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REDVET Rev. Electrón. vet. http://www.veterinaria.org/revistas/redvet 2017 Volumen 18 Nº 5 - http://www.veterinaria.org/revistas/redvet/n050517.html

Diagnóstico postmortem de Aelurostrongylus abstrusus (Railliet, 1898) en un felino mestizo: primer reporte en el municipio de Florencia, Departamento del Caquetá, Colombia http://www.veterinaria.org/revistas/redvet/n050517/051701.pdf

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REDVET - Revista electrónica de Veterinaria - ISSN 1695-7504

Diagnóstico postmortem de Aelurostrongylus abstrusus (Railliet, 1898) en un felino mestizo: primer reporte en el municipio de Florencia, Departamento del Caquetá, Colombia - Postmortem diagnosis of Aelurostrongylus abstrusus (Railliet, 1898) in a mongrel feline: first report in the municipality of Florencia, Department of the Caquetá, Colombia

Sánchez Rojas, Ivan1; Cabrera Gutiérrez, Erika2; Cuellar Ramón, Jader2; Murcia Bastidas, Cristhian2; Sánchez Manchola, Luz2; Sánchez Monge, Erika2.

1 Médico Veterinario Zootecnista, Universidad de la Amazonia. Caquetá, Colombia. 2 Estudiantes, Programa Medicina Veterinaria y Zootecnia, Universidad de la Amazonia. Caquetá, Colombia.

* [email protected] Resumen Aelurostrongylus abstrusus es un nematodo pulmonar que afecta generalmente a felinos menores de un año. Su debut en la parasitología veterinaria ocurrió en 1890. Los vermes adultos de A. abstrusus pueden medir hasta 10 mm de longitud; las larvas depositan los huevos en el parénquima pulmonar, luego de eclosionar resulta la L1 quien migra, mediante los esputos, hacia el tubo digestivo donde es excretada por medio de las heces. En el exterior L1 parasita a moluscos que son los hospedadores intermedios; los roedores o aves actúan como paraténicos. La enfermedad puede ser asintomática o en caso contrario expresar distres respiratorio, epistaxis, taquipnea, diarrea o anorexia. Se recibe en consulta un paciente felino hembra de aproximadamente 8 meses de edad quien presentaba bradipnea, bradicardia, ascitis, caquexia y deshidratación. En la necropsia se evidencia congestión y zonas blanquecinas en pulmón y líquido espumoso amarillento en la tráquea. Mediante estudio histopatológico se obtiene como diagnóstico definitivo neumonía intersticial granulomatosa inducida por A. abstrusus. El presente trabajo, se suma a los pocos reportes realizados en Colombia referentes a estrongilosis cardiopulmonar del gato. Palabras clave: Felino | Aelurostrongylus abstrusus | Estudio histopatológico.



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Abstract Aelurostrongylus abstrusus is a pulmonary nematode that usually affects felines less than one year old. His debut in veterinary parasitology occurred in 1890. Adult worms of A. abstrusus can measure up to 10 mm in length; the larvae deposit the eggs in the lung parenchyma, after hatching it results the L1 who migrates, through the sputum, to the digestive tract where it is excreted through the feces. On the outside L1 parasites mollusks which are the intermediate hosts; Rodents or birds act as paratenic. The disease may be asymptomatic or otherwise respiratory distress, epistaxis, tachypnea, diarrhea or anorexia. A female feline patient of approximately 8 months of age who received bradypnea, bradycardia, ascites, cachexia and dehydration. Necropsy shows congestion and whitish areas in the lung and yellow foamy liquid in the trachea. A granulomatous interstitial pneumonia induced by A. abstrusus is the definitive diagnosis by means of a histopathological study. The present study is in addition to the few reports made in Colombia regarding cat cardiopulmonary strongylosis. Keywords: Feline | Aelurostrongylus abstrusus | Histopathological study. Introducción. La estrongilosis cardiopulmonar del gato es causada por el nematodo Aelurostrongylus abstrusus, denominado así por Railliet tras el primer aislamiento en Alemania en 1890 (Knaus, et al 2014). De acuerdo con Kassai (2002) éste parasito pertenece al Orden Strongylida de la Superfamilia Metastrongyloidea; los vermes más grandes alcanzan medidas de 5-10 mm de longitud y 50-80 μm de ancho y junto a los huevos y otros estadios larvarios parasitan bronquiolos, parénquima pulmonar y posiblemente arteria pulmonar. Se trata de un nematodo de distribución cosmopolita cuya prevalencia oscila en 5,6% siendo los Países Europeos como Portugal, Alemania y Dinamarca los lugares donde se han hecho la mayor cantidad de reportes (Taubert, et al 2009). Miró, et al (1999) manifiesta que las hembras fecundadas de A. abstrusus que se encuentran implantadas a lo largo de la estructura pulmonar depositan huevos de los cuales surge la L1, cuyo tamaño oscila entre 300-400 μm de longitud a 15 μm de diámetro, quienes migran mediante esputos desde los capilares alveolares hasta el tubo digestivo donde son eliminadas mediante las heces. Una vez en el exterior, la L1 atraviesa la piel de algunos gasterópodos como el caracol gigante africano (Achatina fulica) o las babosas comunes (Deroceras reticulatum) donde se lleva a cabo el desarrollo a L3 (Thiengo, et al 2008). Estas larvas pasan a los felinos mediante la ingestión directa de los gasterópodos o por el consumo de pájaros o roedores que actúan como hospedadores paraténicos (Pérez, 2008).



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El proceso en el cual el tercer estadio larvario migra por el sistema linfático desde el lumen intestinal hasta la superficie pulmonar se lleva a término en 24 horas, según afirma Salamanca, et al (2003). Los síntomas de la estrongilosis cardiopulmonar del gato se deben a los huevos y larvas embolizadas en los capilares alveolares que finalmente conlleva a irritación sobre el árbol respiratorio (Miró, et al 1999). Las manifestaciones clínicas, que suelen ser variadas para cada individuo, incluyen tos intensa, estornudos, secreción oculo-nasal y progresiva pérdida de peso (Arlington, 2005). La muda desde L1 a L3 en los hospedadores gasterópodos se lleva a término en un lapso de 17 a 18 días en condiciones favorables o en 4 a 5 semanas en situaciones hostiles (Salamanca, et al 2003). De acuerdo con Zottler, et al (2017) el tiempo que requiere A. abstrusus para iniciar su reproducción desde el momento en que se da la ingestión/contaminación es de 4 a 9 semanas siendo el pico de excreción larval a los 60-120 días post infección. El periodo de patencia del parasito es de 4 meses (Urquhart, 2001). Miró, et al (1999); Urquhart (2001) describen las características macroscópicas que se observan post mortem en los pulmones de animales afectados como granulaciones grisáceas subpleurales que forman cadenas grumosas, focos de infartación hemorrágica de 1-2 mm en el parénquima e hipertrofia e hiperplasia muscular que afecta a bronquiolos, conductos alveolares y capas medias de arteria pulmonar. Informan que también se puede observar alveolos bloqueados por vermes, huevos, larvas y detritus celulares. El diagnóstico de Aelurostrongylus abstrusus resulta en ocasiones frustrante para los clínicos pese a que algunos pacientes infectados no expresan sintomatología contundente y el hallazgo del parásito muchas veces ocurre post mortem. La técnica de diagnóstico más difundida es la de flotación larvaria de Baerman-Wetzel donde se realiza un estudio del material fecal del felino y se logra establecer la presencia o no de larvas de A. abstrusus (Grandi, et al 2005) que se caracterizan por presentar una espina subterminal en forma de S en su extremo posterior (Urquhart, 2001). Diversos autores describen nuevos paradigmas en el diagnóstico del parasito mencionando el análisis molecular (Traversa, et al 2008), citología de lavados transtraqueales-traqueobronquiales (Salamanca, et al 2003) y detección de anticuerpos mediante ELISA o ADN del parasito en las heces (Zottler, et al 2017). La terapéutica con antiparasitarios ofrece alternativas aceptables con variados resultados. Se reconoce la administración de 0,4 mg/kg SC o PO de ivermectina (Grandi, et al 2005), fipronil (s)-metopreno-eprinomectina-praziquantel spot-on (Gianelli, et al 2015), 45 mg de selamectina (Iannino, et al 2013) o 50 mg/kg c/12h /5 días de mebendazol PO (Salamanca, et al 2003).



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En el presente trabajo se describe el diagnostico post mortem de Aelurostrongylus abstrusus en un felino mestizo, siendo el primer caso de estrongilosis cardiopulmonar reportado en el municipio de Florencia, Caquetá – Colombia. Materiales y metodología. A la CPA de la Universidad de la Amazonia ingresa un paciente felino hembra de 1,5 kg de peso, estado reproductivo entero y de aproximadamente 8 meses de edad quien fue llevado por habitantes de la ciudad luego de verla en estado de agonía en las calles. Al realizar la semiotecnia, se evidencia un alto grado de deshidratación, mucosas pálidas, estado corporal deplorable, ascitis y dificultad respiratoria acompañada de bradicardia y bradipnea. Antes del deceso fortuito del paciente se realiza punción venosa yugular para prueba de VIF y VLF que resultaron negativos.

En el examen post mortem se aprecia zonas de congestión y áreas blanquecinas en el pulmón además de espuma amarillenta en la tráquea, hígado congestionado con bordes redondeados, esplenomegalia, zonas hemorrágicas sobre el lumen intestinal y abundante colecta de líquido peritoneal de color amarillo oscuro; los riñones se encontraron isquémicos.

Figura 1. Colecta de líquido espumoso amarillento en lumen traqueal

Figura 2. Isquemia de las estructuras renales.



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Figuras 3 y 4. Estructuras anatómicas de A. abstrusus. Tomado de “First report of Aelurostrongylus abstrusus in domestic land snail Rumina decollata, in the Autonomous city of Buenos Aires” (Cardillo, et al 2014)

El Laboratorio de Patología Veterinaria de la Universidad Nacional de Colombia, donde se remitió pool de órganos, emite como diagnostico neumonía intersticial granulomatosa severa generalizada por Aelurostrongylus abstrusus y nefritis granulomatosa multifocal con vasculitis linfoplasmocitaria; en cuanto a las lesiones, se observaron bronquios con fragmentos de estructuras parasitarias, detritus celulares, parásitos redondos en distintas fases larvarias ingresando y saliendo de la pared alveolar, inflamación granulomatosa y piogranulomatosa además de escasos polimorfonucleares (PMN). En la Figura 1 y 2 se evidencian las lesiones de la tráquea y riñón. Las figura 3 y 4, tomadas de “First report of Aelurostrongylus abstrusus in domestic land snail Rumina decollata, in the Autonomous city of Buenos Aires” cuyos derechos son exclusivos de Cardillo, et al (2014), muestran el aspecto microscópico de las larvas de A. abstrusus conseguidas mediante la técnica de flotación de Baerman. Resultados y discusión. Para el presente caso el diagnóstico de Aelurostrongylus abstrusus se dio mediante análisis histopatológico postmortem pues el deceso fortuito del animal no dio espacio para practicar exámenes paraclínicos. Se trata de una casuística que representa el primer reporte de estrongilosis cardiopuilmonar del gato en el Departamento del Caquetá. Éste se suma a los pocos casos descritos en Colombia como el de Salamanca, et al (2003), por ejemplo. En América Latina se han diagnosticado casos de infestación por A. abstrusus en Brasil y Argentina por Scofield, et al (2005) y Cardillo, et al (2014) respectivamente. Los mayores reportes provienen del continente Europeo y se trata de los realizados por Gianelli, et al (2015); Grandi, et al (2005); Taubert, et al (2009), entre otros.



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Hansen, et al (2017) y Grandi, et al (2005) sugieren que hay una mayor vulnerabilidad de adquirir el parasito en gatos menores de 12 meses por los hábitos de juego, además que la prevalencia aumenta en los felinos que habitan las zonas rurales, por el mayor contacto con los hospedadores paratenicos. Se encuentran semejanzas con el presenta caso, pues el paciente tenía 8 meses de edad y además se presume que habitaba las calles. Los signos clínicos observados en el paciente se asemejan a los reportados por Kassai (2002); Scofield, et al (2005) quienes afirman que la enfermedad puede ser asintomática pero cuando no, se evidencia disnea, estertores, anorexia, epistaxis, diarrea, distres respiratorio y neumonía. Los hallazgos histopatológicos del pulmón descritos por el Laboratorio de Patología de la Universidad Nacional de Colombia coinciden con los mencionados por Miró, et al (1999) y Urquhart (2001) para los casos de infestación por Aelurostrongylus abstrusus. El diagnóstico de la estrongilosis cardiopulmonar del gato suele ser un tanto engorrosa en cuanto que muy pocas veces se realiza coprológico mediante Baerman dentro de los exámenes paraclínicos iniciales; los análisis de materia fecal se limitan, en la mayoría de los casos a las técnicas con solución salina saturada. La situación anterior genera distorsión en el diagnostico conllevando a una prematura muerte del paciente. Sin embargo, los recientes estudios como el de Payo, et al (2008) quien encontró L1 de A. abstrusus en el 17,4% de la población felina en un albergue en Portugal, recalcan la importancia de incluir ésta patología dentro de los diagnósticos diferenciales en enfermedades que cursen con angustia cardiorespiratoria. Los resultados obtenidos por Traversa, et al (2008) demuestran la importancia de la especificidad que debe tener las técnicas de diagnóstico para A. abstrusus. Éste autor encontró que al realizar coprológico con solución de azúcar y Mac Master no se observaban estadios larvarios pero con soluciones de zinc y la técnica de flotación de Baerman se obtenían resultados positivos en los mismos pacientes. Recientemente Traversa, et al (2014), Giannelli, et al (2015) y Traversa, et al (2015) diagnosticaron Troglostrongylus brevior y Angiostrongylus chabaudi en el pulmón de pacientes felinos con alteraciones respiratorias significativas idénticas a las manifestadas en animales con A. abstrusus; se encontró mínimas diferencias morfológicas entre las tres especies. Ante esto, se plantean nuevas y específicas técnicas de diagnóstico como la descrita por Zottler, et al (2017) quien trabaja en utilizar la detección mediante ELISA de MSP (proteína de esperma principal recombinante) en felinos infectados con el gusano pulmonar así como lo ha hecho exitosamente para el diagnóstico de Dictyocaulus viviparus y el gusano pulmonar de las focas. Olsen, et al (2015) demostró fallas en la técnica de flotación Baerman para el diagnóstico de Aelurostrongylus abstrusus. El autor encontró que el recuento de animales infestados de una misma población aumentó de 13,6% con el



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coprológico a 15,6% mediante histopatología del pulmón. Lo anterior sugiere una mayor sensibilidad y especificidad de los estudios histopatológicos por encima de Baerman tal vez por la permanente presencia de larvas en el pulmón y por el contrario intermitente eliminación larvaria mediante las heces. Diversos autores (Iannino, et al 2013; Miró, et al 1999; Salamanca, et al 2003) han listado alternativas terapéuticas para la estrongilosis cardiopulmonar del gato. En este abordaje, Grandi, et al (2005) describe la casi nula efectividad de 400 mcg/kg de ivermectina en contraste con la exitosa utilización de 50 mg/kg de febendazol administrado por vía oral durante 15 días. Recientemente Gianelli, et al (2015) planteó la combinación de fipronil – (s) methoprene – eprinomectina – praziquantel como una valiosa alternativa para el control y tratamiento de endoparásitos que además posee una efectividad entre el 90,5% – 100% contra Aelurostrongylus abstrusus. Conclusiones. La estrongilosis cardiopulmonar es una enfermedad parasitaria ocasionada por Aelurostrongylus abstrusus quien se deposita en las estructuras pulmonares como bronquiolos, alveolos y capilares sanguíneos de gatos generalmente menores de un año de edad. Es una enfermedad de distribución cosmopolita cuyo hospedador intermedio y/o paraténico son los moluscos como las babosas, roedores y pájaros. La presencia de gusanos pulmonares en gatos está siendo cada vez más diagnosticada, por esto se hace indefectible incluir este tipo de afecciones dentro de los diagnósticos diferenciales en alteraciones cardiopulmonares. La inclusión de la técnica de flotación Baerman cobra gran importancia y debe ser más valorada por los veterinarios dedicados a la clínica de felinos por ser el método de diagnóstico vanguardista hasta el momento más efectivo sin desconocer las nuevas propuestas como la detección de MSP con ELISA. Referencias. 1. Arlington, S. 2005. Aelurostrongylus abstrusus induced pneumonia in

cats: pathological and epidemiological findings of 38 cases (1987-1996). Semina: Ciências Agrárias, Londrina, 26(3). Pp 373-380.

2. Cardillo, N; Clemente, A; Pasqualetti, M; Borrás, P; Rosa, A; Ribicich M. 2014. First report of Aelurostrongylus abstrusus in domestic land snail Rumina decollata, in the Autonomous city of Buenos Aires. InVet. 16 (1). Pp 15-22.

3. Giannelli, A; Brianti, E; Varcasia, A; Colella, V; Tamponi, C; Di Paola, G; Knaus, M; Halos, L; Beugnet, F; Otranto, D. 2015. Efficacy of Broadline® spot-on against Aelurostrongylus abstrusus and Troglostrongylus brevior lungworms in naturally infected cats from Italy. Veterinary Parasitology, 209(3). Pp 173-177.



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4. Grandi, G; Calvi, L; Venco, L; Paratici, C; Genchi, C; Memmi, D; Kramer, L. 2005. Aelurostrongylusabstrusus (cat lungworm) infection in five cats from Italy. Veterinary Parasitology, 134 (1). Pp 174-182.

5. Hansen, A; Skarbve, L; Vinther, L; Willesen, J; Pipper, C; Olsen, C; Mejer, H. 2017. Occurrence and clinical significance of Aelurostrongylus abstrusus and other endoparasites in Danish cats. Vet Parasitol. 234: 31-39.

6. Iannino, F; Iannetti, L; Paganico, D; Podaliri, M. 2013. Evaluation of the efficacy of selamectin spot-on in cats infested with Aelurostrongylus abstrusus (Strongylida, Filariodidae) in a Central Italy cat shelter. Veterinary Parasitology, 197(1). Pp 258-262.

7. Kassai, T. 2002. Helmintología veterinaria. Zaragoza, España: Acribia. Pp 94-95.

8. Knaus, M; Chester, S; Rosentel, J; Kühnert, A; Rehbein, S. 2014. Efficacy of a novel topical combination of fipronil, (S)-methoprene, eprinomectin and praziquantel against larval and adult stages of the cat lungworm, Aelurostrongylus abstrusus. Vet Parasitol. 28(202). Pp 64-8.

9. Miró, G; Gómez, M. 1999. Parasitosis respiratorias y cardiopulmonares. En, M. Cordero del Campillo; F. A. Rojo Vázquez (Eds,). Parasitología Veterinaria. Madrid, España: McGraw-Hill. Pp 696-697.

10. Olsen, C; Willesen, J; Pipper, C; Mejer, H. 2015. Occurrence of Aelurostrongylus abstrusus (Railliet, 1898) in Danish cats: A modified lung digestion method for isolating adult worms. Vet Parasitol, 210(1-2). Pp 32-39.

11. Payo, P; Botelho, M; Carvaja, A; Payo, M; Gonzalo, J; Rojo, F. 2008. Prevalence study of the lungworm Aelurostrongylus abstrusus in stray cats of Portugal. J Feline Med Surg, 10(3). Pp 242-246.

12. Pérez, G. 2008. Atlas de parasitología en pequeños animales. Buenos Aires, Argentina: Inter-Medica. Pp 2.

13. Salamanca, J; Cortés, J. 2003. Parasitosis pulmonar por Aelurostrongylus abstrusus en un felino. Reporte de caso. Rev Med Vet Zoot. 50: 30-34.

14. Scofield, A; Madureira, R; Freire de Oliveira, C; Guedes, D; Oliveira, C; Da Fonseca, A. 2005. Diagnóstico pós-morte de Aelurostrongylus abstrusus e caracterização morfométrica de ovos e mórulas por meio de histologia e impressão de tecido. Ciência Rural, Santa Maria, 35(4). Pp 952-955.

15. Taubert, A; Pantchev, N; Vrhovec, M; Bauer, C; Hermosilla, C. 2009. Lungworm infections (Angiostrongylus vasorum, Crenosoma vulpis, Aelurostrongylus abstrusus) in dogs and cats in Germany and Denmark in 2003–2007. Veterinary Parasitology, 159(2). Pp 175-180.

16. Thiengo, S; Fernandez, M; Torres, E; Coelho, P; Lanfredi, R. 2008. First record of a nematode Metastrongyloidea (Aelurostrongylus abstrusus larvae) in Achatina (Lissachatina) fulica (Mollusca, Achatinidae) in Brazil. J Invertebr Pathol 98(1). Pp: 34-9.

17. Traversa, D; Lepri, E; Veronesi, F; Paoletti, B; Simonato, G; Diaferia, M; Di Cesare, A. 2015. Metastrongyloid infection by Aelurostrongylus abstrusus, Troglostrongylus brevior and Angiostrongylus chabaudi in a domestic cat. International Journal for Parasitology, 45(11). Pp 685-690.



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18. Traversa, D; Romanucci, M; Di Cesare, A; Malatesta, D; Cassini, R; Iorio, R; Seghetti, M; Della, S. 2014. Gross and histopathological changes associated with Aelurostrongylus abstrusus and Troglostrongylus brevior in a kitten. Vet Parasitol, 201(1-2). Pp 158-162.

19. Traversa, D; Guglielmini, C. 2008. Feline aelurostrongylosis and canine angiostrongylosis: A challenging diagnosis for two emerging verminous pneumonia infections. Veterinary Parasitology, 157(3). Pp 163-174.

20. Urquhart, G. 2001. Parasitología Veterinaria. Zaragoza, España: Acribia. Pp 70-72.

21. Zottler, E; Strube, C; Schnyder, M. 2017. Detection of specific antibodies in cats infected with the lung nematode Aelurostrongylus abstrusus. Vet Parasitol. 235: 75-82.

REDVET: 2017, Vol. 18 Nº 5

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