bioindicadores calidad agua

8/13/2019 Bioindicadores Calidad Agua

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Aplicacin de

Macroinvertebrados y Diatomeas

como Bioindicadores en el Estudio

de la calidad de las Aguas

Mdulo II

Master en Ingeniera del Agua

Grupo TAR


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NDICE

1. INTRODUCCIN

2. SELECCIN DE ESTACIONES DE MUESTREO

2.1 INTRODUCCIN2.2 SEGUIMIENTO DE LA EVOLUCIN DE UN RO2.3 ELECCIN DE LAS ESTACIONES2.4 NMERO DE ESTACIONES

2.4.1 MUESTREO DE UN RO2.4.2 MUESTREO DE UN LAGO O EMBALSE

2.5 FRECUENCIA DEL MUESTREO

3. SELECCIN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO EN CADA ESTACIN3.1 IBGN3.2 BMWP3.3 IBD

4. METODOLOGA DEL MUESTREO4.1 NDICE BIOLGICO GENERAL NORMALIZADO (IBGN). AFNOR 1992.4.2 BMWP (BIOLOGICAL MONITORING WORKING PARTY)4.3 NDICE BIOLGICO DIATMICO (IBD). AFNOR

5. TRATAMIENTO DE MUESTRAS.5.1. IBGN Y BMWP 5.2. IBD

6. IDENTIFICACIN DE LOS TAXONES DE MACROINVERTEBRADOS YDIATOMEAS.

6.1. MACROINVERTEBRADOS.6.1.1. IBGN.6.1.2. BMWP

6.2. DIATOMEAS.6.2.1. IBD

7. BIBLIOGRAFIA.

8. ANEXOS.


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1. INTRODUCCIN

Siguiendo las lneas marcadas por la Directiva 2000/60/CE, se hacen

necesarios la inclusin de parmetros biolgicos que certifiquen la calidad

ecolgica de un ro.

Estos ndices biolgicos estn referidos a poblaciones de

macroinvertebrados bentnicos y de diatomeas (algas pardas), que constituyen

los bioindicadores ms representativos de la calidad de las aguas.

Los ndices que vamos a tratar son ndices de calidad normalizados por

AFNOR, referidos a guas de diversidad francesas. Estos ndices son:

ndice Biolgico Diatmico (IBD) NF. T 90-354

ndice Biolgico General Normalizado (IBGN) NF. T 90-350

As mismo se ha considerado un segundo ndice para macroinvertebrados,

basado en la norma francesa, pero adaptado para Espaa que es el Biological

Monitoring Working Party (BMWP). Este ndice es menos restrictivo que el IBGN,

pero nos da una buena aproximacin sobre el estado ecolgico de un ro.

El presente documento est basado en el trabajo realizado por el equipo

del Grupo TAR para la Fundacin PRODTI y la Consejera de Obras Pblicas en

el Estudio de la Determinacin de la Diversidad Ecolgica en los Ros Andaluces,

y ha sido procesado como texto de estudio para el Mdulo II del Master

universitario en Ingeniera del Agua.


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2. SELECCIN DE ESTACIONES DE MUESTREO

2.1. INTRODUCCIN

Cada uno de los aspectos de la evolucin de un ro que se mencionan a

continuacin, han de estar simplificados en una rigurosa eleccin del emplazamiento

de las estaciones de muestreo, su nmero y el periodo de muestreo.

El propsito de un anlisis de agua es el de evaluar las propiedades de una

matriz (en este caso agua natural superficial o subterrnea, agua residual domsticao industrial, agua tratada), cuyos resultados deben ser de alta calidad y fiabilidad y

adecuados al propsito para el cual fueron solicitados, ya que en base a esta

informacin se toman importantes decisiones en materia de legislacin, medidas de

mitigacin, control y proteccin del medio ambiente, las cuales estn regidas por

normas y regulaciones de carcter oficial.

Las muestras recolectadas para los anlisis deben ser relevantes y

verdaderamente representativas, por lo tanto es el aspecto ms crtico de un

programa de monitoreo.

El objetivo de un muestreo de agua es obtener una parte representativa del

universo en consideracin a la cual se le analizarn los diferentes parmetros de

acuerdo al inters. Para lograr este objetivo es necesario que la muestra conservelas concentraciones de todos sus componentes y que no se presenten cambios

significativos en su composicin antes del anlisis. El muestreo es por lo tanto el

aspecto ms crtico de un programa de mediciones.

La recoleccin, preservacin y almacenamiento de las muestras son

crticos para los resultados de calidad del agua. Es por esto, que un programa de

muestreo debe ser planeado para satisfacer los objetivos de estudio. El nmero de

muestras y la localizacin de los sitios de muestreo deben ser determinados


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previamente y cumplir con los requerimientos necesarios para establecer los

estndares de calidad o lmites permitidos. La exactitud y fiabilidad de los resultados

se basan en la representatividad de la muestra.

2.2. SEGUIMIENTO DE LA EVOLUCIN DE UN RO.

El seguimiento de la evolucin de la calidad de un ro se har tanto

TEMPORAL como ESPACIAL.

TEMPORAL:seguimiento a lo largo del tiempo en ciclos de un ao y

bsqueda de las causas de la evolucin que podr ser:

Natural: inducidos por los ciclos estacionales de hidrologa,

especies, desarrollo de la vegetacin, temperatura,

Humana: provocando modificacin de las caractersticas del

medio.

Mixta: ciertas causas naturales pueden acelerar la alteracin de

la calidad del medio en el periodo de esto.

ESPACIAL: seguimiento a lo largo del curso de agua. La bsqueda de

las causas de la evolucin podr ser:

Natural: suponen una modificacin de hbitat debidos a

cambios geofsicos, edafolgicos,...

Humana: suponen una modificacin de hbitat debido a

poblaciones, actividades industriales, agrcolas,...

Mixta


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2.3. ELECCIN DE LAS ESTACIONES

Para definir la calidad de un curso de agua, hay que establecer un estado de

referencia dentro de una escala tipolgica y as poder establecer las sensibilidades ypotencialidades propias de una cuenca.

Los criterios bsicos para seleccin de las zonas a monitorear en cursos

hdricos superficiales depende de que se priorice su extensin territorial, cuenca,

ros, tramos de los mismos o lagos.

Definido el tema precedente pueden luego implementarse las fases de

seleccin de las estaciones de monitoreo de calidad de agua en tres niveles:

1. La macrocolocacin, que determina los tramos del ro que son

representativos del nivel de calidad de toda la cuenca.

2. La microcolocacin, que implica la ubicacin dentro del tramo

precedente de la estacin de muestreo.

3. Identificacin del o los puntos de toma que deben ser

representativos del rea (ejemplo: de toda la seccin transversal del tramo del

ro o de la columna de agua del lago en cuestin).

Esta ltima fase implica que la colecta de la muestra se efecte en una zona

homognea en cuanto a la distribucin espacial del poluente, o contaminante, en

cuestin; la seleccin final puede ser simple si no hay descargas puntuales en el

rea, pero en caso de estar cerca del vuelco de un efluente debe muestrearse aguas

abajo de la zona de mezcla. Existen formulaciones que estiman para el caso de ros

y lagos la extensin de la misma, a partir de la cual puede asumirse que slo

acontece un nivel de variacin menor al 10 % en el nivel de concentracin del

poluente.


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La relevancia ambiental de un tramo de ro puede determinarse segn la

cantidad de tributarios que va recibiendo en su transcurso hacia la desembocadura,

las descargas puntuales y distribuidas que recibe, flujo msico de determinados

poluentes, etc. Estas cantidades se dividen por la mitad para llegar al centroide por

cuenca, subcuenca y as sucesivamente si se ve la necesidad de seguir

subdividiendo la zona para evaluar el efecto de determinada descarga puntual,

aunque esto implica mayores gastos si se implementa una red demasiado amplia.

Pueden darse dos tipos de estaciones regularmente empleadas: fijas y

transitorias; convendr utilizar una u otra segn el tipo de estudio ambiental einformacin requerida para cumplimentar los mismos.

Los criterios de diseo de la red implican la localizacin de las estaciones y

puntos de toma representativos para el estudio de calidad en una cuenca; la

seleccin del nmero de muestras (N) para cada parmetro de inters para el

estudio y una frecuencia (F) adecuada al objetivo priorizado en el proyecto en

cuestin (ejemplo: deteccin de infracciones o de tendencias de calidad de agua)

La eleccin de las estaciones est en funcin del objeto de estudio y han de

tener unas propiedades esenciales determinadas:

Representativa: se elegir la estacin en una longitud determinada del

curso de agua que no presente variaciones significativas en los ndices, de tal

manera que los parmetros en la muestra tengan el mismo valor que en el

cuerpo de agua, en el lugar y tiempo de muestreo. Para ello, el cuerpo de

agua debe estar mezclado totalmente en el lugar de muestreo. Se har un

inventario de los distintos hbitats disponibles (pareja o par sustrato/

velocidad) y sus poblaciones representativas.

Comparativa:son una pareja de estaciones situadas desde un lado a

otro del foco de perturbacin sobre el medio a evaluar. Las dos estaciones

debern ser idnticas para el hbitat muestreado de forma que se diferencien


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nicamente por el impacto de la perturbacin. Se recomienda cartografiar las

estaciones indicando la posicin y dimensin de los hbitats muestreados.

Informativa: corresponde a un lugar aislado de un segmento de un

curso de agua que constituye un accidente ecolgico y que no va a ser

representativo. El valor obtenido en este tipo de estacin es extrapolable.

As procederemos del siguiente modo:

1. Seleccionar: un tramo del ro que no haya estado

recientemente inundado. Se recomienda muestrear las zonas ms

centrales y los mrgenes de ms de 0,2 m de profundidad.

2. Dividir: el tramo de ro a estudiar en tantas reas como

hbitats distintos:

zona de fuerte corriente y sustrato duro

zona lntica y sustrato duro

entre la vegetacin acutica emergida de los

mrgenes del ro

entre los macrfitos sumergidos o macroalgas

arena, grava o barro

Es muy importante seleccionar un tramo de ro que posea todos

los tipos de sustratos para poder recolectar la mxima biodiversidad.

Otros requisitos del sitio de muestreo a tenerse en cuenta son:

Acces ibilidad: la persona encargada de recolectar las muestrasnormalmente tiene que transportar una carga apreciable de equipo de


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muestreo, adems de las muestras; por lo tanto, se debe seleccionar un lugar

accesible bajo todas las condiciones meteorolgicas, vas de acceso,

puentes, etc.

Distancia hasta el Laboratorio: el tiempo requerido para el transporte

de las muestras regir el lmite de las determinaciones y la fiabilidad de los

resultados. En trminos prcticos, tiempos de transporte mayores de 24 horas

entre el sitio y el laboratorio hace reconsiderar la estacin o buscar un

laboratorio ms cercano; si no es posible, tener en cuenta esta circunstancia

en la interpretacin de los resultados.

Seguridad: la recoleccin de muestras en ros o lagos puede ser

peligrosa, particularmente bajo malas condiciones de tiempo y crecientes

altas; al considerar un lugar se debe dar la debida importancia a este aspecto.

Si no hay alternativa, se deben tomar siempre todas las precauciones y

proveerse de los equipos necesarios de seguridad.

2.4. NMERO DE ESTACIONES

Est en funcin del objeto de estudio; un slo sitio de muestreo

generalmente no es suficiente para definir la calidad del agua. Por lo tanto, la

seleccin de las estaciones, la frecuencia y el nmero de muestras depende

bsicamente de los objetivos y alcances del estudio, as como de los usos del agua.

Cuando los efectos en la calidad de un tributario son de inters, se debe

muestrear aguas arriba y aguas abajo de la confluencia y aproximadamente 60 m

aguas arriba de la desembocadura del tributario, donde no haya mezcla por reflujo

de la corriente receptora.


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Para evaluar el efecto de las descargas de desechos industriales, domsticos,

agropecuarios, etc., se deben tomar muestras aguas arriba de la descarga y aguas

abajo donde la mezcla vertical y horizontal sea completa.

2.4.1. Muestreo de un ro

Para estudiar el efecto de un impacto, se elegir una estacin ro arriba

(estacin de referencia)y dos ro abajo; es decir, una inmediatamente antes del

impacto, otra cercana a la perturbacin y la ltima ms alejada para verificar la

capacidad de recuperacin del medio.

Definiremos como estaciones de referencia aquellas donde la presin

humana y el impacto producido sobre el medio natural sean nulos o el mnimo

posible.

Los descriptores de la presin antropognica que se genera en la cuenca son

variables conservativas (poco oscilantes en el tiempo) y que influyen directamenteen la calidad de los tramos de ros donde confluyen sus aguas; de esta manera,

analizando el grado de humanizacin y presin antrpica sobre la subcuenca en

cada estacin, podremos discriminar aquellas poco perturbadas o sin perturbar.

A veces es necesario conocer el caudal de la corriente, con el fin de calcular

la carga de los parmetros medidos. Por ello, cuando existen estaciones de medida

del caudal, los sitios de muestreo se deben ubicar en dichas estaciones o cerca de

ellas.

2.4.2. Muestreo de un lago o embalse

Se debe contar con datos sobre las caractersticas tales como volumen, rea

superficial, profundidad media, tiempo de renovacin, as como las caractersticas

trmicas, batimtricas, hidrulicas y ecolgicas.


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Para el muestreo de un lago o embalse, la seleccin de los sitios de muestreo

depende del propsito que se tenga. Cuando el objetivo es conocer la potabilidad, se

deben tomar muestras de todos los afluentes y del espejo de agua en los sitios

cercanos a las posibles fuentes de contaminacin. Se debe evitar tomar muestras en

las mrgenes, superficie o fondo, pues la calidad no es uniforme en estos sitios.

2.5. FRECUENCIA DEL MUESTREO

El programa de muestreo puede estipular tiempos de muestreo al azar, pero

deben estar distribuidos ms o menos uniformemente a travs del ao. Si se conoce

el tiempo de mayor variabilidad o pico de la calidad del agua (poca de invierno o

verano), es conveniente incrementar la frecuencia en tales pocas o desviar haca

ellos ms esfuerzos en el monitoreo.

Los lagos naturales y artificiales muestran variaciones de composicin segn

la localizacin horizontal y la profundidad (estratificacin); en tales casos se debenexaminar las muestras separadamente antes de integrarlas.


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3. SELECCIN DE LOS PUNTOS DE MUESTREO EN CADA

ESTACIN.

3.1. IBGN

Tomaremos como ejemplo de la aplicacin de este mtodo un estudio

realizado en el ro Hueznar, en la Sierra Norte de la Provincia de Sevilla, Andaluca,

Espaa, donde se tomaron como referencia siete estaciones diferentes para el

estudio y, dentro de cada estacin, ocho puntos de muestreo.

Para la eleccin de estas estaciones no se han seguido criterios cuantitativos,sino cualitativos que permitan encontrar las causas de posibles variaciones de los

parmetros a estudiar.

El sentido de estos ocho puntos es la representatividad de ocho hbitats

distintos. Esta eleccin nos permitir apreciar la evolucin de la biomasa y detectar

los cambios impuestos de los hbitats a los macroinvertebrados y una visin

generalizada de los distintos grupos existentes en la estacin. Hay pues una relacin

directa entre la riqueza taxonmica y la riqueza del hbitat. Es imprescindibledistinguir estos ocho hbitats o al menos las facies lntica y ltica. Generalmente los

sistemas lticos son ms sensibles que los lnticos. La evidencia de perturbaciones

es facilitada en situaciones extremas, como con dficits de agua, temperaturas

extremas, etc. Cada hbitat viene establecido por la velocidad de corriente, la altura

del agua y la naturaleza del sustrato.

Figura 3.1.Arriba se observa tpica facie ltica Figura 3.2 Tipica facie lentica


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El IBGN nos indica cmo efectuar una correcta eleccin de estos puntos. As

pues, se buscarn ocho parcelas de 1/20 m2. Se efectan ocho combinaciones

distintas de sustrato/velocidad (S-V). Cada hbitat est caracterizado por una pareja

distinta de sustrato-velocidad. Si no existen ocho tipos distintos de sustratos, se

debe tomar unos de ellos dos veces pero en puntos con distinta corriente ovelocidad. Si el terreno es montono, hay que hacer un muestreo en ocho puntos

distintos intentando recoger todo el sustrato significativo. Si existen ocho sustratos

distintos y uno de ellos presenta puntos con distinta corriente, se debe tomar la

muestra en aquel que sea ms significativo (el que tenga mayor superficie en

general dentro de la estacin). Con la velocidad se actuar igual: una falta de ciertos

hbitats puede solucionarse muestreando los sustratos por separado dentro de la

misma parcela. Por ejemplo, en ausencia de hbitat lntico en un cauce de montaase muestrear primero la superficie superior mientras que la superficie inferior y el

sustrato subyacente ser objeto de un segundo muestreo. Sin embargo, la

experiencia en nuestros ros andaluces objetos de este estudio, por ejemplo el

Huznar, nos indica que los distintos tipos de habitats estn bien representados.

Figura 3.3. Zona con corriente media.

Figura 3.4. Zona con corriente rpida Figura 3.5. Zona con corriente baja


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Puede ser til marcar cada punto elegido con una bandera. Este mtodo nos

dar una buena visin del conjunto de la estacin y de la eleccin de los hbitats

ms representativos. Adems, en el mapa de la estacin se marcarn siempre los

ocho puntos elegidos. Tambin es aconsejable la anotacin de cualquier

caracterstica reseable de cada punto en una ficha identificativa, como laaccesibilidad, presencia de elementos externos al ro, etc.

Efectuando combinaciones definidas en la tabla 3.1. As obtendremos

nuestros ocho puntos. Las velocidades superficiales son evaluadas para cada

hbitat mediante un caudalmetro o, si la diferencia es acusada, mediante simple

observacin. La categora de los sustratos estn clasificados en el orden de

sucesin figurante ordenado en la tabla (de 9 a 0). Esta sucesin recomienda

muestrear prioritariamente los hbitats ms hospitalarios para la fauna. En estos

estarn presentes los macroinvertebrados ms selectivos en cuanto a su hbitat.

Estos nos elevarn nuestro ndice. En presencia de una perturbacin ms o menos

acusada estos organismos desaparecern. Sin embargo aquellos invertebrados que

estn adaptados a situaciones estresantes o contaminantes permanecern. As

pues, habr que empezar siempre que se pueda por los hbitats de ms calidad.

Cuando esto no sea posible se irn eligiendo sucesivamente en orden descendente

en la tabla de S-V.

Figura 3.6. Briofitas Figura 3.7. Plantas flotantes o spermafitas.

Figura 3.8. Partculas de arena con dimetro menor de 25.


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3.2. BMWP.

Este ndice de macroinvertebrados, al contrario que el IBGN, no especifica las

zonas de muestreos. En un principio se podrn escoger dentro de una estacintantos puntos como hbitats distintos haya. Esto nos dar una representatividad ms

o menos adecuada de la estacin completa, aunque para facilidad del trabajo se

recomienda establecer pocos puntos, pero que sean representativos de la totalidad

de los hbitats.

3.3. IBD.

Se eligir un punto donde las condiciones de crecimiento de las diatomeas

sean ptimas, es decir, una zona no muy profunda, con una adecuada iluminacin, y

que sea aireada a travs de una corriente ms o menos fuerte. Generalmente estas

condiciones en los ros de la Sierra Norte de Sevilla son fciles de encontrar, ya que

hay muchas rocas superficiales dentro de la corriente donde crecern

adecuadamente estos microorganismos. Con una muestra por estacin bastar,

aunque en condiciones especiales se podrn muestrear varias zonas, escogiendo

distintos hbitats, en orden decreciente de agresividad del medio.

Figura 3.9. Encontraremos las diatomeas sobre las rocas en zonas de corriente y

con iluminacin como en la foto de adjunta.

Para poder muestrear en zonas muy profundas se tomarn muestras de agua

o incluso se pueden poner sustratos artificiales a una cierta altura.


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4. METODOLOGA DEL MUESTREO

Una vez determinados los puntos de muestreo en el apartado anterior, en

base a variables de sustrato, velocidad y hbitat, procederemos a efectuar el

muestreo en s.

Para ello, nos basaremos en las especificaciones de ndices biolgicos que

tratan de determinar la calidad ambiental de una determinada zona en base a la

tolerancia ambiental de los organismos que aparecen en circunstancias de estrs

ambiental.

El mtodo de muestro empleado para los macroinvertebrados viene

especificado en la norma francesa NT 90-350 y el material empleado corresponde a

la norma internacional ISO 7828:1985, Mtodos de muestreo biolgico. Gua para el

muestro manual con red de macroinvertebrados bentnicos. Para la toma de

muestras de diatomeas, se seguir la norma francesa NF. T 90-354.

Para que la toma de muestras sea objetiva, representativa y a su vez repetible

en el tiempo, se han de establecer una serie de pautas o pasos a seguir as como el

uso de unos materiales de campo cuyas medidas estn normalizadas. Es decir, se

trata de definir un protocolo de actuacin vlido para toda la zona que se desee

muestrear tanto en metodologa como en el tiempo.

4.1. NDICE BIOLGICO GENERAL NORMALIZADO (IBGN). AFNOR

1992.

Este mtodo deriva del ndice IBG (ndice Biolgico Normalizado, normaAFNOR experimental N T 90-350, Octubre 1985).


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Permite la evaluacin de la calidad general de un curso de agua mediante el

anlisis de la macrofauna bntica, la cual est considerada como indicador (o

expresin sinttica) de esta calidad general. Tambin permite la evaluacin del

efecto de una perturbacin en el medio receptor cuando es aplicado

comparativamente ro arriba y ro abajo de un vertido o de alguna otra perturbacin.

Los individuos son seleccionados y determinados hasta el nivel de familia, a

excepcin de aquellos grupos faunsticos dbilmente representados o donde la

identificacin es delicada.

Las caractersticas que deben recogerse en cada estacin de muestreo:

o la fecha.

o la localizacin geogrfica exacta (coordenadas UTM).

o la altitud.

o la anchura del lecho mojado en el momento del muestreo.

o la naturaleza del sustrato y la velocidad de corriente

correspondiente a las 8 muestras efectuadas sobre la estacin y el

hbitat dominante.

o la lista de taxones muestreados y eventualmente sus

abundancias relativas.

o la variedad taxonmica de la toma de muestra ( t).

o el grupo faunstico indicador (valor de GI).

Metodologa de muestreo.

1.-Indicar el muestreo de cada punto, indicando en la bolsa:

ro estacin n


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punto.

2.- El muestreo se debe realizar siempre a contracorriente, es decir,

debemos empezar a muestrear por el punto ms bajo de la estacin de muestreoe ir subiendo, para evitar as mover el punto siguiente y perder muestras de

macroinvertebrados que pueden ser arrastrados por la corriente al pisar nosotros

el terreno. De cada punto, se debe anotar:

tipo de sustrato.

velocidad de corriente aproximada.

3.-Las muestras son tomadas con la ayuda de una malla de 500 m. de

dimetro, de tipo Surber (facies lticas); o en aguas turbias (facies lnticas) por

traccin de 50 cm. o en su defecto por movimiento de vaivn sobre una superficie

equivalente. Si la superficie estuviera compuesta por rocas, se procedera a la

extraccin y recoleccin de las mismas depositndolas en cubetas para su

posterior retirada de los organismos a estudiar.

4.-Se procede al tamizado de las muestras punto por punto por medio del

tamiz de 500 micras de malla, extrayendo los diferentes organismos si es que no

se ha realizado en el campo. De este modo se van separando las muestras

manualmente ayudndonos con pinzas u otro tipo de utensilios adecuados a tal

efecto.

5.-Una vez obtenida y separadas las muestras se conservan con formol al

6-10% y se dispensan en viales para facilitar la posterior separacin de los

organismos en el laboratorio. Es importante el hecho de rotular perfectamente

cada vial indicando el punto de muestreo, la estacin a la que pertenece y, si

fuese necesario, el cauce que estamos estudiando, as como algn que otro

aspecto que consideremos de importancia en ese momento.


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6.- Una vez separados y ordenados los organismos se procede a su

identificacin y recuento mediante claves (guas identificadoras) y con ayuda de

una lupa binocular y de un microscopio ptico.

Figura 4.4. , 4.5. y 4.6. Tamizado con la malla surber en distintas zonas de un r io.

Material.

En lo que se refiere al IBGN, se pueden usar una malla tipo Surber de

medidas normalizadas para ambientes de sustrato-velocidad de caractersticas

lticas, o una malla tipo Haveneau para ambientes de caractersticas lnticas.

Figura 4.7.Malla tipo Haveneau (zonas lenticas y profundas).


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Figura 4.8. Malla tipo Surber (zonas loticas).

En nuestro caso usaremos la primera: la malla tipo Surber, (ver figur

a), dado que nuestro mtodo ha demostrado ser vlido usando la misma tanto

para ambientes lticos como para ambientes lnticos.

Figura 4.9. Malla surber. Figura 4.10. Malla surber.

Igualmente precisamos para realizar el trabajo cubetas de plstico,

preferentemente anchas y con asa para su mejor manejo a la hora de tamizar la

muestra, as como otros elementos, (si procediera su uso), tales como guantes de

ltex, pinzas, bandejas tamizadoras con una luz de malla igual a la utilizada en la

malla Surber, es decir, un dimetro de 500 micras para mantener as constante el

tamao de poro y viales donde depositar la muestra a analizar una vez obtenida esta

ltima. Los viales pueden ser de plstico, pvc, u otro material semejante y con

paredes lisas para evitar la acumulacin de muestra en las mismas. Su capacidad

ser acorde al volumen de muestra a tratar, oscilando esta entre 50-100 ml de

capacidad.

Tambin precisaremos formaldehdo al 6% para la conservacin de las

muestras y su posterior anlisis en laboratorio.


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o Ventajas y lmites de la metodologa.

Este mtodo perfecciona al ndice predecesor IBG: cambia el orden de los

sustratos de la toma de muestra dando una prioridad a los sustratos mshospitalarios para la fauna macroinvertebrada; desplazamiento de ciertos taxones de

la tabla estndar de determinacin del ndice desde el sentido de una mayor

tolerancia a la polucin; aumentando el nmero de clases de variedad taxonmica y

del nmero de taxones a considerar; ciertos taxones no se tienen en cuenta si son

representados por menos de 10 individuos. Esta mejora contribuye a una mayor

sensibilidad del mtodo y, a nivel prctico, las ventajas de este mtodo residen en la

facilidad de clculo del ndice y la simplicidad de las determinaciones taxonmicas.

En tal caso, el IBG puede ser aplicado a todos los tipos de medios, excepto

en los medios muy profundos, debido a la dificultad de la toma de muestra.

Los macroinvertebrados son aqu considerados como expresiones sintticas

de la calidad general de los cursos de agua. En cambio, esta tcnica no permite

separar de la calidad general del agua la parte debida a las condiciones fsicas

naturales de un curso de agua y la parte debida a las perturbaciones. Esta incgnita

se elimina una vez realizada diferentes campaas que permitan conocer datos

histricos sobre la fauna acutica existente en el ro como hemos as constatado a lo

largo de las diferentes campaas en las que se ha validado el mtodo para cauces

fluviales andaluces.


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4.2. BMWP ( BIOLOGICAL MONITORING WORKING PARTY ).

La zona geogrfica empleada en su estudio inicialmente fueron las islasbritnicas. Dicho mtodo permite estimar la calidad de un agua para el estudio de la

fauna bntica, en funcin de la tolerancia frente a la polucin orgnica, los individuos

son identificados hasta nivel de familia, a cada cual le afecta un valor segn su

tolerancia a la polucin: un valor elevado refleja una tolerancia fiable frente a la

polucin y viceversa.

El ndice es calculado como la suma de valores correspondientes a las

distintas familias presentes en la toma de muestra.


1.- Sobre una estacin determinada por las caractersticas fsicas

homogneas, la toma de muestra se hace removiendo el sustrato con el pie, ro

arriba y con una red de toma de muestra estndar.

2.- La operacin debe efectuarse cubriendo todos los hbitats ms

importantes durante tres minutos, con un minuto de toma de muestra en los

lugares donde no pueden ser muestreados segn la metodologa precedente.

3.-Las caractersticas fsicas del medio deben ser anotadas.

4.-No se especifica el nmero de puntos de muestreo por estacin.

5.-Una vez obtenida las muestras se conservan con formol al 6-10%. Para

facilitar la separacin de los macroinvertebrados de la muestra.

6.-Se procede al tamizado de las muestras, si es que no se ha realizado

en el campo, y se va separando manualmente, bolsa a bolsa, ayudndonos con

unas pinzas y una mesa de luz.


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7.- Una vez separados los organismos se procede a su identificacin y

recuento mediante claves (guas identificadoras) y con ayuda de una lupa

binocular y de un microscopio ptico.

Material.

Para la toma de muestras es necesario disponer de una draga-malla de 500

micras, (tipo Surber), badeadoras, pinzas, bolsas, tamices ( uno de ellos debe ser de

500 micras). En el laboratorio sern necesarios una mesa de luz, unas cubetas,

pinzas finas, recipientes para separar los organismos, lupa binocular, microscopio

ptico, guas identificadoras de macroinvertebrados y formaldehdo al 6%.

Ventajas y lmites del mtodo.

Facilita la determinacin de macroinvertebrados. Clculo fcil de un ndice y

obtencin de una expresin sinttica de la calidad del agua fcilmente asimilable por

todas las personas. La escala BMWP vara en funcin de la talla y de la diversidad

especfica de las muestras, lo que hace que se obtenga sobre una misma estacin

los diferentes valores de esta escala segn el esfuerzo de toma de muestra

realizado por el operario.

Podramos considerar que la libertad a la hora de elegir el nmero de puntos

a muestrear en cada estacin sera un lmite del mtodo, ya que podran existir

variaciones segn el operario que realice el muestreo. No obstante, se intentar

siempre escoger un nmero de puntos suficiente para representar los distintos

hbitats de la estacin que se muestree.

4.3. NDICE BIOLGICO DIATMICO (IBD). AFNOR.

Para la confeccin de este ndice, usamos un grupo de microalgas que

son las diatomeas, pertenecientes al grupo de las crisofceas. Su uso en este ndice

se basa en la tolerancia que poseen ante distintos contaminantes y su respuesta


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ante ellos, de tal modo que las poblaciones varan en el espacio y en el tiempo

variando ecolgicamente frente a esos contaminantes. Es por ello que este grupo

de algas es usado como organismos bioindicadores.


Dependiendo del tipo de cauce en el que se vaya a muestrear, se tomarn las

muestras en columna de agua o sobre un sustrato. De tal modo que si el cauce es

grande y profundo, se toman muestras de agua, bien en superficie o bien en

profundidad, en un vial adecuado a la capacidad requerida, de tal modo que para el

tratamiento posterior precisaremos de 5 ml de muestra.

En cambio si se trata de muestrear una zona con un cauce pequeo, se toma

la muestra de una zona del ro con buena oxigenacin y corriente, preferiblemente

de la orilla, procedindose al raspado de la capa de materia orgnica y sedimento

que est adherida al mismo, introduciendo la muestra en un vial con un poco de

agua del cauce, procedindose a su tratamiento posterior en laboratorio.

Es de importancia el rotular correctamente la muestra en cuestin, el punto de

muestreo, la estacin y si fuese necesario el cauce fluvial que se est estudiando,

as como otras consideraciones de inters, tales como la fecha, hora de recogida y

autor del muestreo.

Figura 4.1. Cocconeis Figura 4.2. Cyclotella Figura 4.3. Cymbella


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5. TRATAMIENTO DE MUESTRAS

Una vez obtenidas las muestras de cada punto de muestreo,

procederemos al tratamiento adecuado de stas. Debido a la fragilidad demacroinvertebrados y diatomeas, este procedimiento debe ser realizado con gran

delicadeza ya que de ello depende la correcta identificacin de los individuos

capturados. A continuacin se detallan los pasos a seguir para un ptimo procesado

de las muestras.

5.1. IBGN Y BMWP

Material necesario:

Pinzas de relojero

Bandeja de fondo blanco (30 x20 x 5 aprox.)

Bandeja clasificadora

Lquido conservante (formaldehdoal 6% o alcohol 70 + glicerina al10%)

Frasco lavador

Para comenzar la separacin de las muestras se debe elegir un lugar bien

iluminado debido al pequeo tamao de muchos de los macroinvertebrados.

Comenzamos vertiendo el contenido de los viales en la bandeja de fondo

blanco. El color de esta bandeja nos facilitar la localizacin de los organismos ya

que la tonalidad predominante de stos es oscura, debido a la necesidad de pasar

inadvertidos frente a sus depredadores en su ambiente natural. Lavamos los viales

para evitar que los macroinvertebrados se queden adheridos a las paredes.

Con las pinzas iremos removiendo los pequeos granos de arena con el fin de

dejar al descubierto aquellos individuos que tienden a refugiarse en el sedimento.

Los ejemplares que extraigamos los iremos colocando, con mucho cuidado de nopartirlos con las pinzas, en los distintos pocillos de la bandeja clasificadora, los


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cuales estarn rellenos de lquido conservante (formaldehdo 6% o alcohol 75),

reuniendo a los individuos morfolgicamente ms parecidos en un mismo pocillo,

realizando as una primera clasificacin visual de los organismos. Esto nos facilitar

luego la identificacin de los distintos taxones. Este procedimiento se repetir con

todas las muestras que compongan cada punto de muestreo, indicando en cadapocillo la procedencia de los individuos que contengan. Se utilizar un pocillo distinto

por cada punto de muestreo y grupo morfolgico. Una vez se hayan obtenido todos

los macroinvertebrados se proceder a su identificacin con ayuda de una lupa y las

correspondientes guas de identificacin.

Figura 5.1. Bsqueda de ejemplares en bandejas de tonalidad clara para una mejor visualizacin.

5.2. IBD

En este caso se hace mucho ms necesario el correcto tratamiento de las

muestras ya que la extrema fragilidad del caparazn silceo de las diatomeas junto

con el tamao microscpico de stas nos obliga a extremar el cuidado de los

procesos de manipulacin. Una mala preparacin puede provocar que las diatomeas

se partan en pedazos que imposibilitaran su posterior identificacin, o bien que

restos orgnicos mal digeridos interfieran, de forma que oculten diatomeas o

distorsionen las preparaciones.

Para el tratamiento de las muestras se necesitar el siguiente material:


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H2O2 (110-130 Vol.)

cido clorhdrico

Tubos de ensayo

Pipetas de 2 y 5 ml

Ultra centrfuga

Estufa de secado

Portaobjetos ycubreobjetos

Resina NAPHRAX

El procedimiento a realizar sera el descrito a continuacin:

1. Agitar la muestra

2. Tomar 2 ml de muestra (no tomarlo del fondo para evitar impurezas) e

introducirlo en un tubo de ensayo.

3. Aadir 8 ml de perxido de hidrgeno para destruir la materia orgnica.

4. Dejar reposar 12 horas para digerir toda la materia orgnica.

5. Si fuera necesario, aadir cido clorhdrico para eliminar el carbonato clcico,

antes o despus del tratamiento con perxido de hidrgeno.

6. Transcurridas las 12 horas se procede a sedimentarlas mediante

centrifugacin a 1500 vueltas/minuto durante 5 minutos. Una vez sedimentado se

procede al lavado.

7. Se retira el perxido de hidrgeno (sobrenadante), se aade agua destilada y

se centrifuga a 1500 vueltas/minuto, durante 2 minutos. Este procedimiento se repite

tres veces, cambiando el agua destilada cada vez que se centrifuga.

8. Una vez limpias todas las muestras se retira todo el sobrenadante, se toma

todo el sedimento y se reparten en dos cubreobjetos y se dejan que se sequenencima de la estufa a una temperatura no superior a 40C.

9. Una vez secas, se aade una gota de resina naphrax en el portaobjetos sobre

el cual se colocar el cubre con la muestra, con mucho cuidado de repartirlo por toda

la superficie del cubreobjetos y de no formar burbujas entre el cubre y el porta.

10. Dejar secar durante al menos 48 horas antes de su visualizacin al

microscopio.


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6. IDENTIFICACIN DE LOS TAXONES DE

MACROINVERTEBRADOS Y DIATOMEAS

Una vez realizado el tratamiento de las muestras, procedemos a laidentificacin de los organismos indicadores de calidad. Para ello vamos a estudiar

dos tipos de organismos diferentes: los macroinvertebrados y las diatomeas.

6.1. MACROINVERTEBRADOS:

Son los organismos ms frecuentemente utilizados como indicadores decalidad de agua por varias razones:

Son organismos con escasa capacidad de movimiento, por lo

que se pueden ver directamente afectados por los vertidos.

Poseen un ciclo de vida largo en comparacin con otros

organismos, por lo que se pueden realizar estudios durante largos periodos.

Poseen un espectro ecolgico muy amplio (grupo muyheterogneo).

Tambin tienen un tamao ptimo.

Son organismos que no tienen espina dorsal y que son visibles sin usar

microscopio. El estudio de macroinvertebrados es el ms utilizado debido a la

variedad y abundancia de las comunidades que lo forman, la facilidad de recogida

de muestras y la diversidad de tolerancias que presentan a las variaciones de las

condiciones del agua.

Los ndices biticos (aquellos que ordenan las especies de

macroinvertebrados segn la tolerancia a la contaminacin orgnica) que vamos a

aplicar son los siguientes:

IBGN (ndice Biolgico Global Normalizado)

BMWP (Biological Monitoring Working Party)


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6.1.1. IBGN

Es un ndice francs, norma AFNOR, Diciembre 1992. Deriva del IBG (ndice

Biolgico Normalizado), que es norma AFNOR experimental N T 90-350, deOctubre 1985.

Dicho ndice permite evaluar la calidad general del curso del agua mediante

anlisis de la macrofauna bntica, la cual est considerada como indicador de la

calidad general. Tambin se puede evaluar el efecto de una perturbacin cuando

es aplicado comparativamente ro arriba y ro debajo de un vertido o de cualquier

otra perturbacin.

La unidad taxonmica utilizada para la determinacin es la familia, a

excepcin de aquellos grupos faunsticos dbilmente representados o donde la

identificacin es delicada.

Para determinar el ndice utilizaremos una tabla cruzada (ANEXO 9.3) dondese confronta el nmero total de taxones encontrados (t), situado en la abscisa y el

primer grupo faunstico indicador de la tabla (G.I), situado en la ordenada. Cada

taxn ser representado nicamente si el nmero de individuos encontrados es

mayor o igual que tres o mayor o igual que diez (para ciertos taxones).

La determinacin del grupo indicador la realizaremos siguiendo la tabla de

arriba abajo y pararemos en la primera presencia significativa de un taxn (n

mayor que tres o n mayor que diez) de la lista de indicadores de calidad, siendo

n el nmero de individuos de cada taxn .As, el valor del IBGN resultar de la

combinacin del grupo faunstico indicador y de la variedad de taxones

encontrados de la macrofauna bntica ( ver tabla en ANEXO 9.3).


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Existen 138 taxones (ver tabla indicadora de taxones de IBGN en ANEXO

9.2) susceptibles de participar en la variedad total y 38 grupos de individuos que

pueden actuar como grupos indicadores.

Los valores del IBGN van desde 0 (muy mala calidad) a 20 (muy buena

calidad).En la tabla siguiente, podemos observar el valor del IBGN asociado a la

calidad del agua y al color asignado en cada caso:

IBGN >17 calidad excelente

16 > IBGN > 13 calidad buena

12> IBGN > 9 pasable

8 > IBGN > 5 mediocre

IBGN < 4 mala

Tabla 6.1. Cdigo de colores y calidades de las aguas analizadas segn el valor del IBGN.

El color azul indica que las aguas son muy limpias; el verde, aguas no

alteradas sensiblemente; el amarillo, es indicativo de signos de contaminacin; el

naranja, aguas contaminadas y el rojo supone aguas muy contaminadas.

Un ejemplo de aplicacin del IBGN, remitindonos a la tabla, sera el

siguiente: si el primer taxn representativo es Perlidae, tendremos como grupo

indicador el 9. Si el nmero de individuos encontrados de este grupo es 35, vemosen la tabla cruzada que nos corresponde un valor de IBGN de 18.

Tambin podemos calcularlo mediante la relacin siguiente:

IBGN= GI + (clase variedad 1), con IBGN menor o igual a 20.


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6.1.2. BMWP

Este ndice es una aplicacin del BMWP, que es un ndice britnico revisado

por Helawell en 1978. Fue ajustado por Alba-Tercedor y Snchez Ortega en 1988 yadoptado en el VI Congreso Espaol de Limnologa (Granada 1991) para su

aplicacin a la Pennsula Ibrica, debido a su fcil utilizacin.

Tiene como finalidad estimar la calidad del agua para el estudio de la fauna

bntica, en funcin de la tolerancia frente a la polucin orgnica.

Dicho ndice no est acotado por arriba. El autor asigna a cada grupo

faunstico una puntuacin en funcin de su exigencia en cuanto a la calidad del

agua. El valor que se asigna est comprendido entre uno y diez. Las familias ms

exigentes (algunos Plecpteros, Efemerpteros, Tricpteros,) tienen una

puntuacin de diez, mientras que los menos exigentes (clase Oligochaeta, por

ejemplo) tienen una puntuacin de uno. Esto significa que les corresponde un valor

de diez a familias que no toleran la contaminacin y les corresponde un valor de uno

a familias que viven en aguas muy contaminadas.

El valor del ndice bitico se calcula sumando las puntuaciones de los

distintos grupos faunsticos encontrados en cada punto de muestreo. Cuanto ms

elevado es el valor del ndice bitico, la calidad del agua es mayor y si corresponde

un valor ms bajo del ndice, la calidad del agua ser menor. El valor rara vez

supera la puntuacin de 200, an en las zonas mejor conservadas y carentes decontaminacin.

En el ndice BMWP, que es la aplicacin del BMWP a los ros ibricos, se

incluyen algunas familias que no se encuentran en la fauna britnica. Adems,

cambian algunas puntuaciones de familias que s estn en ambos lugares.

Generalmente, los valores de BMWP suelen ser mayores, aunque ambos tienen

fuertes correlaciones. En el caso de BMWP, asigna los valores de cinco clases de

calidad. La clase I indica mejor calidad de agua y la V indica una calidad de aguams deficiente.


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Tabla 6.2. Cdigo de colores y calidad de las aguas segn el valor del BMWP

Los valores intermedios entre las clases (cinco puntos por abajo y por arriba

del lmite marcado entre dos clases), se considera transicin entre ambas y se

dibujan con trazos alternos de los dos colores.

En la siguiente tabla, relacionamos los dos ndices biticos antes

mencionados, IBGN y BMWP, y su significado con respecto a la calidad del agua.

IBGN BMWP SIGNIFICADO

>150

101-120

Aguas muy limpias

Aguas no contaminadas o noalteradas de modo sensible

16-13 61-100Son evidentes algunos efectos de

contaminacin

12-9 36-60 Aguas contaminadas

8-5 16--35 Aguas muy contaminadas

150 Clase I(a).Aguas muy limpias.

101


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qumicas del medio y existen mayor nmero de especies indicadoras de calidad de

agua, basta con la existencia de un solo individuo por especie (ver tabla indicadora

de taxones de BMWPen ANEXO 9.4).

6.2. DIATOMEAS:

Son el siguiente grupo de organismos que vamos a estudiar como indicadores

de calidad. Las algas, en general, se utilizan como indicadores de calidad de agua

gracias a la sensibilidad a los cambios del medio en que viven, por tanto se

convierten en un referente del estado ecolgico de cualquier sistema acutico.

Una de las caractersticas ms importantes de las algas es su capacidad

depuradora del medio ambiente, ya que a travs de la fotosntesis incorporan

oxgeno, contribuyendo de esta manera a la oxidacin de la materia orgnica, por un

lado y, por otro, a aumentar el oxgeno disuelto en agua, el cual ser utilizado por

otras comunidades u organismos que componen la flora y fauna del medio acutico

donde viven.

Se considera que cuanto mayor es la diversidad de especies existentes en el

medio, las aguas son de mejor calidad.

El nfasis del estudio est centrado en el grupo de algas diatomeas, que son

algas unicelulares, pardas, capaces de colonizar los sistemas acuticos, muy

sensibles a la polucin (especialmente al nitrgeno y fsforo). Son capaces de

colonizar cualquier tipo de sustrato; son muy resistentes a la accin de los

elementos, incluso a altas temperaturas. Se pueden encontrar en forma libre o

formando colonias. Son estrictamente auttrofas y constituyen el grupo ms

importante del fitoplancton, debido a que contribuyen con cerca del 90% de la

productividad de los sistemas.


35/55

Tienen la particularidad de que permanecen en el tiempo, pues sus paredes

silceas no se degradan. Se las encuentra en todos los ambientes y son las algas

ms utilizadas en todo el mundo para el biomonitoreo de ambientes actuales y

fsiles.

A travs de distintos estudios realizados, se sabe que los cambios en las

comunidades algales delatan el inicio de contaminacin que pueda existir en un

sistema acutico, lo cual se refleja en las modificaciones de la estructura poblacional

y en la proliferacin de especies asociadas a determinados aportes. Las respuestas

de estos organismos frente a los cambios de las condiciones del medio los

convierten en finos sensores de la calidad del agua y en referentes del estado

ecolgico del medio ambiente.

Estas algas poseen una membrana celular constituda fundamentalmente por

pectina, fuertemente impregnada de slice, de modo que resiste la accin de los

cidos y bases fuertes. A este caparazn silceo en forma de estuche de dos valvas

se le da el nombre de frstulo o teca. ste se encuentra formado por dos partes, que

se unen como las piezas de una caja: son las semitecas. Existe una semitecasuperior, llamada epiteca y una inferior, llamada hipoteca. Tanto epiteca como

hipoteca constan de porciones perfectamente delimitadas. La regin superior de la

epiteca y la inferior de la hipoteca se denominan valvas y, segn corresponda, se

nombran epivalva e hipovalva. Los bordes de las semitecas reciben el nombre de

pleuras, existiendo epipleura e hipopleura. En base a lo anterior y a la regin del

frstulo que se est observando de un ejemplar, ser la denominacin que reciba la

vista; si se observa epivalva o hipovalva, ser vista valvar y si se observa epipleura ohipopleura, ser vista pleural. Los frstulos de diatomeas presentan una serie de

ornamentaciones, as como la estructura externa, que tambin presenta una serie de

elementos tales como espinas, salientes, etc., que sirven de unin entre las distintas

clulas. Tambin, aquellas diatomeas que presentan simetra bilateral poseen una

estructura central, denominada rafe.


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Segn la simetra, podemos diferenciar entre aquellas que poseen simetra

radial (Orden Biddulphiaes o Centrales) y las que poseen simetra bilateral (Orden

Bacillariales o Pennales).

A continuacin, mostramos una imagen de una diatomea, en la que se

pueden diferenciar las distintas partes (diatomea perteneciente al gnero

Achnanthes):

Figura 6.1. Estructu ra de una diatomea.

El ndice que vamos a utilizar para la determinacin de las algas diatomeas es

el IBD.

6.2.1. IBD

Es el ndice Biolgico Diatmico. Es un ndice francs, norma AFNOR N F. T90-354.

El principio de este ndice es el mismo que para los ndices biticos, tambin

influye la cantidad relativa de los taxones. Viene referido para todos los ecosistemas

de agua dulce, porque las diatomeas se caracterizan por estar presentes en todas

partes y, sobre todo, en todo tipo de sustratos.


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Si el nmero de diatomeas contadas es menor que 400 despus de ver toda

la preparacin, es necesario hacer una nueva preparacin a partir del agua de

origen, con el fin de completar el contaje. Para evitar este problema, la preparacin

se hace doble.

Clculo del IBD:

Para realizar este clculo, vamos a seguir una serie de pautas:

Clculo del porcentaje de la abundancia (representada

por A) de los taxones que aparecen y de los taxones asociados.

Eliminacin de los taxones que aparecen pero que

presentan A menor que los valores que indica la norma. Todos los

taxones que aparecen presentan A menor que 7,5% (es decir, tres

diatomeas de 400), todos stos son eliminados sistemticamente. Se

considera que el efecto producido por ms de tres individuos de un

taxn asociado es ms peligroso que si considersemos que fuese en

realidad una contaminacin de la muestra.

Clculo de probabilidad de presencia de un taxn de los

que aparece es significativo de la poblacin. Son los que se estudian

para determinar la calidad del agua, utilizando la siguiente frmula:

F (i) = Ax* Px (i)*Vx / Ax*Vx

Ax es la abundancia del taxn x que aparece en porcentaje.

Px (i) es la probabilidad de presencia del taxn x de la clase de

calidad i.Vx es el valor ecolgico del taxn x.

n es el nombre de los taxones que aparecen.

Existen siete valores de F (i), porque el IBD define siete clases

de calidad de agua.

Clculo de B, que corresponde al valor del IBD y que

constituye un valor intermedio.


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B = 1*F(1)+2*F(2)+3*F(3)+ 4*F(4)+5*F(5)+6*F(6)+7*F(7)

Clculo del IBD sobre 20

IBD/20 = 4.75 * IBD - 8.5

IBD >17 calidad excelente

16 > IBD > 13 calidad buena

12 > IBD > 9 pasable

8 > IBD > 5 mediocre

IBD < 4 mala calidad

Tabla 6.4. Cdigo de colores y calidad del agua analizada segn el valor del IBD.


40/55

7. BIBLIOGRAFA

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UNIVERSITAT DE VALENCIA. DEPARTAMENTO DEBIOLOGA ANIMAL

Curso de postgrado Experto en aplicacin de tcnicas biolgicas retrospectivas

(biomonitoring) para la evaluacin de la contaminacin acutica.


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LASSERRE (G)- Cours dhydrobiologie. Ecologie, dynamique des

Pleuplements et des populations aquatiques.

GONZLEZ DEL TNAGO (M), GARCA DE JALN (D) Restauracin de ros

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MARGALEF (R). Limnologa. Ed. Omega. 1983

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JUNTA DE ANDALUCA: Cuaderno de itinerarios de Parque Natural Sierra

Norte de Sevilla, Sevilla. Consejera de medioambiente.

JUNTA DE ANDALUCA: Gua Prctica Parque Natural Sierra Norte (mapa),

Empresa Pblica de Turismo.


42/55


43/55

FAMILIAS BIOTOPO CORRIENTE ALIMENTO NUTRICIN

Glossiphonidae

g. hemiclepsis Lagos, estanques(corrientes deagua)

Limnfilos Pescado Succionan sangre

g. HelobdellaLagos, corrientes

de agua,vegetacin

LimnfilosArtrpodos,

GasterpodosSuccionan sangre

g. GlossiphoniaSustrato duro,

lagosLimnfilos Gasterpodos Succionan sangre

Hirudidae

g. HirudoLagos, estanques Limnfilos

Mamfero

(parsitos)Succionan sangre

Erpobdellidae

Riberas (lagos y

estanques)

Refilos

Limnfilos

Invertebrados

acuticos Predador

ORDEN PLECPTEROS


Glossiphonidae

g. hemiclepsis

Lagos,estanques(corrientesde agua)

Limnfilos Pescado Succionan sangre

CapniidaeSustratosblandos,restos

Refilos Restos vegetales Fitfagos

g. GlossiphoniaSustrato

duro, lagosLimnfilos Gasterpodos Succionan sangre

Hirudidae

g. Hirudo

Lagos,estanques

LimnfilosMamfero

(parsitos)

Succionan sangre

ErpobdellidaeRiberas(lagos y

estanques)

Refilos

Limnfilos

Invertebradosacuticos

Predador


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CLASE GASTERPODOS


Viviparidae

Sustratoduro

Potamn

Limnfilos Macrfitos, restosFitfagos, raspan el

sustrato

BythinellidaeMacrfitos

CrenonRefilos Micrfitos Raspan el sustrato

Hydrobiidae Macrfitos Limnfilos Restos vegetalesFitfagos, raspan y

filtran

AncylidaeSustrato

duro,macrfitos

Refilos Micrfitos Raspan el sustrato

FerrisiidaeAcroloxidae

Macrfitos,limos, fango

Limnfilos Micrfitos, restos Raspan el sustrato

PlanorbidaeMacrfitos(sustrato

duro)Limnfilos Macrfitos

Fitfagos, raspan elsustrato

PhysidaeMacrofitos(sustrato



LymnaieidaeMacrfitos(sustrato




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ORDEN EFEMERPTEROS


Ephemeridae Arenas, gravas RefilosRestos orgnicos y

vegetalesColectores

PolymitarcidaeCienos, limos,

gravas, potamonLimnfilos

Restos orgnicos yvegetales

Colectores

HeptageniidaeBloques,

empedradosRefilos

Restos orgnicos yperifiton

Colectores

CaenidaeLimos

recubriendo laspiedras

Refilos y limnfilosRestos orgnicos

finosDetritvoros

baetidae Empedrados Refilos

Algasmicroscpicas,

restos orgnicosfinos, larvas

Colectores

LeptphlebiidaeLagos, aguas

lentas, potamonRefilos

Algas microscpicasy restos orgnicos

Detritvoros

CLASE CRUSTCEOS


Gammaridae Variado Refilos Restos orgnicos Detritvoro

LimnadiidaeSustratosblandos

Limnfilos Invertebrados Predador


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ORDEN PLECPTEROS


Taeniopterygidae

Musgo

vegetacinacutica, gravas

Limnfilos,Refilos

Restosvegetales,algas

unicelularesFitfagos

NemouridaeEmpedrados,

musgosRefilos Restos vegetales Fitfagos

CapniidaeTierras blandas,

restosRefilos Restos vegetales Fitfagos

Chloroperlidae Sustratos duros Refilos Invertebrados Predador

Perlodidae Sustratos duros Refilos Invertebrados Predador

ORDEN ODONATAS


GomphidaeArena ofango

LimnfilosInsectos,pequeoscrustceos

Predador

Aeschnidae Restosvegetales


Predador

Platycnemididae Vegetacin(ribera)


Predador


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ORDEN TRICPTEROS


Glossosomati-daeSustrato

duro,capassuperiores

Refilos Micrfitos (restos) Fitfagos

HydroptilidaeAlgas

filamento-sas, piedras

LimnfilosAlgas

filamentosasFitfagos

HydropsichidaeSustrato

duroRefilos

Restos finos,algas

microscpicasDetritvoro

PhilopotamidaeSustrato

duroRefilos

Algas (finos restosorgnicos9

Detritvoro

Polycentropo-tamidae

Sustrato dur,ramas

Refilos Invertebrados Predador

Psychomyiidae

Sustratoduro,

maderasumergida

Refilos Micrfitos Fitfagos

EcnomidaeSustrato

duro,vegetacin

Limnfilos - Fitfagos

Phryganeidae Macrfitos LimnfilosInvertebrados y

macrfitosPredador

BeraeidaeRaices,musgos,detritus

Limnfilos algas Fitfagos

limnephilidaeArena,crenon

Refilos vegetales Fitfagos

ORDEN HIMENPTEROS


Agriotypidae Tricpteros Indiferente segnsus huspedes

Segn sushuspedes

Colector


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ORDEN DPTEROS


Tipulidae

Sedimentosde maderacubiertosde agua

Limnfilos Restos vegetales Colector

AthericidaeSustrato

duro,macrfitos

Refilos Invertebrados Colector

LimoniidaeSediment

os demadera

RefilosOligoquetos,Inverebrados

Colector

Anthomyidae Macrfitos RefilosOligoquetos,

chironomidae,invertebrados

Colector

Culicidae

Fondoslimosos,aguas

estancadas

LimnfilosRestos finos,

microfloraColector

SimuliidaeSustrato

duro,macrfitos

RefilosFlora microscpica,

restos finosColector

ChironomidaeSustrato

duro,macrfitos

Limnfilos Refilos Microinvertebrados,algas, restos finos Colector

CeratopogonidaeArena,gravas

Limnfilos Restos orgnicos Detritvoro

EmpididaeSustrato

duro,macrofitos

RefilosSimuliidae,

invertebradosColector

TabanidaeArena,gravas

Refilos Invertebrados Colector


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ORDEN HETERPTEROS


CorixidaeMacrofitos,potamon

Limnfilos Algas, restos Predador

NaucoridaeMacrfitos,

aguasestancadas

Limnfilos Invertebrados predador

NotonectidaeAguas

estancadasLimnfilos Invertebrados Predador

Nepidae

Aguas poco

profundasestancadas Limnfilos

Invertebrados,

pequeos peces Predador

MesoveliidaeVegetacinde ribera

Limnfilos Invertebrados predador


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8.2. TABLAS DE TAXONES INDICADORES DE IBGN.

Lista de los 138 taxones ut ilizados para la determinacin del IBGN

INSECTES

PLCOPTRESCapniidae

ChloroperlidaeLeuctridae

NemouridaePerlidae

PerlodidaeTaeniopterygidae

TRICHOPTRESBeraeidae

BrachycentridaeEcnomidae

GlossosomatidaeGoeridae

HelicopsychidaeHydropsychidae

HydroptilidaeLepidostomatidae

LeptoceridaeLimnephilidae

MolannidaeOdontoceridaePhilopotamidaePhryganeidae

PolycentropodidaePsychomyidaeRhyacophilidae

SericostomatidaeThremmatidae

PHMROPTRESBaetidae

CaenidaeEphemerellidaeEpherneridaeHeptageniidae

LeptophlebiidaeOligoneuriidaePolymitarcidaePotamanthidae

ProsopistomatidaeSiphlonuridae

HTROPTRESAphelocheiridae

CorixidaeGerridaeHebridae

HydrometridaeNaucoridae

NepidaeNotonectidaeMesoveliidae

PleidaeVlildae

COLOPTRESCurculionidae

DonaciidaeDryopidaeDytiscidaeEubriidaeElmidae

GyrinidaeHaliplidaeHelodidae

HelophoridaeHydraenidaeHydrochidae

HydrophilidaeHydroscaphidae

HygrobiidaeLimnebiidaeSpercheidae

DIPTRESAnthomyidaeAtheric idae

BlephariceridaeCeratopogonidaeChaoboridae

ChironomidaeCulicidaeDixidae

DolichopodidaeEmpididaeEphydridaeLimoniidae

PsychodidaePtychopteridae

RhagionidaeScatophagidaeSciomyzidaeSimuliidae

StratiomyidaeSyrphidaeTabanidae

ThaumaleidaeTipulidae

ODONATESAeschnidae

CalopterygidaeCoenagrionidae

CordulegasteridaeCorduffidaeGomphidae

LestidaeLibellutidae

Platycnemididae

MGALOPTRESSialidae

PLANIPENNESOsmylidaeSysyridae

HYMNOPTRES

LPIDOPTRESPyralidae

CRUSTACS

BRANCHIOPODES

AMPHIPODESGammaridae

ISOPODESAsell idae

DCAPODESAstacidaeAtyidae

Grapsidae

Cambaridae

MOLLUSQUES

BIVALVESCorbiculidaeDreissenidaeSphaeriidaeUnionidae

GASTROPODESAncylidaeBithyiridae

BythinellidaeHydrobiidaeLimnaeidae

NeritidaePhysidae

PlanorbidaeValvatidaeViviparidae

VERS

ACHTESErpobdellidae

GlossiphonfidaeHirudidae..

PiscicolidaeTRICLADES

DendrocoelidaeDugesitdaePlanaffidae

OLIGOCHTES

NMATHELMINTHES

HYDRACARIENS

HYDROZOAIRES

SPONGIAIRES

BRYOZOAIRES

NMERTIENS


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8.3. TABLA TAXONMICA CRUZADA

Valores de IBGN segn la naturaleza y la variedad taxonmica de la

macrofauna

Clase de variedad 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1

Taxonest

2> 49 44 40 36 32 28 24 20 16 12 9 6 3

GI 50 45 41 37 33 29 25 21 17 13 10 7 4 1

ChloroperlidaePerlidae.....Perlodidae

Taeniopterygidae

9 20 20 20 19 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9

CapniidaeBrachycentridae

OdontoceridaePhilopotamidae

8 20 20 19 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8

LeuctridaeGlossosomatidae

Beraeidae......Goeridae

Leptophlebiidae

7 20 19 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7

NemouridaeLepidostomatidaeSericostomatidae

Epherneridae

6 19 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6

HydroptilidaeHeptagenildaePofymiTARcidaePotamanthidae

5 18 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5

LeptoceridaePolycentropodidae

PsychomyidaeRhyacophilidae

4 17 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4

Limnephilidae 1)HydrapsychidaeEphemerellidae1)Aphelocheiridae

3 16 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3

Baetidae 1)Caenidae 1)Elmidae 1)

Gammaridae 1)Mollusques

2 15 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2

Chironomidae 1)Asell idae 1)

AchtesOligochtes

1 14 13 12 11 10 9 8 7 6 5 4 3 2 1

1) Taxones representados para menos de 10 individuos Los otros paramenos de 10 individuos.2) t Sumatorio de t


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8.5. ESQUEMA DE LAS ESTACIONES DEL RIVERA DEL HUEZNAR

Estacin n6

7 m

1

7


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Estacin n6

7

bioindicadores calidad agua

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