biotecnologia de la reproduccion animal - fbmc · . genético (ensayo de progenie) - uso intensivo...

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Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular Facultad de Ciencias Exactas y Naturales Universidad de Buenos Aires Agrobiotecnología Curso 2011 Biotecnología en reproducción animal Lino Barañao Cambiado con la DEMO VERSION de CAD-KAS PDF-Editor (http://www.cadkas.com). Cambiado con la DEMO VERSION de CAD-KAS PDF-Editor (http://www.cadkas.com). Cambiado con la DEMO VERSION de CAD-KAS PDF-Editor (http://www.cadkas.com).

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Departamento de Fisiología, Biología Molecular y Celular Facultad de Ciencias Exactas y Naturales

Universidad de Buenos Aires

Agrobiotecnología Curso 2011

Biotecnología en reproducción animal

Lino Barañao

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Sumario

Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Conclusiones

Producción de embriones in vitro

Criopreservación

Introducción

Inseminación artificial

Superovulación / Transferencia de embriones

Micromanipulación

Referencias

Aplicación a diferentes especies animales

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Introducción

Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

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• En la mayoría de las especies domésticas existen entre 300.000 y 500.000 ovocitos por ovario en el momento del nacimiento.

• El ciclo estral en bovinos tiene una duración de 21 días.

• En bovinos se producirían 17,4 ovulacionespor año y 261 ovulaciones en 15 años.

• La capacidad reproductiva de la hembra bovina es menor en comparación a su potencial.

• La biotecnología de la reproducción estáfundamentalmente orientada a aumentar la capacidad reproductiva de las hembras.

Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducciónanimal

La capacidad reproductiva de las hembras es limitada

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducciónanimal

Ovogénesis y desarrollo folicular

Adaptado de: Senger. Pathways to pregnancy and parturition, 1997.

Folículo Primario

Folículo Terciario

Folículo Secundario

Folículo atrésico

Cuerpo blanco Cuerpo lúteo

Cuerpo hemorrágico

Folículo Terciario

Epitelio germinal

OvarioFolículo Primario

Folículo Terciario

Folículo Secundario

Folículo atrésico

Cuerpo blanco Cuerpo lúteo

Cuerpo hemorrágico

Folículo Terciario

Epitelio germinal

Ovario

Independiente de gonadotrofinas

Folículos primordiales

Folículo ovulatorio

Folículo antral temprano

Control intraovárico

Control gonadotrofinas

Folículo en crecimiento

Reclutamiento inciado por FSH

Crecimiento Folicular

Folículo preantral

Independiente de gonadotrofinas

Folículos primordiales

Folículo ovulatorio

Folículo antral temprano

Control intraovárico

Control gonadotrofinas

Folículo en crecimiento

Reclutamiento inciado por FSH

Crecimiento Folicular

Folículo preantral

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducciónanimal

Folículo antral

Microscopía electrónica de barrido de un folículo antral

Esquema de un folículo antral

Células de la granulosa Ovocito

Células de la granulosa

Zona pelúcida

Ovocito

Núcleo

Células de la granulosa

Zona pelúcida

Ovocito

Núcleo

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducciónanimal

Control hormonal del ciclo estral

El ciclo estral está regulado por el eje hipotálamo-hipófiso-gonadal

Hipotálamo

Hipófisis

Ovario

GnRH

FSH LH

CL Folículo

Progesterona

Estradiol

Inhibina

Hipotálamo

Hipófisis

Ovario

GnRH

FSH LH

CL Folículo

Progesterona

Estradiol

Inhibina

Hipotálamo

Hipófisis

Ovario

GnRH

FSH LH

CL Folículo

Progesterona

Estradiol

Inhibina

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducciónanimal

Ciclo estral y sincronización de celos

• Sincronización de celos

- Prostaglandina F2 alfa

- Progestágenos

Ciclo estral

Ovulación Atresia

CLCL

CA

LH

FSH

EstradiolPGF2αααα

Progesterona

Ovulación Atresia

CLCL

CA

LH

FSH

EstradiolPGF2αααα

Progesterona

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducciónanimal

Dinámica folicular durante el ciclo estral y control de las ondas foliculares

Dinámica folicular

Sincronización de onda folicular y ovulación: GnRH, estradiolD

iám

etro

de

los

folíc

ulos

(m

m)

2

1210864

181614

2 1210864 1614 18 20 220

Onda anovulatoria

Onda ovulatoria

Luteólisis Folículoovulatorio

Días del ciclo estral

Diá

met

ro d

e lo

s fo

lícul

os (

mm

)

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2 1210864 1614 18 20 220

Onda anovulatoria

Onda ovulatoria

Luteólisis Folículoovulatorio

Días del ciclo estral

Días del ciclo estral

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2 1210864 1614 18 20 220

GnRH PF2αFolículoovulatorio

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Días del ciclo estral

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GnRH PF2αFolículoovulatorio

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Inseminación artificial

Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

La inseminación artificial es la técnica reproductiva mas difundida

Oviducto

Sitio de fertilización

Unión útero-tubal

Útero

CervixVagina

107 105 103

102

Gradiente en el número de espermatozoides viablesdespués del servicio en el tracto genital de la hembra

Técnica de inseminaciónartificial en el ganado bovino:

- Simple- De bajo costo- Efectiva

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

• Aumento del progreso genético

- Aumento de la eficiencia de estimación del valor . genético (ensayo de progenie)

- Uso intensivo de un macho de alto valor genético

- Rápida difusión de la genética superior

• Control de enfermedades venéreas

• Eliminación de costos asociados al toro

• Uso de machos incapacitados

• Transporte y conservación prolongada de material genético

• Utilización de semen sexado

Ventajas y aplicaciones de la inseminación artificial

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Producción de semen en el ganado bovino

602

239

17

188

71

69

18

Centros de colección de

semen

40.102

19.803

268

9.228

530

9.627

646

Toros

115.176.7852.694.903Europa

5.917.2690Sudamérica

63.938.0278.874.920Lejano Oriente

2.559.64016.794Oriente Medio

232.347.07111.641.821Total

43.270.5000Norteamérica

1.484.85055.204África

Dosis producidas congeladas

Dosis producidas

frescasRegión

Adaptado de: Vishwanath, Theriogenology, 2003.

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Inseminación artificial con semen sexado

3,6Porcina

3,9Canina

3,7Equina

3,8Bovina

4,2Ovina

2,8Humana

Diferencia X-Y (%)

Especie

Adaptado de: Johnson and Welch, Theriogenology, 1999.

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Posibles usos del semen sexado

• Producción animal

• Animales de compañía

• Deportes (perros, caballos)

• Investigación

• Animales transgénicos

• Medicina humana

- Enfermedades genéticas ligadas al sexo- Elección del sexo

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

El uso de semen sexado para inseminación artificial de bovinos es aún limitado

• Alto costo de la tecnología- Utilización de semen fresco (no criopreservado)- Separación de 1x107 espermatozoides de cada

sexo por hora con una pureza de 90%

- Equipamiento costoso

• Menor fertilidad- Dosis de inseminación reducidas (2x106)- Espermatozoides con reducida fertilidad

• Utilización de semen sexado- Test de progenie

- Aumento de la presión de selección- Asociado con otras tecnologías (superovulación y

transferencia de embriones, fertilización in vitro)

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Superovulación / Transferencia de embriones

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La superovulación y transferencia de embriones permite incrementar la tasa reproductiva de hembras de alto valor genético

Superovulación

Recuperaciónde embriones

Receptoras

Sevicio natural o inseminación

artificial

Crías de la donante

Donante

Transferenciade embriones

Superovulación

Recuperaciónde embriones

Receptoras

Sevicio natural o inseminación

artificial

Crías de la donante

Donante

Transferenciade embriones

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Las respuestas a los tratamientos superovulatorios son muy variables

Hormonas utilizadas:

• Gonadotrofinas extraídas de la hipófisis de porcinos u ovinos (pFSH y oFSH)

- Relación FSH/LH variable- Vida media corta, múltiples aplicaciones- Riesgo de Encefalopatía Espongiforme Bovina (EEB)

• Gonadotrofina de yegua preñada (eCG)- Vida media larga, anticuerpos anti-eCG

• Gonadotrofina de la menopausia humana (hMG)

- Alto costo

• FSH y LH recombinante- Alto costo

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Desarrollo y tránsito embrionario en el tracto genital

Día 0 = Celo

Día 1

Día 2 Día 3Día 4 Día 5

Día 6-8

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Morfología embrionaria

Embriones bovinos día 4 Embriones bovinos día 8

Tomado de: Lattanzi et al., Biol. Reprod., 2003.

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PD

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

La recolección de embriones se realiza por medios no quirúrgicos

• Circuito cerrado con flujo continuo

• Catéter de 3 vías

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Instrumental utilizado para la recolección no quirúrgica

Vagina

Salida de fluido

Entrada de fluido Cérvix

Entrada de fluido(1o vía)

Salida de fluido(3o vía)

Entrada de aire(2o vía)

• Catéter de 2 vías: flujo discontinuo

• Catéter de 3 vías: flujo continuo

Entrada y salida de fluido(1o vía)

Entrada de aire

(2o vía)

Entrada y salida de fluido

Balón con aire

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Búsqueda y evaluación de los embriones en el laboratorio

Blastocistos en diferentes estadios

Filtro para retener embriones

Lavado de los filtros

Búsqueda de embriones

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Manejo sanitario de los embriones

Interacciónpatógeno-

embrion

Lavado de embriones

Embriones no aceptables

C

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zona pelúcida

patógeno

A B C

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Transferencia no quirúrgica de embriones

Pajuelas (0,25 ml) empleadaspara la transferencia (Mintüb, Alemania).

Catéter y puntasplásticas estérilesdescartables. (Minitüb, Alemania)

Catéter de transferencia metálico (Mintüb, Alemania)

Cargado de la pajuela empleada para la transferencia

Embrión en mediode cultivo

Aire

Medio de cultivo

Medio de cultivo

AireAlgodón

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Aplicaciones de la transferencia de embriones • Aumento del progreso genético

- Aumento de la presión de selección

- Reducción del intervalo generacional

- Difusión de la mejora genética

• Control de enfermedades

• Importación-exportación

• Conservación de especies en peligro de extinción

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Producción de embriones in vitro

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Biotecnologíaen reproducción animal

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Producción de embrionesin vitro Recolección de ovocitos

Maduración in vitro

Ovarios de matadero

Animales vivos (OPU)

Fertilización in vitroDescongelado y capacitación de los espermatozoides

Cultivo in vitro

Transferencia de embriones

Criopreservación

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Recolección de los ovocitos

• Obtención de ovocitos a partir de animales sacrificados para consumo

- Progreso genético mínimo- Garantía sanitaria escasa- Uso en Investigación

Aspiración de los folículos antrales Complejos cúmulus-ovocito Lavado de ovarios

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Maduración nuclear y maduración citoplasmática

• Expansión del cúmulus

• Reinicio de la meiosis

24hs24 h24hs24 h

Vesicula germinal Metafase I Metafase II10-12 h 10-12 h

CP

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Maduración nuclear: reinicio de la meiosis

Inhibidor de la meiosis

Inhibidor de la meiosis

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Evolución de los niveles de MPF y MAP-quinasa.

MPF

MAP-Kinasa

Vesículagerminal

Ruptura de la vesícula germinal

Metafase I Metafase II1er Cuerpo

polar

FertilizaciónOvulación

Pico pre-ovulatoriode LH

Remocióndel ovocitodel folículo

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Fertilización in vitro

Antes de la centrifugación

Después de la centrifugación

Coincubación de ovocitos y

espermatozoides

Semen

45%Percoll

90%Percoll

Diluyente

Espermato-zoides no motiles

Espermato-zoidesmotiles

Gradiente de Percoll

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Activación del ovocito y bloqueo espermático

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Fertilización, descondensación de la cromatina y formación de pronúcleos

1er CP 1er CP 1er CP

2do CP2do CP

Pronúcleos

Segregación de cromosomas homólogos

Descondensación de la cabeza del espermatozoide

Formación de pronúcleos y singamia.

Pronúcleos

Espermatozoidedescondensándose

en el citoplasma

1er CPEspermatozoide que no penetró la zona pelúcida

1er y 2do CP

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Los ovocitos fertilizados se cultivan in vitro por 8 días

Estadiopronuclear

Embrión de2 células

Embrión de 4 - 8 células

Mórula Blastocistoexpandido

Blastocistoprotruído

• Desarrollo de embriones in vitro

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Sistemas para el cultivo de embriones in vitro

• Co-cultivo: relacionado a altos índices de anormalidades . al nacimiento (mayor tamaño, distocia, malformaciones).

- Concentración de O2: 20%

- Medio de cultivo: TCM-199 o Menezo´s B2 + suero fetal . bovino (SFB)

- Líneas celulares: Vero; BRL

- Cultivos primarios: células de la granulosa; células . oviductales

• Medios Definidos: mayores tasas de desarrollo, menor . mortalidad perinatal y porcentaje de malformaciones. . Mayor reproducibilidad.

- Concentración de O2: 5%

- Medio de cultivo: SOF (Synthetic Oviductal Fluid) .. + aminoácidos + seroalbúmina bovina (BSA)

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Los embrionesproducidos in vitroson menosviables que los producidos in vivo

• Características de los embriones producidos in vitro:

- Menor viabilidad

- Mayor sensibilidad al enfriamiento y criopreservación

- Mayor cantidad de lípidos

- Uniones intercelulares anormales

- Menor número de células

- Menor proporción de células en el macizo celular interno

- Mayor incidencia de anormalidades cromosómicas

- Menor tasa de preñez después de la transferencia

- Mayores pérdidas fetales durante la gestación

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Punción folicular (Ovum Pick-Up; OPU)

• Obtención de ovocitos a partir de animales vivos

Dispositivo de OPU

Pared vaginalPared rectal

Ovario

Cervix

Fijación del ovario

Aguja

Dispositivo de OPU

Transductor

Tubo de acero

Tubo interno de acero del sistema de guía

Aguja 19-G

Conector de acero

Tubo de silicona Tubo de

acero

Mango

EcógrafoBomba de vacío

Transductor

Adaptado de: Bols et al., Theriogenology, 1995.

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Aplicaciones de la producción de embriones in vitro

• Investigación básica:

- Producción de embriones en diferentes estadios de . desarrollo a bajo costo a partir de ovarios de animales . sacrificados para consumo

• Aplicaciones comerciales:

- Producción de mayor número de embriones

- Menor intervalo generacional por uso de animales . prepúberes (OPU)

- Obtención de embriones de vacas preñadas (OPU)

- Obtención de embriones de vacas que no pueden ser . superovuladas y/o con problemas reproductivos (OPU)

- Obtención de embriones de animales muertos

• Base para el desarrollo y/o aplicació n . de otras técnicas:

- Clonación

- Producción de animales transgénicos

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Micromanipulación

Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

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Producción de mellizos por microcirugía

División de una mórula fuera de la zona pelúcida.

Apertura de la zona pelúcida para extraer al embrión.

Hemi-embriones después de la división.

Unidad de micromanipulación

Mellizos idénticos producidos por microcirugía

Tomado de: Palma, Biotecnología de la Reproducción, INTA (Argentina), 2001.

Tomado de: Palma et al., Rev. Arg. Med. Vet.,1991.

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Biopsia y sexado

PCR

BlastómeroBlastómero

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Inyección intracitoplasmática de espermatozoide(Intracitoplasmic Sperm Injection; ICSI).

Ovocito maduro(metafase II)

Micropipeta

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Inyección pronuclear

Micropipeta

Ovocito fecundado

Pronúcleo

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Transplante nuclear

Enucleación

Célula donante Transplante nuclear

Ovocito en MII

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Producción de quimeras por agregación de células a un blastocisto

Micropipeta

Blastocisto

Células inyectadas

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Criopreservación

Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

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Tasas de enfriamiento para diferentes sistemas de criopreservación

-30

-7

25

-19615 25 90

Tem

pera

tura

(oC

)

Tiempo (minutos)

Estabilización

Seeding

0,3 – 0,6 oC/min

Vitrificación

Congelamiento gradual

2.500 – 20.000 oC/min

Adaptado de: Palma, Biotecnología de la Reproducción, INTA (Argentina), 2001.

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Características de los métodos de criopreservación

• Congelamiento Gradual- Formación de cristales de hielo

- Baja concentración de crioprotectores: mayor . probabilidad de daño por enfriamiento

- Alto costo: equipo para el descenso controlado . de la temperatura

• Vitrificación- No hay formación de cristales de hielo

- Alta concentración de crioprotector: mayor . probabilidad de daño osmótico y por toxicidad

- Bajo costo: enfriamiento directo en N2 líquido

• Refrigeración- Enfriamiento a 4 oC por 24 a 72 h

Equipo para enfriamiento controlado

Termo de nitrógeno líquido

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Descongelamiento: método de transferencia directa

• Crioprotectores permeables:- Glicerol- Dimetilsulfóxido (DMSO)- Propilenglicol- Etilenglicol

• Crioprotectores impermeables:- Sacarosa- Trealosa- Glucosa- Rafinosa

Solución extractora del crioprotector

Embrión en solución con crioprotectores

Solución extractora del crioprotector

AireAireTapón algodón Sellado

Solución extractora del crioprotector

Embrión en solución con

crioprotectores

Tapón algodón

Solución extractora del crioprotector

Embrión en solución con crioprotectores

Solución extractora del crioprotector

AireAireTapón algodón Sellado

Solución extractora del crioprotector

Embrión en solución con

crioprotectores

Tapón algodón

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Embrión en solución con crioprotectores

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AireAireTapón algodón Sellado

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Embrión en solución con

crioprotectores

Tapón algodón

Solución extractora del crioprotector

Embrión en solución con

crioprotectores

Tapón algodón

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Embriones bovinos transferidos en el año 2002

Embriones producidos in vitroEmbriones producidos in vivo

66.951

42

5.952

13.859

46.630

464

4

Frescos

16.378

52

5.191

8.968

2.040

30

97

Congelados

538.312

32.945 (6,4%)

90.371 (16,8%)

92.412 (17,2%)

119.118 (22,2%)

189.124 (34,7%)

14.342 (2,7%)

Total

83.329270.572 (52%)

267.740 (48%)

Total

9415.31417.631Oceanía

11.14348.61841.753Europa

22.82753.03739.375Asia

48.67045.16673.952América del Sur

49499.65289.472América del Norte

1018.7855.557Africa

TotalCongeladosFrescosContinentes

Adaptado de: Data Retrieval Committee Annual Report, IETS, 2003.

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Conclusiones: aplicaciones biotecnológicas a la reproducción de animales

• Inseminación artificial y congelación de semen- Control de enfermedades de transmisión sexual

- Uso intensivo de un macho de alto valor genético

- Aumento de la eficiencia de estimación del valor genético . (ensayos de progenie)

• Sincronización e inducción de la ovulación- Aumento de la eficiencia de la producción de terneros

- Aumento de la eficiencia del manejo productivo y reproductivo

• Superovulación, transferencia y criopreservación de . embriones

- Uso intensivo de hembras de alto valor genético

- Rápida difusión de genética superior: transporte y . comercialización alrededor del mundo a bajo costo

- Sanidad Animal: importación de embriones libres de patógenos

- Recuperación mas eficaz de individuos exóticos y razas en . peligro de extinción

- Conservación in vitro por tiempo indefinido de una amplia . variedad de especies mamíferas

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• Sexado de espermatozoides y embriones- Producción de descendencia del sexo deseado

• Producción in vitro de embriones- Uso mas intensivo de hembras de alto valor genético

- Utilización de hembras que no pueden ser superovuladas

- Producción de embriones con ovarios de matadero

• Micromanipulación- Producción de mellizos idénticos para investigación o aumentar . la eficiencia de los programas de transferencia de embriones

- Clonación por transferencia nuclear, inyección pronuclear o . producción de quimeras para generar organismos transgénicos

- Inyección intracitoplasmática de espermatozoides en especies . en las que no es factible la fertilización in vitro

Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Conclusiones: aplicaciones biotecnológicas a la reproducción de animales

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Aplicaciones a diferentes especiesanimales

Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

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• Inseminación artificial- IA: Inseminación artificial convencional en el cervix (3x109 espermatozoides)

- IIU: Inseminación intrauterina en el cuerpo del útero

- IIUP: Inseminación intrauterina profunda a 2/3 de la distancia entre el cervix

. y la unión útero-tubal (UUT) (50x106 esperm.)

Biotecnología aplicada a la reproducción de porcinos

Cuerno uterinoCuerpo del útero

25 cm de la UUT

Ovario

18-20 cm del cervix

Canal cervical

13-15 cm

Unión útero-tubal (UUT)

3. IIUP2. IIU

1. IA

Adaptado de: Belstra, Annual Swine Report, 2002.

Tracto reproductivo de una cerda

Instrumental para inseminación intrauterina

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• Control hormonal de estro y ovulación- Una sola inseminación por hembra- Inseminación a tiempo fijo- Disponibles: PG600 (Intervet ,Inc.)- No aprobados: Progestagenos, GnRH, eCG, hCG

• Transferencia de embriones: - Quirúrgico- Endoscopía- No quirúrgico: trasncervical

• Colecta de embriones: quirúrgica- Por cirugía o posterior al sacrificio

1765.008264Total

80--------USA

852.098105Europa

1250530Corea

432.405129Canada

Hembras recipientes

Embriones transferiblesLavajesPaíses

Adaptado de: Data Retrieval Committee Annual Report, IETS, 2003.

Transferencias de embriones en cerdos en 2002

Biotecnología aplicada a la reproducción de porcinos

Inseminacion artificial

Detección de celo

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•Sistemas de producción de . embriones in vitro

- Uso comercial: aumento del progreso . genético, transporte del material genético . a bajo costo y con bajo riesgo sanitario.

- Investigación básica.

- Investigación con propósitos biomédicos: . xenotransplante de tejidos/órganos, . transgénicos.

• Problemas del sistema:- Formación de pronúcleo masculino.

- Poliespermia.

• Origen de los ovocitos- Ovarios

- Tamaño de los folículos

• Maduración in vitro:- Maduración nuclear: FSH, LH

- Maduración citoplasmática: EGF, células del . cúmulus, cisteína.

• Fertilización in vitro:- Variabilidad del semen: fresco, criopreservado

- Contenido de glutatión.

- Factores para reducir poliespermia.

- Formulación de medio de FIV (TALP, mTBM)

• Cultivo in vitro:- Modified Whitten’s medium

- North Carolina State University 23 medium

- Iowa State University medium

- Beltsvile Embryo Culture Medium 3

Biotecnología aplicada a la reproducción de porcinos

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• Criopreservación de embriones- Alta sensibilidad a la hipotermia (15oC) debido al alto contenido lipídico

- Vitrificación: “open pulled straw; OPS”

Microscopía confocal de un embrión porcino después de la criopreservación para examinar el daño en el citoesqueleto

Biotecnología aplicada a la reproducción de porcinos

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• Transferencia de embriones (TE)

- Países líderes: Estados Unidos, Argentina y Brasil (Australia; Canadá; Italia; . Alemania y Francia utilizan la TE en menor medida)

- Limitante para la difusión de la TE: Asociaciones de Criadores

- Recolección de embriones de yeguas que ovulan espontáneamente: 0,5-1 embrión . por hembra

- Aplicaciones de la TE: Yeguas viejas con pobre historial reproductivo; yeguas en . competencia (carrera, polo, etc.)

• Superovulación

- No existe producto comercial para superovular yeguas: Las hormonas eCG, GnRH y . FSH porcina no son activas. Extracto de pituitaria equina (EPE) aumenta 3-4 veces . la tasa de ovulación.

- Aplicaciones de la superovulación: TE, punción folicular, fertilización in vitro, ICSI, . criopreservación.

• Inseminación artificial

- Semen refrigerado (5 oC por 24-48 h) o congelado (gran variabilidad individual en . cuanto a tolerancia la congelación)

Biotecnología aplicada a la reproducción de equinos

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• Criopreservación

- Refrigeración y transporte de embriones: se pueden mantener a 5 oC por 24 h . sin perder viabilidad

- Limitantes de la criopreservación de embriones: cápsula del embrión . (membrana proteica acelular); asociaciones de criadores

- Congelación y vitrificación de ovocitos

Macizo celular interno

Blastocele

Trofoblasto

Cápsula100 µµµµm

Blastocisto expandido

100 µµµµm

Blastocisto temprano

Blastocele en formación

Detritos celulares

Zona Pelúcida

Biotecnología aplicada a la reproducción de equinos

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Adaptado de: Aguilar and Woods, Current Therapy in Large Animal Theriogenology, 1997.

OvarioRectoCervix

Oviducto

Balón inflable

Utero

Vagina

Aire

FiltroSalida medio

Vejiga

Entrada medio

Medio de lavaje

30Australia

15Nueva Zelanda

23410.725Total

2005.000Estados Unidos

47Sudáfrica

371Europa

1162Canadá

203.000Brasil

2.500Argentina

CongeladosFrescosPaíses

Embriones equinos transferidos en 2002

Adaptado de: Data Retrieval Committee Annual Report, IETS, 2003.

Recolección no quirúrgica de embriones

Biotecnología aplicada a la reproducción de equinos

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• Producción in vitro de embriones: fertilización in vitro (FIV); inyección . intracitoplasmática de espermatozoide (ICSI)

- Limitantes de la FIV: maduración del ovocito y capacitación espermática

- Disponibilidad de ovarios de matadero para investigación limitada: información limitada . sobre sistemas de maduración, fertilización y cultivo in vitro

- ICSI es utilizada como alternativa a la FIV: La inyección del espermatozoide evita las . deficiencias de los sistemas de FIV

• Transferencia de gametas ( Gamete Intrafallopian Tube Transfer; GIFT)

- Transferencia de ovocitos y espermatozoides (200.000) al oviducto.

- Aplicaciones de la transferencia de gametas: En casos de semen limitante (semen sexado, . congelado, padrillos con bajo recuento espermático), como alternativa a la FIV

• Transferencia de ovocitos

- Recolección de ovocitos: De folículos preovulatorios (madurados in vivo), o durante el diestro . (maduración in vitro)

- Aplicaciones de la transferencia de ovocitos: Infecciones uterinas persistentes; estudios sobre . maduración de ovocitos in vitro; como alternativa a la FIV

Biotecnología aplicada a la reproducción de equinos

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• Inseminación Artificial

- Método de inseminación: vaginal, cervical, transcervical, intrauterina

• Superovulación y transferencia de embriones

- Alta variabilidad de la respuesta al tratamiento superovulatorio y de . las tasas de fertilización.

- Recolección de embriones y transferencia: procedimiento quirúrgico

Inseminación intrauterina por laparoscopía

Inseminación transcervical con endoscopioInseminación transcervical

Biotecnología aplicada a la reproducción de ovinos y caprinos

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17.921

100.496

Embriones recolectados

9.234

52.433

7.843

21.457

Almacenados

6.7847.004Caprinos

19.21483.453Ovinos

ExportadosEmbriones Transferidos:Frescos Congelados

Adaptado de: Data Retrieval Committee Annual Report, IETS, 2003.

• Producción de embriones in vitro

- Ovarios de matadero

- Punción folicular laparoscópica de animales vivos

• Criopreservación

- Congelación gradual o vitrificación

- Embriones producidos in vitro son mas sensibles

Embriones de oveja y cabra transferidos en 2002

Biotecnología aplicada a la reproducción de ovinos y caprinos

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Biotecnología aplicada a la reproducción de camélidos sudamericanos

• Estacionalidad de la actividad . reproductiva, que es mas marcada en los . camélidos silvestres (vicuña y guanaco)

• Ovulación inducida: 22 a 46 h después de . la cópula

• Alta mortalidad embrionaria

2.811.6123,776.793165.482602.907Total

2.510.912989.593100.0001.600Perú

------------53Paraguay

1009.687482----Ecuador

----200--------Colombia

27.58570.36330.00025.000Chile

324.3362.022.56912.00054Bolivia

400135.00023.000578.700Argentina

AlpacaLlamaVicuñaGuanacoPaís

Población de camé lidos sudamericanos en los países andinos (número estimado)

Tomado de: Larocca, Transferencia de embriones y biotecnología, 2001.

Llama (Lama glama) Alpaca (Lama pacos)

Vicuña (Vicugna vicugna) Guanaco (Lama guanicoe)

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• Inseminación artificial: 30 h después de estímulo ovulatorio

- Dificultosa colecta de semen- Alta viscosidad, baja concentración . espermática, baja motilidad.- Criopreservación poco eficiente de semen

• Superovulación y transferencia de embriones: respuestas muy variables

- Ausencia de fase luteal- Folículos dominantes por largos períodos

• Sistema de producción de embriones in vitro: poco desarrollado

- Preñez de un embrión vitrificado (2002)- Mórulas producidas in vitro por transferencia . nuclear (2003)- Punción folicular guiada por ultrasonografía . (2000)

• Híbridos

Blastocistos reexpandidos 72 h post-descongelación

Embrión de llama día 7Blastocistos bovinos día 7

Biotecnología aplicada a la reproducción de camélidos sudamericanos

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

• Población mundial: 163 millones de cabezas

• Producción importante en regiones pantanosas y anegadizas, . donde es irremplazable

• Baja eficiencia de superovulación y recolección de embriones

• Desarrollo de sistemas de producción de embriones in vitro a . partir de ovarios de matadero o de animales vivos a través de . la punción folicular

• En India 124 embriones fueron recolectados in vivo, 78 fueron . transferidos frescos y 19 congelados en el 2002. Además 265 . embriones de búfalo están almacenados

Biotecnología aplicada a la reproducción de búfalos (Bubalus bubalis)

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

• Existen 2,4 millones de cabezas en 4.500 establecimientos.

• Altamente estacionales: La actividad ovulatoria comienza en . otoño, los partos están sincronizados en el verano.

• La producción in vitro de embriones sería la mejor alternativa . para el uso eficiente del semen recuperado.

• En 2002, se colectaron más de 1.000 embriones; cerca de . 800 fueron transferidos. Canadá reportó preñeces de . embriones producidos in vitro.

Biotecnología aplicada a la reproducción de ciervos (Cervus elaphus)

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Conclusiones: aplicaciones biotecnológicas a la reproducción de animales

• Inseminación artificial y congelación de semen- Control de enfermedades de transmisión sexual

- Uso intensivo de un macho de alto valor genético

- Aumento de la eficiencia de estimación del valor genético . (ensayos de progenie)

• Sincronización e inducción de la ovulación- Aumento de la eficiencia de la producción de terneros

- Aumento de la eficiencia del manejo productivo y reproductivo

• Superovulación, transferencia y criopreservación de . embriones

- Uso intensivo de hembras de alto valor genético

- Rápida difusión de genética superior: transporte y . comercialización alrededor del mundo a bajo costo

- Sanidad Animal: importación de embriones libres de patógenos

- Recuperación mas eficaz de individuos exóticos y razas en . peligro de extinción

- Conservación in vitro por tiempo indefinido de una amplia . variedad de especies mamíferas

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• Sexado de espermatozoides y embriones- Producción de descendencia del sexo deseado

• Producción in vitro de embriones- Uso mas intensivo de hembras de alto valor genético

- Utilización de hembras que no pueden ser superovuladas

- Producción de embriones con ovarios de matadero

• Micromanipulación- Producción de mellizos idénticos para investigación o aumentar . la eficiencia de los programas de transferencia de embriones

- Clonación por transferencia nuclear, inyección pronuclear o . producción de quimeras para generar organismos transgénicos

- Inyección intracitoplasmática de espermatozoides en especies . en las que no es factible la fertilización in vitroAgrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Conclusiones: aplicaciones biotecnológicas a la reproducción de animales

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Agrobiotecnología

Biotecnologíaen reproducción animal

Referencias 1. Palma, G.A. Biotecnología de la Reproducción. Instituto Nacional de Tecnología Agropecuaria (INTA, Argentina), 2001.

2. Gordon, I. Controlled reproduction in cattle and buffaloes. Centre for Agriculture and Biosciences International (CABI), 1996.

3. Karow, A.M. and Critser, J.K. Reproductive tissue banking. Academic Press, 1997.

4. Stringfellow, D.A. and Seidel, S.M. Manual of the InternationalEmbryo Transfer Society, IETS, 1998.

5. Larocca, C. Transferencia de embriones y biotecnología Área de Biotecnología de la Reproducción Animal, Facultad de Veterinaria, Universidad de la República, Montevideo, República Oriental del Uruguay. Libro electrónico, 2001.

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