INSTITUT SENEGALAIS DE RECHERCHES AGRICOLES (ISRA)

CENTRE NATIONAL DE RECHERCHES AGRONOMIQUES (CNRA) DE BAMBEY

PRESENTE ET SOUTENU PAR : IBAHIMA FAYE 42EME

PROMOTION

REPUBLIQUE DU SENEGAL

Un Peuple – Un But – Une Foi

Pour l’Obtention du Diplôme d’Ingénieur des Travaux Agricoles (ITA)

Thème:

MINISTERE DE L’ENSEIGNEMENT SECONDAIRE, DES CENTRES UNIVERSITAIRES

REGIONAUX ET DES UNIVERSITES UNIVERSITE DE THIES

Institut Supérieur de Formation Agricole et Rurale (ISFAR) ex ENCR DE BAMBEY

TUTEUR DE STAGE : Dr Samba Thiaw

Agronome, Physiologiste Chercheur au CNRA de Bambey

MAITRE DE STAGE : Babacar FAYE

Ingénieur Agronome Formateur à l’ISFAR de Bambey

Janvier 2009

EVALUATION DE LA CROISSANCE ET DE LA PRODUCTIVITE

DU NIEBE (VIGNA UNGUICULATA (L) WALPERS ) EN CONDITIONS DE DEFICIT HYDRIQUE :CONTRIBUTION A L’AMELIORATION DU

PHENOTYPAGE DU NIEBE POUR LA TOLERANCE A LA SECHERESSE

I

TABLE DES MATIERES

DEDICACES ................................................................................................................................. III

REMERCIEMENTS ..................................................................................................................... IV

RESUME ........................................................................................................................................ VI

ABSTRACT ................................................................................................................................. VII

LISTE DES SIGLES ET ABBREVIATIONS ......................................................................... VIII

LISTE DES FIGURES.................................................................................................................. IX

LISTE DES TABLEAUX .............................................................................................................. X

INTRODUCTION............................................................................................................................ 1

PREMIERE PARTIE: REVUE BIBLIOGRAPHIQUE ............ ................................................. 3

I.1. GENERALITES SUR LE NIEBE ........................................................................................................................... 3 I.1.1. Origine .............................................................................................................................. 3 I.1.2. Taxonomie ........................................................................................................................ 3 I.1.3. Description botanique ....................................................................................................... 3

I.2. Importances socio-économiques du niébé ............................................................................................................... 4

I.3. Itinéraires techniques ............................................................................................................................................... 5 I.3.1. Choix et préparation des parcelles .................................................................................... 5 I.3.2. Semis et entretien.............................................................................................................. 6 I.3.3. Fertilisation minérale ........................................................................................................ 6 I.3.4. Récolte et stockage ........................................................................................................... 7

I.4. Contraintes de la culture .......................................................................................................................................... 7 I.4.1 Contraintes biotiques ......................................................................................................... 7 I.4.2 Les contraintes abiotiques ................................................................................................. 8

I.5. SECHERESSE ET NIEBE ...................................................................................................................................... 9 I.5.1. Définitions de la sécheresse .............................................................................................. 9 I.5.3. Concepts généraux et mécanismes d’adaptation du niébé à la sécheresse .................... 10

DEUXIEME PARTIE: MATERIELS ET METHODES ............ .............................................. 12

II.1. Site expérimental ................................................................................................................................................... 12

II.2. Conditions environnementales de l’essai ............................................................................................................. 12 II.2.1. Le climat ........................................................................................................................ 12

II

II.2.2. Le sol ............................................................................................................................. 15

II.3. Matériel végétal ..................................................................................................................................................... 15

II.4. Dispositif, unité expérimentale et facteur étudié ................................................................................................ 16

II.5. Conduite de la culture ........................................................................................................................................... 16

II.6. Observations et mesures ....................................................................................................................................... 17 II.6.1. Suivi de la phénologie ................................................................................................... 17 II.6.2. Paramètres de développement et de croissance............................................................. 17 II.6.3. Evaluation de l’impact de la sécheresse sur les génotypes ........................................... 18 II.6.4. Le rendement et ses composantes ................................................................................. 19

TROISIEME PARTIE: RESULTATS ET DISCUSSIONS ..................................................... 20

III.1. RESULTATS ....................................................................................................................................................... 20 III.1.1. Suivi phénologique ...................................................................................................... 20 III.1.2. Impact de la sécheresse sur les génotypes ................................................................... 28 II.1.3. Croissance et développement ........................................................................................ 29 III.1.4. Rendement, composantes de rendement et corrélations .............................................. 32

III.2. DISCUSSION ....................................................................................................................................................... 35

CONCLUSION ET PERSPECTIVES ......................................................................................... 40

REFERENCES BIBLIOGRAPHIQUES..................................................................................... 41

III

DEDICACES

Je dédie ce travail à:

Mon père Abdou Karim Faye qui nous a quitté, il y a maintenant quinze (15) ans. En effet, il a été un

père exemplaire pour nous car, il nous a aimé de toutes ses forces et nous a soutenu moralement et

financièrement pour la réussite dans la vie active. Nous prions pour qu’Allah (SWT) lui accorde sa

Miséricorde et l’accueille dans son Paradis. « Amine ».

Mon frère Karamokho Faye qui nous a aussi très tôt quitté, il y a juste un an. Nous prions pour que le

Tout Miséricordieux lui accorde son pardon et l’accueille dans son Paradis. « Amine ».

Ma mère Fatou Diouf pour son affection et son soutien sans faille à mon égard.

Mes oncles Mamadou Diouf et sa famille, Niokhor Diouf et sa famille résidant à Dakar

Mes tantes Selbé Diouf, Maïmouna Diouf, Ramatoulaye Diouf, Ndèye Anta Diouf, Léna Diouf, Aïda

Diouf, Awa Faye, Amie Faye, Fatou Faye et leurs enfants.

Mes frères et sœurs Mamadou Faye, Babacar Faye, Omar Faye, Aïssa Faye, Aminata Faye, Aby Faye et

familles pour leur soutien moral.

Mes collègues de travail Malick Bâ, Cheikh Ndiaye, Omar Bâ, Mignane Diouf, Djibril Faye, Ibrahima

Ndao, Abdoul Aziz Diop, Babacar Bow.

IV

REMERCIEMENTS

Je rends grâce à Allah le Tout Puissant, le Très Miséricordieux, qui m’a prêté la santé, la paix et la

longévité pour accomplir ce travail. J’associe à cette gratitude tous les frères et sœurs en la foi pour

leurs contributions à la mise œuvre de ce document.

Ce travail est le résultat de la collaboration scientifique de plusieurs personnes. Ainsi, je tiens à

remercier solennellement au niveau de l’ISFAR :

Dr Amadou Tidiane Diallo, Directeur de l’ISFAR et M. Abdoulaye Faye, Directeur des études à

l’ISFAR pour m’avoir accepté et accueilli au sein de l’institut.

M. Babacar Faye, mon maître de stage à qui j’exprime ma profonde gratitude et ma reconnaissance

pour avoir accepté l’encadrement et le suivi de ce stage. Il m’a toujours encouragé et prodigué des

conseils très utiles qui m’ont aidé à mieux organiser ce travail. Je tiens particulièrement à le

remercier pour sa sympathie, son assistance à tous les niveaux, sa disponibilité et la qualité de ses

réflexions.

M. Dembélé chef du Département de Productions Végétales (DPV).

M. Kalidou Bâ chef Département de Production Animale (DPA).

M. Birahim Fall chef Département de Production Forestière (DPF).

M. Jérôme Tine chef Département Sociologie et économie rurale.

M. Baol Sarr, intendant; M. Mbaye Ndiaye et M. Pouye à la scolarité.

Mesdames Marie Guissé, Diakhaté et Diatou Camara ; secrétaires.

Mes remerciements vont également à l’endroit de tout le personnel du CNRA (Centre national de

recherches agronomiques) de Bambey :

Dr Ousmane Ndoye, chef de centre du CNRA qui, malgré ses nombreuses charges a pris le temps

d’étudier mon dossier et a donné son aval pour le stage de fin d’études dans sa structure.

Dr Ndiaga Cissé, chercheur responsable de la sélection niébé et sorgho à qui je dis vraiment merci

pour m’avoir ouvert les portes de son laboratoire.

Mon tuteur de stage Dr Samba Thiaw, phytotechnicien, agronome, physiologiste intervenant dans

ledit projet. Je vous exprime ma profonde gratitude pour m’avoir réservé toute votre disponibilité

V

et ouverture durant mon séjour dans votre laboratoire et bureau. Il n’a ménagé aucun effort depuis

l’identification du sujet de stage jusqu’à sa soutenance pour que le travail présenté ne souffre

d’aucune imperfection, tant au niveau de sa forme que de son fond. J’associe également à ces

remerciements les techniciens M. Assane Sène, M. Mbaye Diagne et M. Bounama Sall pour l’aide,

la convivialité, l’ambiance et les bons moments passés ensemble sur le terrain et au laboratoire lors

des observations et mesures expérimentales.

Mme Rosalie Diouf, documentaliste et bibliothécaire que je remercie vivement de m’avoir facilité

l’accès à la documentation et à certains sites Internet pour la recherche bibliographique et la

rédaction du mémoire. Elle m’a encouragé à parfaire mon niveau d’anglais pour l’exploitation des

articles et documents scientifiques.

J’exprime ma profonde reconnaissance à l’égard de Monsieur Nouhoun Belko, thésard en

physiologie et sélection des plantes au CERAAS et au laboratoire de sélection niébé du CNRA. Il

n’a ménagé aucun effort pour apporter son intelligence, son esprit scientifique dans la rédaction du

document. Je remercie aussi son épouse Mme Belko Marème Niang, agronome et doctorante au

CERAAS/ISRA, sans oublier leur fils « le petit colonel Ahmad Tall Belko ».

Un dernier mot de remerciement à l’ensemble des tous les étudiants de l’ISFAR en particulier mes

camarades de la 42ème promotion, nos prédécesseurs de la 40ème, 41ème promotion et aussi nos cadets de

la 43ème et 44ème promotion. Je n’oublierais pas les étudiants (es) du CUR de Bambey, Yaye Seynabou

Thiaw, Fatoumata Diao, Maty Niass, Sène, Aminata Diagne, Makouta Kanté, Ousmane Thiaw.

VI

RESUME Le niébé (Vigna unguiculata [L.] Walp) est une légumineuse à graines qui est très importante en

Afrique sub-saharienne où la pluviomètrie est faible et souvent mal répartie. Pour trouver des

variétés plus adaptées aux conditions de déficit hydrique dans les grandes zones de cultures du

niébé, un projet financé par le GCP et intitulé: Improving tropical legumes productivity for

marginal environments in sub-Saharan Africa avait été mis en place. Il vise à contribuer à

l’amélioration du phénotypage du niébé pour la tolérance à la sécheresse : en évaluant la

croissance et la productivité d’une grande collection de niébé en condition de déficit hydrique et,

en évaluant leur capacité de rendement en conditions de sécheresse, de chaleur et leur date de

maturité. C’est dans ce cadre qu’un essai a été mis en place dans la station expérimentale du

CNRA de Bambey dont l’étude porte sur l’évaluation de la croissance et de la productivité du

niébé en condition en déficit hydrique imposé au 30ème jour après semis. Le dispositif utilisé est en

Blocs Aléatoires Complètement Randomisés à 3 répétitions avec 25 variétés sur chaque bloc. Les

résultats ont permis d’identifier deux groupes pour la maturité: les variétés de 55 à 65 Jas et celles

de 65 à 75 Jas. Les variétés qui se sont montrées plus adaptées selon le score de Mai Kodomi ont

cependant étaient moins productives que les variétés qui sont dans la classe intermédiaire avec un

port érigé et un cycle court. En condition de stress hydrique, les paramètres agro morphologiques

et phénologiques les mieux appropriés pour le phénotypage du niébé restent le nombre de gousses

par pédoncule et le nombre de gousses par plante. Cette étude montre qu’il est possible de faire le

phénotypage du niébé en condition de stress hydrique, seulement le type de stress et les variétés à

utiliser restent importantes dans cette caractérisation.

Mots clés : Le niébé (Vigna unguiculata), évaluation, paramètres agro morphologiques et

phénologiques,

VII

ABSTRACT Cowpea is a grain legume, which is very important in sub Saharan Africa with low and poorly

distributed rainfall. A project was designed and financed by GCP to find better-adapted varieties to

water stress. The project title is: Improving tropical legumes productivity for marginal

environments in sub Saharan Africa. Its objectives are: improving the phenotype of cowpea for

drought tolerance by evaluating a core collection for growth and productivity under stress and by

evaluating the yield capacity and the maturity under heat and drought. A trial was conducted at

CNRA Bambey with the objective of evaluating the growth and the productivity of cowpea after a

stress imposed 30 days after sowing. The design was a completely randomized bloc with 3

replications and 25 genotypes per bloc. Results showed two maturity groups: the varieties with 55

to 65 days from sowing to maturity and the second group with varieties of 65 to 75 days to

maturity. Based on Mai Kodomi score, the varieties, which had better rating, were not the best in

terms of grain production. The varieties with intermediate rating (erect and early) gave better grain

production. In the study, under stress, the fit parameters for phenotyping cowpea are the number of

pods per peduncle and the number pods per plant. Our study shows that it possible to phenotype

cowpea under stress providing that we select the appropriate type of stress and the right germ

plasm to use.

Key words: Cowpea (Vigna unguiculata), evaluation, agro morphologic parameters, and

phenology

VIII

LISTE DES SIGLES ET ABBREVIATIONS

CERASS : Centre d’Etudes Régional pour l’Amélioration de l’Adaptation à la Sécheresse

CNRA : Centre National de Recherches Agronomiques

CRE : Contenu Relatif en Eau

CUR : Collège universitaire régional

DIFN : Diffuse non interceptance ou radiation non interceptée

ETM: Evapotranspiration maximale

FAO: Food and Agriculture Organization of United Nations

GCP: Generation Challenge Program

IITA: International Institute of Tropical Agriculture

INERA : Institut National d’Etude et de Recherches Agronomiques

ISFAR: Institut Supérieur de Formation Agricole et rurale

ISRA : Institut Sénégalais de Recherches Agricoles

JAS : Jours Après Semis

LAI : Leaf Area Index ou indice de surface foliaire

SARI : Semi Arid Research Institute

UCR : Université California Riverside

IX

LISTE DES FIGURES Figure 1. Evolution des températures maximale et minimale durant l’essai ................................... 13

Figure 2. Evolution des humidités relatives maximale et minimale durant l’essai ......................... 13

Figure 3. Evolution de la vitesse du vent durant l’essai (Avril-Juillet 2008, ................................... 14

Figure 4. Evolution de la durée d’insolation durant l’essai (Avril-Juillet 2008, ............................. 14

X

LISTE DES TABLEAUX

Tableau 1. Résultats des Tests Anova pour les paramètres phénologiques ..................................... 20

Tableau 2. Sous-ensembles homogènes pour la date de levée ......................................................... 21

Tableau 3. Sous-ensembles homogènes pour la densité des plantes ............................................... 22

Tableau 4. Sous-ensembles homogènes de la date d’émission de la première fleur ....................... 23

Tableau 5. Sous-ensembles homogènes pour la date à 50 % de floraison ....................................... 24

Tableau 6. Sous-ensembles homogènes suivant la date de maturité ............................................... 25

Tableau 7. Répartition des génotypes suivant leur port ................................................................... 26

Tableau 8. Répartition des génotypes suivant leur type de croissance ............................................ 26

Tableau 9. Récapitulatifs de la phénologie des 25 génotypes ......................................................... 27

Tableau 10. Répartition des génotypes suivant leur score ............................................................... 28

Tableau 11. Sous ensembles homogènes suivant l’abscission florale, avortement et le

macrophomina.................................................................................................................................. 29

Tableau 12. Sous ensembles homogènes suivant la hauteur de la tige principale ........................... 30

Tableau 13. Sous ensembles homogènes suivant le nombre de branches secondaires à la récolte . 31

Tableau 14. Sous ensembles homogènes pour la surface foliaire .................................................... 32

Tableau 15. Sous ensembles homogènes pour le rendement en graines.......................................... 33

Tableau 16. Sous ensembles homogènes pour la biomasse sèche aérienne .................................... 34

Tableau 17. Sous ensembles homogènes pour le nombre de gousses par pédoncule ...................... 35

Tableau 18. Sous ensembles homogènes pour le nombre de gousses par plante

Tableau 19. Sous ensembles homogènes pour le poids de 100 graines ........................................... 36

Tableau 20. Relations entre le rendement en graines et les autres paramètres phénologiques et agro

morphologiques................................................................................................................................ 37

1

INTRODUCTION

Le niébé (Vigna unguiculata (L.) Walp.) est une importante légumineuse à graines dans les régions

semi arides de l’Afrique et des Amériques du centre et du sud. Il est également cultivé dans les

régions sèches de l’Asie. En Afrique Sub Saharienne, le niébé constitue une source importante de

protéines, de vitamines essentielles, de sels minéraux et d’acides aminés importants comme la

lysine et le tryptophane. Dans cette partie de l’Afrique, le niébé occupe la deuxième place après

l’arachide (Arachis hypogeae L.) tant pour la production que la superficie totale emblavée. Les

rendements en graines de niébé en Afrique qui représentent près de 70 % de la production

mondiale, sont nettement inférieurs à ceux enregistrés aux USA et en Australie (Quin, 1997). La

faible productivité du niébé est attribuée principalement à l’effet dépressif de la sécheresse et

secondairement à d’autres facteurs. Sur le plan agronomique, il joue un rôle important dans la

fertilité des sols grâce à l’association symbiotique entre les bactéries du sol et les racines du niébé.

Il contribue ainsi à la réduction des besoins en engrais azoté et donc aux coûts de production pour

les fermiers.

Problématique :

Les grandes régions de production du niébé sont pratiquement caractérisées par des sécheresses

fréquentes, des températures très élevées, des sols pauvres avec une faible capacité de rétention en

eau. Considéré comme naturellement mais relativement tolérant ou résistant à la sécheresse, le

niébé a développé des mécanismes multiples de tolérance à la chaleur/sécheresse lui permettant de

se développer dans des régions où les conditions environnementales sont parfois assez difficiles.

Cependant, malgré ces mécanismes d’adaptation, la sécheresse peut causer des pertes

substantielles en gousses et en graines (Mai-Kodomi, 1999).

Par conséquent, le développement de variétés tolérantes à la sécheresse et à la chaleur devient une

nécessité. Ainsi; des progrès ont été accomplis dans la sélection du niébé pour l’adaptation aux

zones arides et semi arides (Hall et al., 1997).

On pourrait stabiliser voire améliorer significativement les rendements du niébé si

l’adaptation/tolérance à la sécheresse était améliorée en utilisant des techniques modernes de

sélection.

C’est dans ce contexte qu’a été élaboré le projet GCP (Generation Challenge Program) intitulé

«Improving tropical legumes productivity for marginal environments in sub-Saharan Africa ». Il

vise à promouvoir l’application de la sélection moderne combinant la sélection conventionnelle

2

aux champs et les biotechnologies pour améliorer la productivité de quatre légumineuses à savoir

le niébé, l’arachide, le haricot et le pois chiche.

Objectifs :

Cette étude vise à :

- contribuer à l’amélioration du phénotypage du niébé pour la tolérance à la sécheresse; en

évaluant la croissance et la productivité de 25 génotypes et lignées de niébé (Vigna

unguiculata (L) Walp.) en condition de déficit hydrique;

- évaluer leur capacité de rendement en conditions de sécheresse et de chaleur et leur date de

maturité.

Ce travail se présentera en trois parties :

- une revue bibliographique sur le niébé et la sécheresse;

- ensuite, le matériel et les méthodes d’étude;

- enfin, les résultats obtenus ainsi que leur discussion.

3

PREMIERE PARTIE : REVUE BIBLIOGRAPHIQUE

I.1. GENERALITES SUR LE NIEBE

I.1.1. Origine

Les spéculations sur l’origine et le centre de domestication du niébé ont été basées sur des

caractères botaniques et cytologiques, des informations relatives à sa distribution géographique,

des pratiques culturales et des rapports d’histoire naturelle (Faris,1965 ; Ng and Maréchal, 1985).

Le niébé (Vigna unguiculata (L.) Walp) est originaire d’Afrique centrale plus précisément dans la

zone côtière, et en Afrique Australe. Il a émigré en Asie (3ème millénaire avant notre ère) puis en

Amérique (16ème et 17ème siècle) (Padulosi and Ng, 1997). L’Afrique occidentale constitue le

premier centre de domestication du niébé (Baudion and Maréchal., 1985) et l’Afrique Australe

constitue son centre de spéciation (Vavilov, 1926).

I.1.2. Taxonomie

Le niébé, est une dicotylédone appartenant à l'ordre des Fabales, la famille des Fabaceae, la sous

famille des Faboideae, la Tribu des Phaseoleae, la sous Tribu des Phaseolinae, le genre Vigna et

la section Catiang (Verdcourt 1970; Maréchal et al., 1978). Vigna est un genre pantropical avec

plusieurs espèces, dont le nombre exact varie selon les auteurs : 184 (Phillips, 1951), 170 (Faris,

1965), entre 170 et 150 (Summerfield et Roberts, 1985), 150 (Verdcourt, 1970), 154 (Steele,

1976) et environ 84 dont 50 sont des variétés sauvages d’Afrique (Maréchal et al., 1978).

I.1.3. Description botanique

Le niébé est une plante autogame (Fery, 1985) qui présente un faible taux d’allogamie (0,2 à 2%).

Il a un port érigé ou volubile, rampant ou grimpant avec tous les types de port intermédiaires. Le

niébé est une espèce diploïde 2n = 22 chromosomes, de petite taille, comme chez la plupart des

espèces de Phaseolineae (Maréchal et al., 1978). La structure et le cycle de la plante sont

variables, selon le génotype, les conditions de température et de photopériode. Il y a des variétés

érigées, de 65 à 70 jours avec quelques branches latérales et les variétés rampantes de 140 à 150

jours avec plus de branches secondaires et tertiaires. En général, les deux premières feuilles sont

opposées, sessiles et entières. Les feuilles sont alternes, pétiolées et trifoliées. Les folioles

mesurent 3 à 10 cm de long sur 2 à 3 cm de large vers le bas et 10 à15 cm vers le milieu. En plus,

chaque nœud de la tige porte des stipules prolongées sous l’insertion qui caractérisent l’espèce

Vigna unguiculata. La forme des feuilles (rhomboïde ou hastée), la pigmentation anthocyanique

4

des entre-nœuds, la longueur des pédoncules floraux, la photosensibilité sont les principaux

facteurs de variabilité chez les formes cultivées (Jones, 1965).

Les gousses et les graines sont très diversifiées chez le niébé. Elles sont largement utilisées pour la

description des variétés (Pasquet et Fotso, 1994) et l’identification des cultigroupes (Pasquet,

1996b). Les gousses du niébé sont cylindriques renflées à l’emplacement des graines, de taille et

de pigmentations variables, pendantes ou dressées. Elles se présentent comme des alvéoles qui

peuvent loger 8 à 20 graines. Les gousses des formes sauvages sont déhiscentes, ce qui n’est pas

fréquent chez les formes cultivées. La déhiscence est monogènique et dominant chez le niébé

(Lush et Evans, 1981). Le cultigroupe Sesquipedalis possède de très longues gousses, charnues au

péricarpe fripé chez la gousse sèche et des graines espacées dans la gousse. Ces caractères sont

mono ou bigéniques. Le phénotype de ce cultigroupe est récessif (Fery, 1985).

Les graines sont de taille et de couleurs variables suivant les variétés. La nature du tégument est

une caractéristique importante de la graine. On en trouve deux types : l’un épais, lisse et plus ou

moins brillant et l’autre mince, ridé et mat. Ces deux types semblent être déterminés par au moins

deux paires de gènes et le phénotype à tégument lisse est dominant. Les graines sont réniformes

pour la plupart. Ce caractère est monogénique mais dominant. Plusieurs autres gènes déterminent

les différentes couleurs (Fery, 1985). Les formes cultivées se distinguent des formes sauvages par

des graines et des gousses de taille plus importante et par des graines non dormantes (lush et

Evans, 1981).

I.2. Importances socio-économiques du niébé

Le niébé fait partie intégrante des systèmes de cultures traditionnelles, particulièrement dans la

région semi-aride des savanes de l’Ouest africain (Steele, 1972). Le niébé est la plus importante

légumineuse à graines dans les zones de savane tropicale d’Afrique. Dans le monde, le niébé est

cultivé sur près de 8 millions d’hectares, et l'Afrique couvre à elle seule environ 6 millions

d’hectares soit 75 % de l’ensemble des terres emblavées. Le niébé considéré comme naturellement

tolérant à la sécheresse comparativement aux autres cultures, est adapté au climat chaud et requiert

moins d’eau que la plupart des cultures. Par conséquent, il se développe bien dans des

environnements marginaux (sols pauvres et conditions d’alimentation hydrique limitantes).

Par ailleurs, le niébé est riche en vitamines (B), en protéines et en certains nutriments et éléments

essentiels tels que le fer, le calcium et le zinc. Il contient environ 24,8 % de protéines, 63,6 % de

glucides, 1,9 % en matières grasses, 6,3 % de cellulose. Le niébé a un rôle primordial dans

l’alimentation de nombreuses familles rurales et dans l’économie des fermiers sahéliens pauvres. Il

5

constitue la deuxième légumineuse annuelle après l’arachide dans les systèmes traditionnels. Il est

cultivé et consommé extensivement en Asie, en Amérique du Sud et du Centre, dans les Caraïbes,

aux Etats Unis, dans le Moyen Orient et en Europe Australe. Le niébé est un aliment de base

apprécié en Afrique car ses feuilles, gousses vertes et graines sèches peuvent être consommées et

commercialisées. Les feuilles sont consommées comme épinard et la plante entière constitue un

excellent fourrage en raison de sa haute teneur en protéines. Certaines variétés à cycle court,

permettent d’avoir une alimentation de bonne qualité pendant les périodes de « soudure » (juillet à

septembre).

La graine sèche est aussi communément moulue et consommée dans plusieurs plats traditionnels,

comme la bouillie, le pain, l’aliment de sevrage pour enfants ou encore transformée en beignets

(Akara en wolof). Le niébé sec précuit, intervient dans la préparation des ragoûts à sauce épicée.

Le niébé grillé peut être utilisé pour la préparation du« neleng» un plat qui ressemble au couscous

de mil.

Les statistiques mondiales de production de niébé sont imprécises en raison de la part importante

de l’autoconsommation dans la production du niébé. Des estimations de la FAO de 1973 donnent

un rendement mondial moyen de 2 à 3 q/ha et attribuent 77,7 % de la production mondiale au

Nigeria, 5,2 % au Burkina Faso et 2,1 % au Sénégal (Caron et Granès, 1993). Actuellement la

production mondiale est estimée à 3,3 millions de tonnes dont 64 % est produite en Afrique (Cissé

et Hall, 2003). Dans certains pays tropicaux, le niébé fournit plus de la moitié des protéines

consommées et de ce fait, joue un rôle important dans la sécurité alimentaire.

I.3. Itinéraires techniques

Le niébé est cultivé en culture pure partout dans le monde sauf en Afrique où on le retrouve le plus

souvent en rotation ou en association avec le mil dans les zones semi arides et avec le sorgho ou le

maïs dans les zones plus humides. La rotation mil-niébé est intéressante dans la mesure où les

racines des deux spéculations explorent des horizons différents pour la nutrition minérale et l’eau.

Avec comme précédent le mil, les attaques des champignons responsables de la fonte de semis

chez le niébé sont limitées alors qu’un précédent niébé peut entraîner une germination« suicide»

Striga hermonthica. Des essais sur les associations culturales niébé-céréale ont montré que le niébé

se développe mieux en association avec une variété à taille courte.

I.3.1. Choix et préparation des parcelles

Le niébé est généralement cultivé sur des sols pauvres. Il est préférable de le cultiver sur un sol à

précédent mil ou une jachère enfouie. Il faut éviter le contact des parcelles enherbées avec la

6

parcelle de culture du niébé. Pour cela, choisir des parcelles éloignées des jachères, afin de

diminuer les risques de passage de la chenille poilue et nettoyer le terrain avant les préparatifs pour

le semis. Dégager une bande proprement nettoyée d’au minimum 5 à 10 m autour de la parcelle de

culture. Cette bande pourra être traitée avec de la poudre de Sumithion lors de l’attaque des

chenilles. Un labour profond (15-20 cm) suivi d’un passage croisé à la herse permet d’avoir une

structure meuble du sol sablo limoneux. Sur les sols particulièrement pauvres, il est conseillé avant

le labour d’apporter 300 à 400 kg de phosphate tricalcique par hectare tous les quatre ans.

I.3.2. Semis et entretien

Les besoins maximaux en eau d’un niébé de 75 jours sont estimés à 350 mm à Bambey et 430 mm

à Louga. Le semis est effectué en ligne après une pluie utile de plus de 15 mm au moyen d’un

semoir muni d’un disque de 6 à 8 trous ou manuellement à l’aide d’un rayonneur. Les graines sont

semées à raison de 2 à 3 graines par poquet à la profondeur de 2 à 3 cm. Il faut 12 à 16 kg de

semences pour emblaver un hectare de terrain avec un écartement de 50 cm x 50 cm pour les

variétés rampantes telles que 58-57, Mougne et N’diambour et 50 cm x 25 cm pour les variétés

érigées telles Bambey 21, Mouride et Mélakh. La germination est épigée et la plantule émerge au

bout de 3 à 4 jours après avoir absorbé 1 à 2 fois son poids en eau. Il est possible de ressemer

rapidement des pieds manquants dès que les plants sont levés, soit 8 jours après. Le niébé est une

plante particulièrement fragile à l’état plantule d’où l’importance de traiter la semence juste avant

les semis à l’aide d’un fongicide et insecticide : Granox à la dose 2 à 4 g par kg de semence. Ce

traitement protège la plantule contre les parasites de la germination à la levée.

Pour l’entretien de la culture, il faut effectuer un premier sarclo-binage (radou) sitôt après le semis

et procéder au sarclo-binage à la houe deux semaines après la levée et au sarclage manuel à

l’hilaire, 3 à 4 semaines après la levée. Il faut arracher les racines, sécher et brûler les plants de

Striga (Nduxum en wolof) avant que ceux-ci ne fleurissent, sinon les graines en germant puissent

contribuer à la multiplication de la plante parasite.

I.3.3. Fertilisation minérale

Les besoins en engrais azoté du niébé sont plus importants durant les 2 premières semaines.

Ensuite, le niébé utilise l’azote fixé par les bactéries qui se trouvent au niveau des nodules

racinaires. Il faut épandre 150 kg d’engrais ternaire (NPK) 6 –20 -10 avant ou juste après le semis.

Pour une meilleure efficacité, il faut épandre l’engrais juste après une pluie.

7

I.3.4. Récolte et stockage

La récolte se fait d’une manière échelonnée à maturité complète puis il faut procéder au séchage

immédiatement, ensuite traiter les gousses au moyen de la Perméthrine (Percal ou K-Othrine) et les

garder dans des sacs jusqu’au battage. Il faut effectuer le battage des gousses le plus tôt possible et

utiliser des fûts ou des sacs hermétiques pour stocker les graines. Afin de récupérer les fanes pour

le bétail, couper les tiges après la dernière récolte (avant la chute des feuilles) et les mettre en tas.

Le stockage du niébé en fûts métalliques hermétiquement fermés donne des résultats satisfaisants

en milieu rural. Il se réalise en alternant une couche de sable puis une couche de niébé, jusqu’à

remplir le fût. Mettre une couche de sable avant de fermer le couvercle. Cependant les chambres

froides sont mieux indiquées pour la conservation à court et à long terme des semences.

I.4. Contraintes de la culture

I.4.1 Contraintes biotiques

La lutte la plus efficace et la moins onéreuse contre les ennemis de la culture reste la recherche de

variétés résistantes et/ou tolérantes. Pour certains parasites, la lutte chimique reste la seule méthode

efficace. Le seul moyen de lutte contre les chenilles d’Amsacta moloneyi est d’utiliser un

insecticide de contact tel que l’endosulfan (800g/ha). Les thrips sont combattus par un traitement à

la deltaméthrine (15 g/ha).

Le chancre bactérien (Xanthomonas vignicola) et la virose due au Cowpea Aphid-borne Mosaic

Virus (CAbMV) constituent les principales maladies du niébé au Sénégal et sont difficilement

contrôlées, et le seul recours est la recherche de variétés résistantes.

On répertorie aussi parmi les parasites, les champignons responsables des fontes de semis

(Pythium aphanidermatum, Rhizoctonia solani et Colletrichum capsii).

A ces maladies viennent s’ajouter en zone sahélienne, les problèmes des plantes parasites: Striga

gesnerioides et Alecta vogelii, contre lesquelles les méthodes de lutte préconisées (lutte chimique,

agronomique et mécanique) restent encore inefficaces (Bâ, 1983; Samb et Chamel, 1992).

Le niébé peut également subir à tous les stades de sa croissance, l’action des nématodes

(Meloidogyne, Rotylenchus et Pratylenchus) sur les racines.

L’infestation des récoltes de niébé par les bruchideae (Callosobruchus maculatus) débute au

champ et se poursuit pendant le stockage. Elle peut atteindre 50 à 80 % à 6-7 mois de stockage. La

phase larvaire entraîne une perte importante de 5 à 25 %. Les dégâts sont irréparables car les

bruches réduisent le pouvoir germinatif et abaissent la teneur en protéines (Seck, 1994).

8

I.4.2 Les contraintes abiotiques

Les populations rurales du Sahel sont particulièrement concernées par la variabilité climatique

dans la mesure où les performances de leurs systèmes de production, sont étroitement tributaires

du climat (Bazzaz et Sombroek, 1996). Le déficit hydrique est le facteur le plus limitant de la

production agricole. On observe parfois une baisse de la productivité allant de 30 à 50 % du fait du

déficit hydrique (Pimental et al., 1999). Chez le niébé, le manque d’eau provoque une fermeture

rapide des stomates avec pour conséquence une réduction de la photosynthèse et de la

transpiration. Outre ces effets, une alimentation hydrique insuffisante du niébé entraîne une

réduction de la matière sèche des tiges et une diminution de la nodulation. A certains stades de

développement de la plante, les processus d’élaboration de rendement sont beaucoup plus sensibles

à des périodes de sécheresse (Sultan et al., 2005). Le manque d’eau a aussi comme conséquences

une baisse de la teneur en eau des organes, un avortement des boutons floraux et des pertes de

rendement. L’effet d’un déficit hydrique sur le rendement final en grain du niébé dépend du stade

auquel il intervient. Les stades de floraison et de maturation physiologique des graines sont les

plus sensibles (Edmeades et al., 1995). En effet, à ces stades, l’activité photosynthétique doit être

maintenue pour assurer le transfert des assimilats des feuilles vers les graines (Mourad et al.,

1990). Selon ces auteurs, la photosynthèse est un meilleur indicateur du fonctionnement de la

plante lors d’un déficit hydrique. La synthèse des glucides est la conséquence essentielle des

activités photosynthétiques réalisées au niveau des feuilles. Les assimilats sont importants aussi

bien pour le fonctionnement de la plante que pour la production finale (remplissage des grains,

synthèse d’autres substances carbonées, etc.).

Par ailleurs, il existe d’autres stress abiotiques auxquels sont soumis les cultures selon les zones

agro écologiques dans lesquelles elles sont cultivées :

- Photopériode

On sait qu’à partir de l’équateur (latitude 0°), il y a une variation dans la longueur du jour en

fonction des saisons. La sensibilité à la photopériode est sans aucun doute le facteur de diversité le

plus important chez la plupart des espèces cultivées.

Il y a deux grands groupes suivant leur sensibilité à la photopériode (Silvestre, P., 1965 ; Sène, D.,

1966)

Groupe1 : génotypes photo indépendants tardifs.

Groupe2 : génotypes photosensibles.

9

La photosensibilité serait contrôlée par un seul gène et la photo indépendance des cultivars précoce

serait récessive (Sène, D., 1966)

- La chaleur

Les températures élevées peuvent entraîner des dommages importants chez le niébé pendant sa

période de reproduction. En effet, de fortes températures intervenant au début de la phase

reproductive peuvent entraîner un avortement des boutons floraux ou l’arrêt du développement de

ceux-ci de sorte qu’aucune fleur ne sera formée (Dow El Madina et Hall, 1986).

- La carence minérale

Un élément minéral est qualifié d’essentiel quand les plantes ne peuvent pas compléter

normalement une étape quelconque de leur cycle de développement du fait du manque de cet

élément. Le manque de cet élément directement impliqué dans le métabolisme de la plante doit

être corrigé seulement en ajoutant l'élément en question dans l’alimentation hydro minérale de la

plante (Arnon, 1954).

- La salinité

L'effet de salinité peut empêcher la croissance de la plante pour deux raisons. Premièrement, la

présence de sel dans la solution du sol réduit la capacité de la plante à prendre de l'eau.

Deuxièmement, des quantités excessives de sel dans les cellules foliaires de la plante entraînent

une détérioration de l’appareil photosynthétique et par conséquent causer la réduction du potentiel

de croissance des plantes (Greenway Munns, 1980).

I.5. SECHERESSE ET NIEBE

I.5.1. Définitions de la sécheresse

La sécheresse climatique se traduit par une baisse du régime des pluies par rapport à une valeur

normale calculée sur une période et pour un lieu donné à partir des séries pluviométriques

pluriannuelles (Rasmusson, 1987).

La sécheresse agronomique se traduit par un déficit en eau dans le continuum sol-plante-

atmosphère. Selon Khalfaoui (1988), la sécheresse agronomique se rapporte à une réduction de

l’apport d’eau par rapport à l’optimum correspondant à une satisfaction totale des besoins de la

plante.

La sécheresse agricole se définit par le rapport : demande par les activités rurales / offre potentielle

d'eau. La sécheresse agricole caractérise les conditions hydrologiques où la disponibilité en eau est

insuffisante pour le développement des plantes et des animaux.

10

Le stress hydrique est une des contraintes environnementales auxquelles sont soumises les plantes

cultivées au Sahel. Levitt (1980) définit le stress comme le facteur du milieu potentiellement

préjudiciable au développement des organismes vivants. Les effets de ce stress sur les plantes sont

nombreux : diminution de la vitesse de croissance, baisse de la teneur en eau des tissus,

perturbation de la balance hormonale, modification du métabolisme glucidique, protéique et

lipidique, diminution de rendement (Deblonde et Ledent, 2000).

I.5.3. Concepts généraux et mécanismes d’adaptation du niébé à la sécheresse

Le niébé est une plante qui tolère bien les conditions difficiles de cultures dans les environnements

marginaux en Afrique subsaharienne (Hall et al., 1996). Sa capacité de résistance au déficit

hydrique a été comparée à celle de l’arachide : le CRE (contenu relatif en eau) du niébé ne descend

pas en dessous de 75 % alors celui de l’arachide atteint 50 % (Nwalozie, 1993 ; Diop, 2002). Selon

Mai Kodomi et al., (1999) cité par Bourou (2004), face à un stress hydrique précoce, le niébé

présente deux types de résistance :

- le type 1 correspond aux variétés dont la croissance est ralentie mais qui conservent un état

hydrique élevé permettant aux feuilles et aux rameaux de survivre assez longtemps;

- le type 2 concerne les variétés qui mobilisent l’eau des premières feuilles vers les jeunes organes,

ce qui se traduit par la sénescence des feuilles inférieures permettant la survie des jeunes feuilles.

Ainsi, les variétés de type 2 survivent plus longtemps que celles de type 1 en condition de déficit

hydrique précoce.

Il existe une large gamme de mécanismes de résistance qui ne sont pas exclusifs les uns des autres

et qui peuvent même être complémentaires (Jones et al., 1980). Diverses classifications des

mécanismes de résistance à la sécheresse ont été élaborées et on distingue trois grandes stratégies

d’adaptation à la sécheresse (Levitt, 1980 ; Turner, 1986).

1. L’esquive (drought escape)

L'esquive ou l'échappement qui consiste à réaliser le cycle complet de développement pendant la

période favorable est l'un des moyens pour la plante de réduire ou d'annuler les effets du stress

hydrique (Monneveux & This 1997). Les cultures ont ainsi la possibilité de boucler leur cycle

avant qu’un déficit hydrique important ne se manifeste (De Raissac, 1984). Ceci permet de réduire

la durée réelle d’exposition de la plante au stress hydrique (Khalfaoui, 1988 ; Annerose, 1990).

11

2. L’évitement (drought avoidance)

L’évitement du stress hydrique dépend de l’acquisition de caractères morphologiques et

anatomiques qui permettent à la plante de réguler les pertes en eau et de maintenir ses tissus à un

potentiel hydrique élevé en conditions de déficit hydrique. La régulation et la réduction des pertes

d’eau sont réalisées par la diminution de la surface foliaire, la régulation stomatique, l’enroulement

et l’inclinaison des feuilles par rapport à la radiation solaire (Bunting et al., 1982 ; Clark, 1986), ou

encore la transformation des feuilles en épines (cas des sclérophytes) et ou la protection des

stomates par une cuticule plus ou moins épaisse (Turner, 1986).

3. La tolérance (drought tolerance)

C’est la capacité de la plante à maintenir l’intégrité des structures et des fonctions métaboliques

des tissus en condition de déficit hydrique. Il est fondamentalement une propriété intrinsèque des

organites cellulaires à supporter le stress sans dommage. Elle confère à la plante la capacité de

continuer sa croissance malgré l’état de déshydratation intense et le niveau bas du potentiel

hydrique.

12

DEUXIEME PARTIE : MATERIELS ET METHODES

II.1. Site expérimental

L’essai a été mené dans la station expérimentale du CNRA de Bambey (14°42’N, 16°28’W,

altitude: 20m) situé dans le Centre Ouest du Sénégal. Le climat de cette localité est caractéristique

de la zone sahélienne, avec une saison sèche de novembre à mai, marquée par des températures

extrêmes de 19 à 40 °C, des humidités relatives comprises entre 10 et 75 % et une saison des pluies

de juin à octobre dont le total médian des précipitations est voisin de 430 mm. Les sols,

d’appellation locale dior et dior-deck sont caractéristiques des sols ferrugineux tropicaux

faiblement lessivés. Il s’agit de sols de type peu évolué, constitués d’apports sableux dunaires à

faible teneur en argile et limon, avec un pH compris entre 6 et 6,5.

II.2. Conditions environnementales de l’essai

II.2.1. Le climat

Les données climatiques journalières ont été recueillies sur une station météorologique située dans

le même site expérimental (à environ 200 m des essais). La pluviométrie, les températures

maximale et minimale, les humidités relatives maximale et minimale, la vitesse du vent, la durée

d’insolation et l’évaporation bac (bac normalisé de classe A) ont été suivies.

II.2.1.1. Pluviométrie et irrigation

Au cours de l’expérimentation, les apports en eau ont été assurés uniquement par irrigation dans le

premier mois de culture, soit entre 105 et 140 mm d’eau réparties en 7 dates d’irrigation du semis

au 30ème jour après semis (voire paragraphe II.5. Conduite de la culture). Les plantes n’ont

enregistré aucun apport en eau de la dernière irrigation (17 mai) au 16 juin date à laquelle est

tombée la première pluie (21,3 mm) qui vient lever le stress hydrique imposé aux plantes

pratiquement à la fin de leur cycle de développement. La pluviosité décadaire a varié entre 0 et

138,7 mm avec respectivement 0 ; 21,3 ; 35,9 ; 33,2 ; 47,2 ; et 138,7 mm pour les décades de juin

et juillet.

II.2.1.2. Températures et humidités relatives

Au cours de l’essai, les maxima de température ont varié entre 28,60 °C et 48,60 °C et les minima

entre 17,50 °C et 26,50 °C (figure 1). Les moyennes journalières des maxima et minima de

température ont été respectivement de 37,49 °C et 22,4 °C.

13

151821242730333639424548

1/4 8/4 15/422/4 29/4 6/5 13/520/5 27/5 3/6 10/617/6 24/6 1/78/7 15/722/7 29/7

Dates

Tem

péra

ture

s (°

C)

T(°C) min T(°C) max

Figure 1. Evolution des températures maximale et minimale durant l’essai (Avril-Juillet 2008, station CNRA de Bambey).

Au cours de l’essai, les maxima de l’humidité relative ont varié entre 39 et 100 % et les minima

entre 8 et 80 % (figure 2). Les moyennes journalières des humidités relatives maximale et

minimale ont été respectivement de 89,4 % et 33,2 %. Les humidités relatives ont

significativement augmenté à partir de la 2ème décade de juin à cause de l’influence des pluies.

5152535455565758595

105

1/4 8/4 15/422/429/4 6/5 13/520/527/5 3/6 10/617/624/6 1/78/7 15/722/729/7

Dates

Hu

mid

ité r

elat

ive

(%)

HR(% ) min HR(% ) max

Figure 2. Evolution des humidités relatives maximale et minimale durant l’essai (Avril-Juillet 2008, station CNRA de Bambey).

II.2.1.3. Vitesse du vent et durée d’insolation

Durant la période expérimentale, la vitesse du vent mesurée par un anémomètre de type totaliseur à

2 m du sol a été très variable dans le temps. Elle a en effet fluctué entre 1,5 et 4,6 m.s-1 avec une

moyenne de 2,9 m.s-1 (figure 3).

14

0.00.51.01.52.02.53.03.54.04.55.0

1/4 6/4 11/4 16/4 21/4 26/4 1/5 6/5 11/5 16/5 21/5 26/5 31/5 5/610/6 15/6 20/6 25/6 30/6

Dates

Vite

sse

vent

(m

/s)

Vitesse vent (m/s)

Figure 3. Evolution de la vitesse du vent durant l’essai (Avril-Juillet 2008, station CNRA de Bambey).

Durant la période expérimentale, la durée réelle d’insolation du jour a été mesurée par un

héliographe de type Campbell-Stokes et s’est révélée très peu stable du fait de la couverture

nuageuse très variable dans la journée d’un jour à un autre. Elle a en effet fluctué entre 0,2 et 11,2

heures avec une moyenne de 8,6 heures (figure 4).

0123456789

101112

1/4 8/4 15/422/429/4 6/5 13/5 20/527/5 3/6 10/617/6 24/6 1/78/7 15/722/7 29/7

Dates

Dur

ée d

'inso

latio

n (h

)

Durée d'insolation (h)

Figure 4. Evolution de la durée d’insolation durant l’essai (Avril-Juillet 2008, station CNRA de Bambey).

15

II.2.2. Le sol

On se réfère ici à des analyses physico-chimiques du site expérimental effectuées en 1997 au

laboratoire d’analyse de sol de l’ISRA. Le sol de type dior-deck (sablo-argileux) est caractérisé par

des teneurs faibles en matière organique (0,27 à 0,34%) et en azote (0,16 à 0,19 ‰). La faible

teneur en matière organique associée à une teneur en argile également faible (3,5 à 5,6 %), se

traduit par un complexe adsorbant pauvre (capacité d’échanges cationiques faible, 1,7 à 2,2

meq.100g-1) et un faible pouvoir tampon (pH acide). Cependant, les teneurs en phosphore sont

nettement au-dessus des seuils de déficience. La capacité de rétention hydrique est faible en raison

du pourcentage élevé de sables (91 à 95 %) dans les horizons de surface. En moyenne, l’humidité

au point de flétrissement permanent (pF 4,2) est de 14 mm.m-1; elle passe à 134,5 mm.m-1 à la

capacité au champ (pF 3), soit une réserve utile maximale de 120,5 mm.m-1 (Sarr et al., 1999). De

par ses caractéristiques physico-chimiques, ce sol est représentatif des sols dégradés rencontrés

dans la zone (Pieri, 1989).

II.3. Matériel végétal

Le matériel végétal utilisé dans cette étude est composé de 25 génotypes et variétés de niébé

choisis parmi les 220 évalués dans l’essai global. Sur les 25 génotypes, certains ont un port

rampant ou semi rampant, tandis que d’autres sont de port semi érigé ou érigé (cf. tableau 9 dans la

troisième partie), ceci dans le souci de bien évaluer les paramètres phénologiques et agro

morphologiques (dates de floraison et de maturité, hauteur de la tige principale, surface foliaire de

la canopée). Les variétés et génotypes utilisés sont:

- ISRA / Sénégal : 58-57, Mougne, Bambey21, Mouride, Melakh et Yacine;

- IITA / Nigeria : TVu 2723, TVu 6464, TVu 10100, Ifé Brown, IT85F-867-5, IT93K-503-1,

IT97K-499-39, IT98K-1111-1, Big Baff (IT82E-18);

- UCR et Device/ California: CB5, CB27, CB46, 524B, Early scarlet;

- INERA / Burkina Faso: KVx 525 et KVx 61-1-1;

- SARI / Ghana: Apagbaala et Marfo Tuya;

- Australie : Sasaque.

16

II.4. Dispositif, unité expérimentale et facteur étudié

Le dispositif général de l’essai est en blocs aléatoires complètement randomisés à 3 répétitions.

Chaque bloc ou répétition comprend 5 sous blocs. Chaque sous bloc compte 44 parcelles soit en

total 660 parcelles. Les blocs / répétitions sont séparés entre eux par 2 m et entourés de 3 à 5 m de

bordures semées avec deux variétés assez précoces (Melakh et Yacine).

L’unité expérimentale est représentée par une parcelle de 2 lignes de 3 m de long séparées entre

elles par une distance de 0,50 m. Les parcelles sont séparées entre elles par 0,75 m. La densité de

semis a été de 50 cm x 50 cm soit 40 000 plants à l’hectare. La zone (carré de rendement) prévue

pour la récolte et l’évaluation des paramètres et composantes de rendement est de 0.5 m x 1 m au

milieu de la parcelle.

En pratique, tous les génotypes ont été soumis au même régime hydrique du semis à la récolte.

L’irrigation a été uniforme et arrêtée au 30ème Jas (Jours après semis). Par conséquent, le seul

facteur étudié fut le génotype avec 25 niveaux ou traitements qui présentent une grande diversité

de provenance.

II.5. Conduite de la culture

L’essai a été conduit sur une jachère suivie d’un précédent cultural sorgho hivernage 2007 sur une

sole expérimentale clôturée de la station du CNRA de Bambey. La culture a été mise en place sur

un sol de type dior-deck en contre saison chaude afin de pouvoir contrôler l’application d’un

déficit hydrique et évaluer aussi les réponses des génotypes au stress hydrique et à la chaleur. Un

labour à une profondeur de 15 cm a été effectué suivi d’un hersage. Une nouvelle irrigation (20

mm) a été effectuée suivi du semis en humide le 17 Avril avec des semences traitées au Granox à

raison de 2 à 3 graines par poquet.

Le démariage à un pied par poquet a été effectué 2 semaines après le semis suivi d’un épandage

d’engrais ternaire NPK (6-20-10) à la volée à la dose de 150 kg/ha. Un premier binage a été

effectué après l’apport de l’engrais à l’aide d’une traction animale (cheval). Des traitements

phytosanitaires ont été réalisés le 25 mai à l’endosulfan et au Thimul35 afin de contrôler les dégâts

que causeraient les insectes piqueurs - suceurs et vecteurs de virus.

17

II.6. Observations et mesures

II.6.1. Suivi de la phénologie

Un suivi régulier des différents stades de développement a été réalisé sur les parcelles

élémentaires. Les dates de 50 % de levée et les densités de levée (nombre de plants présents sur la

parcelle au 20ème Jas) ont été déterminées sur chaque parcelle.

Les dates d’apparition des premières fleurs ont été notées sur l’ensemble des parcelles. La

floraison a été suivie journalièrement pour la détermination de la date de 50 % floraison. Les dates

de maturité physiologique des gousses ont été notées à partir des observations régulières de

l’ensemble des plants de la parcelle.

Le type de port des plants a été noté à partir de la date de 50 % floraison.

Le type de croissance (déterminée ou indéterminée) de tous les génotypes a été évalué entre la date

de 50 % floraison et la maturité.

II.6.2. Paramètres de développement et de croissance L’estimation de la quantité de matière sèche aérienne produite a été faite aux 42ème et 64ème Jas.

Pour cela deux pieds ont été prélevés de façon aléatoire sur chaque parcelle (hors carré de

rendement). Après séchage au soleil en serre (5 jours) puis à l’étuve à 70°C pendant 48 h, les

mesures des poids secs des fanes (tiges et feuilles) ont été réalisées à l’aide d’une balance de

précision (Balance METTLER PJ 3600)

La hauteur de la tige principale des plants a été mesurée sur un échantillon de 3 plants par parcelle

à 60ème Jas à l’aide d’une règle graduée de 0,5 m. Le nombre de branches secondaires a été aussi

compté sur un échantillon de 3 plants par parcelle puis ramené à une valeur moyenne pour chaque

génotype. Par contre, les génotypes IT93K-503-1 et Yacine ont chacun 2 plants.

Deux méthodes ont été utilisées pour déterminer l’évolution de l’indice de surface foliaire (LAI)

du couvert végétal, qui est la surface des feuilles par unité de surface de sol: une méthode

indirecte, par utilisation d’un appareil nommé LAI-2000 (©LICOR) qui permet des mesures

rapides, nombreuses permettant le suivi du développement foliaire d’un couvert et une méthode

directe, par prélèvement de plantes, puis détermination de la surface réelle des feuilles par un

planimètre optique au laboratoire.

18

Mesures indirectes au LAI-2000 :

Le LAI-2000 (Model LAI-2000, Li-cor, Inc., Lincoln, Nebraska 68504, USA) permet la mesure du

LAI et de la fraction de rayonnement transmise au sol (DIFN). Ces variables ont été mesurées aux

47ème et 56ème JAS entre 7 et 9 heures du matin (comme cela est recommandé).

Dans la pratique, au niveau de chaque parcelle, trois séries de mesures sont effectuées, et chacune

est composée de :

- une mesure de la radiation incidente, effectuée au-dessus du couvert;

- quatre mesures de la radiation transmise (arrivant au sol), effectuées en dessous du couvert

le long des diagonales formées par 4 poquets.

Au total, l’appareil considère 12 couples de mesures (radiation incidente, radiation transmise) à

partir desquels il calcule le LAI moyen et le pourcentage moyen de radiation transmise au sol à

travers le couvert végétal (DIFN).

Mesures directes par prélèvements et planimètre :

Le planimètre (Delta-T MK2 (de type AMS, Devices, Ltd, Cambridge, England). est muni d’un

tapis roulant (système de convoyeur avec deux courroies transparentes) où sont déposées les

folioles et d’une caméra qui restitue l’image sur un écran et les surfaces balayées sont calculées

automatiquement, cumulées et affichées sur l’écran. Avant chaque mesure, l’appareil est

préalablement étalonné à l’aide de disques de surface connue (10 cm2 et 50 cm2).

II.6.3. Evaluation de l’impact de la sécheresse sur les génotypes

Scoring de Mai-Kodomi (1999)

Elle a consisté à évaluer visuellement l’impact de la sécheresse en notant les changements de

couleur, le flétrissement, l’enroulement et la sénescence des feuilles en utilisant une échelle de 1 à

5 où 1 correspond à l’état où aucun changement n’est noté sur les feuilles et 5 indique la

sénescence extrême des feuilles :

1 : feuilles vertes et turgescentes;

2 : feuilles vertes et légèrement flétries;

3 : feuille d’un vert- jaune avec un flétrissement modéré;

4 : feuilles jaunâtres avec un flétrissement sévère;

5 : feuilles totalement sénescentes, marron ou même mortes.

19

Abscissions florales et avortements

Aussi, nous avons évalué la sensibilité / tolérance des différents génotypes en notant des cas

d’abscissions florales et avortements sur les pédoncules floraux. Ces dommages peuvent être dus à

des températures élevées (> 40°C) ou à l’effet accentué d’un stress hydrique sévère (Dow. El

Madina et Hall 1986).

Attaques d’insectes, virus et champignons

Des présences d’insectes ont été constatées et notées dans certaines parcelles sur lesquelles des

pieds sont souvent totalement séchés à l’état vert ou présentent un rabougrissement net (nanisme).

Ces dégâts sont sans doute la conséquence de la pression des ennemis de la culture

(Macrophomina sp., Aphis, Ootheca etc.). L’intensité de ces dommages pourrait être due aux

conditions de sécheresse (stress hydrique et chaleur).

II.6.4. Le rendement et ses composantes

Rendement total en graines

A la récolte, le nombre de plants présents sur le carré de rendement a été compté pour la

détermination de la densité à la récolte. Les génotypes ayant présenté une grande hétérogénéité par

rapport au nombre de plants restant sur la parcelle et dans le souci de récupérer le maximum de

semences pour les essais à venir, les carrés de rendement ont varié selon les cas : lorsque nous

avons au milieu de la parcelle 4, 6, 8 10 12 pieds, les carrés de rendement sont respectivement de

1 ; 1,5 ; 2 ; 2,5 ; 3 m2.

Composantes du rendement

Les composantes du rendement tels que le nombre de gousses par pédoncule, de gousses par plant

et le poids de 100 graines ont été déterminés sur un échantillon de 3 plants par parcelle puis

ramenés à une valeur moyenne pour chaque génotype.

20

TROISIEME PARTIE : RESULTATS ET DISCUSSIONS

III.1. RESULTATS

III.1.1. Suivi phénologique

Les tests de l’analyse de variance révèlent une différence hautement significative (p<0,01) entre

les génotypes pour les dates de levée, d’apparition de la première fleur, de floraison et de maturité

physiologique. La différence entre les génotypes est significative (p<0,05) pour la densité des

plants à 20 Jas (Tableau 1).

Tableau 1. Résultats des Tests Anova pour les paramètres phénologiques

PARAMETRES

Probabilité

Date de levée Densité des plants à 20

20Jas

Date de

1ère fleur

Date de floraison Date de maturité

physiologique

0,000 0,019 0,000 0,000 0,000

III.1.1.1. Levée et densités de levée

Date de levée

L’ensemble des 25 génotypes ont levé entre le 5ème et le 7ème Jas. Le test de classement des

moyennes de Newman et Keuls révèle deux sous ensembles homogènes pour la date de levée dans

lequel on peut distinguer 3 classes (Tableau 2). Les génotypes (524B, Apagbaala, CB5, IT85F-

867-5 et TVu-10100) ont levé les premiers, et les génotypes (IT97K-499-39 et TVu-6464) ont levé

les derniers. En outre, un groupe de 18 génotypes ont une date de levée intermédiaire aux deux

premières.

21

Tableau 2. Sous-ensembles homogènes pour la date de levée N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 524B 3 5.00a Apagbaala 3 5.00a CB5 3 5.00a IT85F-867-5 3 5.00a TVu-10100 3 5.00a 58-57 3 5.33ab 5.33ab CB27 3 5.33ab 5.33ab Early Scarlet 3 5.33ab 5.33ab IT98K-1111-1 3 5.33ab 5.33ab KVx525 3 5.33ab 5.33ab Mougne 3 5.33ab 5.33ab Mouride 3 5.33ab 5.33ab TVu-2723 3 5.33ab 5.33ab IT93K-503-1 2 5.50ab 5.50ab Yacine 2 5.50ab 5.50ab CB46 (Parent) 3 5.67ab 5.67ab KVx-61-1-1 3 5.67ab 5.67ab Marfo Tuya 3 6.00ab 6.00ab Melakh 3 6.00ab 6.00ab Sasaque 3 6.00ab 6.00ab Bambey21 3 6.33ab 6.33ab Big Baff (IT82E-18)

3 6.67ab 6.67ab

Ife Brown 3 6.67ab 6.67ab IT97K-499-39 3 7.00b TVu-6464 3 7.00b

Densités des plants à 20 Jas

Bien que l’analyse de variance ait révélé une différence significative entre les génotypes, le test de

classement des moyennes de Newman et Keuls ne distinguent pas différents sous ensembles

homogènes (Tableau 3). A 20 Jas, du fait de la bonne levée notée dans l’ensemble, tous les

génotypes ont présenté une bonne densité ; comprise entre 10 et 14 pieds par parcelle sur un

maximum de 14 (soit 71 à 100 % de levée et des densités comprises entre 29 514 et 40 000 plants

par hectare).

22

Tableau 3. Sous-ensembles homogènes pour la densité des plantes N Sous-ensemble GENOTYPES Nombre de

pieds/parcelle Densité à l’hectare

IT97K-499-39 3 10.33 29514 IT93K-503-1 2 11.00 31429 Early Scarlet 3 11.33 32371 Marfo Tuya 3 11.67 33343 Bambey21 3 12.33 35229 Big Baff (IT82E-18)

3 12.33 35229

CB5 3 12.33 35229 Ife Brown 3 12.33 35229 Apagbaala 3 12.67 36200 Melakh 3 12.67 36200 Mouride 3 12.67 36200 Sasaque 3 12.67 36200 Yacine 2 13.00 37143 58-57 3 13.33 38086 Mougne 3 13.33 38086 TVu-2723 3 13.33 38086 TVu-6464 3 13.33 38086 524B 3 13.67 39057 CB27 3 13.67 39057 KVx525 3 13.67 39057 TVu-10100 3 13.67 39057 CB46 (Parent) 3 14.00 40000 IT85F-867-5 3 14.00 40000 IT98K-1111-1 3 14.00 40000 KVx-61-1-1 3 14.00 40000

III.1.1.2. Floraison

Date d’émission de la première fleur

Il y a une différence significative entre les dates d’émission de la première fleur des 25 génotypes.

Le test de classement des moyennes de Newman et Keuls permet de distinguer neuf (9) sous

ensembles homogènes (Tableau 4) que nous pouvons résumer en 3 grandes classes :

a). Les génotypes (Sasaque, TVu-2723, IT85F-867-5, CB27, CB46, 524B, CB5, Early sacrlet, Apagbaala,

Bambey 21 et Melakh) qui ont émis leur première fleur entre 34 et 40 Jas.

b). Les génotypes (Mouride, Ife Brown, Big Baff, KVx-61-1-1, Yacine, KVx525, TVu-6464 et Mougne)

qui ont émis leur première fleur entre 40 et 45 Jas.

c). Les génotypes (IT98K-1111-1, TVU-10100, IT93K-503-1, Marfo Tuya, IT97K-499-39 et 58-57) qui

ont émis leur première fleur entre 45 et 51 Jas.

23

Tableau 4. Sous-ensembles homogènes de la date d’émission de la première fleur

N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 3 4 5 6 7 8 9 Sasaque 3 34.00 TVu-2723 3 35.33 35.33 IT85F-867-5 3 35.67 35.67 CB27 3 36.33 36.33 36.33 CB46 (Parent) 3 36.33 36.33 36.33 524B 3 36.67 36.67 36.67 CB5 3 36.67 36.67 36.67 Early Scarlet 3 37.33 37.33 37.33 37.33 Apagbaala 3 38.33 38.33 38.33 38.33 38.33 Bambey21 3 38.33 38.33 38.33 38.33 38.33 Melakh 3 40.00 40.00 40.00 40.00 40.00 Mouride 3 41.67 41.67 41.67 41.67 41.67 Ife Brown 3 42.00 42.00 42.00 42.00 Big Baff (IT82E-18)

3 42.33 42.33 42.33 42.33

KVx-61-1-1 3 42.33 42.33 42.33 42.33 Yacine 2 43.00 43.00 43.00 KVx525 3 44.00 44.00 44.00 TVu-6464 3 44.00 44.00 44.00 Mougne 3 44.67 44.67 44.67 IT98K-1111-1 3 46.00 46.00 46.00 TVu-10100 3 48.00 48.00 IT93K-503-1 2 48.50 48.50 Marfo Tuya 3 49.33 IT97K-499-39 3 49.67 58-57 3 50.67

Date de 50 % de floraison

Les dates de 50 % de floraison ont également été très variées pour les 25 génotypes. Le test de

classement des moyennes de Newman et Keuls révèle huit (8) sous ensembles homogènes

(Tableau 5) que nous pouvons regrouper en 4 principaux groupes :

a). Les génotypes (Sasaque, IT85F-867-5, TVu-2723, 524B, CB27, CB46, CB5, Bambey 21, Early

sacrlet) qui ont atteint 50% de floraison entre 35 et 40 Jas.

b). Les génotypes (Apagbaala, Melakh, Mouride, Ife Brown, Big baff) qui ont atteint 50 % de floraison

entre 40 et 45 Jas.

c). Les génotypes (KVx-61-1-1, TVu-6464, Yacine, KVx525, Mougne, TVu-10100) qui ont atteint 50

% de floraison entre 45 et 50 Jas.

24

d). Les génotypes (IT99K-499-39, IT98K1111-1, IT93K-503-1, Marfo Tuya et 58-57) qui ont

atteint 50 % de floraison entre 50 et 55 Jas.

Tableau 5. Sous-ensembles homogènes pour la date à 50 % de floraison

N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 3 4 5 6 7 8 Sasaque 3 35.67 IT85F-867-5 3 36.67 36.67 TVu-2723 3 36.67 36.67 524B 3 37.67 37.67 CB27 3 37.67 37.67 CB46 (Parent) 3 38.00 38.00 CB5 3 39.33 39.33 39.33 Bambey21 3 39.67 39.67 39.67 Early Scarlet 3 40.00 40.00 40.00 40.00 Apagbaala 3 40.67 40.67 40.67 40.67 40.67 Melakh 3 41.33 41.33 41.33 41.33 Mouride 3 44.00 44.00 44.00 44.00 Ife Brown 3 44.67 44.67 44.67 Big Baff (IT82E-18)

3 45.00 45.00

KVx-61-1-1 3 45.33 45.33 TVu-6464 3 45.67 45.67 Yacine 2 46.50 KVx525 3 47.33 Mougne 3 47.33 TVu-10100 3 49.00 49.00 IT97K-499-39 3 52.33 52.33 IT98K-1111-1 3 52.33 52.33 IT93K-503-1 2 52.50 52.50 Marfo Tuya 3 54.00 58-57 3 54.33

III.1.1.3. Maturité

Dans la logique des dates d’émission de la première fleur et de 50 % de floraison, les 25 génotypes

ont présenté des dates de maturité physiologique très variées. Le test de classement des moyennes

de Newman et Keuls révèle quatre (4) sous ensembles homogènes (Tableau 6) à partir desquels

nous pouvons former 2 grands groupes :

a). Un premier groupe formé de TVu-2723, Sasaque, IT85F-867-5, Bambey 21, CB27, Apagbaala,

CB46, Early scarlet, 524B, CB5, KVx-61-1-1, Melakh, Big Baff, Ife Brown, KVx525, Mouride

qui a atteint la maturité physiologique entre 55 et 65 Jas. Ces génotypes se sont révélés très

précoces, peut être en réponse (esquive ou échappement) au déficit hydrique.

25

b). Un second groupe formé de TVu-6464, Mougne, Yacine, IT98K-1111-1, IT99K-499-39, TVu-

10100, 58-57, IT93K-503-1 qui a atteint la maturité entre 65 et 75 Jas. N’étant pas pour autant

tardifs, ces génotypes ont bouclé leur cycle moins rapidement que les précédents.

La variété Marfo Tuya ayant émis sa première fleur à 50ème Jas et atteint le stade de 50 % de

floraison à 54ème Jas n’a pas connu de récolte à la fin de l’essai par faute de production.

Tableau 6. Sous-ensembles homogènes suivant la date de maturité N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 3 4 TVu-2723 3 55.67 Sasaque 3 56.00 IT85F-867-5 3 58.33 58.33 Bambey21 3 58.67 58.67 CB27 3 58.67 58.67 Apagbaala 3 59.00 59.00 CB46 (Parent) 3 59.33 59.33 Early Scarlet 3 59.33 59.33 524B 3 60.00 60.00 CB5 3 60.00 60.00 KVx-61-1-1 3 61.33 61.33 61.33 Melakh 3 61.33 61.33 61.33 Big Baff (IT82E-18)

3 63.33 63.33 63.33

Ife Brown 3 63.67 63.67 63.67 KVx525 3 64.33 64.33 Mouride 3 64.33 64.33 TVu-6464 3 65.00 65.00 Mougne 3 65.33 65.33 Yacine 2 65.50 65.50 IT98K-1111-1 3 68.00 68.00 IT97K-499-39 3 68.33 68.33 TVu-10100 3 72.67 58-57 3 74.00 IT93K-503-1 2 74.00

III.1.1.4. Port et type de croissance

-Port

Le port des différents génotypes a été déterminé à la date de 50 % de floraison. Nous remarquons

qu’en plus de Bambey 21, Sasaque, Ife brown, Big Baff et IT85F-867-5, toutes les variétés d’origine

américaine ont un port érigé, alors que toutes les autres variétés ont un port semi rampant à

rampant (Tableau 7)

26

Tableau 7. Répartition des génotypes suivant leur port

-Type de croissance

Le type de croissance des génotypes a été déterminé dans la dernière phase de leur cycle de

développement, phase au cours de laquelle ils sont censés ne plus produire de nouveaux organes

(bourgeons végétatifs et fleurs). Le Tableau 8 montre la distribution des 25 génotypes selon leur

type de croissance. A l’exception de Melakh, Yacine et Mouride, toutes les variétés à port érigé ont

une croissance déterminée. En plus de 58-57 et Mougne, les génotypes des collections du Burkina

Faso, du Ghana et de l’IITA ont présenté un type de croissance indéterminée caractérisée par leur

« capacité de reprise » à la levée du stress hydrique par les premières pluies du mois de juin. En

effet, dans des conditions d’alimentation hydrique favorable retrouvées, ces génotypes ont

recommencé à produire de nouveaux organes végétatifs et reproducteurs.

Tableau 8. Répartition des génotypes suivant leur type de croissance TYPE DE CROISSANCE X GENOTYPES Déterminée Indéterminée CB5 58-57 CB27 Mougne 524B KVx525 Sasaque KVx-61-1-1 Melakh Apagbaala Yacine Marfo Tuya Mouride TVu-2723 Bambey21 TVu-6464 Early Scarlet TVu-10100 CB46 IT93K-503-1 Ife Brown IT97K-499-39 IT85F-867-5 IT98K-1111-1 Big Baff (IT82E-18)

PORT X GENOTYPES

Erigé Rampant Semi érigé Semi rampant CB5 58-57 Mougne Melakh CB27 Marfo Tuya Mouride Yacine 524B TVu-2723 Apagbaala

Sasaque TVu-6464 KVx525 Bambey21 TVu-10100 KVx-61-1-1 Ife Brown IT97K-499-39 IT93K-503-1

Early Scarlet IT98K-1111-1 CB46 (Parent) IT85F-867-5

Big Baff (IT82E-18)

27

Le récapitulatif des mesures et observations effectuées est présenté dans le Tableau 9 qui suit. Par

ailleurs, ce tableau donne des renseignements sur la phénologie des 25 génotypes étudiés.

Tableau 9. Récapitulatifs de la phénologie des 25 génotypes

GENOTYPES Date de

levée (Jas)

Densité à l'ha à 20 Jas

Dates de 1ère fleur (Jas)

Dates de 50%

floraison (Jas)

Dates de maturité

(Jas)

Type de Croissance

Port

524B 5,00 39057 36,67 37,67 60 Déterminée Erigé 58-57 5,33 38086 50,67 54,33 74 Indéterminée Rampant Apagbaala 5,00 36200 38,33 40,67 59 Indéterminée Semi

rampant Bambey21 6,33 35229 38,33 39,67 58,67 Déterminée Erigé Big Baff (IT82E-18)

6,67 35229 42,33 45,00 63,33 Déterminée Erigé

CB27 5,33 39057 36,33 37,67 58,67 Déterminée Erigé CB46 (Parent)

5,67 40000 36,33 38,00 59,33 Déterminée Erigé

CB5 5,00 35229 36,67 39,33 60 Déterminée Erigé Early Scarlet 5,33 32371 37,33 40,00 59,33 Déterminée Erigé Ife Brown 6,67 35229 42,00 44,67 63,67 Déterminée Erigé IT85F-867-5 5,00 40000 35,67 36,67 58,33 Déterminée Erigé IT93K-503-1 5,50 31429 48,50 52,50 74 Indéterminée Semi

rampant IT97K-499-39 7,00 29514 49,67 52,33 68,33 Indéterminée Semi

érigé IT98K-1111-1 5,33 40000 46,00 52,33 68 Indéterminée Semi

rampant KVx525 5,33 39057 44,00 47,33 64,33 Indéterminée Semi

rampant KVx-61-1-1 5,67 40000 42,33 45,33 61,33 Indéterminée Semi

rampant Marfo Tuya 6,00 33343 49,33 54,00 Indéterminée Rampant Melakh 6,00 36200 40,00 41,33 61,33 Déterminée Semi

rampant Mougne 5,33 38086 44,67 47,33 65,33 Indéterminée Semi

érigé Mouride 5,33 36200 41,67 44,00 64,33 Déterminée Semi

érigé Sasaque 6,00 36200 34,00 35,67 56 Déterminée Erigé TVu-10100 5,00 39057 48,00 49,00 72,67 Indéterminée Semi

érigé TVu-2723 5,33 38086 35,33 36,67 55,67 Indéterminée Semi

érigé TVu-6464 7,00 38086 44,00 45,67 65 Indéterminée Semi

érigé Yacine 5,50 37143 43,00 46,50 65,5 Déterminée Semi

rampant

28

III.1.2. Impact de la sécheresse sur les génotypes

III.1.2.1. Scoring de Mai-kodomi

L’évaluation de l’impact de la sécheresse sur les 25 génotypes par le scoring de Mai-kodomi nous

a permis de distinguer 4 groupes suivant leurs niveaux de tolérance/sensibilité (Tableau 10). Les

génotypes ayant le score 1 (feuilles vertes et turgescentes) seraient résistantes à la sécheresse

tandis que ceux ayant le score 4 (feuilles jaunâtres avec un flétrissement sévère) seraient très

susceptibles à la sécheresse. En outre, certains génotypes présentent des comportements

intermédiaires (score 2 et 3) des deux extrêmes. Cependant, le score 5 (feuilles de couleurs marron,

totalement mortes) n’a été attribué à aucun génotype dans les conditions de sécheresse de cet essai.

Tableau 10. Répartition des génotypes suivant leur score

SCORES 1 2 3 4

58-57 Mouride 524B Melakh IT93K-503-

1 Mougne CB5 TVu-2723

IT97K-499-39

KVx525 CB27 Apagbaala

IT98K-1111-1

IT85F-867-5

Yacine KVx-61-1-1

Marfo Tuya Sasaque Big Baff (IT82E-18) TVu-10100 Bambey21 CB46 (Parent)

Ife Brown Early Scarlet TVu-6464

III.1.2.2. Abscission florale, avortement et macrophomina

En ce qui concerne le fonctionnement et état sanitaire des génotypes en conditions de sécheresse,

pour les trois caractères étudiés, les variétés présentent une grande variation (Tableau 11). Ainsi

pour l’abscission florale, le phénomène n’a été présent qu’avec la variété Melakh alors que les

autres variétés semblent avoir un bon comportement. En ce qui concerne l’avortement, les variétés

d’origine sénégalaise (58-57, Bambey 21, Melakh, Mougne et Mouride) présentent une grande

susceptibilité. D’autres variétés comme CB5, Early Scarlet, Ife Brown semblent être très

susceptibles au phénomène de stress imposé durant le 30ème jour. Par rapport au macrophomina, on

note également la présence de plusieurs variétés qui présentaient des symptômes de la maladie.

29

Tableau 11. Sous ensembles homogènes suivant l’abscission florale, avortement et le

macrophomina

GENOTYPES Abscission florale

Avortement Macrophomina

524B - - - 58-57 - + - Apagbaala - - - Bambey21 - + + Big Baff (IT82E-18) - - + CB27 - - + CB46 (Parent) - - - CB5 ++ - Early Scarlet - + - Ife Brown - + - IT85F-867-5 - - - IT93K-503-1 - - ++ IT97K-499-39 - - - IT98K-1111-1 - - + KVx525 - - - KVx-61-1-1 - + - Marfo Tuya - - - Melakh + + - Mougne - ++ + Mouride - ++ - Sasaque - + + TVu-10100 - + - TVu-2723 - - + TVu-6464 - + ++ Yacine - ++ -

- = phénomène absent ; + = phénomène présent ; ++ = phénomène très marqué

II.1.3. Croissance et développement

III.1.3.1. Hauteur de la tige principale à la récolte

En ce qui concerne la hauteur de la tige principale, les 25 génotypes se divisent en 2 sous

ensembles. L’écart entre la taille de la variété la plus haute et la variété la plus courte est de 27,66

cm. Cependant en terme d’adaptation à la sécheresse, la hauteur de la tige principale peut être un

critère important pour les variétés à croissance déterminée pour la production de graine. La

majorité des variétés ont une croissance comprise entre 17,67 et 27,33 cm. Pour le second sous

ensemble, les variétés ont une croissance plus rapide ou une morphologie qui leur permette une

meilleure compétition pour la taille.

30

Tableau 12. Sous ensembles homogènes suivant la hauteur de la tige principale N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 Ife Brown 3 17.67 KVx-61-1-1 3 19.00 Yacine 2 19.00 Big Baff (IT82E-18) 3 19.33 Apagbaala 3 20.00 Bambey21 3 20.00 Early Scarlet 3 20.00 Mouride 3 20.00 Sasaque 3 20.33 524B 3 21.67 CB46 3 21.67 CB5 3 22.00 IT97K-499-39 3 22.33 IT85F-867-5 3 22.67 Marfo Tuya 3 24.33 CB27 3 24.57 IT98K-1111-1 3 24.67 KVx525 3 25.33 TVu-6464 3 27.33 58-57 3 29.33 29.33 TVu-10100 3 35.00 35.00 Melakh 3 36.67 36.67 Mougne 3 38.00 38.00 IT93K-503-1 2 44.00 TVu-2723 3 45.33

III.1.3.2. Nombre de branches secondaires à la récolte

L’évaluation du nombre de branches secondaires sur 25 génotypes a été faite au 60ème Jas. C’est

ainsi que le test de classement des moyennes de Newman et Keuls révèle 3 groupes suivant

l’échantillon choisi (Tableau 13). Les génotypes qui ont un développement moins important et qui

produisent un nombre restreint de branches secondaires occupent une petite surface au niveau des

parcelles. Ils ont un nombre compris entre 3 et 4, alors que les génotypes qui ont un

développement assez important émettent un nombre de 5 à 6. Enfin il y a les génotypes qui ont

donné un nombre important de branches secondaires (58-57, Marfo Tuya, IT93K503-1), ce

nombre est compris entre 7 et 8.

31

Tableau 13. Sous ensembles homogènes suivant le nombre de branches secondaires à la récolte N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 3 Sasaque 3 3.00 TVu-2723 3 3.00 Bambey21 3 3.33 524B 3 4.00 4.00 CB46 (Parent) 3 4.00 4.00 IT85F-867-5 3 4.00 4.00 IT97K-499-39 3 4.00 4.00 Yacine 2 4.00 4.00 CB27 3 4.33 4.33 CB5 3 4.33 4.33 Early Scarlet 3 4.33 4.33 Mouride 3 4.33 4.33 TVu-10100 3 4.33 4.33 Big Baff (IT82E-18)

3 4.67 4.67 4.67

Ife Brown 3 5.00 5.00 5.00 TVu-6464 3 5.00 5.00 5.00 Apagbaala 3 5.33 5.33 5.33 IT98K-1111-1 3 5.67 5.67 5.67 KVx-61-1-1 3 5.67 5.67 5.67 KVx525 3 5.67 5.67 5.67 Melakh 3 6.00 6.00 6.00 Mougne 3 6.33 6.33 6.33 58-57 3 7.00 7.00 7.00 Marfo Tuya 3 7.67 7.67 IT93K-503-1 2 8.50

III.1.3.3. Développement du couvert végétal

Indice de surface foliaire (LAI-2000) à 47 Jas

L’estimation de l’indice de surface foliaire faite sur les 25 génotypes fait ressortir 5 sous-

ensembles selon le test de Duncan (Tableau 14). Ce paramètre a été mesuré au 47ème Jas. Le test de

classement des moyennes de Newman et Keuls fait ressortir 4 groupes homogènes. Les génotypes

qui ont une croissance érigée, développent une surface foliaire plus réduite comprise entre1,2 et

1,55: C’est le cas de TVu-10100, Ife Brown CB27, TVu2723, Sasaque, IT 85F-867-5, CB5, 524B,

CB46 et Mougne. Le deuxième groupe comprend les génotypes dont la surface foliaire est

comprise entre 1,57 et 1,94. Le troisième groupe comprend les génotypes dont la surface foliaire

est comprise entre 2,00 et 2,10. Enfin le quatrième groupe comprend les génotypes dont le port est

semi rampant à rampant avec une surface foliaire allant de 2,10 a 2,34.

32

Tableau 14. Sous ensembles homogènes pour la surface foliaire N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 3 4 5 TVu-10100 3 1.2000 Ife Brown 3 1.3067 1.3067 CB27 3 1.3967 1.3967 1.3967 TVu-2723 3 1.3967 1.3967 1.3967 Sasaque 3 1.4833 1.4833 1.4833 1.4833 IT85F-867-5 3 1.5033 1.5033 1.5033 1.5033 CB5 3 1.5067 1.5067 1.5067 1.5067 524B 3 1.5367 1.5367 1.5367 1.5367 CB46 3 1.5433 1.5433 1.5433 1.5433 Mougne 3 1.5567 1.5567 1.5567 1.5567 Bambey21 3 1.5700 1.5700 1.5700 1.5700 1.5700 Mouride 3 1.6833 1.6833 1.6833 1.6833 1.6833 Big Baff (IT82E-18)

3 1.6900 1.6900 1.6900 1.6900 1.6900

IT93K-503-1 2 1.6950 1.6950 1.6950 1.6950 1.6950 IT97K-499-39 3 1.7233 1.7233 1.7233 1.7233 1.7233 KVx525 3 1.7233 1.7233 1.7233 1.7233 1.7233 Early Scarlet 3 1.8567 1.8567 1.8567 1.8567 1.8567 TVu-6464 3 1.9433 1.9433 1.9433 1.9433 1.9433 Marfo Tuya 3 2.0033 2.0033 2.0033 2.0033 Melakh 3 2.0833 2.0833 2.0833 2.0833 Yacine 2 2.0900 2.0900 2.0900 2.0900 Apagbaala 3 2.1033 2.1033 2.1033 IT98K-1111-1 3 2.1533 2.1533 2.1533 KVx-61-1-1 3 2.2567 2.2567 58-57 3 2.3400

III.1.4. Rendement, composantes de rendement et corrélations

III.1.4.1. Rendement en graines

L’estimation des rendements en grains a été effectuée sur les 25 génotypes suivis pour mieux

connaître la productivité de chaque génotype (Tableau 15). Le test de classement des moyennes de

Newman et Keuls fait ressortir 4 sous-ensembles qui peuvent se classer en 3 groupes :

- groupe1 : génotypes qui ont un rendement compris entre 166,17et 491,34g ;

- groupe2 : génotypes dont le rendement est compris entre 491, 34 et 596,72g ;

- groupe3 : génotypes dont le rendement en grains est compris entre 601,12g et 836,63g.

33

Tableau 15. Sous ensembles homogènes pour le rendement en graine N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 3 4 TVu-6464 3 166.17 CB27 3 203.40 IT93K-503-1 2 226.10 IT97K-499-39 3 305.48 Mougne 3 400.43 Early Scarlet 3 430.21 430.21 Sasaque 3 474.78 474.78 KVx525 3 482.97 482.97 TVu-10100 3 491.34 491.34 Ife Brown 3 520.59 IT98K-1111-1 3 538.34 58-57 3 540.02 IT85F-867-5 3 556.81 556.81 Apagbaala 3 563.40 563.40 Melakh 3 579.28 579.28 Bambey21 3 584.07 584.07 TVu-2723 3 596.72 596.72 KVx-61-1-1 3 601.12 524B 3 646.93 Big Baff (IT82E-18)

3 648.69

Mouride 3 653.77 653.77 Yacine 2 679.30 679.30 CB5 3 752.37 CB46 3 836.63

III.1.4.2. Composantes du rendement

Biomasse sèche aérienne (fane) par plante à la récolte

La mesure de la biomasse aérienne sèche a été faite sur les 25 génotypes pour connaître la

production en fane de chaque génotype qui est aussi un facteur de vigueur végétative. Le test de

classement des moyennes de Newman et Keuls révèle un seul groupe homogène avec des poids

compris entre 25,25 à 62,61g (Tableau 16).

34

Tableau 16. Sous ensembles homogènes pour la biomasse sèche aérienne N Sous-ensemble GENOTYPES 1 Ife Brown 3 25.25 Sasaque 3 25.67 CB27 3 26.43 CB5 3 28.34 524B 3 28.99 KVx-61-1-1 3 29.76 Bambey21 3 31.86 TVu-6464 3 31.91 Big Baff (IT82E-18)

3 33.99

Melakh 3 34.44 TVu-2723 3 34.71 Mouride 3 37.28 CB46 (Parent) 3 39.44 TVu-10100 3 39.62 IT97K-499-39 3 39.71 Early Scarlet 3 40.072 Yacine 2 42.93 IT98K-1111-1 3 43.03 58-57 3 45.34 KVx525 3 49.19 IT93K-503-1 2 49.93 Apagbaala 3 50.067 Mougne 3 51.52 Marfo Tuya 3 55.24 IT85F-867-5 3 62.61

Nombre de gousses par pédoncule

L’estimation du nombre de gousses par pédoncule a été faite sur les 25 génotypes. L’analyse de la

variance a montré un seul groupe (Tableau 17). La variété Marfo Tuya dont le cycle est long n’a

pas pu donner de gousses par pédoncule. Le nombre de gousses par pédoncule varie de 0 à1, 25.

35

Tableau 17. Sous ensembles homogènes pour le nombre de gousses par pédoncule N Sous-ensemble GENOTYPES 1 Marfo Tuya 3 0.00 58-57 3 0.11 KVx525 3 0.37 TVu-10100 3 0.40 Mougne 3 0.44 TVu-6464 3 0.44 IT98K-1111-1 3 0.53 CB5 3 0.56 Ife Brown 3 0.57 IT93K-503-1 2 0.57 IT97K-499-39 3 0.63 Melakh 3 0.63 KVx-61-1-1 3 0.65 IT85F-867-5 3 0.67 Mouride 3 0.67 Bambey21 3 0.68 Sasaque 3 0.70 Big Baff (IT82E-18) 3 0.71 CB27 2 0.71 Early Scarlet 3 0.73 524B 3 0.77 Apagbaala 3 0.81 TVu-2723 3 1.03 CB46 (Parent) 3 1.19 Yacine 2 1.25

Nombre de gousses par plante

Poids de 100 graines

La mesure du poids de 100 graines a été réalisée au niveau des 25 génotypes pour connaître le

rendement de chaque génotype. Le test de classement des moyennes de Newman et Keuls révèle 8

sous ensembles qui se subdivisent en cinq (5) groupes (Tableau19) :

- groupe1 : les génotypes qui ont un poids de 100 graines compris entre 10, 227 et 12, 993g (TVu-

6464 ; TVu-2723 ; 58-57);

- groupe2 : les génotypes qui ont un poids de 100 graines compris entre 13, 770 et 15, 343g

(Mougne ; Sasaque ; Apagbaala ; IT85F-867 ; IT93K503-1 ; Early Scarlet- Big Baff);

36

- groupe3 : les génotypes dont le poids de 100 graines est compris entre 17, 177 et 18, 540g (KVx-

61-1-1 ! Bambey21 ; IT98K-1111-1 ; IT97K-499-39 ; Melakh ; Ife Brown ; Mouride);

- groupe4 : les génotypes dont le poids de 100 graines est compris entre 18, 870 et 21, 295g

(CB27 ; CB46 et de Yacine);

- groupe5 : enfin les génotypes qui ont leur poids de100graines compris entre 22.657 et 25, 707g

(CB5 et 524B).

Tableau 18. Sous ensembles homogènes pour le poids de 100 graines

N Sous-ensembles GENOTYPES 1 2 3 4 5 6 7 8 TVu-6464 3 10.227 TVu-2723 3 10.807 10.807 58-57 3 12.993 12.993 12.993 Mougne 3 13.770 13.770 13.770 13.770 Sasaque 3 13.780 13.780 13.780 13.780 Apagbaala 3 13.863 13.863 13.863 13.863 IT85F-867-5 3 14.077 14.077 14.077 14.077 TVu-10100 3 14.620 14.620 14.620 14.620 IT93K-503-1 2 14.955 14.955 14.955 14.955 Early Scarlet 3 15.343 15.343 15.343 15.343 Big Baff (IT82E-18)

3 15.850 15.850 15.850 15.850

KVx-61-1-1 3 17.177 17.177 17.177 17.177 Bambey21 3 17.503 17.503 17.503 17.503 17.503 IT97K-499-39 3 17.617 17.617 17.617 17.617 17.617 Melakh 3 17.797 17.797 17.797 17.797 17.797 KVx525 3 18.003 18.003 18.003 18.003 18.003 IT98K-1111-1 3 18.167 18.167 18.167 18.167 18.167 Ife Brown 3 18.193 18.193 18.193 18.193 18.193 Mouride 3 18.540 18.540 18.540 18.540 18.540 CB27 3 18.870 18.870 18.870 18.870 CB46 (Parent) 3 20.767 20.767 20.767 Yacine 2 21.295 21.295 CB5 3 22.657 22.657 524B 3 25.707

III.1.4.3. Corrélations

L’analyse de la corrélation entre le rendement en graines et certains paramètres de croissance et de

productivité laisse apparaître plusieurs groupes. D’une part les paramètres qui sont positivement

corrélés au rendement en graines sont le nombre de gousses par pédoncule et le nombre de gousses

37

par plante et d’autre part ceux qui sont négativement corrélés au rendement en graines concernent

la date d’apparition de la 1ere fleur, 50 % floraison et la date de maturité (Tableau 20).

Tableau 19. Relations entre le rendement en graines et les autres paramètres phénologiques et agro morphologiques. Rendement en graines Rendement en graines Corrélation de Pearson 1.000 Signification (bilatérale) . Poids sec fanes Corrélation de Pearson .325 Signification (bilatérale) .006** Date de 1ère fleur Corrélation de Pearson -.136 Signification (bilatérale) .261 Date de 50% floraison Corrélation de Pearson -.089 Signification (bilatérale) .466 Date de maturité Corrélation de Pearson -.233 Signification (bilatérale) .053 Poids sec de 100 graines Corrélation de Pearson .275 Signification (bilatérale) .021* Hauteur de tige principale

Corrélation de Pearson .017

Signification (bilatérale) .889 Nbre de branches secondaires

Corrélation de Pearson -.188

Signification (bilatérale) .120 Nbre gousses / plante Corrélation de Pearson .672 Signification (bilatérale) .000*** Nbre gousses / pédoncule Corrélation de Pearson .623 Signification (bilatérale) .000*** LAI à 47 Jas Corrélation de Pearson .141 Signification (bilatérale) .244

*** La corrélation est très hautement significative

** La corrélation est significative au niveau 0.01 (bilatéral).

* La corrélation est significative au niveau 0.05 (bilatéral).

III.2. DISCUSSION

Les conditions d’expérimentation laissent entrevoir que l’essai a été soumis à un stress hydrique.

En effet la quantité totale d’eau a varié entre 105 et 140 mm et a été apportée sous forme

d’irrigation jusqu’au 30ème Jas. L’effet de la faible quantité d’eau a certainement pu être accentué

par les températures élevées puisque le maximum se situait entre 28,6 et 48,6 mm. Pour les

génotypes utilisés dans cet essai de stress hydrique, qui ont des cycles et des morphologies

différents, la combinaison du stress volontaire imposée au 30ème jour et les températures élevées

ont certainement une conséquence sur l’initiation et le développement des fleurs mais également

38

sur la formation des jeunes gousses. C’est le cas de la variété Marfo Tuya qui a seulement produit

de la biomasse aérienne sans pour autant produire des gousses. Cependant, il y avait des

pédoncules foraux qui avaient complètement avorté. D’autres facteurs d’importance qui ont pu

influer sur la résistance des variétés sont l’humidité relative qui a varié entre 39 et 100 % et la

vitesse du vent qui a été forte parfois atteignant 4,6m/s.

L’application du stress hydrique a entraîné divers résultats, ce qui est la conséquence même de la

variabilité de l’échantillon utilisée. Cependant, les températures moyennes journalières

enregistrées durant cet essai ont varié entre 22,4° C et 37,49° C et ont favorisé une bonne

germination, un bon développement et une bonne croissance des plantes, ce qui est en accord avec

Caron et Granès, (1993) qui stipulent que des températures comprises entre 35 et 38° C sont

optimales pour une bonne germination. Les résultats de l’analyse du suivi phénologique ont

montré une hétérogénéité en ce qui concerne les caractères mesurés (tableau 9). Certaines variétés

ont levé très vite c’est le cas de toutes les variétés à port érigé tandis que d’autres comme les deux

variétés nigériannes (IT97K499-39 et TVu 64-64) ont accusé un retard dans la germination et sont

allées jusqu’à 7 Jas. Pour la date de 50 % floraison Caron et Granès (1993) avaient affirmé que la

durée de floraison des variétés cultivées au Sénégal varie entre 44 et 77 jours. Notre étude a

montré que toutes les variétés cultivées dans cet essai se situent dans cette fourchette de durée de

cycle (Tableau 9).

Toutes les variétés ont atteint leur maturité entre 55 et 75 Jas. Cependant on distingue deux

groupes: Les variétés précoces qui mûrissent très vite (55 à 65 Jas) et les variétés semi tardives qui

mûrissent assez tard (65 à 75 Jas). Pour ces deux groupes, les mécanismes de résistance à la

sécheresse sont apparemment différents avec les variétés précoces ayant acquis le mécanisme de

drought escape (esquive) car pouvant boucler rapidement leur cycle. L’effet de la sécheresse sur

les 25 génotypes était remarquable car il y a des changements agro morphologiques et

phénologiques constatés. Ils sont plus précis au moment des mesures faites avec le LAI pour savoir

l’indice de surface foliaire. Par exemple, les génotypes qui ont des canopées peu développées

reçoivent une petite quantité de lumière du fait de leur surface foliaire réduite, cas de TVu-10100.

Par contre d’autres génotypes développent des canopées plus larges, ce qui leur permet de capter

plus de lumière et ensuite d’effectuer une photosynthèse plus efficiente. La dynamique d’évolution

du LAI et sa dépendance aux conditions d’alimentation hydrique ont été démontrés dans des

études antérieures (Diop, 2002). Là où le LAI a une valeur élevée, le sol reçoit peu de lumière,

c’est le cas de 58-57 ; KVx-61-1-1 ; IT98K-1111-1 dans le (Tableau 14). Pour ces variétés, la

production en graines est faible du fait de la biomasse qui est trop importante. Pour le cas du 58-57

39

son poids de 100 graines est passé à 13g dans cet essai contre 12g en 1960 (Sène, 1966 ; Sène et

Ndiaye, 1971). Cette différence pour le poids de 100 graines peut être due à une compensation

résultant du nombre réduit de gousses durant cet essai. Toujours pour le poids de 100 graines, les

résultats obtenus dans cette analyse ont montré que le poids de 100graines de la variété Melakh

(17.797g) est inférieur à celui obtenu par Cissé et al. (1997) qui est de 19g.

L’effet du stress a eu pour conséquence une dégénérescence chez beaucoup de plants de niébé.

Pour une meilleure appréciation de la sensibilité des variétés au stress, le score de Mai Kodomi a

montré 4 sous classes. Les variétés ayant le meilleur score donc qui ne semblaient pas souffrir de

la sécheresse (58-57, IT93K-503-1, IT97K-499-39, IT98k-1111-1, Marfo Tuya et TVu 10100) ont

eu le meilleur score (Tableau 10), mais n’ont pas donné le meilleur rendement en graines

(Tableau15). Dans les conditions de cette expérimentation, les variétés Mouride, Yacine, CB5 et

CB46 ont donné la meilleure production en graines. Cependant selon le score de Mai Kodomi, ces

variétés ont un score de 3, c'est-à-dire dans le groupe des variétés qui ont souffert sur le plan

végétatif à cause de la sécheresse. Il est possible que ces variétés aient complété l’essentiel de leur

phase reproductive avant l’imposition de la sécheresse. D’autre part il n’y a pas de corrélation

significative entre le rendement en graines et le LAI par contre on notait une corrélation positive

entre les composantes de rendement et le rendement en graines (Tableau 20). La hauteur des tiges

n’a pas été un facteur explicatif du rendement en graines comme c’est souvent le cas avec les

variétés à croissance déterminée et port érigé (Tableau 12). Selon les observations, la sécheresse a

engendré des effets de taches foliaires, de chlorose, de défoliation ou de dessèchement chez les

variétés les plus sensibles.

40

CONCLUSION ET PERSPECTIVES

Le niébé bien qu’étant une plante rustique peut être sensible à des effets combinés de stress

hydrique et de hautes températures. Dans ce travail, il a été possible de faire une distinction entre

les différentes variétés soumises à un stress hydrique au 30ème jour après semis quant à leur

performance. Le type de croissance (déterminée ou indéterminée) et le type de port n’ont pas été

affectés par l’application du stress hydrique. Par contre la maturité a été un peu accélérée par la

période de sécheresse qui a été imposée. Les résultats de cette étude montrent qu’il est possible de

cribler différentes variétés en utilisant le score de Mai Kodomi. Cependant ce paramètre est plus

utile pour différencier les variétés sur l’aspect développement végétatif que sur le plan du stade

reproductif. Il est apparu que les variétés qui ont eu le meilleur score de Mai Kodomi se sont

maintenues plus longtemps sur le terrain et sont donc restées plus vertes. Sur ce plan il s’avère être

un paramètre utile pour l’évaluation de plusieurs variétés pour la résistance ou la tolérance a la

sécheresse. Un autre caractère important dans cette évaluation est le rendement en graines. Cette

étude a révélé que les variétés les plus productives sous ce stress sont les variétés à croissance

déterminée et a port érigé. Toutefois, il apparaît que le comportement final des variétés dépend du

type de stress imposé. Les corrélations faites entre le rendement en graines et certaines

composantes de rendement ont montré une relation positive et significative. Donc à défaut de

pouvoir aller jusqu’au rendement on peut valablement utiliser les paramètres tels que le nombre de

gousses par plante et le nombre de gousses par pédoncule. Dans les environnements sahéliens et

sénégalais en particulier, la sécheresse est un phénomène endémique et il est important que l’on

puisse rapidement et d’une manière fiable pouvoir caractériser le matériel végétal à utiliser soit en

sélection soit en agronomie. C’est le principe du phénotypage. Cette étude a montré également que

certaines variétés de niébé possèdent des mécanismes de résistance induits par la précocité. C’est

ce que l’on appelle drought escape ou l’esquive. Sur la base de la méthodologie utilisée durant cet

essai on peut valablement affirmer que le phénotypage du niébé en condition de sécheresse est

possible si l’on choisit des paramètres appropriés.

Dans la perspective de la continuation de ce travail, une étude plus complète consisterait à faire un

traitement sous stress hydrique et un autre sans stress. Ceci permettrait de voir d’une manière

exacte le comportement des variétés sous les deux régimes hydriques. Ce faisant, on pourra

définitivement affirmer sans aucun doute la validité des paramètres utilisés dans ce phénotypage.

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