe de la práctica realizada durante el laboratorio, el cual incluye también el pre-informe

4. Resolución de cuestionario para medir el rendimiento después de las prácticas





1. Establezca claramente y de forma grafica las diferencias entre célula procariota y eucariota, entre una célula animal y vegetal. 2. Defina el concepto de tejido, y explique la función del tejido epidérmico, parenquimático, epitelial, sanguíneo. INFORME Debe contener los siguientes puntos:

• Preinforme completo • Formato de observaciones y datos importantes y Respuesta a cuestionario del informe • Conclusiones • Referencias bibliográficas

Formato de observaciones y datos importantes.

Epidermis de Cebolla.

Dibuje o coloque las fotografías correspondientes a las observaciones con cada uno de los aumentos y describa cómo son las células

25

Reconozca las partes de las células del tejido epidermal de cebolla y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes preguntas:

a. ¿Qué forma tiene las células de este tejido? b. ¿Qué estructuras se observan en el montaje húmedo (agua) en 40X? c. ¿Qué conclusiones puede sacar de la utilización de diferentes aumentos? d. ¿Al hacer el montaje con tinción (lugol), que sucede, qué organelos se colorean? e. ¿Qué ventajas tiene el utilizar colorante? ¿Qué desventaja? f. ¿Qué función cumple el tejido epidermal?

Parénquima de papa.


10X sin colorante

10 X con Lugol

40 X sin colorante 40 x con Lugol

10X sin colorante 10 X con Lugol

40 X sin colorante 40 x con Lugol

26

Reconozca las partes del tejido parenquimatico de la papa y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes preguntas

a. ¿Qué estructuras se observan en el montaje húmedo (agua) con el objetivo de 10x ? b. ¿Al aplicar el colorante lugol qué sucede? c. ¿Qué organelos se tiñen? ¿De qué color? ¿Por qué? d. ¿Qué forma tienen las células de este tejido? e. ¿Qué función cumplen?

Epidermis y parénquima de Elodea.


Reconozca las partes de las células que forman el tejido epidermal de la elodea. y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes preguntas

a. ¿Qué forma tienen las células? b. ¿Qué partes de la célula se observan con el objetivo de 10X? c. ¿Qué estructuras celulares se observan a mayor aumento 40X? d. ¿Qué función cumplen los cloroplastos? e. ¿Qué es ciclosis? ¿Por qué se realiza?

Cromoplastos en pulpa de tomate.


Células escamosas epiteliales.

Dibuje o coloque las fotografías correspondientes a las observaciones con cada uno de los

10X

40 X

10X

40 X

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aumentos y describa cómo son las células

Reconozca las partes que tienen las células que forman el tejido escamoso epitelial humano y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes preguntas

a. ¿Qué forma tienen las células que forman el tejido escamoso epitelial humano? b. ¿Qué organelos se observan a mayor aumento 40X en el montaje húmedo (solución

salina)? c. ¿Al aplicar el colorante qué organelos se ven mejor? d. ¿Cuál es la función del tejido epitelial?

Células sanguíneas


1. Reconozca las partes de las células que forman el tejido sanguíneo y señálelas mediante flechas con nombres, conteste las siguientes preguntas

a. Identifique las células sanguíneas teniendo en cuenta la forma, ausencia o presencia de

gránulos en el citoplasma, coloración que toman los gránulos y forma del núcleo: b. ¿Qué tipos diferentes de células aparecen? Esquematice dichas formas

10X

40 X

100X

GLÓBULOS ROJOS O ERITROCITOS

GLÓBULOS BLANCOS O LEUCOCITOS PLAQUETAS

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c. ¿En cuáles de estas formas celulares no encuentra núcleo? d. ¿Cuáles observa en mayor cantidad? e. ¿Qué función cumplen estas células?

Conclusiones:

Deben estar relacionadas con la diferencia entre las células epidérmicas vegetales y parenquimatosas vegetales; diferencias entre las células animales y vegetales, (forma tamaño, distribución, entre otros).


ÍTEM EVALUA DO VALORACIÓN BAJA VALORACIÓN

MEDIA VALORACIÓN ALTA

MÁXIMO PUNTAJE




3


TORIO




8


MES




6

17

Retroalimentación


29

PRACTICA No. 04 – DIVERSIDAD MICROBIANA

(Para realizar en el segundo encuentro)

Tipo de practica


Porcentaje de evaluación 3,5 % Horas de la practica 2, 20

Temáticas de la práctica Observación de bacterias, hongos y algas y protozoos.


Propósito

Aprender a identificar microorganismos de las diversas clases taxonómicas.

Objetivo

• Reconocer en placas de cultivo diferentes tipos de microorganismos, en especial Colonias de bacterias y hongos.

• Conocer y aplicar la técnica de tinción de Gram • Identificar bacterias Gram positivas y Gram negativas • Observar microscópicamente mohos y levaduras. • Observar microorganismos de fermentación ácido láctica y

fermentación alcohólica a partir del kumis o yogurt. • Observar protozoarios y algas en muestras de agua

Meta

Identificación correcta de los microorganismos observados al seguir las instruciones de la guía de laboratorio.

Competencias

• Elaborar montajes de microorganismos para observarlas al microscopio

• Reconocer en diferentes habitats y sustratos la diversidad biológia de microorganismos

• Realizar frotis fijo con tinción de Gram


Observar los videos:

Biodiversidad microbiana http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad1.htm

30

parte 1

Biodiversidad Microbiana parte 2

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/biodiversidad_2.htm

Leer el capítulo sobre microorganismos, en el curso virtual de biología de UNAD

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/intromicrorg.htm

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/bacterias.htm

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/protozoos.htm

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/algas.htm

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/hongos.htm

Descripción de la practica

A través de esta práctica el estudiante podrá realizar una descripción macroscópica de las colonias bacterianas y de hongos, de microorganismos como protozoos y micro algas, además de adquirir destrezas en técnicas de tinción.



Yogur casero o probiótico, Agua estancada, Tajada de pan y/o fruta con moho (dejarlo 2 en un sitio húmedo y oscuro mínimo 2 semanas antes de la práctica ). Levadura de Panadería. Láminas portaobjetos y laminillas cubreobjetos. Hisopos. Asas microbiológicas: recta y de argolla. Fósforos. Guantes de nitrilo, tapabocas N95 y gorro. Cinta adhesiva transparente. Lápices de colores.

MATERIALES QUE SERÁN SUMINITRADOS EN EL LABORATORO

Cultivos de diversos hongos y bacterias en cajas de petri. Solución salina, Agua destilada, Coloración de Gram (cristal violeta, lugol, alcohol acetona y fucsina) Lactofenol, Azul de Metileno, Alcohol, Aceite de inmersión, Mechero, Asa recta y de argolla. Microscopio.


Computador para la observación de los videos

Metodología

Procedimiento

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OBSERVACIÓN DE BACTERIAS

Procedimiento:

1. Observación macroscópica de colonias

Realice una descripción macroscópica de las colonias bacterianas que le son entregadas en las cajas de petri. Haga un cuadro donde describa la forma (puntiforme, circular, rizoide, irregular y filamentosa), el borde (entero, ondulado o filamentoso), la elevación (plana, elevada, convexa, crateriforme y acuminada) y la superficie (lisa o rugosa, mate o brillante, seca o cremosa, invasiva o superficial)

Colonia Forma Borde Elevación Superficie

2. Elaboración del frotis bacteriológico

A partir de una de las colonias de los cultivos dados realice un frotis de la siguiente manera:

1. Tome una lamina portaobjetos limpia y en ella coloque una gota pequeña de solución salina. 2. Con un asa previamente esterilizada a la llama del mechero, obtenga una muestra de una de las colonias observadas. Mezcle la muestra en la gota de solución salina que coloco en el portaobjetos. 3. Déjela secar al temperatura ambiente y fíjela pasándola por la llama del mechero. Posteriormente proceda a colorear con la tinción de gram de la siguiente manera:

COLORACION DE GRAM desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Cubra la preparación con cristal violeta durante 1 minuto. Lave con agua corriente. 2. Cubra la preparación con lugol y déjelo actuar por 1 minuto. Lave con agua corriente. 3. Agregue alcohol acetona y déjelo actuar por 15 segundos. Lave con agua corriente. 4. Adicione fucsina y déjela actuar por 30 segundos. Lave con agua corriente y ponga a secar la lámina. 5. Ubique la lámina en el microscopio, localice las bacterias con el objetivo de menor aumento y observe en con el objetivo de 100 X, no olvide colocar una pequeña gota de aceite de inmersión. 6. Según sus observaciones clasifique las bacterias observadas según su forma, agrupación y tinción. 7. Escriba sus observaciones.

32

BACTERIAS DE LA CAVIDAD BUCAL desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Prepare una lámina portaobjetos limpia y sin grasa. 2. Tome un escobillón desechable, páselo por el borde de la encía en la parte que hace contacto con los dientes. 3. La muestra extraída con el escobillón colóquela sobre una lámina portaobjetos. 4. Deje secar por sí sola la lámina durante unos minutos con el fin de definir el frotis. 5. Pase lentamente el portaobjetos a través de la llama del mechero, con esto se fija el frotis. 6. Deje enfriar y coloree con la tinción de Gram como se indicó anteriormente. 7. Deje secar la lámina y ubique las células con el objetivo de menor aumento y luego observe con el objetivo de inmersión. 8. Tenga en cuenta que las bacterias Gram positivas toman coloración violeta y las Gram negativas coloración roja. 9. Escriba todas sus observaciones.

BACTERIAS DEL YOGUR desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Tome una lámina portaobjetos y en ella coloque una gota de agua destilada. 2. Con un asa de argolla, obtenga una gota de yogur y mézclela con la gota de agua colocada en el portaobjetos. 3. Deje secar completamente la lámina. Pásela 3 veces por la llama del mechero. Tenga cuidado de no sobre calentar la muestra. 4. Cubra la preparación con alcohol o metanol por unos segundos para eliminar la parte grasa. 5. Escurra el alcohol y deje secar al aire. Luego cubra el extendido con azul de metileno durante 2 minutos. Lave el exceso de colorante y deje secar. 6. Enfoque el microscopio con el objetivo de mayor aumento e identifique los estreptococos y los lactobacilos. Anote sus observaciones.

OBSEVACIÓN DE HONGOS

Observación de mohos: Desarrolle el siguiente procedimiento en casa 8 días antes del laboratorio

1. Prepare una solución de agua azucarada y agregue 20 gotas de esta a una tajada de pan, déjela por espacio de media hora al aire libre. 2. Almacénela en una bolsa plástica y ciérrela. Guárdela en un lugar oscuro a 30°C y obsérvela di ariamente. 3. Cuando el pan esté enmohecido, coloque en un portaobjetos una pequeña gota de solución de Azul de lactofenol. 4. Luego con un trozo de cinta adhesiva transparente de aproximadamente 2 cm toque la superficie del pan enmohecido. 5. Pegue la cinta adhesiva sobre la gota del portaobjetos. Elimine el colorante sobrante con un papel de filtro. 6. Observe al microscopio con objetivo de 10X y 40X e identifique el micelio y las hifas. El procedimiento anterior también puede hacerlo con frutas u hortalizas dañadas que presenten en su superficie mohos. Escriba sus observaciones.

Observación de levaduras: desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Tome un poco de levadura de panadería y colóquela en un tubo de ensayo que contenga agua con azúcar. 2. Incube a 37°C durante 15 minutos est3. Con un gotero tome una gota del cultivo anterior 4. Adicione dos gotas de Azul de Lactofenol5. Coloque una laminilla y elimine el exceso de colorante con papel 6. Observe al microscopio en los aumentos de 10X y 40X7. Observe que algunas presentan gemaciones.

OBSERVACIÓN DE

Desarrolle el siguiente diagrama de flujo

1. Tome una muestra de agua estancada con un cuentagotas y deposítela en el centro de un portaobjetos. Coloque un cubreobjetos. 2. Observe la preparación al microscopio. Mueva lentamente la preparación, e identifique protozoos. 3. Escriba sus observaciones



Prepare una solución de agua

azucarada y agregue 20 gotas

de esta a una tajada de pan,

déjela por espacio de media

hora al aire libre.

desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Tome un poco de levadura de panadería y colóquela en un tubo de ensayo que contenga agua con azúcar. 2. Incube a 37°C durante 15 minutos est o producirá el desarrollo de las levaduras.

tome una gota del cultivo anterior y colóquela en el portaobjetos. dos gotas de Azul de Lactofenol

5. Coloque una laminilla y elimine el exceso de colorante con papel absorbente. 6. Observe al microscopio en los aumentos de 10X y 40X identifique las levaduras por su forma ovalada.

Observe que algunas presentan gemaciones. Escriba sus observaciones

OBSERVACIÓN DE ALGAS Y PROTOZOOS

esarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Tome una muestra de agua estancada con un cuentagotas y deposítela en el centro de un portaobjetos.

2. Observe la preparación al microscopio. Mueva lentamente la preparación, e identifique


Almacene en una bolsa

plástica cerrada. Guárdela

en un lugar oscuro a 25

obsérvela diariamente.

Selle herméticamente y

transporte al laboratorio el

día de la práctica.

Prepare una solución de agua

azucarada y agregue 20 gotas

de esta a una tajada de pan,

déjela por espacio de media

hora al aire libre.

33

desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Tome un poco de levadura de panadería y colóquela en un tubo de ensayo que contenga agua con azúcar.

identifique las levaduras por su forma ovalada.

1. Tome una muestra de agua estancada con un cuentagotas y deposítela en el centro de un portaobjetos.

2. Observe la preparación al microscopio. Mueva lentamente la preparación, e identifique las algas y los

Almacene en una bolsa

plástica cerrada. Guárdela

en un lugar oscuro a 25°C y

obsérvela diariamente.

Selle herméticamente y

transporte al laboratorio el

día de la práctica.

34





4. Resolución de cuestionario para medir el rendimiento después de las prácticas Informe o productos a entregar




1. Defina los principales linajes los organismos. 2. Complete el siguiente cuadro conceptual.

Organismo

Tipo de Célula

Principales Características Morfológicas y

Fisiológicas

Hábitat

Impacto Ecológico

Bacteria

Protozoario

Hongos

Algas

3. Investigue el fundamento de la Coloración de Gram INFORME Debe contener los siguientes puntos:

• Preinforme completo

35

• Respuesta a cuestionario del informe • Conclusiones • Referencias bibliográficas

En el informe debe incluirse el siguiente cuadro que debe registrar todas las observaciones realizadas.

FORMATO #1

Bacterias Tinción Enfoque 100X Morfología Gram (+) Gram (-) Observaciones

OBSERVACIÓN MACROSCÓPICA DE COLONIAS

1. Dibuje o coloque la fotografía en su formato de 2 o 3 de las colonias observadas, señalando en el dibujo a qué tipo de organismo pertenece e identifique lo siguiente.

a. ¿Qué forma tienen las colonias celulares observadas? b. ¿Cuál es su color? c. ¿Qué forma tienen las colonias observadas (puntiforme, circular, rizoide, irregular y filamentosa) d. ¿Cómo es el borde de la colonia (entero, ondulado o filamentoso) e. ¿ Cómo es la elevación (plana, elevada, convexa, crateriforme y acuminada) f. ¿Cómo es la superficie (lisa o rugosa, mate o brillante, seca o cremosa, invasiva o superficial)

OBSERVACIÓN DE BACTERIAS DEL YOGURT (COLORACIÓN DE GRAM)

2. Dibuje coloque la fotografía en su formato 2 o 3 de las células observadas, señalando en el dibujo a qué

tipo de organismo pertenece e identifique lo siguiente.

a. ¿Qué tipo de microorganismos se observan? b. ¿Cómo se denominan las bacterias según su forma? c. ¿Cómo se clasifican las bacterias según la manera de agruparse? d. ¿Qué color toman las bacterias de acuerdo a la coloración de gram?

FORMATO #2

Mohos Tinción Enfoque 40X Estructuras nombre Reproducción Observaciones

36

FORMATO #3

Levaduras tinción Enfoque 40X Reproducción Observaciones

OBSERVACIÓN DE MOHOS Y LEVADURAS

3. Dibuje en su formato 2 o 3 de las células observadas, señalando en el dibujo a qué tipo de organismo

pertenece e identifique lo siguiente.

a. ¿Qué tipo de microorganismos se observan? b. ¿Cómo se denominan los tejidos de los hongos? c. Establezca diferencias puntuales entre hongos y levaduras d. Establezca diferencias puntuales entre bacterias y hongos


ÍTEM EVALUA DO VALORACIÓN

BAJA VALORACIÓN MEDIA VALORACIÓN ALTA

MÁXIMO PUNTAJE




3


TORIO




8


MES




6

17

37

Retroalimentación

El tutor le entregará oportunamente tanto la calificación como la retroalimentación sobre logros y errores del informe.

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PRACTICA No. 05 – MITOSIS Y MEIOSIS (Para desarrollar en el segundo encuentro)

Tipo de practica



Temáticas de la práctica Ciclo celular, Mitosis y Meiosis


Propósito

Aprender a diferenciar los periodos del ciclo celular

Objetivos

• Manejar correctamente los materiales y reactivos específicos de la práctica.

• Identificar cada uno de los periodos que comprende el ciclo celular

• Relacionar cada cambio presente en las células meristemáticas, con las diferentes fases de la mitosis.

• Reconocer los procesos de la meiosis con base en el material suministrado.

Meta

Poder explicar el ciclo celular con ilustraciones de observaciones reales al microscopio

Competencia

Dominio de la observación celular en sus diferentes ciclos de mitosis y meiosis.


División celular contenido del módulo: http://www.unad.edu.co/curso_biologia/divcelular.htm Videos http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis1.htm http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_mitosis2.htm

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El estudiante observará las fases la división celular en montajes al microscopio.


LABORATORIOS QUE POSEEN MICROPREPARADOS

Materiales que deben llevar:

Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente, Jabón, Láminas portaobjetos y laminillas cubreobjetos. Papel y lápiz para tomar apuntes

Materiales que le serán suministrados en el laborat orio:

Micropreparados raíces de cebolla y de Corte transversal de Testículo de ratón. Aceite de inmersión. Microscopio

LABORATORIOS QUE NO POSEEN MICROPREPARADOS

Materiales que deben llevar:

Bulbo de cebolla Allium cepa, Bata Blanca, Guantes. Papel absorbente, Jabón, Láminas portaobjetos y laminillas cubreobjetos. Bisturí, Papel y lápiz para tomar apuntes.

Materiales que le serán suministrados en el laborat orio:

Microscopio , aceite de inmersión, Acetocarmín

Metanol, Bisturí, micropreparados que ilustran los procesos de mitosis y meiosis


Computador para la observación de los Videos de Mitosis y Meiosis parte 1 y 2.

Metodología

LABORATORIOS QUE POSEEN MICROPREPARADOS

Desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio;

1. Coloque el micropreparado al microscopio e inicie la observación con el objetivo de 10x e identifique las células,

2. Cambie al objetivo de 40X para detallar las células. Observe los núcleos y cromosomas en color azulado.

3. Ubique el objetivo de 100 x y escriba sus observaciones diferenciando cada uno de los aumentos

40

mencionados.

4. Detenidamente y distinga células en interfase, en división celular, las diferentes etapas de la mitosis y meiosis, no olvide hacer dibujos de lo observado.

LABORATORIOS QUE NO POSEEN MICROPREPARADOS

Para el desarrollo de esta práctica utilice bulbos de cebolla, Allium cepa y realice preparaciones con la raíz de material fijado y teñido, una vez obtenidos los extendidos de células obsérvelos al microscopio óptico.

1. Con ayuda de una pinza retire la capa externa marronacea o rosácea y lave con abundante agua, esto se realiza para eliminar restos de sustancias con las que frecuentemente han sido tratadas para inhibir o retardar la germinación de las raicillas. 2. Llene un vaso de precipitados con agua y coloque un bulbo de cebolla sujeto con dos o tres palillos de manera que la parte inferior quede inmersa en el agua. 3. Póngalo a germinar a 25°C o a temperatura ambien te durante 3 días, al cabo de estos aparecerán numerosas raicillas en crecimiento de unos 3 o 4 cm. de longitud. 4. Revise diariamente y procure que la corona no se deseque para lo cual es necesario rellenar con agua cada 24 horas. 5. Cuando las raíces tengan entre 0.5 y 1 cm de longitud, realice cortes de raíz de aproximadamente 2 – 3 mm a partir del ápice. 6. Colóquelas en una lámina portaobjetos. Adiciona una gota del colorante acetocarmín. 7. Coloque el cubreobjetos con mucho cuidado sobre la raíz. Con ayuda de la punta de una lanceta, de unos golpecitos sobre el cubre objetos sin romperlo, de modo que la raíz quede extendida. 8. Use papel absorbente para retirar el exceso de colorante realice una suave presión, evitando que él cubre objetos resbale. Si la preparación está bien asentada no hay peligro de rotura por mucha presión que se realice. 9. Selle todos los bordes del cubre objetos con esmalte transparente, para evitar que se seque y de esta manera conservar la preparación durante varios días. 10. Coloque la preparación al microscopio e inicie la observación con el objetivo de 10x e identifique las células. 11. Cambie al objetivo de 40X para detallar las células. Observe los núcleos y cromosomas en color rosáceo – morado. 12. Ubique el objetivo de 100 x y escriba sus observaciones anotando las diferencias en cada uno de los aumentos mencionados. 13. Trate de observar detenidamente las preparaciones y distinga células en interfase y células en división y dentro de estas, las diferentes etapas de la mitosis Realice dibujos de todas las fases observadas. Sistema de Evaluación



41



4. Resolución de cuestionario para medir el rendimiento después de las prácticas Informe o productos a entregar




1. Defina y explique cada una de las fases la mitosis, detallando sus etapas de manera gráfica y explique en qué tipo de células se presenta este proceso.

2. Defina y explique cada una de las fases la meiosis, detallando sus etapas de manera gráfica y explique en qué tipo de células se presenta este proceso.

INFORME Debe contener los siguientes puntos:


El informe debe incluir el siguiente formato donde se registra cada una de las fases de la división celular observadas

MITOSIS: Células de Cebolla

FASE DIBUJO DESCRIPCIÓN Y CARACTERÍSTICAS

INTERFASE

PROFASE

METAFASE

ANAFASE

TELOFASE

42

Además se deben resolver las siguientes preguntas:

a. ¿Qué etapas de la meiosis y mitosis observo? b. ¿Qué proceso se está desarrollando en las etapas observadas? c. ¿Qué tipo de células se están observando? d. ¿Cuántos cromosomas poseen las células en mitosis? e. ¿Cuántos cromosomas poseen las células en meiosis?




MÁXIMO PUNTAJE




3


TORIO




8


MES




6

17

Retroalimentación


44

PRACTICA No. 06 – TEJIDOS VEGETALES (Para desarrollar en el tercer encuentro)

Tipo de practica

Presencial x Autodirigida Remota Otra ¿Cuál


Temáticas de la práctica Tejidos vegetales: protector, parenquimático, conductor y de sostén.


Propósito s

Esta práctica permite a los estudiantes comprobar la diversidad y especialización de los tejidos vegetales , además de adquirir la habilidad para realizar cortes a mano alzada

Objetivos

• Comprobar la diversidad y especialización de las células vegetales y sus agrupaciones en tejidos.

• Agudizar el sentido de la observación de las estructuras vegetales, aspecto importante para comprender la morfología vegetal.

Meta

Diferenciar los tipos de tejido vegetal

Competencias

Adquirir habilidad en la elaboración de cortes a mano alzada y en coloración


Módulo de biología UNAD en la parte correspondiente a tejidos vegetales.

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/tejorgsist.htm#ancla2

http://www.unad.edu.co/curso_biologia/video_Tej_vegetales.htm


En La presente práctica los estudiantes distinguirán las diferentes clases de tejidos vegetales y sus respectivas funciones.


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Hojas de Lirio, lápiz de cedro, Pera, Hojas de olivo y hojas de hiedra. Láminas portaobjetos y laminillas cubreobjetos. Bisturí o cuchilla, Pinza.

MATERIALES QUE SERÁN SUMINITRADOS EN EL LABORATORO

Fluoroglucina, Verde brillante. Microscopio.


Computador para la observación de los videos de Tejidos vegetales

Metodología

En esta práctica observe a través del microscopio la morfología de los distintos tejidos vegetales.

TEJIDO PROTECTOR

Observación hojas de Lirio

Desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio; 1. Tome una hoja de lirio y con un bisturí haga una pequeña incisión en el limbo 2. Con ayuda de una pinza levante la capa externa para obtener una lámina fina. 3. Coloque la lámina fina obtenida en el portaobjetos y agregue una gota agua. 4. Enfoque al microscopio con objetivo de 10x y 40x. Identifique las células oclusivas, los ostiolos y los cloroplastos. 5. Escriba sus observaciones. Observación hojas de Olivo Otro ejemplo de tejido protector puede observarlo en la hoja de olivo. 1. Raspe el envés de una hoja de olivo. 2. Coloque el raspado en una lámina portaobjetos y adicione unas gotas de agua. 3. Observe los pelos escamiformes. 4. Escriba sus observaciones

TEJIDOS MECÁNICOS O DE SOSTÉN

Observación de células de Pera

Desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Raspe con un cuchillo o bisturí una parte pequeña de mesocarpio de pera y colóquela en un portaobjetos. 2. Coloque el corte en una lámina portaobjetos y adicione unas gotas de agua. 3. Cubra con una laminilla cubreobjetos evitando que se formen burbujas.

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4. Elimine el exceso de agua con papel absorbente 5. Observe el microscopio con objetivo de 10 X y 40x. Identifique las esclereidas. 6. Escriba sus observaciones.

TEJIDOS CONDUCTORES

Observación de madera de Cedro

Desarrolle el siguiente diagrama de flujo antes de su ingreso al laboratorio

1. Realice un corte longitudinal y fino de un lápiz de madera de cedro. 2. Coloque las virutas en un portaobjetos, adicione agua. 3. Coloque una laminilla cubreobjetos y observe al microscopio.

Observación peciolo de Hiedra

1. Realice finos cortes perpendiculares del pecíolo de la hiedra, a la dirección del tallo; mínimo cuatro cortes. 2. Deposítelos en una lámina y adicione verde brillante durante 5 minutos. Lave con agua corriente. 3. Cubra los cortes con fluoroglucina durante 2 minutos. 4. Transcurridos los 2 minutos elimine el exceso de colorante. 5. Cubra con ácido clorhídrico durante 2 minutos. Lave con agua corriente. 6. En la lámina portaobjetos coloque unas gotas de agua, deposite el corte y coloque un cubreobjetos y observe al microscopio. 7. Identifique el Xilema y el Floema. 8. Escriba sus observaciones.


La evaluación se llevará a cabo por medio de las sigui entes actividades

1. Presentación del pre-informe sobre el laboratori o, el cual incluye las respuestas a las preguntas sobre observación de videos y las respuestas al cue stionario de la práctica. (El pre-informe se debe llevar resuelto antes de iniciar la práctica).

2. Evaluación parcial presencial al iniciar la prác tica

3.Asistencia , participación y presentación del in forme de la práctica realizada durante el laboratorio, el cual incluye también el pre-informe

4. Resolución de cuestionario para medir el rendimi ento después de las prácticas Informe o productos a entregar


• Titulo de la práctica • Objetivos • Resumen de la información teórica relacionada con la práctica. • Respuesta a las preguntas del formato para observación de videos.

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• Respuestas al cuestionario del pre-informe.


1. Describa los diferentes tipos de tejidos vegetales explicando su función. 2. Nombre las diferencias en las plantas vasculares y no vasculares; y entre plantas dicotiledóneas y monocotiledóneas

INFORME Debe contener los siguientes puntos:


El informe debe incluir el siguiente formato donde se registra

MATERIAL BIOLÓGICO

TIPO DE TEJIDO Y ESTRUCTURAS OBSERVADAS

DIBUJO O FOTOGRAFIA


LIRIO Tejido Protector Estomas: Células oclusivas y ostiolo. Cloroplastos

OLIVO

PERA

CEDRO

HIEDRA

Además en el informe se deben responder las siguientes preguntas:

Dibuje o coloque la fotografía en su formato 2 o 3 de las células observadas, señalando en el dibujo a qué tipo de tejidos pertenecen e identifique lo siguiente.

1. ¿Qué forma tiene las células observadas? 2. Señale las partes de cada una de las células observadas e identifíquelas su nombre. 3. ¿Defina claramente la función de cada tejido?

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MÁXIMO PUNTAJE




3


TORIO




8


MES




6

17

Retroalimentación


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Referencias

Bargueno, E. (2006). Ecología. Conceptos y aplicaciones. España. McGraw- Hill/Interamericana

Bruce , A., Lewis J. , Raff, M. , Roberts K. & Walter P. (2004). Biología Molecular De La Celula. Editorial Omega. 4 Edición

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Freeman, Scott. (2009). Biología. Pearson Ediciones. 3 edición

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laboratorio de biologia 2011

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