Cultivo de alimento vivo para acuacultura

Castillo Gutiérrez José LuisMarín Ramírez Dayra Melissa

Cultivos auxiliares

Se les llama cultivos auxiliares, a aquellos que proporcionan alimento vivo, el cual es de especial importancia durante las etapas tempranas del desarrollo de los organismos, principalmente estadios larvarios de los crustáceos, las postlarvas de peces y las diferentes fases en el desarrollo de los moluscos. Estos cultivos paralelos pueden constar de zooplancton y/o fitoplancton, entre los cuales se destacan organismos tales como los cladóceros, copépodos, el anostraco artemia y los rotíferos por parte del zooplancton, mientras que en el fitoplancton se destacan variados grupos de microalgas, principalmente diatomeas y clorofitas.

Levaduras• Estas pueden ser

utilizadas como fuente de alimento principal para varios tipos de larva, sin embargo, su principal uso suele ser el de alimentar el zooplancton, esta también ha sido evaluada para suplementar o reemplazar algas en la alimentación de estados post larvarios de los peneidos como el camarón.

Microalgas• Las microalgas miden de dos a veinte micras, la mayoría no tienen movimiento y se encuentran presentes en todos los sistemas acuáticos, son el equivalente ecológico a las plantas de los ecosistemas terrestres. Al ser parte inicial de la red trófica de muchos organismos, son fuente de proteínas de alta calidad, pigmentos y lípidos con un gran contenido de ácidos grasos poliinsaturados los cuales sirven como productos de almacenamiento y fuente de energía. El tamaño celular es un factor importante a considerar entre las especies de microalgas utilizadas en acuicultura. Además, el grado de valor nutricional, la digestibilidad

• Las microalgas añadidas a los tanques de larvas modifican o estabilizan el valor

nutricional del alimento vivo; en los primeros estadios de peces tanto marinos como

dulceacuícolas algunas larvas son capaces de ingerir directamente las microalgas. Además,

esta alimentación natural incrementa el apetito de los organismos y mejora la microflora tanto

en el tanque como en el tracto digestivo.

GENERO CICLO TEMPERATURA OPTIMA DIAMETRO MEDIO

Phaeodactylum (diatomea) 10 h 25°C 10.4μ

Skeletonema (diatomea) 13.1 h 18°C >20μ

Dunaliella (cloroficea) 24 h 16°C 17.8μ

Chlorella (cloroficea) 7.7 h 25°C 5μ

Tetraselmis (cloroficea) 18 h 18°C 18.4μ

Monochrysis (crisoficea) 15.3 h 20–25°C 10μ

Isochrysis (crisoficea) 30.2 h 20°C 10.2μ

CARACTERISTICAS DE ALGUNAS DE LAS ESPECIES DE ALGAS UNICELULARES UTILIZADAS EN ACUACULTURA

Rotíferos• El segundo grupo de interés lo constituyen los rotíferos, estos son microscópicos animales (de 0.5 a 2.5 mm) que tienen menos de mil células en todo su cuerpo, tienen un cuerpo sin divisiones que asemeja una pera o un saco transparente con una corona de cilios en la parte que podemos identificar como cabeza. Se usan como alimento vivo porque son animales fáciles de cultivar y son muy lentos al nadar, lo que facilita que sean atrapados por las larvas que comienzan a desarrollar sus habilidades depredadoras en la columna de agua.

Anatomía de Brachionus plicatilis

Método del tanque de transferencia

Esquema del sistema de cultivo en tanque de recirculación: A) Bomba de aire; B) Rotíferos en el medio; C) Tubo de vinil (25 cm de diámetro); D) Filtro de recirculación; E) Tina de policarbonato (Pan-light), cubierta de fibra de vidrio.

Técnica de cultivo desarrollada por la asociación The Seto Inland Farming Fisheries Association (SISSFFA) y la Estación de Maricultura de Nagasaki. Este método es el más comúnmente utilizado y es llamado “Thinning out method” (Fukusho et al., 1976).

Sistema de retroalimentación de nutrientes (“Feedback System”) para el cultivo masivo de rotíferos (Hirata, 1980).

ArtemiaLa Artemia es un microcrustáceo conocido comúnmente como Camarón de salmuera o Sea-monkey en inglés.Son organismos muy fáciles de cultivar, con un ciclo de vida corto y que permiten un fácil manejo por su formación de estructuras de resistencia en forma de pequeños huevos llamados quistes.

Existen cinco etapas fundamentales para la preparación de quistes que son: colecta en zonas naturales o en cultivos intensivos, filtrado, lavado, secado, envasado y almacenado.

CICLO DE VIDA DE ARTEMIA

TECNICAS PARA DESCAPSULAR QUISTES DE ARTEMIA 1.Hidratar el huevo de artemia una hora con aereación.2.Cerrar el aire de la incubadora y dejar reposar unos minutos. Los huevos que sedimenten sacarlos con un tamiz y los que floten desecharlos.3.Pasar la artemia a la solución descapsulante de siete a diez minutos como máximo. Evitar que suba la temperatura a más de 35°C (al terminar se ve el quiste de color anaranjado y transparente al microscopio).4.Regresar los huevos al tamiz y lavarlos con agua de la llave hasta que pierdan el olor a cloro (unos diez minutos).5.Lavar los quistes con HCl .1 normal (18 ~ 20 segundos).6.Regresar la artemia al tamiz y lavarla con agua de la llave unos cinco minutos.7.Pasar los huevos a la incubadora con agua de mar y esperar la eclosión en 24 horas.

CONDICIONES OPTIMAS EN CUANTO A COMPOSICION Y CONCENTRACION DE SALES REQUERIDAS PARA LA PRODUCCION DE Artemia EN CULTIVO Y PARA LA ECLOSION DE QUISTES

CONDICIONES QUIMICAS PARA ECLOSION CONDICIONES QUIMICAS PARA CULTIVO

FUENTE CONC. g/l CONC.g/l  

NaCl 50 31.08 O2 - 55 ppm

MgCO 13 7.74  

MgCl2 10 6.09 pH - 8.0

CaCl2 0.3 1.53  

KCl 0.2 0.97  

NaHCO3 2.0 2.00  

CopépodosSe ha demostrado que la inclusión de copépodos en la dieta de peces marinos en estado larvario, asegura un desarrollo normal, con mejoras en el crecimiento y la supervivencia, reduciendo notoriamente la ocurrencia de enfermedades, malformaciones y pigmentación anormal. El cultivo de copépodos aún no dispone de técnicas sencillas para considerarlos posibles substitutos de la Artemia. La principal especie que se ha cultivado masivamente es Tigriopus japonicus, que se ha utilizado para la nutrición de larvas de peces y camarones.

Las dificultades para su cultivo están en relación con el sustrato, ya que esta especie es bentónica, por lo que se ha experimentado con diferentes formas y materiales de sustrato artificial. Los mejores resultados de producción se han encontrado cuando se utiliza como sustrato alguna especie de macroalga pues no sólo juegan el papel de sustrato sino que aportan material de alimento y constituyen en los sistemas de cultivo un filtro biológico que purifica el agua del mismo. En el cultivo de T. japonicus y de otros copépodos en general, es importante proporcionar la temperatura óptima, el pH, el tipo de alimento y su concentración óptima, así como la preparación de hábitats adecuados.

Tres diferentes tipos de sustrato para el cultivo masivo de Tigriopus japonicus.A. Estructura tipo panal1. Base de polivinil transparente2. Tubos aereadores

B.1. Lámina acanalada de polivinil2. Línea de acero cubierta con tubo de silicón3. Aereador

C.3. Tela de mosquitero de plástico (luz de 1.6 mm)2. Aereador

Micro crustáceos de agua dulce

El más común se conoce como pulga de agua por los saltos que da dentro del esta, el cual es generado por la acción de las antenas. El tamaño de este crustáceo llega hasta 4 mm. Estos organismos son valiosos en la alimentación para peces de pequeño tamaño de agua dulce y especialmente, en etapas de desarrollo larvario y juvenil; también se utiliza como ingrediente para la formulación de alimentos comerciales.

Dentro de esta clase de organismos existen dos géneros de agua dulce de gran importancia en Acuacultura, que son Daphnia y Moina.Estos organismos se caracterizan por poseer un cuerpo comprimido lateralmente y ovalado; no se distinguen segmentos como en otros crustáceos. Presentan dimorfismo sexual marcado, la hembra es más grande que el macho. Presentan un carapacho de quitina transparente, las antenas o apéndices con numerosas setas; ojos compuestos y simples (ojo nauplio). Una cavidad embriónica con huevos y embriones situados en la parte dorsal, entre el carapacho y el dorso del cuerpo.

Estructura de antenulas en macho y hembra de D. magna

PRODUCCIÓN DE MICROCUSTRACEOS CON DIFERENTES ALIMENTOS

ESPECIE ALIMENTO CONCENTRACION DE ALIMENTO ccl/ml. T°C CONSUMO DE

ALIMENIO cel/hr REFERENCIA

Daphnia magna bacterias coliformes

1,000 15 200

Manuflcva, 19642,000   7003,000   1,0504,000   1,700

D. magna Chlorella pyrenoidosa

410 18 124

Sushchenya, 1958

750   2551,140 a 2991,580 24 3932,160   4052,300   327

D. magna Soenedesmus sp8   58

Vasilleva, 1953415   275

D. magna Azotobacter y bacteria Coli

22    Rodina, 1984a

470    

D. pulex Chlamydomonas reinhardti

25 20 4.5

Richman, 195850   5.875   13.8100   19.1

Moina affinis Soenedesmus dimorphus

6,000 24.0  Shirota, 1966

  26.5  

Moina sp Soenedesmus sp

200 21±2 16.6Torrentera, 1986 (observación personal)500   48.0

Medios de cultivo para “pulga de agua”-I-

1. Póngase 6.6. gr de salvado de trigo en 1 litro de agua.2. Dejar fermentar en un lugar moderadamente caliente durante una semana.3. Diluir el litro a 100 litros de agua.4. Agregar 25 a 50 gr de Cloruro de Sodio (sal).5. Agregar 25 a 50 gr de Sulfato de Calcio.6. Colocar la solución en un sitio donde le de bastante sol.7. Sembrar el medio con “Pulgas de Agua”.

-II-1. Póngase 6.6 gr de salvado de trigo en 1 litro de agua.2. Dejar fermentar en un lugar moderadamente caliente durante una semana.3. Diluir 1.5 litros en 100 litros de agua.4. Agregar 25 a 50 gr de Cloruro de Sodio (sal).5. Agregar 25 a 50 gr de Sulfato de Calcio.6. Agregar 5 a 10 gr de hígado cocido en rebanadas de 1 mm de grueso. El hígado debe cocerse lo más rápidamente hasta que las proteínas se coagulen.7. No es necesario poner la solución al sol.8. Siémbrese el medio con “Pulgas de Agua”.9. Si falta oxígeno disuelto en la solución, debe retirarse un poco de agua (5 litros) y agregar la misma cantidad de agua limpia fresca y “aereada”.10. Se añadirá salvado fermentado e hígado cuando sea necesario.

-III-1. Mezclar hasta formar una suspensión uniforme 1/4 de paquete de levadura para pan fresca en 100 cc. de agua.2. Añádase la suspensión a 70 litros de agua.3. Debe mantenerse burbejeo de aire en la solución para evitar la falta de oxígeno disuelto.4. Siémbrese el medio con “Pulga de Agua”.5. Se agregará la suspensión cada cinco o seis días.

RESULTADOS DE CULTIVOS DE MICROCRUSTACEOS DE AGUA DULCE (CLADOCEROS) CON NUTRIENTESORGANICOS E INORGANICOS - SISTEMAS INTENSIVO Y EXTENSIVO

FUENTE DE NUTRIENTES

DOSIS DE FERTILIZACION POR m3 DE AGUA

NO. INICIAL DE ORGANISMOS g/m3

TIEMPO DE MADU RACION DEL CULTIVO (DIAS)

DURACION DEL CULTIVO (DIAS)

BIOMASA MAX. OBTENIDA g/m3

COSECHA DIARIA g/m3

VOLLMEN TOTAL DEL CULTIVO M31H2O

REFERENCIA

Excreta de caballo

1.5 kg (inicial) 0.75 kg (cada 8–10 días)

10 20–25     40   Shipet, 1950

Excreta de caballo

1.5 kg (inicial) 0.75 kg (cada 8–10 días)

10     612.5     Asketou, 1954

Infusión de excreta de caballo

10 litros 5–50 10–16 9–45 250 25.8 30.6 Meshkowa, 1957

Infusión de pasto (2 kg/100 1)

10 litros cada 4 días 15–20 15–19 26–47 250–1,500 34.4 (30–38.5) 5.5 Meshkova,

1957Infusión de excreta de caballo y pasto

10 litros cada 2–4 días (10:3) 10–275 10–24 14–42 250–1,000 27.3 27.5 Meshkova,

1957

Levadura proteolizada

16–20 g inicial 30–40 18–20 120–130 800–1,200 30–50 25–30 Briskina, 19608–10 g/5 días              

Levadura proteolizada

16–20 gr inicial 10–40 20–25 180–270   16 280 Briskina, 19608–10 g/5 días         26 525            23 557  

Fertilizantes minerales

37.5 g nitratos (13 mg N/l) 2 mg/l superfosfatos

20–40 12 15   13.4 332 Bogatova & Askerov, 1958

Fertilizantes minerales

37.5 g nitrato de amonio y 20 gr de levadura (al inicio) 19 g de nitrato de amonio y 10 g de levadura c/5 días

50 7 20–25(verano)       Asketov, 1958

100 5     25–40 20–35 1960

150 3–4 35–45(invierno)        

Excreta de caballo trozos de vegetales superfostatos y sulfato de amonio

0.5 – 1 kg         28   Konovalov & Binting, 1956

Levadura proteolizada y fertilizantes minerales 10:2

0.5 kg   3–4 10–15   106   Askenov, 1960          a    

          110    

• Referencias:• http://www.fao.org/docrep/003/w3732e/w3732e00.htm• http://www.dhigroup.com/~/media/Publications/Newsletters/

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• http://www.researchgate.net/publication/232700515_IMPORTANT_LIVE_FOOD_ORGANISMS_AND_THEIR_ROLE_IN_AQUACULTURE

• http://www.fao.org/3/contents/36ec64d7-d6e7-52c3-8d43-dc199945d143/AB473S00.htm#TOC

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